يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

الجوانب الفنية للناسور أبهري أجوفي ماوس

17K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/50449

⸱

يوليو 11, 2013

في هذه المقالة

ملخص

والهدف هو إنتاج ناسور شرياني والتي هي بسيطة وقابلة للتكرار. هذه الطريقة لا تستخدم الخيوط الجراحية أو لاصق الغراء. ولذلك فإن العينات يمكن استخدامها مع أقل قدر من المواد الأجنبية للتحليل.

الملخص

وتناقش الجوانب الفنية للناسور شرياني وريدي خلق في الماوس. تحت التخدير العام، يتم إجراء شق في البطن، ويتعرض الشريان الأبهر والوريد الأجوف السفلي (IVC). يتم تشريح الشريان الأورطي infrarenal الداني والقاصي الشريان الأورطي لوضع المشبك وثقب إبرة، على التوالي. ويولى اهتمام خاص لتجنب تشريح بين الشريان الأورطي وIVC. بعد لقط الشريان الأورطي، يتم استخدام 25 G إبرة لثقب الجدران كلا من الشريان الأورطي في IVC. يتم استخدام النسيج الضام المحيطة لضغط مرقئ. سوف خلق الناجح لAVF تظهر نابض تدفق الدم في الشرايين في IVC. ويمكن تحقيق مزيد من AVF ناجحة تأكيد دوبلر بالموجات فوق الصوتية بعد الجراحة.

المقدمة

الخيار الأكثر شيوعا الذي تم اختياره لاستبدال العلاج الكلوي في المرضى الذين يعانون من نهاية مرحلة المرض الكلوي هو غسيل الكلى. يتم تنفيذ الوصول لغسيل الكلى عن طريق ناسور شرياني وريدي (AVF)، الكسب غير المشروع الشرايين والأوردة، أو وضع القسطرة المؤقتة. على الرغم من AVF هي النمط المفضل من الوصول، AVF ما زالت بعيدة عن الكمال. الابتدائي معدلات المباح AVF سنة واحدة هي 60-65٪ فقط، مع العديد من الإخفاقات بسبب تضخم neointimal. والبيولوجيا الجزيئية وعلم وظائف الأعضاء من تشكيل AVF العادية وغير القادرة على التأقلم تشكيل ما زالت تحمل سيئة. على هذا النحو، هو الكثير الذي يمكن تحقيقه في تحسين النتائج AVF مع الربح المرفقة في فهم تنظيم تشكيل الناسور. 1-3

تدرس تعرض الوريد إلى تدفق الشرايين عادة في سياق ترقيع الوريد التي هي نماذج مباشرة لتجاوز الجراحية. 4، 5 على الرغم من أن ترقيع الوريد وAVF فضح بالمثل الوريد إلى بيئة الشرايين، وهناك عدة دي الحرجةfferences بينهما. أولا، المقاومة من السرير جريان القاصي هو أقل من ذلك بكثير في AVF، كما يستنزف AVF إلى الأذين الأيمن في حين أن الكسب غير المشروع الوريد المصارف في كثير من الأحيان إلى المريضة الشرايين الصغيرة البعيدة، مما أدى إلى زيادة تدفق الدم وإجهاد القص في AVF. ثانيا، يمكن الدم في الطرف الوريدي من AVF تكون مزيجا من الوريدي والدم الشرياني مما يؤدي إلى انخفاض الأوكسجين مقارنة محتوى الشرياني بحتة في الكسب غير المشروع الوريد. ثالثا، لا يتم إزالة الوريد في AVF من السرير، مما يؤدي إلى الحفاظ على لايتي venorum وinnervations العصبي، بالمقارنة مع تبديل كاملة من الكسب غير المشروع الوريد في السرير الشرايين. وأخيرا، فإن عدد anastomoses هو عادة اثنين في ترقيع الوريد في حين أن AVF لديه عادة واحدة فقط. في هذه الدراسة، ونحن نقدم نموذج الفأر من ناسور أبهري أجوفي التي يمكن استخدامها لدراسة AVF.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. التخدير وقبل العملية الإجراءات

  1. تحريض التخدير العام
    يتم الحصول على موافقة المناسبة رعاية الحيوان واللجنة المؤسسية الاستخدام. ذكر الفئران C57/black، الذين تتراوح أعمارهم بين 10 أسابيع، هي تخدير. تقديم 4٪ isoflurane ومع 0.8 لتر / دقيقة الأكسجين إلى مربع زجاجي عبر المرذاذ isoflurane وثم ضع الماوس في الداخل. بدلا من ذلك، إذا فضل من قبل الجراح والتخدير داخل الصفاق يمكن استخدامها.
  2. الحفاظ على التخدير
    بعد التأكد من التخدير عن طريق عدم وجود رد فعل لقرصة أخمص القدمين، ويتم وضع الماوس على طاولة العمليات في موقف ضعيف مع قناع السيليكون. وانخفض isoflurane وإلى 2٪ للحفاظ على مستوى التخدير المناسبة.
  3. إزالة الشعر
    تتم إزالة الشعر بطني من الرقبة إلى أسفل البطن باستخدام مزيل الشعر. ويفضل مزيل الشعر، لأن الشعر الذي يتم ترك باستخدام ماكينة حلاقة قد تتداخل مع الموجات فوق الصوتية دوبلر.

2. Ultrasoun قبل الجراحةد

  1. أهداف الموجات فوق الصوتية
    يتم إجراء الفحص بالموجات فوق الصوتية دوبلر قبل الجراحة AVF وذلك لتسجيل النتائج على مستوى القاعدة التي يمكن مقارنتها مع النتائج اللاحقة للعمليات الجراحية لرؤية التغيرات التشريحية والفسيولوجية.
  2. نقاط المراقبة
    يتم فحص حبل الوريد، وفوق الأشعة تحت الكلوي الوريد الأجوف السفلي (IVC)، والشريان الأورطي البطني باستخدام كل نبض دوبلر وB-واسطة.
  3. قياسات
    ويقاس باستخدام الوضع B، قطر كل الأوعية الدموية. وبالإضافة إلى ذلك، يتم تسجيل أقصى سرعة (سرعة الانقباضي الذروة في الشرايين) والطول الموجي في كل نقطة من النقاط المذكورة أعلاه القياس.

3. إجراءات المنطوق

  1. إعداد الماوس
    إعداد موقع شق مع مطهر موضعي وتستمر تقنية العقيم السليم أثناء الجراحة بما في ذلك استخدام ثنى الجراحية، والقفازات وأدوات معقمة، الخ
  2. البطن
    يتم شق البطن خط الوسط جمعةROM الحافة السفلية للكبد إلى ما فوق العانة.
  3. تعرض الشريان الأورطي وIVC.
    يتم إدراج ضام ويتم سحب كل من أحشاء من تجويف البطن إلى الجانب الأيمن وأبقى ملفوفة في الشاش غارقة مع المياه المالحة. تشريح الغشاء الذي يربط خلف البريتوان وانخفاض القولون للحصول على مرأى ومسمع من الشريان الأورطي وIVC. الضغط على المثانة إذا تم المتوسعة ذلك ويحصل في الطريق.
  4. التعرض للموقع ثقب
    وسوف موقع ثقب يكون بين نصف إلى ثلاثة أرباع المسافة من اليسار الوريد الكلوي إلى التشعب الأبهري. (الشكل 1) تشريح الهامش الأيسر من الشريان الأورطي بحيث يمكن ثقب. نضع في اعتبارنا أن الشريان الأبهر يتوضع حوالي 45 درجة وراء IVC ويجب أن تشريح أنه الخلف بالإضافة إلى اليسار. (الشكل 2) والنقطة الأكثر أهمية في هذه الجراحة ليست لتشريح بين الشريان الأورطي وIVC. تبقي بعيدا عنهم.
  5. التعرض للموقع المشبك من منطقة المسؤوليةتا
    تشريح الشريان الأورطي infrarenal من الأنسجة المحيطة بها. يجب الحرص على عدم إيذاء IVC على اليمين واليسار الأوردة الكلوية مع روافده على اليمين.
  6. لقط من الشريان الأورطي
    المشبك الأبهر الداني من خلال تطبيق مقاطع المجهرية.
  7. تناوب الشريان الأورطي
    بواسطة استيعاب النسيج الضام المحيطة الشريان الأورطي، وتناوب على الشريان الأورطي بحيث ثقب يمكن أن تكون مصنوعة من الجانب الظهري قليلا من الشريان الأبهر (الشكل 2).
  8. ثقب الشريان الأورطي من خلال لIVC
    حفظ الشريان الأورطي في وضع استدارة، ثقب الشريان الأورطي من خلال لIVC باستخدام إبرة G 25. (الشكل 2) إذا نجحت، يمكن أن ينظر إلى إبرة من خلال جدار IVC رقيقة.
  9. الارقاء
    عن طريق سحب الأنسجة خلف الصفاق، بما في ذلك العضلات، والتفاف موقع ثقب من الشريان الأورطي. لا ضغط الشريان الأورطي ضد IVC، كما أنه قد تجلط AVF (الشكل 3).
  10. دي لقط الأبهر
    بعد تأكيدمن الارقاء الأولية، وإزالة المشبك الشريان الأورطي. قد يحدث نزيف إضافية ولكن يمكن أن تتوقف مع مزيد من الضغط الموصوفة أعلاه. على اجتثاث تحامل، الدم الشرياني ويمكن رؤية تصب في IVC بدلا من الظلام الوريدي تدفق الدم.
  11. إغلاق البطن
    عودة الأمعاء إلى وضعها الطبيعي وإغلاق البطن.

4. الإجراءات اللاحقة للعمليات الجراحية

  1. الرعاية اللاحقة للعمليات الجراحية
    بعد إغلاق البطن، يتم إيقاف isoflurane و. الرعاية اللاحقة للعمليات الجراحية بما في ذلك وعي والعناية بالجروح يتم تطبيقها وفقا للتعليمات التي أوصت بها رعاية الحيوان واللجنة المؤسسية الاستخدام. لتسكين نستخدم البوبرينورفين عند 0.1 مغ / كغ كل ساعة intrasmuscularly 12 لمدة 24 ساعة في أعقاب العمليات الجراحية.
  2. الموجات فوق الصوتية بعد العمليات الجراحية
    في اليوم الأول بعد العملية، يتم إجراء دوبلر بالموجات فوق الصوتية للتأكد من AVF. وبالإضافة إلى ذلك، يتم قياس المتغيرات الأخرى للتحقق من التغييرات من قبل العمليةالقيم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

بعد الممارسة، البقاء على قيد الحياة في اليوم الأول بعد العملية هو عادة أكثر من 95٪، وفي يوم 7 بعد الجراحة، وكان البقاء على قيد الحياة 91.3٪ الشكلان 1 و 2 إظهار موقع ثقب مثالية في وجهات النظر الاكليلية ومستعرضة؛ موضع ثقب موقع أمر بالغ الأهمية لبقاء جيدة دون الحصول على النزف المفرط. حالة وفاة أثناء العمل الجراحي والوفيات المبكرة بعد الجراحة وعادة ما تكون بسبب نزيف. هذا يميل إلى أن يحدث مع تشريح المفرطة بين الشريان الأورطي وIVC، أو عن عدم كفاية الضغط مرقئ. ويبين

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وهناك العديد من التقارير التي وصفت AVF في الفئران، بما في ذلك AVF الفخذ، 6، 7 السباتي لالوداجي AVF 8 و الأورطيه-الأجوف AVF. 9، 10 الجرذ هو عدة مرات أكبر من الفأرة، مما يسمح لعملية جراحية أسهل في الفئران مقارنة الماوس. ومع ذلك، من أجل الاستفادة من السلالات والمتغيرات الجينية الماوس يجب تمديد الاجراء ليشمل نماذج الماوس. قدم عدة تقارير نشرت سابقا نموذج AVF في الفئران، ولكن كانت هذه التقارير عموما في سياق تطوير نموذج لفشل القلب في الجانب الأيمن، وذلك ب...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

شكر وتقدير

وأيد هذا العمل في جزء من المعهد الوطني للصحة منح R01-HL095498، وكذلك مع الموارد واستخدام المرافق في كونيتيكت VA نظام الرعاية الصحية، والغرب هافن، CT.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
Vevo 770 آلة الموجات فوق الصوتيةVisualsonics20-60 ميجا هرتز رأس المسح الضوئي ؛ RMV-704
المشبك الوعائيRoboz Surgical Instrument Co.RS-5424
المشبك تطبيق الملقطRoboz Surgical Instrument Co.RS-5410
25 إبرة قياسبيكتون ديكنسونBD PrecisionGlide إبرة 25 جم × 7/8 # 305124

المراجع

  1. Allon, M. Current management of vascular access. Clinical Journal of the American Society of Nephrology. 2 (4), 786-800 (2007).
  2. Dixon, B. S. Why don't fistulas mature? Kidney International. 70 (8), 1413-1422 (2006).
  3. Roy-Chaudhury, P., Spergel, L. M., Besarab, A., Asif, A., Ravani, P. Biology of arteriovenous fistula failure. Journal of Nephrology. 20 (2), 150-163 (2007).
  4. Kudo, F. A., Muto, A., et al. Venous identity is lost but arterial identity is not gained during vein graft adaptation. Arteriosclerosis, Thrombosis, and Vascular Biology. 27 (7), 1562-1571 (2007).
  5. Muto, A., Yi, T., et al. Eph-B4 prevents venous adaptive remodeling in the adult arterial environment. The Journal of Experimental Medicine. 208 (3), 561-575 (2011).
  6. Croatt, A. J., Grande, J. P., et al. Characterization of a model of an arteriovenous fistula in the rat: the effect of L-NAME. The American Journal of Pathology. 176 (5), 2530-2541 (2010).
  7. Misra, S., Fu, A. A., et al. The rat femoral arteriovenous fistula model: increased expression of matrix metalloproteinase-2 and -9 at the venous stenosis. Journal of Vascular and Interventional Radiology. 19 (4), 587-594 (2008).
  8. Kojima, T., Miyachi, S., et al. The relationship between venous hypertension and expression of vascular endothelial growth factor: hemodynamic and immunohistochemical examinations in a rat venous hypertension model. Surgical Neurology. 68 (3), 277-284 (2007).
  9. Caplice, N. M., Wang, S., et al. Neoangiogenesis and the presence of progenitor cells in the venous limb of an arteriovenous fistula in the rat. American Journal of Physiology Renal Physiology. 293 (2), F470-F475 (2007).
  10. Nath, K. A., Kanakiriya, S. K., Grande, J. P., Croatt, A. J., Katusic, Z. S. Increased venous proinflammatory gene expression and intimal hyperplasia in an aorto-caval fistula model in the rat. The American Journal of Pathology. 162 (6), 2079-2090 (2003).
  11. Karram, T., Hoffman, A., et al. Induction of cardiac hypertrophy by a controlled reproducible sutureless aortocaval shunt in the mouse. Journal of Investigative Surgery. 18 (6), 325-334 (2005).
  12. Perry, G. J., Mori, T., et al. Genetic variation in angiotensin-converting enzyme does not prevent development of cardiac hypertrophy or upregulation of angiotensin II in response to aortocaval fistula. Circulation. 103 (7), 1012-1016 (2001).
  13. Guzman, R. J., Krystkowiak, A., Zarins, C. K. Early and sustained medial cell activation after aortocaval fistula creation in mice. The Journal of Surgical Research. 108 (1), 112-121 (2002).
  14. Castier, Y., Lehoux, S., et al. Characterization of neointima lesions associated with arteriovenous fistulas in a mouse model. Kidney International. 70 (2), 315-320 (2006).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

بزل الأبهرتقويس الوريد الأجوف السفليالتصوير بالموجات فوق الصوتية بدوبلرالتشريح الجراحيالضغط المرقئتثبيت الأوعية الدمويةالبزل بالإبرةالمراقبة بعد الجراحةتخدير الحيوان