مقالة منهجية

استئصال ورم الدماغ في الفأر باستخدام نظام استئصال طفيف التوغل

أغسطس 7, 2025

في هذه المقالة

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المصدر: Alomari، S.، et al. تنفيذ استئصال أورام المخ طفيفة التوغل في القوارض لجمع الأنسجة عالية الجدوى. J. Vis. Exp. (2022)

يوضح هذا الفيديو استخدام نظام الاستئصال طفيف التوغل (MIRS) لاستئصال أنسجة الورم من فأر مخدر مزروع بورم. يتضمن الإجراء تثبيت الماوس على إطار تجسيمي ، وإعادة فتح موقع الجراحة السابق للوصول إلى الدماغ ، وإدخال قنية متخصصة تستخدم الشفط وشفرة دوارة لإزالة أقسام الورم. بعد الاستئصال ، يتم جمع الأنسجة المستأصلة من خلال أنابيب معقمة ، ويتم إغلاق الجرح للسماح بالشفاء.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت مراجعة جميع الإجراءات التي تنطوي على نماذج حيوانية من قبل اللجنة المؤسسية المحلية لرعاية ومجلس المراجعة البيطرية JoVE.

1. زرع الورم الأولي داخل الجمجمة

  1. في المرحلة الأولى من الدراسة ، قم بحقن كل فأر داخل الجمجمة ب 100,000 خلية (خط خلايا الورم الدبقي الفأري GL261) معلقة في 4 ميكرولتر من المحلول الملحي المخزن بالفوسفات (1x PBS) على عمق 2.5 مم بعد التقرير المنشور سابقا.
  2. حدد إشارة الورم في كل فأر باستخدام نظام التصوير في الجسم الحي بعد 9 أيام من زرع الورم.
    ملاحظة: إذا لزم الأمر ، قم بتقسيم الفئران إلى مجموعتين بناء على عبء الورم. في هذه الدراسة ، كانت المجموعتان هما: (1) الفئران ذات عبء الورم الصغير نسبيا (متوسط إشارة الإضاءة الحيوية = 5.5e + 006 ± 0.1e + 006 فوتون / ثانية ، ن = 10) و (2) الفئران ذات عبء الورم الكبير نسبيا (متوسط إشارة الإضاءة الحيوية = 1.69e + 007 ± 0.2e + 007 فوتون / ثانية ، ن = 10) ، (ص < 0.05 ، اختبار مان ويتني).
  3. قسم كل مجموعة إلى مجموعتين فرعيتين متقارنتين.
    >ملاحظة: في هذه الدراسة ، كانت المجموعتان الفرعيتان: الفئران غير المعالجة (ن = 5) والفئران المصابة بأورام تخضع لعملية استئصال جراحية باستخدام MIRS (ن = 5) ، (ص > 0.05 ، اختبار مان ويتني).
  4. بدءا من يوم الاستئصال ، تتبع تطور الورم باستخدام نظام التصوير في الجسم الحي بتردد يعتمد على نمط نمو الورم.
    ملاحظة: بالنسبة لخط خلايا GL261 ، تتبع تطور الورم في يوم الاستئصال ثم كل 3-6 أيام.

2. استئصال الورم باستخدام MIRS

  1. تخدير الفأر باستخدام خليط غاز الأيزوفلوران O2 في غرفة الحث أو الحقن داخل الصفاق لمحلول الزيلازين / الكيتامين.
    1. أدخل سلك الطاقة الموجود على اللوحة الخلفية في مقبس سلك الطاقة. قم بتشغيل الطاقة إلى النظام أو إيقاف تشغيلها عن طريق التبديل (1 = ON ، 0 = OFF).
    2. أدخل أحد طرفي خرطوم النيتروجين (المرفق مع وحدة التحكم) في التركيب الذكري على اللوحة الخلفية لوحدة التحكم. قم بتدوير صامولة التوصيل في اتجاه عقارب الساعة لتشديد الاتصال.
      ملاحظة: يجب توصيل الطرف المقابل للخرطوم بمصدر النيتروجين.
    3. قبل توصيل الخرطوم بمصدر النيتروجين ، تأكد من أن ضغط الإمداد لا يتجاوز 100 رطل لكل بوصة مربعة ، وهو ضغط إمداد الإدخال الموصى به لوحدة التحكم.
      ملاحظة: ستولد وحدة التحكم طموحها الخاص عند تنشيطها بواسطة دواسة القدم بمجرد توفير النيتروجين إلى وحدة التحكم.
    4. قم بتأمين غطاء منفذ التفريغ وإغلاقه لتجنب أي تسرب في نظام التفريغ. ستؤثر أي تسريبات في نظام الشفط على أداء وحدة تحكم MIRS.
    5. إذا كان الشفط أقل من 17 أثناء الإعداد أو التحضير ، فتحقق من ضبط مقبض الشفط الموجود في مقدمة وحدة التحكم على المستوى الأقصى (100) ، وتأكد من عدم وجود تسرب في نظام الشفط ، وتأكد من صحة ضغط إمداد إدخال النيتروجين.
    6. لتوصيل دواسة القدم بوحدة التحكم، أدخل موصل دواسة القدم الرمادية في الوعاء الرمادي الخاص بها حتى يسقط صورا ويتناسب مع موضعه.
      ملاحظة: يتصل موصل دواسة القدم بوحدة التحكم في اتجاه واحد، ويتم إدخاله بإفتاحه.
    7. لتوصيل القبضة بوحدة التحكم، أدخل موصل القبضة الأزرق في الوعاء الأزرق الخاص به حتى يسقط صوت ويتناسبه في موضعه.
      ملاحظة: يتصل موصل القبضة بوحدة التحكم في اتجاه واحد، ويتم إدخاله بإفتاحه.
    8. قم بتجهيز كل قبضة قبل استخدام النظام عن طريق شفط سائل معقم من وعاء صغير إلى الفتحة ، من خلال الأنبوب والقبضة ، ثم في العلبة للتأكد من تشحيم الجزء الداخلي من الأنبوب والقبضة لتقليل انسداد الأنسجة.
    9. استعد للشفط بمفرده أو الشفط بالقطع عن طريق تحديد الوضع المناسب على اللوحة الأمامية لوحدة التحكم. ابدأ باستخدام دواسة القدم.
  2. أدخل قنية MIRS 23 G في فتحة الأزيز على عمق 2.5 مم.
  3. ابدأ عملية الاستئصال عن طريق الضغط على دواسة القدم المتصلة بالقنية. قم بإجراء دورة كاملة واحدة (360 درجة) أو أكثر من الاستئصال باستخدام مقبض التحكم في المقاسة.
    ملاحظة: كلما زاد عدد الدورات التي تم إجراؤها ، زاد حجم الأنسجة السرطانية التي تم استئصالها.
  4. بمجرد اكتمال عملية الاستئصال ، اسحب قنية MIRS 23 G من فتحة الأزيز واستخدم 5 مل من 1x PBS لشطف الأنبوب وإخراج أي حطام متبقي.
  5. قم بإزالة الماوس من الإطار التجسيمي وأغلق الجرح باستخدام دباسة أو مادة خياطة 4-0 (انظر جدول المواد).
  6. ضع الماوس على وسادة تدفئة أو تحت ضوء دافئ أثناء التعافي من التخدير قبل إعادته إلى قفصه.
  7. بعد اكتمال التجربة ، قم بتطهير القنية عن طريق التنظيف. قم بالتناوب مع الوسائط المبردة والهواء "لدفع" كل الأنسجة المقطوعة مرة أخرى إلى علبة التجميع. قم بإزالة علبة التجميع من النظام وقم بتثبيتها بالغطاء المرفق.
  8. بعد الانتهاء من الخطوة 2.12 ، ضع الطرف البعيد للقنية في 3٪ H2O2 وقم بتطبيق الشفط عند 24-25 في الزئبق لملء خط الشفط مرة أخرى إلى علبة تجميع الشفط واتركه لمدة 60-90 ثانية.
  9. راقب الفئران بحثا عن أي علامات عصبية (حركات غير منتظمة أو نوبات صرعية) بعد الإجراء.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

فئة الشكل = 'image image-style-align-center image_resized' style = 'display: table ؛ margin-left: auto ؛ margin-right: auto ؛ width: 75٪ ؛ '>figure-results-1

الشكل 1: إعداد نظام MERS. (أ) نظام الاستئصال طفيف التوغل (MIRS) لورم المخ في نماذج القوارض ذات الأنسجة المدمجة نظام الحفظ. (ب) اللوحة الأمامية لوحدة التحكم MIRS. 1 = قوة النظام ، 2 = دواسة ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

<فئة الشكل = 'الجدول'><فئة الجدول = 'ck-table-resize'>قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة الاسم الشركة رقم فهرسي التعليقات Anased (Injection Xylazine, 100 mg / mL)Covetrus33198 نظام التخديرباترسون Scientific78935903 حاوية نفايات غاز التخديرباترسون Scientific78909457 C57Bl / 6 ، الفئران البالغة من العمر 6-8 أسابيعكود سلالة مختبرات نهر تشارلز027 IsofluraneCovetrus11695-6777-2 Isoflurane Vaporizerباترسون Scientific78916954 KetamineCovetrus11695-0703-1 Kopf الإطار التجسيميKopf Instruments5001 Lightfield المجهرBioTekCytation 5 وحدة الحقن الدقيقKopf5001 مثقاب المحرك الدقيقForedomF210418 نظام التصوير بالرنين المغناطيسيBruker7T Biospec Avance III ماسح التصوير بالرنين المغناطيسي NICO نظام لا يحصىNICO شركة مرهم العيونPuralube مرهم بيطري غراءسيجما ألدريتش #P4762 PBSInvitrogen # 14190250 PenStrepMillipore SigmaN1638 حل PercollSigma Aldrich #P4937 تحكم الماصةFalconA07260 محلول بوفيدون اليودAplicare52380-1905-08 RPMI MediaInvitrogenINV-72400120 شفرة مشرطCovetrus7319 مقبض مشرطأدوات العلومالدقيقة 91003-12 مهلة علامة الجلدD538،851مزيل الدبابيسMikRonACR9MM دباسةMikRonACA9MM دبابيسكلاي آدامز427631 الإطار التجسيميKopfInstruments 5000 السكروزسيجما ألدريتشS9378 خياطة ، فيكريل 4-0إيثيكونJ494H

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة