وقد أجريت جميع استخدام الحيوانات وفقا للبروتوكولات المعتمدة من قبل اللجنة المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام.
1. إعداد خلطات وسائل الإعلام
- العقيمة PBS درجة الحموضة: 7.3 (1 L)
ز 0.23 ناه 2 ص 4
1.15 ز نا 2 هبو 4
9.0 غرام كلوريد الصوديوم
يستغرق حجم بالماء DI. تعقيم الأوتوكلاف مع. - خلية الإعلام الثقافة (100 مل)
89 مل RPMI
10 مل 10٪ FBS
1 مل مضاد حيوي فطري (ابام) 100 ميكروغرام 50 مم 2 المركابتويثانول (3.5 ميكروغرام الأوراق المالية 2 المركابتويثانول إلى 96.5 ميكروغرام PBS) - FACS العازلة (الفرز نيون تفعيل خلية) (لاستخدامها خلال التدفق الخلوي) 2٪ FBS في برنامج تلفزيوني العقيمة
- iTh17 ميكس (بناء على عدد من العينات، وتحديد حجم اللازمة لجميع خلطات ووسائل الإعلام)
1.5 ميكروغرام / مل مكافحة CD28
20 نانوغرام / مل IL-6
5 نانوغرام / ملTGF-β
2. وستكون خلايا مطلي في ثلاث نسخ تحت الشروط التالية
- لوحة ملزمة لمكافحة CD3، ومكافحة CD28 (وهذا هو مزيج السيطرة التنشيط).
- iTH17: لوحة ملزمة لمكافحة CD3، ومكافحة CD28، IL-6، TGF-β.
3. مكافحة CD3 محدد لوحة (10 ميكروغرام / مل)
فمن المستحسن أن إعداد لوحات مكافحة CD3 محدد لوحة يتم على الأقل 4 ساعة قبل الوقت ستضاف الخلايا إلى لوحات.
- إضافة 30 ميكرولتر مكافحة CD3 إلى الآبار (غير المخفف مكافحة CD3 في برنامج تلفزيوني العقيمة) من جديد 96 U جيدا أسفل MICROTEST الأنسجة لوحة الثقافة، والاستفادة من الجانبين من لوحة لضمان تغطية موحدة للآبار. احتضان عند 37 درجة مئوية لمدة 4 ساعات، ثم بردت حتى حان الوقت لإضافة يمزج والخلايا إلى صفيحة.
4. الماوس تشريح
- ويستند هذا البروتوكول على استخدام C57BL / 6 هيئة التصنيع العسكريه، 3-8 أشهر من العمر، والتي تم شراؤها من مختبر جاكسون (بار هاربور، ME).
- التضحية الماوس باستخدام ثاني أكسيد الكربون 2 الاختناق، وتأكيد وفاة مع خلع عنق الرحم لاحقة.
- تعقيم أدوات تشريح الفئران ومنطقة شق مع الايثانول 70٪ ويبدأ تشريح.
- من وجهة النظر بطني، والاستيلاء على الجلد التي هي سابقة لفتح مجرى البول وتبدأ خفض مع مقص يصل خط الوسط بطني حتى وصلت إلى منطقة الذقن. اتخاذ الاحتياطات اللازمة وليس لتمزيق أو قطع في بطانة جدار البريتوني.
- سحب على الجلد وحصره للسماح بالوصول إلى الغدد الليمفاوية مريحة أثناء الإزالة.
- سيتم إزالة الغدد الليمفاوية والطحال جمع كل بالملقط، وتوضع في طبق بتري معقمة تحتوي على 5 مل من autoMACS تشغيل شراؤها من مخزن بيوتيك Miltenyi (يرجى الرجوع إلى أرقام 2 و 3 لالعقدة الليمفاوية والطحال إزالة الرسوم البيانية).
- إزالة الغدد الليمفاوية الإبطية التي هيوجدت بالقرب من الإبط (تحت الإبط) وراء عضلات الصدر من كل فأر.
- إزالة الغدد الليمفاوية العضدية التي تقع في الأنسجة الضامة التي تقع بالقرب من بعضها الإبطين.
- إزالة الغدد الليمفاوية العنقية سطحية وجدت في عنق كل فأر.
- إزالة الغدد الليمفاوية الأربية التي تقع في منطقة الورك في بالاشتراك في الأوعية الدموية 3.
- للوصول إلى الغدد الليمفاوية المساريقي، وقطع من خلال بطانة البريتوني حتى خط الوسط بطني. تم العثور على الغدد الليمفاوية المساريقي في النسيج الضام الذي يحمل الأمعاء معا. وجدوا عموما في سلسلة من 4-8 العقد، ويمكن أن تبدو وكأنها "سلسلة من اللآلئ". تأكد من سحب السلسلة بأكملها.
- يقع الطحال في منطقة البطن، خلف المعدة والأمعاء. إزالته عن طريق سحب وفصلها من البنكرياس.
- طحن الأجهزة تحت غطاء العقيمة باستخدام 2 شرائح المجهر بلوري. وضع الغدد الليمفاوية أو الطحال علىالجانب بلوري واحد شريحة المجهر، وفرك مع الجانب متجمد من الشريحة الثانية حتى تفككت. تكرار حتى يتم وقف جميع الغدد الليمفاوية والطحال.
ملاحظة: من المستحسن أن تبدأ مع الغدد الليمفاوية وتنتهي مع الطحال، والدم سوف تجعل من الصعب أن نرى الغدد الليمفاوية المتبقية في المخزن المؤقت autoMACs.
- لتصفية أجهزة الأرض في تعليق خلية واحدة، تبدأ من خلال للطي على قطعة من 40 ميكرومتر النايلون المواد عدة مرات، ووضع في أعلى 15 مل أنبوب الطرد المركزي. يجب أن تكون مادة النايلون تقريبا 3 × 3 بوصة
- استخدام حقنة 5 مل و 21 إبرة G لنضح 5 مل من autoMACs تشغيل العازلة وأجهزة الأرض. الاستغناء ببطء في مادة النايلون مطوية. الحرص على تجنب ثقب المواد مع الإبرة.
وبمجرد تحقيق تعليق خلية واحدة، يجب أن يظهر الحل كما شاحب، حل يتسق مع عدم وجود visib: ملاحظةلو قطع من الأنسجة الصلبة. إذا بقيت المواد الصلبة، وإعادة نضح والاستغناء من خلال قطعة مطوية جديدة من النايلون وضعت في 15 مل أنبوب الطرد المركزي الجديدة.
- دائما حفاظ على الخلايا على الجليد عندما لا تكون قيد الاستعمال.
5. فصل الخلايا
- لأفضل النتائج، يجب الحصول على الأقل CD4 محض 80٪ + السكان خلايا CD25 من خلال autoMACS برو فاصل خلية باستخدام MACS CD4 + CD25 + T التنظيمية العزلة الخلية عدة، الماوس. يتم الحصول على بروتوكول للاحتفاظ السلبية من السكان خلايا CD4 + CD25 من خلال بيوتيك Miltenyi.
6. TH17 التمايز
- جمع السكان CD25 خلايا CD4 + بعد الانفصال مع autoMACS برو فاصل الخلية.
- عد الخلايا المخفف في نسبة 1:1000 مع الأزرق التريبان باستخدام عدادة الكريات.
- مرة واحدة وقد تم تحديد تركيز من عدد الخلايا، تمييع تعليق خلية إلى 1 × 10 6 خلية / مل في الخلية سائل الإعلام والثقافة.
- إخراج 96 لوحات جيدة مع لوحة ملزمة لمكافحة CD3 بعد 4 ساعة.
- غسل الآبار مكافحة CD3 المغلفة مع 200 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني. كرر 2 مرات.
- لغسل إضافة 200 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني العقيمة لمكافحة CD3 الآبار المغلفة وإزالة PBS في حاوية النفايات.
- إضافة 100 ميكرولتر من مزيج iTh17 أو السيطرة تفعيل مزيج (انظر النقطة رقم 2) إلى الآبار في ثلاث نسخ.
- إضافة 100 ميكرولتر من الخلايا إلى كل بئر التي تم وضعها إما مزيج TH17 أو مزيج السيطرة التنشيط.
- احتضان الخلايا لمدة 72 ساعة على الأقل أو ما يصل إلى 5 أيام (TH17 التمايز يمكن الحصول عليها بعد 72 ساعة أو بعد 5 أيام.)
- يمكن تقييم TH17 تمايز الخلايا عن طريق تلطيخ وتدفق cytometric التحليل، ELISA، أو QPCR
7. تنشيط الخلية (فقط بين الخلايا اللازمة لتلطيخ)
- إزالة 96 لوحات جيدة من الحاضنات في نهاية إما 72 ساعة أو 5 أيام
- نذكر بأن TH17 التمايزلا يمكن أن يتحقق إما ن بعد 72 ساعة أو 5 أيام.
- لكل حالة (على سبيل المثال التحكم التنشيط أو iTh17)، ونقل الخلايا التي هي في ثلاث نسخ في بئر واحدة من 24 لوحة جيدا ثقافة الخلية. وقد تم حتى الآن تجميع الخلايا لشرط واحد في بئر واحدة من 24 لوحة الثقافة جيدا، بدلا من كونها في ثلاث نسخ في 96 U جيدا أسفل لوحة الثقافة.
- الحجم الكلي للكل بئر في 24 لوحة جيدا ثقافة الخلية هو الآن 600 ميكرولتر. رفع حجم كل بئر إلى 1 مل مع وسائل الإعلام ثقافة الخلية.
- إضافة سلطة النقد الفلسطينية (phorbol ميريستات خلات) (50 نانوغرام / مل)، ionomycin (1 ميكرومتر)، ومنتدى بواو الاسيوى (Brefeldin-A) (10 ميكروغرام / مل) إلى كل بئر في البئر لوحة 24 خلية ثقافة في تركيزات المدرجة.
- احتضان عند 37 درجة مئوية لمدة 4 ساعات.
8. تلطيخ الخلايا
- الخلايا وصمة عار مع علامات خارج الخلية وبين الخلايا المطلوب لتحليل تدفق cytometric. للكشف عن وجود سو IL-17، ويتم تلطيخ الخلايا مع أجسام مضادة لمكافحة IL-17A. وتشمل علامات سطح الخلية أوصت CD4، CD8، وCD25.
- استخدام داخل الخلايا تلطيخ خلوى كاتب كيت ماوس من العلوم البيولوجية دينار بحريني لIL-17 بين الخلايا تلطيخ.
- لكل عينة، وخلايا بيليه، وإزالة طاف، وبيليه الخلية resuspend في 200 ميكرولتر FACS العازلة (2٪ FBS في برنامج تلفزيوني).
- نقل خلايا معلق إلى 96 خلية تدفق الخلوي لوحة.
- تدور أسفل الخلايا لمدة 5 دقائق عند 1،200 دورة في الدقيقة وتجاهل طاف.
- إضافة 200 ميكرولتر العازلة PBS نظام مراقبة الأصول الميدانية، الطرد المركزي لمدة 5 دقائق عند 1،200 دورة في الدقيقة، وتجاهل طاف.
- خلايا resuspend في 100 ميكرولتر من FACS العازلة وتطبيق 100 ميكرولتر من الأجسام المضادة خارج الخلية (أب) خليط (يتم خارج الخلية أب الخليط في المخزن FACS). احتضان لمدة 15 دقيقة في RT، مع تغطية احباط.
- كرر الخطوة 8.1.4.
- كرر الخطوة 8.1.5 2X.
- الخلايا resuspend في 100 ميكرولتر من BD Cytofix / Cytoperm العازلة. Incubأكل لمدة 20 دقيقة في RT، مع تغطية احباط.
- إضافة 100 ميكرولتر من 1X دينار بحريني بيرم / غسل العازلة، أجهزة الطرد المركزي لمدة 5 دقائق في 1،200 دورة في الدقيقة، وتجاهل طاف. تكرار.
- إضافة 50 ميكرولتر من الخلايا أب الخليط. (يتم بين الخلايا أب الخليط في 1X دينار بحريني بيرم / غسل) احتضان لمدة 15 دقيقة في RT، مع تغطية احباط.
- كرر الخطوة 8.1.10.
- الخلايا resuspend في 200 ميكرولتر من تلطيخ العازلة دينار بحريني.
- وضع الخلايا معلق في التدفق الخلوي أنابيب تحتوي على 200 ميكرولتر تلطيخ العازلة دينار بحريني (الحجم النهائي هو 400 ميكرولتر).
- تخزينها في 4 درجات مئوية حتى العينات جاهزة للقراءة.
9. تحليل تدفق Cytometric
- بوابة السكان الخلية الحية.
- من السكان الخلية الحية، البوابة على CD4 + CD8 السكان.
- من CD4 + CD8 السكان، على بوابة IL-17A + السكان.
- استنادا إلى النتائج التجريبية السابقة لدينا، وسوف 100٪ من IL-17A + CD25 + يكون السكان.
* تم الحصول على إجمالي عدد الخلايا المطلقة بعد تجميع عينة يثلث
** تم تحديد العدد المطلق للCD4 + CD25 + IL-17A + الخلايا بضرب العدد الكلي للخلايا عن طريق نسبة بوابة الحي والنسبة المئوية لمجموع الخلايا التي تحمل علامات نسب محددة، CD4، CD25، وIL-17A، و يحددها التدفق الخلوي.
10. QPCR وELISA
- الخلايا مكان لا تستخدم لتحليل تدفق cytometric في أنبوب 1.5 مل إيبندورف وأجهزة الطرد المركزي في 13،000 دورة في الدقيقة لمدة 5-10 دقيقة. سيتم استخدام الخلايا الموجودة في الخلية بيليه بعد الطرد المركزي لتحليل QPCR. تم إجراء التحليل باستخدام QPCR PTC-200 بلتيير cycler الحرارية (BIORAD).
- جمع طاف من أنابيب طرد لELISAs. أجريت IL-17A ELISAs باستخدام زوج الأضداد TC11-18H10 (التقاط، وأنواع العدد 555068) وTC11-8H4 البيوتين (الكشف، وأنواع العدد 555067) تم شراؤها من العلوم البيولوجية دينار بحريني. IL-17A ELISA ستاتم الحصول عليها من ndards eBioscience (كتالوج عدد 14-8171-80).
- بعد إزالة طاف، resuspend الخلايا المتبقية لاستخدامها في QPCR في 175 ميكرولتر العازلة RNA تحلل (استخدامها على الفور لاستخراج الحمض النووي الريبي، والتوليف [كدنا]، وQPCR، أو تخزينها في -80 درجة مئوية لاستخدامها في وقت لاحق).
- الرجوع إلى الجدول الثاني لتسلسل التمهيدي لIL-17A والأكتين (مسك بيت الجينات)