مقالة منهجية

Transection الحبل الشوكي في اليرقات الزرد

DOI:

10.3791/51479

مايو 21, 2014

في هذه المقالة

ملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

بعد transection الشوكي، الزرد الكبار يكون الانتعاش وظيفية لمدة ستة أسابيع بعد الإصابة. للاستفادة من الشفافية اليرقات والانتعاش بشكل أسرع، ونحن نقدم وسيلة لtransecting الحبل الشوكي اليرقات. بعد transection، نلاحظ الانتعاش الحسية ابتداء من الساعة 2 أيام بعد الإصابة، وحركة C-منحنى قبل 3 أيام بعد الإصابة.

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تفشل الثدييات في الانتعاش الحسية والحركية التالية إصابة النخاع الشوكي بسبب نقص إعادة نمو محور عصبي دون مستوى الإصابة وكذلك عدم القدرة على معاودة تكوين الخلايا العصبية في العمود الفقري. ومع ذلك، فإن بعض anamniotes بما في ذلك الزرد دانيو rerio المعرض على حد سواء الحسية والانتعاش وظيفية حتى بعد transection كاملة من الحبل الشوكي. الزرد الكبار هو نموذج حي أنشئت لدراسة التجديد التالية اصابات الحبل الشوكي، مع الانتعاش الحسية والحركية من خلال 6 أسابيع بعد الإصابة. للاستفادة من الجسم الحي في تحليل عملية التجدد المتاحة في الزرد اليرقات شفافة وكذلك الأدوات الجينية لا يمكن الوصول إليها في الكبار، ونحن نستخدم اليرقات الزرد لدراسة تجديد بعد transection الحبل الشوكي. نحن هنا يبرهن على وجود طريقة لبتكاثر ويمكن التحقق منه transecting الحبل الشوكي اليرقات. بعد transection، بياناتنا تظهر الانتعاش الحسية بداية في 2 يوما بعد الإصابة (نقطة في البوصة)، وخفة دمح حركة-C منحنى كشفها بواسطة 3 نقطة في البوصة واستئناف السباحة الحرة بنسبة 5 نقطة في البوصة. وبالتالي نقترح الزرد اليرقات كأداة مصاحب لالزرد الكبار لدراسة الانتعاش بعد إصابة الحبل الشوكي.

المقدمة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الصدمة الكبرى إلى الحبل الشوكي الإنسان غالبا ما يؤدي إلى الشلل الدائم وفقدان الإحساس دون مستوى الإصابة، وذلك بسبب عدم القدرة على محاور عصبية أو تجديد أعماله تنمو الخلايا العصبية 1،2. وعلى النقيض من الثدييات، ومع ذلك، بما في ذلك anamniotes السلمندر والزرد (دانيو rerio) تظهر انتعاشا قويا حتى بعد transection الحبل الشوكي كاملة 3،4.

الزرد الكبار هو نموذج راسخة لدراسة عملية الانتعاش في أعقاب إصابة الحبل الشوكي 5-7. التالية transection كاملة في النخاع الشوكي، لوحظ إعادة وظيفة الحسية وقاطرة في الزرد الكبار بنسبة 6 أسابيع بعد الإصابة 8. من أجل دراسة عملية التجدد في الجسم الحي، لجأنا إلى الزرد اليرقات شفافة 9.

ونحن هنا نقدم وسيلة لالقطع في الحبل الشوكي من 5 أيام بعد الإخصاب (DPF) اليرقات الزرد باليودنانوغرام ماصة حقن مكروي مشطوف كما مشرط أو تعديلها من بهات، وآخرون. يدعم 10 هذا الأسلوب إنتاجية عالية ومعدلات وفيات منخفضة، والتكاثر. مع الممارسة، 300 يرقة / ساعة يمكن مقطوع، وأكثر من 6 أشهر من transections، بما في ذلك أكثر من 3،600 الحيوانات، 98.75٪ ± 0.72٪ نجا حتى 7 أيام بعد الإصابة (نقطة في البوصة). وتظهر بيانات لدينا انتعاش سريع للتنقل الحسية وكذلك: في 1 نقطة في البوصة، هو الدافع وراء كل حركة من الأسماك أصيب الصدرية تحرك الزعانف فقط. ومع ذلك، تبدأ اليرقات للرد على إبرة التنغستن مسة الذيلية لtransection بنسبة 2 نقطة في البوصة، إعادة تأسيس الحركة C-منحنى بنسبة 3 نقطة في البوصة، وعرض السباحة المفترسة بنسبة 5 نقطة في البوصة 11. باستخدام الأجسام المضادة ضد تلطيخ تويولين الأسيتيل، ونحن قد أكدت أن محاور هي غائبة عن موقع الإصابة في 1 نقطة في البوصة، ولكن عبروا موقع الإصابة بنسبة 5 نقطة في البوصة. ونحن نعتقد أن هذا البروتوكول توفير تقنية قيمة لدراسة إعادة نمو محور عصبي وتكوين الخلايا العصبية في النخاع الشوكي بعد الاصابة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأثيرت الزرد وتربيتها وفقا للاجراءات المتبعة؛ تمت الموافقة على التجارب من قبل الجامعة لجنة رعاية الحيوان واستخدام المؤسسية ولاية يوتا.

1. إعداد لوحات جراحة

  1. جعل لوحات الجراحة باستخدام 60 مم أطباق بتري وSylgard 184 السيليكون المرنة كيت، بعد تعليمات الشركة الصانعة. ملء أطباق لا يزيد عن نصف كامل والسماح لبلمرة. متجر تغطيتها على درجة حرارة الغرفة.

2. إعداد بال micropipettes

  1. افتعال بال micropipettes عن طريق تسخين وسحب رقيقة الجدار البورسليكات الشعرية أنابيب في مجتذب micropipette باستخدام نفس إعدادات لصنع إبر حقن مكروي.
  2. تحت المجهر تشريح، والمفاجئة قبالة غيض من micropipette إلى ما يقرب من 200 ميكرون في القطر بالملقط.
  3. شطبة الحافة المكسورة مع microgrinder في البداية إلى 35 درجة، تليها الميلا الثاني عند 25 درجة. ضمان طرف حاد وSMOالغير. متجر الانتهاء micropipette مشطوف في طبق بتري على كمية صغيرة من الطين.

3. إعداد الزرد اليرقات

  1. 7 أيام قبل الجراحة، وإنشاء خزانات التزاوج من الزرد الذكور والإناث.
  2. جمع الأجنة في صباح اليوم التالي، 3 ساعة بعد تتسلط الأضواء على لضمان أقصى قدر من العائد. في حالة استخدام خط مراسل المعدلة وراثيا مثل تيراغرام (elevl3: EGFP) knu3 والأجنة المخصبة نوع 100/100 مم لوحة في 25 مل من E3 في 28.5 درجة مئوية. إذا باستخدام wildtype، المخصبة نوع الأجنة 25/100 مم لوحة في 25 مل من E3 في 28.5 درجة مئوية.
  3. في حالة استخدام خط مراسل، وشاشة الأجنة للتعبير الفلورسنت في 48 HPF. تسمح الأجنة التي تم تحديدها لتنضج في كثافة 25/100 مم لوحة في 25 مل من E3 في 28.5 درجة مئوية.
  4. عندما اليرقات هي 5 DPF، وإعداد لوحة لعملية جراحية من خلال تغطية Sylgard مع E2 + 10 ملغم / لتر جنتاميسين سلفات (GS) + تريكين.
    1. إعداد طبق الانتعاش بإضافة 25 مل E2 + GS إلى 100 ملم ديس بيتريح.
    2. إعداد مشرط عن طريق تسجيل ثلاث مسحات معا. وهذه تشكل أداة الثلاثي مع ثلاثة أخاديد.
    3. شن micropipette أعدت على مسحات عن طريق تسجيل ذلك في واحدة من الأخاديد.
  5. إذا إعادة استخدام بال micropipettes، دافق حتى واضح مع E2 + GS باستخدام حقنة 1ML و27 G إبرة قبل المتزايدة على مسحات.

4. جراحة

  1. تخدير 1 لوحة من اليرقات في كل مرة (25 الأسماك) مع تريكين. يتم تخدير الأسماك بما فيه الكفاية عندما لم يعد يحمل استجابة اللمس. من المهم أن الأسماك هي تخدير تماما قبل الجراحة، وإلا فإنها سوف نشل عندما مشرط مسها. يتم إجراء الجراحة تحت المجهر تشريح.
  2. نقل اليرقات لوحة الجراحة.
    1. تحت الأقصى التكبير، وتناوب يرقة واحدة في وقت واحد بحيث انها تقع على جانبها مع عودتها الأقرب إلى يد تمسك مشرط.
    2. موقف ملقط بحيث ترتكز على Sylgard،الزاوية أكثر من عرض من اليرقة.
    3. تستعد مشرط الزجاج ضد واحدة من الأسلحة من ملقط، وقطع في الوجه الظهري الجانبي لليرقة على مستوى المسام الشرج، ويجري التأكد من عدم قطع ما وراء حافة بطني من الحبل الظهري. تحريف مشرط لقطع الحبل الشوكي.
    4. كرر مع اليرقات المتبقية.
      ملاحظة: إذا ينزف يرقة، فإنه لن يتعافى من عملية جراحية. على الفور إزالة اليرقة من لوحة الجراحة والموت ببطء ذلك عبر تريكين جرعة زائدة.
  3. مرة واحدة لعملية جراحية على دفعة من اليرقات كاملة، ونقل الجرحى الحيوانات لوحة الانتعاش. هذا هو لدعم تبادل المعلومات من التخدير.
    1. تحذير: عند جمع اليرقات لنقل المصابين، تأكد من أنها جمعت الرأس أو الذيل الأول: لا تشدد على موقع الإصابة عن طريق الانحناء اليرقات.
      ملاحظة: يمكن إعادة استخدامها جميع الأجهزة المستخدمة لإجراء عملية جراحية، بما في ذلك بال micropipettes.

5. استعادة

  1. آرأصيب ansfer اليرقات من لوحة الاسترداد إلى 100 ملم لوحات مليئة 25 مل E2 + GS في كثافة 25/plate. السماح لاسترداد في حاضنة 28.5 درجة مئوية.
  2. تحقق لوحات اليومية، وإزالة الحيوانات المريضة والنافقة. لا تتغير وسائل الإعلام حتى Coleps (البروتوزوا المياه العذبة) واضحة في وسائل الإعلام. عند تغيير وسائل الإعلام، لا نقل الأسماك إلى لوحة جديدة؛ بدلا من ذلك، إزالة وسائل الإعلام قدر الإمكان والفيضانات نفس اللوحة مع وسائل الإعلام الجديدة. كرر حسب الضرورة للحد من السكان Coleps.
  3. تغذية يومية مع كمية صغيرة من مسحوق يرقات الغذاء.
    ملاحظة: الغذاء لايف (على سبيل المثال، أو باراميسيا الروتيفر) لا يمكن تغذية اليرقات على المصاب إلا بعد أن تعافى الحركة. خلاف ذلك، فإن الأغذية الحية استعمار موقع الإصابة وتقتل اليرقات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

للحد من شدة تلف الأنسجة المحيطة بموقع الإصابة، الميلا السليم من micropipette أمر بالغ الأهمية. ويبين الشكل 1A تلميح مشطوف بشكل صحيح. باستخدام تلميح بأن واسعة جدا (1B الشكل) يميل إلى نتيجة في عدد القتلى أعلى نظرا لاحتمال زيادة الخدش الأبهر الظهري، في حين أن الطرف الذي هو ضيق جدا (الشكل 1C) يميل إلى وهلة قبالة الجلد بدلا من قطع الأنسجة.

لممارسة هذه التقنية، فإنه من...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عندما تعلم هذه التقنية في البداية، ونحن نوصي محاولة لا أكثر من 50-100 transections في جلسة واحدة. بعد اتقان هذه التقنية، ونحن قادرون على القطع يصل إلى 300 الأجنة في ساعة؛ ومع ذلك، فإن هذا المستوى من الإنتاجية يتطلب بضعة أشهر من الممارسة الأسبوعية. نوصي أيضا ممارسة مع خط مراسل والتحقق من transection كاملة حتى يتم تقليل حدوث ناقصة transection الحبل الشوكي إلى أقل من 1٪.

transection الحبل الشوكي في الزرد الكبار هي ت...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

والكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نحن مدينون لمرفق جامعة ولاية يوتا الزرد لتربية المواشي. وأيد من قبل المعاهد الوطنية للصحة RID R56NS053897، وكان LKB متدرب دكتوراه مسبقا بدعم من مبادرة HHMI ميد حيز غراد.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
طبق بتري 60 ممVWR82050-544
100 مم طبق بتريVWR89038-968
PDMS ، Sylgard 184 مجموعة مطاط سيليكونفيشر ScientificNC9644388
أنابيب شعرية البورسليكات: OD 1.00 مم ، معرف 0.78 ممشركة Warner Instruments Inc.64-0778
ملقطالأدوات العلمية الدقيقة ، Inc.11252-30
مجهرتشريح نيكونSMZ6454
مطحنة دقيقةNarishigeEG-44
جنتاميسين كبريتاتأمريسكو0304-5 جميذوب في الماء 10 مجم / مل ، ويخزن في -20 درجة ؛ C
TricaineAcros Organics118000100
قضيب قطني ذو رأس ، خشب ، 6 بوصةفيشر سيانتيفيك23-400-101
1 مل حقنةBD309625
27 جم إبرةBD305109
Fry foodArgentLabs F-ARGE-PTL-CNstore عند -20 درجة ؛ C
مجتذب الماصاتالدقيقة Sutter Instrument Co.نموذج P-97صندوق خيوط FB330B
<قوي>20x E2 (1 لتر) ؛ متجر < / قوي > في RT
17.5 جم كلوريد الصوديومفيشر ScientificS671-500
0.75 جم KClFisher ScientificP217-500
2.90 جم CaCl 2< / sub>· ؛ 2H2OSigmaC7902-500G
4.90 g MgSO4& middot; 7H2OMerckMX0070-1
0.41 g KH2PO4Fisher ScientificP285-500
0.12 g Na2HPO4SigmaS0876-500G
500x NaCO3 (10 مل); < / قوي > جعل طازجة ، وتخلص من
0.35 جم إضافي من NaCO3< / sub>SigmaS5761
<قوي>1x E2 (1 لتر) ؛ < / قوي > يحفظ في RT
50 مل 20x E2
2 مل طازج 500x NaCO3< / sub>

المراجع

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Houweling, D. A., Bär, P. R., Gispen, W. H., Joosten, E. A. Spinal cord injury: bridging the lesion and the role of neurotrophic factors in repair. Progress in brain research. 117, 455-471 (1998).
  2. Mikami, Y., et al. Implantation of dendritic cells in injured adult spinal cord results in activation of endogenous neural stem/progenitor cells leading to de novo neurogenesis and functional recovery. Journal of neuroscience research. 76 (4), 453-465 (2004).
  3. Chernoff, E. A. G., Sato, K., Corn, A., Karcavich, R. E. Spinal cord regeneration: intrinsic properties and emerging mechanisms. Seminars in Cell & Developmental Biology. 13 (5), 361-368 (2002).
  4. Kuscha, V., Barreiro-Iglesias, A., Becker, C. G., Becker, T. Plasticity of tyrosine hydroxylase and serotonergic systems in the regenerating spinal cord of adult zebrafish. The Journal of comparative neurology. 520 (5), 933-951 (2012).
  5. Becker, C. G., Lieberoth, B. C., Morellini, F., Feldner, J., Becker, T., Schachner, M. L1.1 is involved in spinal cord regeneration in adult zebrafish. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 24 (36), 7837-7842 (2004).
  6. Hui, S. P., Dutta, A., Ghosh, S. Cellular response after crush injury in adult zebrafish spinal cord. Developmental Dynamics: An Official Publication of the American Association of Anatomists. 239 (11), 2962-2979 (2010).
  7. Goldshmit, Y., Sztal, T. E., Jusuf, P. R., Hall, T. E., Nguyen-Chi, M., Currie, P. D. Fgf-dependent glial cell bridges facilitate spinal cord regeneration in zebrafish. The Journal of neuroscience: the official journal of the Society for Neuroscience. 32 (22), 7477-7492 (2012).
  8. Reimer, M. M., et al. Motor neuron regeneration in adult zebrafish. The Journal of Neuroscience: The Official Journal of the Society for Neuroscience. 28 (34), 8510-8516 (2008).
  9. Hale, M. E., Ritter, D. A., Fetcho, J. R. A confocal study of spinal interneurons in living larval zebrafish. The Journal of comparative neurology. 437 (1), 1-16 (2001).
  10. Bhatt, D. H., Otto, S. J., Depoister, B., Fetcho, J. R. Cyclic AMP-induced repair of zebrafish spinal circuits. Science. 305 (5681), 254-258 (2004).
  11. McClenahan, P., Troup, M., Scott, E. K. Fin-tail coordination during escape and predatory behavior in larval zebrafish. PloS one. 7 (2), (2012).
  12. Kim, C. H., et al. Repressor activity of Headless/Tcf3 is essential for vertebrate head formation. Nature. 407 (6806), 913-916 (2000).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة