مقالة منهجية

جمع وعزل والإثراء التي تحدث بصورة طبيعية بكتيريا Magnetotactic من البيئة

23.4K مشاهدات

DOI:

10.3791/50123

نوفمبر 15, 2012

في هذه المقالة

ملخص

ونحن يبرهن على وجود طريقة لجمع البكتيريا magnetotactic (MTB) التي يمكن تطبيقها على المياه الطبيعية. يمكن أن تكون معزولة وMTB المخصب من عينات الرواسب باستخدام الإعداد بسيطة نسبيا والتي يستفيد من المغناطيسية البكتيريا الطبيعية. ويمكن بعد ذلك أن تدرس معزولة MTB بالتفصيل باستخدام كل من الضوء والمجهر الإلكتروني.

الملخص

البكتيريا Magnetotactic (MTB) هي الكائنات الدقيقة التي تم المائية الأولى المذكورة لا سيما في 1975 1 من عينات الرواسب التي تم جمعها في المستنقعات المالحة من ولاية ماساتشوستس (الولايات المتحدة الأمريكية). ومنذ ذلك الحين تم اكتشاف MTB في المياه والرواسب الطبقية الأعمدة من جميع أنحاء العالم 2. ميزة واحدة مشتركة بين جميع MTB هو أنها تحتوي على magnetosomes، والتي هي داخل الخلايا، البلورات النانوية المغناطيسية غشاء محدد من أكسيد الحديد الأسود (الحديد 3 O 4) و / أو greigite (الحديد 3 S 4) أو 3 على حد سواء، 4. في نصف الكرة الشمالي، وعادة ما تنجذب إلى MTB الطرف الجنوبي من قضيب مغناطيسي، بينما في نصف الكرة الجنوبي عادة ما تنجذب إلى الطرف الشمالي من المغناطيس 3،5. يمكن استغلال هذه الخاصية عند محاولة عزل MTB من العينات البيئية.

واحدة من الطرق الأكثر شيوعا لتخصيب MTB هو استخدام الحاويات البلاستيكية واضحة لجمع الرواسب والمياه من مصدر طبيعي،مثل بركة المياه العذبة. في نصف الكرة الشمالي، يتم وضع الطرف الجنوبي من قضيب مغناطيسي ضد خارج الحاوية فقط فوق الرواسب في واجهة الرواسب في المياه. بعد بعض الوقت، يمكن إزالة البكتيريا من داخل الحاوية بالقرب من المغناطيس مع ماصة ثم تخصب باستخدام مزيد من مضمار السباق الشعرية المغناطيس 6 و أ. المخصب مرة واحدة، يمكن وضعها على البكتيريا على شريحة المجهر باستخدام أسلوب قطرة شنقا والتي لوحظت في ضوء المجهر أو المودعة على شبكة النحاس، ولاحظ باستخدام المجهر الإلكتروني انتقال (TEM).

باستخدام هذا الأسلوب، قد يكون درس معزولة MTB مجهريا لتحديد خصائص السلوك مثل السباحة، ونوع وعدد من سياط مورفولوجيا الخلايا، الخلايا، شكل بلورات مغناطيسية، وعدد من magnetosomes، وعدد من سلاسل magnetosome في كل خلية، وتكوين بلورات nanomineral، وجود فجوات بين الخلايا.

البروتوكول

1. MTB كوكتيل

  1. عند اتخاذ قرار بشأن موقع لجمع المياه العذبة البكتيريا magnetotactic (MTB)، فمن الأفضل أن تبدأ في كثير من الأحيان مع بركة أو تيار بطيئة الحركة لديها طبقة ناعمة الرواسب الطينية. في هذه المظاهرة جمعنا عينة على حافة نهر Olentangy في حرم جامعة ولاية أوهايو (OSU) في كولومبوس، أوهايو (الولايات المتحدة الأمريكية). ورغم أن هذا كان موقع مناسب للتظاهر لدينا، وبروتوكول الموصوفة هنا تنطبق على أي مكان المائية. ويمكن الاطلاع على المواد المستخدمة في هذا البروتوكول في الجدول 1. العثور على الموقع حيث عمق المياه ما بين 10 و 100 سم. في مثل هذا الموقع، يجب ان تجمع طبقة العلوية معظم الرواسب باستخدام واضحة والمسمار قمة الحاوية. حلج القطن الرواسب والمياه في وعاء حتى يتم ملأها ثلث إلى نصف الرواسب المتبقية وحجم بالماء. إبقاء الحاويات الغارقة حتى يتم ملأها بالماء ثم الغطاء بإحكام ث الحاوياتإيث في أعلى غطاء المسمار. انها ليست ضرورية لخلط الرواسب. مسح خارج الحاوية الجافة مع منشفة وثم أخذ عينة إلى مختبر الخاص بك. فإنه ليس من الضروري الاستعجال في عينة المختبر الخاص بك مرة أخرى إلى. لقد تركنا عينات MTB في حاويات بلاستيكية في هذا المجال لعدة أيام قبل إعادتهم إلى مختبرنا. يجب أن تكون قابلة للحياة MTB لعدة أسابيع إلى أشهر ما دمت تخزين العينات في مكان بارد ومظلل في الميدان.
  2. مرة واحدة في العينة في المختبر الخاص، وتخفيف الغطاء وترك الأمر تغطي الحاوية لتقليل كمية التبخر. تخزين الحاويات في درجة حرارة الغرفة في غرفة مظلمة، درج، أو تغطي كامل الحاوية مع رقائق الألومنيوم. السماح للالرواسب والجسيمات الدقيقة لتسوية تماما إلى أسفل الحاوية من خلال ترك العينة لعدة ساعات دون عائق لعدة أيام. فإنه ليس من الضروري أن يمزج الرواسب، MTB تفضل بيئة دون عائق. الجدران واضحة من وعاء من البلاستيكسوف تسمح لك للتأكد من أن الجزيئات قد استقروا إلى أسفل. اعتمادا على نموذج الخاص بك، يمكن أن يبقى على قيد الحياة MTB في العينة لعدة شهور.

2. MTB عزل

  1. عندما كنت على استعداد لعزل مغناطيس MTB مكان، على جانبي الحاوية البلاستيكية حوالي 1 سم فوق واجهة الرواسب في المياه (الشكل 1A). يجب الحرص على عدم تعكير صفو الرواسب في قاع الإناء. وضع القطب الجنوبي للقضيب مغناطيسي على جانب واحد من الحاويات والجانب الشمالي من المغناطيس شريط آخر على الجانب المقابل (الشكل 1A). يمكن أن تستخدم أي تقريبا المغناطيس، مثل قضيب تحريك مغناطيسي أو كبيرة مغناطيس الثلاجة. ويمكن استخدام أي شيء لدعم مغناطيس في الارتفاع الصحيح فوق واجهة الرواسب في المياه. لقد وجدنا أن يستريح في مغناطيس على الجزء العلوي من الورق المقوى أو البلاستيك مربع هو أفضل، ومع ذلك، يمكن أيضا أن تكون مسجلة المغناطيس إلى خارج الحاوية البلاستيكية. انتظر 30 دقيقة لعدةساعات للبكتيريا على السباحة إلى المغناطيس.
  2. استخدام ماصة معقمة لجمع بعناية المياه من داخل الحاوية (الشكل 1A) بالقرب من موقف قضيب مغناطيسي القطب الجنوبي (على العينات التي تم جمعها في نصف الكرة الشمالي). يجب أن تحتوي على هذه المياه التي تم MTB لجذب المغناطيس شريط القطب الجنوبي. المقبل، يجب استخدام مضمار السباق الشعرية لإثراء MTB.

3. MTB مضمار السباق

  1. من أجل إثراء عينتك مع البكتيريا magnetotactic، مضمار السباق الشعرية ضروري (أرقام 1B و 1C). هذه يجب القيام بها قبل عزل الخلايا من الحاوية البلاستيكية واضحة.
  2. استخدام بوصة 5.75 (146 ملم) والزجاج ماصة باستور لإجراء مضمار السباق. استخدام قلم الماس أو ملف لقطع الجزء العلوي من ماصة، وطول ماصة ليست حاسمة، ولكن يجب أن تكون قادرة على احتواء ما يقرب من 1-2 مل من الماء. بعد ذلك، استخدم ناسخ بنسن لإذابة بحيث تلميحيصبح مختومة (الشكل 1C). ينبغي أن يكون لها ماصة الناتجة نهاية مفتوحة ومغلقة نهاية.
  3. جعل العديد من هذه حلبة والأوتوكلاف ذلك الحين. بالإضافة إلى ذلك، سوف تحتاج إلى الأوتوكلاف القطن والإبر عدة معدنية طويلة.
  4. إضافة تصفية المياه عينة، تم جمعها من الرواسب بالقرب من واجهة الماء هو مبين في الشكل 1A، إلى مضمار السباق تعقيمها باستخدام إبرة معدنية طويلة تعلق على حقنة تصفيتها. يجب أن يكون حجم المسام للمرشح أن يكون 0.22 ملم للقضاء على الحطام والملوثات من المياه. من المهم أن تكون متأكدا تماما من أنه لا توجد فقاعات الهواء في الزجاج الشعرية.
  5. توصيل الجزء السفلي من مضمار السباق مع القطن المعقم (1B الشكل). استخدام إبرة معدنية لدفع القطن في نهاية مختومة من مضمار السباق لذلك هو 0،5 حتي 1 سم بعيدا عن الطرف مختومة (الشكل 1C).
  6. باستخدام ماصة معقمة، إضافة المياه التي تحتوي على MTB (من القسم 2.2) لعينة البحثeservoir (نهاية مفتوحة) لمضمار السباق استعدادا MTB (1B الشكل).

4. MTB التخصيب

  1. مرة واحدة يتم تعبئة السوائل مضمار السباق مع العينة، وضع على جانبها على سطح أفقي (على سبيل المثال، وهو الفوق) ووضع القطب الجنوبي للقضيب مغناطيسي (في نصف الكرة الشمالي) بالقرب من غيض مختومة من مضمار السباق (أرقام 1B و1C).
  2. إنتظر من 5 إلى 30 دقيقة لMTB للهجرة من خلال القطن. ثم يجب عليك جمع السائل بالقرب من غيض من مضمار السباق. يمكن انتظار طويل جدا، أعرض الملوثات، مثل البكتيريا متحركة أخرى، لغيض من شعري. اختياريا، يمكنك استخدام المجهر ضوء لعرض غيض من مضمار السباق ومشاهدة MTB جمع معلومات سرية في مضمار السباق في. وهذا سوف يسمح لك لتحديد كم من الوقت يستغرق لMTB للهجرة من خلال المكونات القطن.
  3. استخدام السكين برفق الماس لجعل الصفر قليلا بالقرب من المكونات القطن والمفاجئة قبالة نهاية مضمار السباق.
  4. <لى> استخدم حقنة 1 مل مع إبرة ضيقة (25 أو 27 مقياس) لإزالة السائل من غيض من مضمار السباق. يجب أن تحتوي هذه العينة السائلة الآن MTB المخصب.

5. MTB المراقبة من المجهر الضوئي

  1. وضع قطرة (10-20 ميكرولتر) من العينة MTB المخصب على ساترة.
  2. الوجه بسرعة ساترة أكثر من ذلك الانخفاض يواجه الآن إلى أسفل وتتدلى من ساترة.
  3. وضع ساترة على عصابة س، وهذا هو يستريح على شريحة زجاجية. ينبغي لليا الدائري ويبلغ قطرها أصغر قليلا ثم ساترة (حوالي 1 سم، الشكل 2).
  4. ضع هذا الانخفاض في الصعود إلى منصة الشنق المجهر الخفيفة والتركيز على حافة واحدة من الهبوط. والهدف 60X الجافة يعمل بشكل جيد جدا لأن معظم لديها فتحة عالية العددية (NA، على سبيل المثال، 0.93) ولكن لا تتطلب النفط، والتي من الصعب استخدام للأسلوب قطرة شنقا (الشكل 2).
  5. وضع الطرف الجنوبي من شريط المغناطيس إلى إغلاق د شنقاوسوف تبدأ شرطة عمان السلطانية وMTB إلى الهجرة نحو حافة الهبوط الأقرب إلى المغناطيس (الشكل 3). في غضون بضع دقائق وينبغي أن يكون العديد من MTB على حافة الهبوط (الشكل 3). تثبت لنفسك أن البكتيريا ممغنطة عن طريق عكس قطب المغناطيس ثم مراقبة البكتيريا السباحة في الاتجاه المعاكس.

6. MTB مراقبة من قبل المجهر الإلكتروني بالإرسال (TEM)

  1. وضع قطرة (~ 20 ميكرولتر) من MTB المخصب على شبكة النحاس والسماح للبكتيريا لتسوية لمدة 10 دقيقة.
  2. الفتيل من الماء الزائد مع قطعة من ورق الترشيح نظيفة.
  3. اختياريا، يمكن الشبكة ملطخة سلبا مع خلات اليورانيل 2٪، 2٪ حامضي الفسفوتنغستيك 7.2، أو 2.5٪ الصوديوم موليبديت 7 و 8 و 9. يتم ذلك عن طريق وضع شبكة النحاس على قطرة من وصمة عار على الفور بعد احتضان الشبكة مع MTB المخصب. احتضان الشبكة مع وصمة عار سلبية، فإن بعض الأحيان تختلف تبعا للشارععين المستخدمة، والفتيل ثم قبالة السائل مع قطعة من ورق الترشيح نظيفة.
  4. مراقبة MTB باستخدام المجهر الإلكتروني انتقال (TEM، الشكل 4). لعمل صفها هنا وكثف لMTB استقرت Formvar والكربون المغلفة النحاس شبكة الشبكات 200 (تيد بيلا # 01800). وضعت شبكات مع الجانب الكربون أسفل على قطرة من تعليق الخلية لمدة تصل إلى 10 دقيقة، ثم يغسل مرة واحدة على الفور عن طريق وضع شبكة على قطرة ماء لمدة 30 ثانية. لتلطيخ، وضعت على شبكات قطرة من خلات اليورانيل 2٪ (تيد بيلا # 19481) لمدة 30 ثانية إلى 5 دقائق ثم تجفف وباستخدام تماما قطعة من ورق الترشيح. تم تحليل الشبكات بواسطة TEM باستخدام إما الروح Tecnai الاتحاد الدولي للفروسية في 80kV أو F20 Tecnai FEI باستخدام زاوية الحلقي عالية STEM مجال الظلام في 200kV.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

A المغناطيس هو أداة فعالة يمكن استخدامها لعزل البكتيريا magnetotactic (MTB) الواردة في العينات البيئية (الشكل 1A). A مضمار السباق الشعرية (1B الشكل) يستخدم الخواص المغناطيسية للMTB لجذبهم من خلال المكونات القطن حيث يمكن فصلهم عن غير الكائنات الدقيقة الواردة magnetotactic أيضا في عينة بيئية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

لا Magnetotactic البكتيريا وجدت في كل بالضرورة البيئة المائية 8 ولكن عندما تفعل ذلك تحدث، يمكن العثور عليها بناء على أمر من 100 - 1،000 الخلايا في المليلتر 2. من أجل مراقبة MTB باستخدام المجهر الضوئي، وسوف تحتاج ما يقرب من 50 البكتيريا / مل في عينة الخاص بك 8. إذا كان هناك أي MTB أو قليلة في عينة الخاص بك، فإنك سوف تحتاج إما لتحديد موقع جديد لجمع عينات بيئية أو ستحتاج الى محاولة واحدة أو أكثر من التقنيات التي تمت مناقشتها في القسم التالي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الإعلان عن أي تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

وأيد هذا العمل من المنح المقدمة من مؤسسة العلوم الوطنية الأميركية (EAR-0920299 0745808 وEAR)؛ الولايات المتحدة المؤسسة الوطنية للعلوم الشرق آسيا والمحيط الهادئ المعاهد الصيفية، والجمعية الجيولوجية الأمريكية برنامج المنح البحثية والمنح للبحوث خريجي الدراسات العليا والمنح الدراسية من جامعة ولاية أوهايو. نود أن نشكر رئيس التحرير واثنين من المراجعين المجهولين للتعليق على بصيرة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
البند الاسم شركة كتالوج رقم التعليقات (اختياري)
الزجاج الشرائح فيشر العلمية S95933
الزجاج باستور pipets فيشر العلمية 13-678-6A
يا الدائري متجر الأجهزة
تغطية زلات فيشر العلمية 12-542B
شريط المغناطيس فيشر العلمية S95957
حاوية أي أي بلاستجيم أو إناء زجاجي التي يمكن أن تعقد ما لا يقل عن 0.5 لتر، ويمكن أن يختم
قطن أي
المجهر مع عدسة 60X الجافة زايس عدسة 60X الجافة ليس من الضروري على الاطلاق، ولكن هذا يعطي NA عالية دون استخدام النفط
الماس القلم فيشر العلمية 08-675
0.22 ملم فلتر فيشر العلمية 09-719C
1 مل حقنة فيشر العلمية NC9788564
ميكروسنتريفوج أنابيب فيشر العلمية 02-681-320
Formvar / الكربون200 شبكة وشبكات النحاس تيد بيلا شركة 01800
اليورانيل خلات تيد بيلا شركة 19481
Tecnai الروح TEM الاتحاد الدولي للفروسية
Tecnai F20 S / TEM الاتحاد الدولي للفروسية

المراجع

  1. Blakemore, R. Magnetotactic bacteria. Science. 190, 377-379 (1975).
  2. Blakemore, R. P. Magnetotactic bacteria. Annual Reviews in Microbiology. 36, 217-238 (1982).
  3. Bazylinski, D. A., Frankel, R. B. Controlled Biomineralization of Magnetite (Fe3O4) and Greigite (Fe3S4) in a Magnetotactic Bacterium. Applied and Environmental Microbiology. 61, 3232-3239 (1995).
  4. Lefevre, C. T., Menguy, N., et al. A Cultured Greigite-Producing Magnetotactic Bacterium in a Novel Group of Sulfate-Reducing Bacteria. Science. 334, 1720-1723 (2011).
  5. Simmons, S. L., Bazylinski, D. A., et al. South-seeking magnetotactic bacteria in the Northern Hemisphere. Science. 311, 371-374 (2006).
  6. Wolfe, R., Thauer, R., et al. A 'capillary racetrack' method for isolation of magnetotactic bacteria. FEMS Microbiology Letters. 45, 31-35 (1987).
  7. Rodgers, F. G., Blakemore, R. P. Intercellular structure in a many-celled magnetotactic prokaryote. Archives of Microbiology. 154, 18-22 (1990).
  8. Moench, T. T., Konetzka, W., et al. A novel method for the isolation and study of a magnetotactic bacterium. Archives of Microbiology. 119, 203-212 (1978).
  9. Balkwill, D., Maratea, D. Ultrastructure of a magnetotactic spirillum. Journal of Bacteriology. 141, 1399-1408 (1980).
  10. Lins, U., Freitas, F., et al. Simple homemade apparatus for harvesting uncultured magnetotactic microorganisms. Brazilian Journal of Microbiology. 34, 111-116 (2003).
  11. Jogler, C., Lin, W., et al. Toward Cloning of the Magnetotactic Metagenome: Identification of Magnetosome Island Gene Clusters in Uncultivated Magnetotactic Bacteria from Different Aquatic Sediments. Applied and Environmental Microbiology. 75, 3972-3979 (2009).
  12. Lin, W., Li, J., et al. Newly Isolated but Uncultivated Magnetotactic Bacterium of the Phylum Nitrospirae from Beijing, China. Applied and Environmental Microbiology. 78, 668-675 (2012).
  13. Li, J., Pan, Y., et al. Biomineralization, crystallography and magnetic properties of bullet-shaped magnetite magnetosomes in giant rod magnetotactic bacteria. Earth and Planetary Science Letters. 293, 368-376 (2010).
  14. Oestreicher, Z., Valerde-Tercedor, C. Magnetosomes and magnetite crystals produced by magnetotactic bacteria as resolved by atomic force microscopy and transmission electron microscopy. Micron. 43, 1331-1335 (2012).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة