مقالة منهجية

وهناك طريقة لمنهجية التقييم الكهروكيميائية والكهربية العصبية من أقطاب تسجيل

DOI:

10.3791/51084

⸱

مارس 3, 2014

 ,  ,  , 
1School of Psychological Science, La Trobe University, 2Intelligent Polymer Research Institute, University of Wollongong, 3ARC Centre of Excellence for Electromaterials Science, 4Health Innovations Research Institute, College of Science, Engineering, and Health, RMIT University

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الطلاء الكهربائي مختلفة تؤثر على أداء تسجيل العصبية من خلال تغييرات في الخصائص الكهروكيميائية والكيميائية والميكانيكية. المقارنة من الأقطاب الكهربائية في المختبر هي بسيطة نسبيا، ولكن المقارنة بين الاستجابة في الجسم الحي هو عادة معقدة بسبب الاختلافات في مسافة القطب / الخلايا العصبية وبين الحيوانات. توفر هذه المقالة طريقة قوية للمقارنة بين أقطاب تسجيل العصبية.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وعادة ما يتم اختبار مواد جديدة وتصاميم ليزرع العصبية على حدة، مع مظاهرة من الأداء ولكن دون الإشارة إلى خصائص زرع أخرى. هذا يمنع مجموعة الرشيد للزرع سيما فيما الأمثل لتطبيق معين وتطوير مواد جديدة على أساس معايير الأداء الأكثر أهمية. هذه المادة يطور بروتوكول للفي المختبر والمجراة في اختبار من الأقطاب الكهربائية تسجيل العصبية. يتم توثيق المعلمات أوصت لاختبار الكهروكيميائية والكهربية مع الخطوات الرئيسية والمشاكل المحتملة التي تمت مناقشتها. يلغي هذا الأسلوب أو يقلل من تأثير العديد من الأخطاء المنهجية موجودة في أبسط نماذج اختبار في الجسم الحي، وخاصة تغيرات في المسافة القطب / الخلايا العصبية وبين النماذج الحيوانية. والنتيجة هي وجود علاقة قوية بين حرجة في المختبر والمجراة في الردود، مثل مقاومة والاشتراكيةنسبة gnal إلى الضجيج. ويمكن بسهولة أن تتكيف هذا البروتوكول لاختبار المواد القطب الآخر والتصاميم. يمكن توسيعها في المختبر التقنيات لأي أسلوب تدميري الأخرى لتحديد مؤشرات الأداء الهامة الأخرى. ويمكن أيضا أن تستخدم لمبادئ النهج الجراحية في مسار السمعي تعديلها إلى مناطق أخرى أو العصبية الأنسجة.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يزرع العصبية وتستخدم بشكل متزايد للبحث، والسيطرة على الأطراف الاصطناعية والعلاج من الاضطرابات مثل مرض باركنسون والصرع، وفقدان الحواس 1،2. قياس و / أو السيطرة على كل من المواد الكيميائية والتركيبة الكهربائية من الدماغ هو الأساس لجميع يزرع العصبية. ومع ذلك، فإنه من المهم لإدارة العلاج الوحيد عندما الأنسجة العصبية في حالة الشاذة للحد من الآثار الجانبية 3. على سبيل المثال، ينبغي أن تنطبق التحفيز والتشجيع العميق للمخ لعلاج الصرع فقط نبضة كهربائية إلى الدماغ أثناء النوبة. قد تكون بعض الآثار الجانبية خلل التوتر، وفقدان الذاكرة، الارتباك، وضعف الوظائف المعرفية، والهلوسة التي يسببها، والاكتئاب أو مضادات الاكتئاب 3،4. في العديد من الأجهزة، وبالتالي نظام الحلقة المغلقة ضروري لتسجيل النشاط الكهربائي لتحريك وتحفيز عندما تم الكشف عن حالة غير طبيعية. وتستخدم أقطاب تسجيل أيضا للسيطرة الموالينأجهزة sthetic. فمن الأهمية بمكان لتسجيل النشاط العصبي المستهدفة وفقا لأعلى إشارة إلى نسبة الضوضاء ممكن لتحقيق اثار الأكثر دقة وتحكم الجهاز. وهناك نسبة كبيرة إشارة إلى الضجيج هو أيضا مرغوب فيه للغاية لتطبيقات البحوث، وأكثر موثوقية البيانات يمكن الحصول عليها، مما أدى إلى عدد أقل من اختبار المواضيع المطلوبة. وهذا سوف يسمح أيضا فهم أكبر لآليات ومسارات المشاركة في التحفيز العصبي والتسجيل.

بعد أن تم وضعها زرع العصبية في الدماغ، ويتم تشغيل استجابة مناعية 5،6. وتنقسم الدورة الوقت للاستجابة بشكل عام إلى مراحل الحادة والمزمنة، يتألف كل منها من العمليات البيولوجية المختلفة 7. الاستجابة المناعية يمكن أن يكون لها آثار وخيمة على أداء عملية الزرع، مثل عزل الأقطاب من الخلايا العصبية المستهدفة من قبل التغليف في ندبة الدبقية أو التدهور الكيميائي للمواد زرع 8.هذا يمكن أن تقلل من نسبة الإشارة إلى الضوضاء من القطب تسجيل وانتاج الطاقة من القطب تحفيز، وتؤدي إلى فشل قطب كهربائي 9. اختيار دقيق من التصميم والمواد المستخدمة في زراعة ضرورية لمنع فشل على مدى عمر الزرع.

وقد وضعت العديد من مواد مختلفة وتصاميم زرع مؤخرا لتحسين نسبة الإشارة إلى الضوضاء والاستقرار زرع لتسجيل العصبية. وشملت المواد الكهربائي البلاتين والإيريديوم، التنغستن، وأكسيد الإيريديوم، وأكسيد التنتالوم، الجرافين، أنابيب الكربون النانوية، مخدر إجراء البوليمرات، والهلاميات المائية في الآونة الأخيرة. المواد الركيزة اختبار يشمل أيضا السيليكون، وأكسيد السيليكون، نيتريد السيليكون، والحرير، وتفلون، بوليميد، والسيليكون. كما تم التحقيق مختلف التعديلات الكهربائي، وذلك باستخدام الطلاء مثل laminin، neurotrophins، أو المجمعة monolayers الذاتي والعلاجات باستخدام الكهروكيميائية، والبلازما والتقنيات البصرية. تصميم زرعو يمكن أن يكون 1 -، 2 - أو 3 الابعاد مع الأقطاب عموما في غيض من اجراء تحقيق العزل أو على طول حافة عرقوب لاختراق أقطاب أو في مجموعة 2 الأبعاد لسطح القشرة يزرع. بغض النظر عن التصميم أو المواد الكهربائي، وقد أظهرت الدراسات السابقة عادة أداء عملية الزرع الجديدة دون الرجوع إلى البنى زرع أخرى. هذا يمنع إجراء تقييم منهجي لممتلكاتهم.

يوفر هذا البروتوكول طريقة لمقارنة المواد القطب مختلفة عبر مجموعة من التقنيات التحليلية والكهربية. لأنه يقوم على مقالة نشرت مؤخرا والتي مقارنة 4 مخدر مختلفة إجراء الطلاء البوليمر (polypyrrole (PPY) وبولي 3 ،4-ethylenedioxythiophene (PEDOT) مخدر مع كبريتات (SO 4) أو الفقرة التولوين سلفونات (نقط)) و 4 طلاء مختلفة، سمك 10. وجدت هذه المادة مادة واحدة، PEDOT-نقط مع الوقت ترسب 45 ثانية،لديها أعلى نسبة ارتفاع عدد وإشارة إلى الضوضاء مع أصغر الضوضاء في الخلفية والتي كانت هذه المعايير تعتمد على مقاومة القطب. كما عرض PEDOT-نقط biostability الحادة متفوقة بالمقارنة مع غيرها من مخدر إجراء البوليمرات وأقطاب الإيريديوم العارية. بروتوكول يسمح المعلمات الحرجة السيطرة على نسبة والاستقرار إشارة إلى الضوضاء يتم تحديدها واستخدامها لزيادة تحسين أداء الأقطاب تسجيل العصبية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على البروتوكول من قبل جامعة لا تروب (09-28P) وجامعة RMIT لجان الأخلاقيات الحيوان (1315).

1. إعداد القطب والأولية في المختبر اختبار

  1. إعداد الحلول ترسب طلاء الكهربائي، على سبيل المثال 10 ملي 3،4-ethylenedioxythiophene (EDOT) و 0.1 M الصوديوم شبه التولوين سلفونات (نا 2 نقطة) لتشكيل بولي 3 ،4-ethylenedioxythiophene-نقط (PEDOT-نقطة).
  2. ربط مجموعة الكهربائي إلى potentiostat.
  3. وضع بعناية مجموعة الكهربائي في حل ترسب والمشبك في مكانه.
  4. وضع شبكة البلاتين عداد كهربائي وحج / أجكل إشارة القطب في حل ترسب والاتصال إلى potentiostat.
  5. باستخدام potentiostat، والطلاء على ودائع الأقطاب المطلوب. سوف ظروف ترسب (المحتملة، والوقت الحالي) تختلف تبعا الطلاء المطلوب. لطلاء PEDOT-نقطة، وتطبيق بوتيهوقد استخدم ntial من 1 V لمدة 15، 30، 45، أو 60 ثانية. يجب أن تكون مغلفة أربعة أقطاب على مجموعة مع طلاء في تكوين مراحل (الشكل 1).
  6. إزالة مجموعة من القطب الحل ترسب وشطف بلطف مع الماء منزوع الأيونات.
  7. كرر الإجراء طلاء مع المواد الأخرى كما تريد.
  8. إعداد الاختبار في المختبر حل (0.3 M فوسفات الصوديوم (نا 2 هبو 4) في الماء منزوع الأيونات).
  9. ربط مجموعة الكهربائي إلى potentiostat.
  10. وضع بعناية مجموعة الكهربائي في حل الاختبار والمشبك في مكانه.
  11. وضع شبكة البلاتين عداد كهربائي وحج / أجكل إشارة القطب في حل الاختبار والاتصال إلى potentiostat.
  12. باستخدام potentiostat، نفذ متتابعة الكهروكيميائية مقاومة الطيفي (EIS) (المحتملة الإزاحة 0 V، سعة 10 فولت، نطاق الترددات 10-100،000 هرتز) وvoltammetry دوري (1 دورة، مجموعة المحتملة 0.8 إلى -0.8 V، معدل المسح 100 بالسيارات / ثانية) على جميع الأقطاب. يتم الاحتفاظ الأقطاب لم تختبر في إمكانات الدائرة المفتوحة ويستخدم وقت هادئ من 1 ثانية بين كل اختبار. جميع أقطاب 32 على اتصال مع الحل للدورة اختبار كامل من 1 ساعة.
  13. إزالة مجموعة الكهربائي من حل الاختبار وشطف بلطف مع الماء منزوع الأيونات.
  14. القيام بأي تحليلات أخرى المطلوب مثل المجهر الضوئي.
  15. متجر تحقيقات في وعاء واقية جافة لمنع الضرر وتدهور السطوح الكهربائي.

2. القطب زرع

  1. وزن الفئران.
  2. حقن يوريثان (20٪ ث / ت في الماء المقطر، 1.3 جم / كجم IP) للتخدير nonrecovery.
  3. ضمان بداية التخدير عن طريق اختبار لمنعكس قرصة أخمص قدميه الانسحاب. إذا التخدير ليس كافيا، ينبغي أن تدار جرعات تكميلية من يوريثان (0.3 جم / كجم الملكية الفكرية).
  4. تطبيق مواد التشحيم العين، ثم يحلق رأسه من أحدامال.
  5. وضع الحيوان في وضعية الانبطاح على طبق homeothermic وإدراج التحقيق المستقيم (37.5 درجة مئوية).
  6. وضع شريط أذن واحدة في الموقف النهائي المتوقع تقريبا في إطار التجسيمي، ومن ثم ضبط الحيوان لوضع شريط الأذن في الصماخ السمعي الخارجي.
  7. محاذاة شريط الأذن الثانية في صماخ السمع الخارجي المقابل. تحول الحيوان في الحانات الأذن لتتماشى مع صاحب الأسنان.
  8. باستخدام ملقط الأسنان الفئران، فتح الفك الحيوان، ربط القواطع العليا على حامل الأسنان وتضييق الأنف في المكان.
  9. خلق شق في الجلد من الرأس، ما يقرب من 1 ملم إلى يمين خط الوسط وبين 10 ملم إلى 10 ملم منقاري الذيلية لامدا.
  10. سحب الجلد والعضلات أفقيا من شق لفضح الجداري والعظام الجداري باستخدام 20٪ محلول بيروكسيد الهيدروجين والشاش، فرك السطح من العظام عرضة للخطر.
  11. حفر حفرة حوالي3 مم 2 في العظام الجداري أقرب إلى امدا وخط الوسط ممكن، وإزالة المكونات العظام. باستخدام ملحي معقم، تدفق حفرة لإزالة أي غبار أو شظايا العظام التي قد تؤدي إلى تلف القطب.
  12. باستخدام مقص حادة، حادة، تشريح تحت القفا من الرقبة وخلق تجويف. التفاف سلك حج / أجكل في الصوف والقطن، وتشبع ذلك بمحلول ملحي ثم قم بإدراج الإلكترود المرجعي في تجويف.
  13. إجراء شق في جافية على المستوى السهمي باستخدام غيض من إبرة.
  14. إرفاق مجموعة الكهربائي إلى القطب مناور وضبط موقفها خلال افتتاح مع 19 °-rostro الذيلية زاوية. إدراج يدويا القطب حوالي 2 ملم في الدماغ نحو أكيمة السفلي.
  15. نعلق المتكلم إلى شريط الأذن اليسرى أجوف.
  16. ضمان تشغيل مكبر للصوت على. ثم تحقق التخدير الحيوان قبل ختم غرفة تسجيل.

3.في اختبار فيفو

  1. تقديم رشقات نارية الضوضاء البيضاء، (ضجيج جاوس الموزعة، 1-44 كيلو هرتز، و 10 مللي ثانية الوقت ارتفاع الخريف) ورصد النشاط على كل قطب كهربائي. الحد الأقصى المعدل الذي ينبغي تسليم رشقات نارية هو انفجار واحدة كل 200 ميللي ثانية.
  2. باستخدام ميكرودريفي الآلية، تضاف ببطء مجموعة الكهربائي حتى يتم تسجيل النشاط مدفوعة سمعيا على 3 أقطاب معظم البعيدة على كل عرقوب (عدد وموقف النشاط تسجيل الأقطاب يمكن أن تختلف مع القطب الكهربائي موضع أو التصميم).
  3. تنفيذ بروتوكول التحفيز الصوتية باستخدام 300 التكرار من 50 ميللي ثانية رشقات نارية الضوضاء البيضاء (ضجيج جاوس الموزعة، 1-44 كيلو هرتز، و 10 مللي ثانية الوقت ارتفاع السقوط) مع معدل الرسوب 1 ثانية في 70 ديسيبل، وتسجيل النشاط المتعددة الوحدات في كل القطب ( 24.4 معدل أخذ العينات كيلو هرتز).
  4. إدراج ببطء مجموعة القطب آخر 200 μ م في IC لوضع كل قطب كهربائي في تقريبا نفس الموقف القطب القاصي أكثر من عشره موقف تسجيل الأولي.
  5. تكرار التحفيز الصوتية وبروتوكول تسجيل العصبية.
  6. مواصلة إدراج مجموعة الكهربائي في 200 م μ الخطوات وأداء التحفيز الصوتية وبروتوكول تسجيل العصبية حتى سجلت جميع أقطاب النشاط مدفوعة سمعيا من لا يقل عن 3 وظائف (عادة 8-12 مواقف القطب الشاملة).
  7. التراجع عن مجموعة الكهربائي في 200 م μ الخطوات ومواصلة أداء التحفيز الصوتية وبروتوكول تسجيل العصبية حتى يتحقق الموقف المبدئي مجموعة الكهربائي.
  8. سحب بعناية مجموعة الكهربائي يدويا.
  9. حقن جرعة زائدة من الصوديوم بنتوباربيتون (Lethobarb؛ 200 ملغم / كغم IP) إلى الموت ببطء الحيوان.
  10. شطف بلطف مجموعة الكهربائي مع الماء المقطر. ثم تحقيقات مخزن في حاوية واقية جافة لمنع الضرر وتدهور السطوح الكهربائي.

4. بعد غرس في فيتاميناختبار ريال عماني

  1. شطف بلطف مجموعة الكهربائي مع الماء المقطر لإزالة أي تلوث.
  2. ربط مجموعة الكهربائي إلى potentiostat.
  3. وضع بعناية مجموعة الكهربائي في حل الاختبار والمشبك في مكانه.
  4. وضع شبكة البلاتين عداد كهربائي وحج / أجكل إشارة القطب في حل الاختبار والاتصال potentiostat.
  5. باستخدام potentiostat، نفذ متتابعة الكهروكيميائية مقاومة الطيفي (EIS) (المحتملة الإزاحة 0 V، سعة 10 فولت، نطاق الترددات 10-100،000 هرتز) وvoltammetry دوري (1 دورة، مجموعة المحتملين 0.8 إلى -0.8 V، معدل المسح 100 بالسيارات / ثانية ) على جميع الأقطاب. يتم الاحتفاظ الأقطاب لم تختبر في إمكانات الدائرة المفتوحة ويستخدم وقت هادئ من 1 ثانية بين كل اختبار. جميع أقطاب 32 على اتصال مع الحل للدورة اختبار كامل من 1 ساعة.
  6. إزالة مجموعة الكهربائي من حل الاختبار وشطف بلطف مع الماء منزوع الأيونات.
  7. Pالدانتيل مجموعة الكهربائي في محلول التنظيف الأنزيمية لمدة 24 ساعة.
  8. إزالة مجموعة الكهربائي من الحل وشطف مع الماء المقطر.
  9. ربط مجموعة الكهربائي إلى potentiostat.
  10. وضع بعناية مجموعة الكهربائي في حل الاختبار والمشبك في مكانه.
  11. وضع شبكة البلاتين عداد كهربائي وحج / أجكل إشارة القطب في حل الاختبار والاتصال potentiostat.
  12. باستخدام potentiostat، نفذ متتابعة الكهروكيميائية مقاومة الطيفي (EIS) (المحتملة الإزاحة 0 V، سعة 10 فولت، نطاق الترددات 10-100،000 هرتز) وvoltammetry دوري (1 دورة، مجموعة المحتملين 0.8 إلى -0.8 V، معدل المسح 100 بالسيارات / ثانية ) على جميع الأقطاب. يتم الاحتفاظ الأقطاب لم تختبر في إمكانات الدائرة المفتوحة ويستخدم وقت هادئ من 1 ثانية بين كل اختبار. جميع أقطاب 32 على اتصال مع الحل للدورة اختبار كامل من 1 ساعة.
  13. إزالة مجموعة الكهربائي من حل الاختبار وشطف بلطف مع الماء منزوع الأيونات.
  14. متجر تحقيقات في وعاء واقية جافة لمنع الضرر وتدهور السطوح الكهربائي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ويرد مجموعة الكهربائي المعتادة المستخدمة في هذا البروتوكول التجريبي في الشكل 1. هناك 32 أقطاب الإيريديوم في 4 السيقان مع 413 μ م 2 مساحة هندسية الاسمية و200 μ م الملعب. تم المغلفة كل القطب الثاني على مجموعة واحدة من أربعة الطلاء الكهربائي مختلفة، وصفت 1-4. مواد طلاء تم اختيارها بعناية لخصائص الكيميائية والميكانيكية والكهروكيميائية بهم. كما ذكرنا سابقا 10، وزيادة ترسب مرات زيادة مساحة القطب وسمك الطلاء، في حين تطبق أكبر قد ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يوفر هذا البروتوكول طريقة لمقارنة العصبية الطلاء القطب تسجيل في حيوان واحد. تصميم القطب المستخدمة هي مثالية للزرع في الفئران أكيمة السفلي (IC)، مع أبعاد نطاق مماثل. أن الاختلافات من هذا القطب مثل مساحة أكبر بين السيقان منع جميع السيقان يجري في IC الفئران في نفس الوقت، في حين السيقان أطول وأكبر الملعب بين أقطاب تزيد من خطر أن النصائح عرقوب سوف تأتي في اتصال مع قاعدة الجمجمة خلال الإدراج. أصغر القطب الملعب يزيد من خطر طلاء الكهربائي من أحد الاتصال إلكترود المجاورة. ومنطقة القطب تؤثر...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
والكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
يعترف الكتاب بدعم من مجلس الأبحاث الأسترالي من خلال مركز التميز للElectromaterials العلوم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
المخفف القابل للبرمجةTDTPA5يتحكم في سعة الإشارة الصوتية عبر الترددات
مشغل مكبر الصوت الكهروستاتيكيTDTED1يقود مكبرات الصوت الكهروستاتيكية (EC1)
مكبر الصوت الكهروستاتيكيالمقترن TDTEC1يوصل الصوت إلى المحطة الأساسية للمعالجة الحيوانية
TDTRZ2يسجل النشاط العصبي من مصفوفة الأقطاب الكهربائية (باستخدام مضخم PZ2)
مضخمالمسبق TDTPZ2-256256 قناة مكبر للصوت عالي المقاومة
معالج متعدد الوظائفTDTRX6يستخدم لتوليد محفزات صوتية
كهربائي متعدد القنواتNeuroNexus TechnologiesA4 & مرات ؛ 8 & ndash ؛ 5 مم-200-200-413سيقان 32 قناة مصفوفة أقطاب
كهربائية PotentiostatCH InstrumentsCHI660Bتقوم بترسيب طلاء القطب الكهربائي وأداء قياس الفولتامتر الدوري و EIS (يستخدم مع CHI684)
MultiplexerCH InstrumentsCHI684التبديل بين الأقطاب الكهربائية على
فوسفات ثنائي الصوديومFluka71644المستخدمة في محلول الاختبار
3،4- إيثيلين ديوكسي ثيوفين (EDOT)سيجماألدريتش 483028مادة طلاء قطب
كهربائي من سلفونات التولوين (Na 2< / sub >pTS)سيجما ألدريتش152536مادة طلاء قطب
كهربائي يوريثانسيجما ألدريتشU2500تستخدم لتخدير قطب
كلوريد الفضة / الفضةأدوات CHCHI111تستخدم لاختبار القطب الكهربائي in vitro < / em>
القطب البلاتينيCH InstrumentsMW4130تستخدم لاختبار القطب الكهربائي in vitro < / em>
MotordriveSutter InstrumentsDR1000للتحكم في موضع مصفوفة القطب أثناء الجراحة
منظف إنزيميالبصريات الطبية المتقدمةUltrazymeينظف البروتين من مجموعة الأقطاب الكهربائية بعد الزرع
حاوية صوتيةTMC Ametek83-501يعزل عن الضوضاء الصوتية والكهربائية
إطار مجسمديفيد كوبف إنسترومنتس1430يؤمن ويضع
جهاز التحكم في درجة حرارةالعالم للأدوات الدقيقةATC1000يتحكم في درجة حرارة
مثقاب العظامKaVo DentalK5Plusيستخدم لإجراء استئصال التقرن
الكهربائي AspiratorFlaemSuction proيستخدم لإجراء استئصال التقرن الكهربائي
الصوت قطب 4 الحيوانية microdrive

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Oluigbo, C. O., Rezai, A. R. Addressing Neurological Disorders With Neuromodulation. IEEE Trans. Biomed. Eng. 58, 1907-1917 (2011).
  2. Shivdasani, M. N., Mauger, S. J., Rathbone, G. D., Paolini, A. G. Inferior Colliculus Responses to Multichannel Microstimulation of the Ventral Cochlear Nucleus: Implications for Auditory Brain Stem Implants. J. Neurophysiol. 99, 1-13 (2008).
  3. Perlmutter, J. S., Mink, J. W. Deep Brain Stimulation. Ann. Rev. Neurosci. 29, 229 (2006).
  4. Weaver, F. M., et al. Bilateral Deep Brain Stimulation vs Best Medical Therapy for Patients With Advanced Parkinson Disease. J. Am. Med. Assoc. 301, 63-73 (2009).
  5. Biran, R., Martin, D. C., Tresco, P. A. Neuronal cell loss accompanies the brain tissue response to chronically implanted silicon microelectrode arrays. Exp. Neurol. 195, 115-126 (2005).
  6. McConnell, G. C., et al. Implanted neural electrodes cause chronic, local inflammation that is correlated with local neurodegeneration. J. Neural Eng. 6, (2009).
  7. Liu, X., et al. Stability of the interface between neural tissue and chronically implanted intracortical microelectrodes. IEEE Trans. Rehab. Eng. 7, 315-326 (1999).
  8. Rousche, P. J., Normann, R. A. Chronic recording capability of the Utah Intracortical Electrode Array in cat sensory cortex. J. Neurosci. Methods. 82, 1-15 (1998).
  9. Williams, J. C., Rennaker, R. L., Kipke, D. R. Long-term neural recording characteristics of wire microelectrode arrays implanted in cerebral cortex. Brain Res. Protoc. 4, 303-313 (1999).
  10. Harris, A. R., et al. Conducting polymer coated neural recording electrodes. J. Neural Eng. 10, (2013).
  11. Bard, A. J., Faulkner, L. R. Electrochemical Methods. , Wiley. (2001).
  12. Ludwig, K. A., Uram, J. D., Yang, J., Martin, D. C., Kipke, D. R. Chronic neural recordings using silicon microelectrode arrays electrochemically deposited with a poly(3,4-ethylenedioxythiophene) (PEDOT) film. J. Neural Eng. 3, 59 (2006).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة