يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

استخدام الوامئات (ذوات الجناحين) العذراء سلخ بمثابة بروتوكول Bioassessment السريع لالمسطحات المائية العائمة السطحية

11.4K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/52558

⸱

يوليو 24, 2015

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Entomology, University of Minnesota, 2Biology, Chemistry & Physics, and Mathematics Department, Northern State University, 3Environmental Analysis and Outcomes Division, Minnesota Pollution Control Agency, 4RMB Environmental Laboratories, Inc.

في هذه المقالة

ملخص

غالبا ما تستخدم بروتوكولات التقييم البيولوجي السريع < p class = 'jove_content'> لمراقبة وتقييم جودة المياه. يتضمن البروتوكول الفعال مجموعات من Chironomidae العائمة على السطح (SFPE). هنا ، يتم وصف تقنيات الجمع الميداني ، والمعالجة المختبرية ، وتركيب الشرائح ، وتحديد Chironomidae SFPE.

الملخص

بروتوكولات bioassessment السريعة باستخدام تجمعات macroinvertebrate القاعية استخدمت بنجاح لتقييم التأثيرات البشرية على نوعية المياه. للأسف، وأساليب أخذ العينات اليرقات القاعية التقليدية، مثل تراجع صافي، يمكن أن يكون مضيعة للوقت ومكلفة. بروتوكول بديل ينطوي على مجموعة من الوامئات العائمة سطح العذراء سلخ (SFPE). الوامئات هي عائلة الأنواع الغنية من الذباب (ذوات الجناحين) والتي تحدث عادة في الموائل المائية مراحل غير ناضجة. chironomids الكبار على الخروج من الماء، وتركهم جلود العذراء، أو سلخ، تطفو على سطح الماء. سلخ غالبا ما تتراكم على طول البنوك أو خلف العوائق من خلال العمل من الرياح أو المياه الجارية، حيث يمكن جمعها لتقييم التنوع chironomid وثراء. Chironomids يمكن استخدامها كمؤشرات البيولوجية الهامة، حيث أن بعض الأنواع أكثر تسامحا للتلوث من غيرها. ولذلك، فإن النسبي وفرة الأنواع وتكوين تم جمعها SFPE تعكسالتغيرات في نوعية المياه. هنا، يتم وصف الطرق المرتبطة الجمع الميداني، وتجهيز المختبرات، وشريحة متزايدة، وتحديد chironomid SFPE في التفاصيل. وتشمل مزايا طريقة SFPE الحد الأدنى من اضطراب في منطقة أخذ العينات والفعالية والاقتصاد جمع العينات وتجهيز المختبرات، وسهولة تحديد وتطبيق في البيئات المائية كلها تقريبا، وتدبير يحتمل أن تكون أكثر حساسية للإجهاد البيئي. وتشمل القيود عدم القدرة على تحديد استخدام موئل دقيق اليرقات وعدم القدرة على تحديد سلخ العذراء إلى الأنواع إن لم تكن قد ارتبطت مع الذكور البالغين.

المقدمة

برامج الرصد البيولوجية، والتي تستخدم الكائنات الحية لتقييم صحة البيئة، وغالبا ما تستخدم لتقييم نوعية المياه أو مراقبة نجاح برامج استعادة النظام الإيكولوجي. وكانت البروتوكولات bioassessment السريعة (RBP) باستخدام تجمعات macroinvertebrate القاعية شعبية بين الوكالات للموارد المائية دولة منذ عام 1989 1. طرق التقليدية لأخذ العينات macroinvertebrates القاعية لالممارسات التجارية التقييدية، مثل تراجع صافي، Surber العينات، وهيس العينات 2، يمكن أن يكون زمنيا المستهلكة، ومكلفة، ويمكن قياس فقط تجمعات من معين موئل دقيق 3. و، RBP بديلة فعالة لتوليد المعلومات البيولوجية عن هيئة مياه خاص يتضمن مجموعة من الوامئات العائمة سطح سلخ العذراء (SFPE) 3.

والوامئات (الحشرات: ذوات الجناحين)، والمعروف باسم البراغيش غير العض، هي الذباب كاملة الانسلاخ التي تحدث عادة في البيئات المائية قبل الناشئة مثل البالغين 60؛ على سطح الماء. الأسرة chironomid هي الأنواع الغنية، مع ما يقرب من 5000 نوع وصفها في جميع أنحاء العالم. ومع ذلك، يقدر أن ما يصل إلى 20000 الأنواع في الوجود 4. Chironomids هي مفيدة في توثيق المياه ونوعية الموائل في العديد من النظم البيئية المائية بسبب تنوعها وارتفاع مستويات التلوث التسامح متغيرة 5. وعلاوة على ذلك، فإنها غالبا ما تكون macroinvertebrates القاعية الأكثر وفرة واسعة النطاق في النظم المائية، وهو ما يمثل عادة 50٪ أو أكثر من الأنواع في المجتمع 5،6. بعد ظهور الكبار الأرضي، وسلخ العذراء (يلقي الجلد العذراء) لا تزال تطفو على سطح الماء (الشكل 1). تتراكم سلخ العذراء على ضفاف أو خلف العوائق من خلال العمل من الرياح أو المياه الجارية، ويمكن بسهولة وبسرعة جمعت لإعطاء عينة شاملة من الأنواع chironomid التي ظهرت خلال ساعة 24-48 السابقة 7.

ntent "> والوفرة النسبية والتكوين التصنيفي للتم جمعها SFPE يعكس جودة المياه، معتبرا أن بعض الأنواع التلوث جدا متسامح، في حين أن البعض الآخر حساس جدا 5 أسلوب SFPE لديه العديد من المزايا أكثر من التقنيات التقليدية اليرقات أخذ العينات chironomid بما في ذلك: (1) الحد الأدنى ، إن وجدت، يحدث اضطراب الموائل في منطقة أخذ العينات؛ (2) عينات لا تركز على جمع الكائنات الحية، وإنما الجلد غير الحية، لذلك لا يتأثر مسار ديناميات المجتمع؛ (3) تحديد لجنس، و في كثير من الأحيان الأنواع، هو نسبيا سهلة نظرا مفاتيح وأوصاف 3 المناسبة؛ (4) جمع وتجهيز وتحديد العينات غير فعالة واقتصادية بالمقارنة مع الطرق التقليدية لأخذ العينات 3،8،9؛ (5) سلخ المتراكمة تمثل الأنواع التي نشأت من مجموعة واسعة من بلوغ الموائل الصغيرة 10؛ (6) طريقة قابلة للتطبيق في البيئات المائية كلها تقريبا، بما في ذلك الجداول والأنهار ومصبات الأنهار ولاكوفاق، البرك، برك الصخور، والأراضي الرطبة؛ و(7) SFPE ربما يكون مؤشرا أكثر حساسية من صحة النظام الإيكولوجي حيث أنها تمثل الأفراد الذين قد أكملت جميع مراحل غير ناضجة وظهرت بنجاح مثل البالغين 11.

طريقة SFPE ليس نهجا جديدا لجمع المعلومات عن المجتمعات chironomid. واقترح استخدام SFPE أول مرة من قبل Thienemann 12 في وقت مبكر 1900s في وقت. مجموعة متنوعة من الدراسات قد استخدمت SFPE لمسوحات التصنيفية (على سبيل المثال، 13-15)، والتنوع البيولوجي والدراسات البيئية (مثل 7،16-19)، والتقييمات البيولوجية (على سبيل المثال، 20-22). بالإضافة إلى ذلك، تناولت بعض الدراسات الجوانب المختلفة لتصميم العينة، حجم العينة، وعدد من الفعاليات العينة المطلوبة لتحقيق مستويات الكشف عن مختلف الأنواع أو الأجناس (على سبيل المثال، 8،9،23). وتشير هذه الدراسات إلى أن نسبة عالية نسبيا من الأنواع أو الأجناس يمكن الكشف مع جهد! المعتدلتي أو حساب ترتبط مع تجهيز العينات. على سبيل المثال، وأندرسون وFerrington 8 قرر أن يعتمد على عينة فرعية 100 العد، ويتطلب وقتا 1/3 الثالثة أقل لاختيار العينات SFPE مقابل تراجع صافي العينات. حددت دراسة أخرى أن 3-4 عينات SFPE يمكن فرزها وتحديد لكل عينة وتراجع صافي وان كانت عينات SFPE أكثر كفاءة من العينات وتراجع صافي في الكشف عن الأنواع كما زاد ثراء الأنواع 3. على سبيل المثال، في مواقع مع ثراء الأنواع قيم 15-16 الأنواع، بلغ متوسط ​​تراجع صافي كفاءة 45.7٪، في حين كانت عينات SFPE 97.8٪ كفاءة 3.

الأهم من ذلك، تم توحيد طريقة SFPE في الاتحاد الأوروبي 24 (المعروفة باسم تقنية chironomid العذراء سلخ (CPET)) وأمريكا الشمالية (25) لتقييم البيئي، ولكن لم يتم وصف طريقة بالتفصيل. وقد وصفت تطبيق واحد لمنهجية SFPE التي كتبها Ferrington، وآخرون. 3. ومع ذلك، كان التركيز الأساسي لهذه الدراسة لتقييم الكفاءة والفعالية، والاقتصاد في طريقة SFPE. والغرض من هذا العمل هو لوصف جميع الخطوات من طريقة SFPE في التفاصيل، بما في ذلك جمع العينات، وتجهيز المختبرات، وشريحة متزايدة، وتحديد جنس. ويشمل الجمهور المستهدف طلاب الدراسات العليا والباحثين والمهنيين المهتمين في توسيع نطاق جهود مراقبة جودة المياه التقليدية في دراستهم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. إعداد اللوازم الجمع الميداني

  1. تحديد عدد العينات SFPE التي ينبغي جمعها على أساس تصميم الدراسة والحصول على واحد جرة عينة (على سبيل المثال، 60 مل) لكل عينة.
  2. إعداد اثنين من التاريخ والمكان التسميات لكل جرة العينة. مكان واحد في الداخل ويضعوا الآخر إلى خارج الجرة. تأكد من أن كل تسمية تاريخ ومكان وتشمل المعلومات التالية: بلد أو دولة أو مقاطعة أو مدينة أو المسطحات المائية، الإحداثيات GPS والتاريخ واسم الشخص (الأشخاص) جمع العينة.
  3. جمع المواد والمعدات (انظر الجدول مواد محددة / معدات) محددة أخرى.

2. الجمع الميداني

  1. عقد علبة اليرقات في يد واحدة وغربال في الآخر. تراجع علبة اليرقات في الماء حيث تتراكم SFPE (على سبيل المثال، تراكمات رغوة، عقبات، والغطاء النباتي طارئة، والحطام، والعودة الدوامات، وعلى طول حواف البنك) (الشكل 2A)، والسماح واتإيه، سلخ، والحطام لدخول علبة اليرقات، وتصب هذه المواد من خلال غربال. إذا أخذ العينات في نظام lotic، تبدأ في نهاية المصب عن متناول عينة والعمل المنبع (الشكل 2B). إذا أخذ العينات في نظام lentic، والبدء في الشاطئ الريح.
    1. كرر الخطوة 2.1 لمدة 10 دقيقة (أو كما ينص على خلاف ذلك لنظام معين أخذ العينات) في كل عينة متناول محدد مسبقا (عادة 100-200 م للعينات التي تم جمعها من تيارات، ولكن تعتمد على المساحة الكلية للموقع الرصد المائي)؛ تنقل بين مناطق تراكم SFPE حسب الاقتضاء.
  2. التركيز الحطام في منطقة واحدة من غربال باستخدام زجاجة بخ مملوءة بالماء من موقع العينة ونقل بعناية عينة SFPE المسمى قبل أن جرة عينة بمساعدة ملقط وتيار من الايثانول من زجاجة بخ. ملء نموذج جرة مع الايثانول.
  3. كرر الخطوات من 2،1-2،2 لجميع العينات.

3. عينة قطف

ملاحظة: بقية من هذا البروتوكول تنتمي إلى 300 SFPE عينة فرعية، وربما تحتاج إلى تعديل لأحجام عينة فرعية أخرى. الاطلاع على 9 الاختزال وتردد أخذ العينات المبادئ التوجيهية بوشار وFerrington للخياطة طرق SFPE لتلبية الأهداف والموارد دراسة محددة.

  1. تخصيص قارورة 1-درهم لكل عينة SFPE. إعداد تسمية تاريخ ومكان إلى مكان داخل كل قارورة وملء قارورة ¾ كاملة مع الايثانول.
  2. إزالة غطاء من العينة جرة المقابلة والتحقق من وجود تعلق سلخ العذراء. شطف بلطف محتويات قبالة غطاء على طبق بيتري باستخدام زجاجة بخ مليئة الايثانول. تحديد وإزالة التسمية من داخل الجرة العينة باستخدام ملقط وبلطف شطف محتويات قبالة التسمية على طبق بيتري. تعيين التسمية جانبا.
  3. نقل محتويات الجرة العينة إلى علبة اليرقات، الشطف مع الإيثانول لضمان البقاء لا SFPE في جرة العينة. نقل جزء من العذراء سلخ، ريسيالمناسب، والإيثانول من درج على طبق بيتري. ضمان تغطية العينة في الإيثانول.
  4. وضع طبق بتري تحت المجهر ستيريو. مسح منهجي محتويات طبق بيتري لسلخ العذراء. تأخذ كل سلخ العذراء من الطبق باستخدام الملقط ومكان في قارورة. لا اختيار العينات التي يتم تقسيم (أي لم يكن لديك ما لا يقل عن نصف مقدمة الرأس والبطن)، المجففة، أو ضغط لتجنب مشاكل تحديد لاحقة.
    ملاحظة: تحديد لنوع وغالبا ما يتطلب أن العينة كلها موجودة، وإن كان في بعض الحالات، قد يكون تحديد المستوى جنس ممكن مع عينات جزئية.
    1. طبق الدوامة والمسح الضوئي لسلخ إضافية العذراء، بما في ذلك أي التي قد تكون عالقة على جوانب الطبق، وكذلك، أي العينات الصغيرة وشفافة التي قد لا تكون يتم الكشف في البداية. كرر حتى تكشف عن اثنين من مسح متتالية لا سلخ العذراء إضافية.
  5. كرر الخطوات من 3.3 و3.4 حتى يتم القبض على جميع أو 300 سلخ العذراء. عندما تم التقاطها 300 سلخ العذراء، تعود بقايا من طبق بيتري إلى علبة اليرقات وشطف طبق بيتري مع الإيثانول. ثم، ونقل بقايا من علبة اليرقات على عينة جرة فارغة، إضافة التسمية التاريخ والمكان، ووضع غطاء على الجرة. الاحتفاظ أو التخلص من بقايا وفقا لبروتوكولات مشاريع محددة.

4. عينة الفرز

  1. صب كل التقطت سلخ العذراء من القارورة وصفت في طبق بتري مليئة الايثانول يكفي فقط لتغطية العينات.
  2. تحت المجهر ستيريو عينات مختلفة إلى مجموعات المورفولوجية متميزة (أي morphotaxa) وتضع كل morphotaxon إلى انفراد قارورة المسمى تملأ 3/4 عشر كاملة مع الايثانول.
    1. الاستفادة من الخصائص المورفولوجية الخارجية لفصل chironomid morphotaxa. على سبيل المثال، من مقدمة الرأس، استخدم الاختلافات في وجود والحجم والشكل، وتلوين للدرنات الرأسية، والثآليل الأمامية، setae أمامي، والقرن الصدري. من البطن، استخدم العمود الفقري، hookrows، جلد خشن، setae، وتوتنهام من شرائح البطن، بالإضافة إلى فصوص الشرج للانفصال morphotaxa (الشكل 4A). رؤية Ferrington، وآخرون. 5، Sæther 26، بيندر وريس 27 للأوصاف وشخصيات من الخصائص المورفولوجية إضافية.
    2. استخدام الإيثانول إضافية إذا بدأت عينات لتجف.

5. الشريحة تركيب

  1. سد بئر واحدة من لوحة متعددة جيدا لكل morphotaxon مع 95٪ من الإيثانول.
    1. وضع تمثيلات متعددة (على سبيل المثال، 25٪ من المجموع الكلي) من كل morphotaxon إلى أن الشريحة التي شنت في الآبار الفردية من لوحة. السماح العينات على الجلوس بشكل جيد لمدة 10 دقيقة على الأقل إلى يذوى بما فيه الكفاية.
  2. الشرائح التسمية مع الموقع المناسب، وجمع، و نظم المعلومات هويةعلى (الشكل 3).
  3. مكان الشريحة على المجهر ستيريو.
    ملاحظة: قالب من الشريحة مسجلة لمرحلة مفيد لوضع ثابت.
  4. وضع قطرة من Euparal على الشريحة. نشر Euparal بحيث يقترب من حجم ساترة. استخدام التهوية المناسبة عند التعامل مع Euparal.
    ملاحظة: استخدام التهوية المناسبة عند التعامل مع Euparal.
  5. تضمين ممثل عن morphotaxon لأول مرة في Euparal باستخدام ملقط.
    ملاحظة: لإفراغ الايثانول الزائدة من العينة، وذلك باستخدام ملقط، اضغط بلطف العينة على مختبر مناديل قبل تضمين ذلك في Euparal.
  6. فصل مقدمة الرأس من البطن باستخدام ملقط غرامة ذات الرؤوس و / أو تحقيقات تشريح (الشكل 4A).
    1. تقسيم مقدمة الرأس على طول الدرز ecdysial (الشكل 4B) وفتح مقدمة الرأس بحيث حواف خياطة هي على طرفي نقيض (الشكل 4C).
    2. توجيه جephalothorax بحيث الجانب البطني يكون مواجها لها (الشكل 4C).
    3. وضع الجانب الظهري البطن فوق؛ وضع مباشرة أسفل مقدمة الرأس (الشكل 4C).
  7. وضع ساترة على العينة. عقد ساترة في زاوية، مع حافة واحدة لمس الشريحة، ومن ثم انخفاض ببطء وإسقاط ساترة للحد من تشكيل فقاعة الهواء. اضغط برفق على ساترة لشد العينة.
  8. كرر الخطوات من خلال 5.3 5.7 لجميع العينات المجففة.

6. تحديد جنس

  1. تحديد جنس العينات محمولة على الشرائح باستخدام المجهر المركب. تحديد العينات إلى جنس باستخدام مفاتيح والتشخيص في Wiederholm 28 و Ferrington، وآخرون. 5. إذا لزم الأمر، تأكيد الهوية على مستوى العائلة باستخدام Ferrington، وآخرون. 5. ملاحظة: كانت هناك العديد من الأوصاف العامة والمراجعات منذ Wiederholm 28 و Ferrington،وآخرون. 5، لذلك، هذه المفاتيح والتشخيصات غير مكتملة وتحتاج إلى أن تستكمل مع الأدب الابتدائي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

ويوضح الشكل 1 دورة حياة chironomid. المراحل غير ناضجة (بيضة، يرقة، خادرة) عادة ما تجري في أو مرتبطة ارتباطا وثيقا، وهي البيئة المائية. عند الانتهاء من مرحلة اليرقات الحياة، اليرقة يبني ملجأ أنبوب يشبه وتعلق نفسها مع إفرازات حريري إلى الركيزة المحيطة بها، ويحدث التشرنق. مرة واحدة قد نضجت الكبار النامية، خادرة يحرر نفسه وتسبح على سطح الماء حيث الكبار يمكن أن تنشأ من سلخ العذراء. وسلخ يملأ بالهواء، وبحكم وجود طبقة شمعية الخارجية للبشرة، وأنها لا تزال تطفو على سطح الم...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

أهم الخطوات لنجاح جمع SFPE العينة، واختيار، والفرز، والشريحة المتزايدة، وتحديد ما يلي: (1) تحديد مجالات تراكم عالية SFPE داخل منطقة الدراسة خلال الجمع الميداني (الشكل 2A). (2) مسح ببطء محتويات طبق بيتري للكشف عن كافة SFPE خلال عينة قطف. (3) وضع ما يلزم من البراعة اليدوية لتشريح مقدمة الرأس من البطن خلال الشريحة تركيب (الشكل 4A)؛ و (4) الاعتراف الصفات المورفولوجية الرئيسية chironomid العذراء سلخ لتحديد بشكل صحيح لجنس.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

تعلن الكتاب أنه ليس لديهم المصالح المالية المتنافسة.

شكر وتقدير

وقدمت التمويل لتأليف ونشر هذه الورقة من خلال المنح المتعددة وعقود لمجموعة الوامئات البحوث (LC Ferrington الابن، PI) في قسم علم الحشرات في جامعة مينيسوتا. وبفضل ناثان روبرتس لتبادل الصور الميداني تستخدم أرقام في الفيديو المرتبطة مع هذه المخطوطة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الإيثانولفيشر العلميS25309B 70-95٪
زجاجات غسيل بلاستيكيةفيشر Scientific0340923B
جرة عينةفيشر Scientific0333510Bزجاج أو بلاستيك ، 60 مل موصى
غربال الاختبارAdvantech120SS12F125 ميكرون حجم شبكة
صينية اليرقاتBioQuip5524مجهر
ستيريو
قوارير غلاف زجاجيفيشر ساينتفيك0333926B1 دراما
حجم قطارة بلاستيكيةحراري ساينتيك137111030 إلى 35 قطرة / مل
ملقط ناعمBioQuip4524# 5
طبق بتريكارولينا741158زجاج أو بلاستيك
لوحة متعددة الآبارThermo Scientific144530زجاج أو بلاستيك
زجاج microslidesحراري 3010002 العلمي3 × 1 بوصة.
زلات الغطاء الزجاجيThermo Scientific12-519-21Gدائري أو مربع
Euparal تصاعد متوسط BioQuip6372B
Pigma penBioQuip1154FBlack
ProbeBioQuip4751
KimwipesKimberly-Clark Professional & trade ؛34120
بها أبيض

المراجع

  1. Southerland, M. T., Stribling, J. B. Biological Assessment and Criteria: Tools for Water Resource Planning and Decision Making. Davis, W. S., Simon, T. P. , Lewis Publishers. 81-96 (1995).
  2. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Resh, V. H., Batzer, D. P. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. , 4th edition, Kendall/Hunt Publishing Company. 15-37 (2008).
  3. Ferrington, L. C., et al. Sediment and Stream Water Quality in a Changing Environment: Trends and Explanation. , International Association of Hydrological Sciences Press. 181-190 (1991).
  4. Ferrington, L. C. Freshwater Animal Diversity Assessment in Hydrobiology. Balian, E. V., Lévêque, C., Segers, H., Martens, K. , Springer. Netherlands. 447-455 (2008).
  5. Ferrington, L. C., Berg, M. B., Coffman, W. P. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. Merritt, R. W., Cummins, K. W., Berg, M. B. , 4th ed, Kendall/Hunt Publishing Company. 847-989 (2008).
  6. Armitage, P. D., Cranston, P. S., Pinder, L. C. V. The Chironomidae: Biology and Ecology of Non-Biting Midges. 572, Chapman & Hall. (1995).
  7. Coffman, W. P. Energy Flow in a Woodland Stream Ecosystem: II. The Taxonomic Composition of the Chironomidae as Determined by the Collection of Pupal Exuviae. Archiv fur Hydrobiologie. 71, 281-322 (1973).
  8. Anderson, A. M., Ferrington, L. C. Proceedings of 18th International Symposium on Chironomidae on Fauna norvegica. Ekrem, T., Stur, E., Aagaard, K. 31, (2011).
  9. Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. The Effects of Subsampling and Sampling Frequency on the Use of Surface-Floating Pupal Exuviae to Measure Chironomidae (Diptera) Communities in Wadeable Temperate Streams. Environmental Monitoring and Assessment. 181, 205-223 (2011).
  10. Wilson, R. S. Monitoring the Effect of Sewage Effluent on the Oxford Canal Using Chironomid Pupal Exuviae. Water and Environment Journal. 8, 171-182 (1994).
  11. Wentsel, R., McIntosh, A., McCafferty, W. P. Emergence of the Midge Chironomus tentans when Exposed to Heavy Metal Contaminated Sediment. Hydrobiologia. 57, 195-196 (1978).
  12. Thienemann, A. Das Sammeln von Puppenhäuten der Chironomiden. Eine Bitte um Mitarbeit. Archiv fur Hydrobiologie. 6, 213-214 (1910).
  13. Anderson, A. M., Kranzfelder, P., Egan, A. T., Ferrington, L. C. Survey of Neotropical Chironomidae (Diptera) on San Salvador Island, Bahamas. Florida Entomologist. 97, 304-308 (2014).
  14. Coffman, W. P., de la Rosa, C. Taxonomic Composition and Temporal Organization of Tropical and Temperate Assemblages of Lotic Chironomidae. Journal of the Kansas Entomological Society. 71, 388-406 (1998).
  15. Brundin, L. Transantarctic Relationships and their Significance, as Evidenced by Chironomid Midges. With a Monograph of the Subfamilies Podonominae and Aphroteniinae and the Austral Heptagyiae. Svenska Vetenskapsakademiens Handlingar. 11, 1-472 (1966).
  16. Anderson, A. M., Ferrington, L. C. Resistance and Resilience of Winter-Emerging Chironomidae (Diptera) to a Flood Event: Implications for Minnesota Trout Streams. Hydrobiologia. 707, 59-71 (2012).
  17. Anderson, T. Contributions to the Systematics and Ecology of Aquatic Diptera-A Tribute to Ole A. Saether. , Caddis Press. 99-105 (2007).
  18. Bouchard, R. W., Ferrington, L. C. Winter Growth, Development, and Emergence of Diamesa mendotae (Diptera: Chironomidae) in Minnesota Streams. Environmental Entomology. 38, 250-259 (2009).
  19. Hardwick, R. A., Cooper, P. D., Cranston, P. S., Humphrey, C. L., Dostine, P. L. Spatial and Temporal Distribution Pattens of Drifting Pupal Exuviae of Chironomidae (Diptera) in Streams of Tropical Northern Australia. Freshwater Biology. 34, 569-578 (1995).
  20. Wilson, R. S., Bright, P. L. The Use of Chironomid Pupal Exuviae for Characterizing Streams. Freshwater Biology. 3, 283-302 (1973).
  21. Raunio, J., Paavola, R., Muotka, T. Effects of Emergence Phenology, Taxa Tolerances and Taxonomic Resolution on the Use of the Chironomid Pupal Exuvial Technique in River Biomonitoring. Freshwater Biology. 52, 165-176 (2007).
  22. Ruse, L. Lake Acidification Assessed using Chironomid Pupal Exuviae. Fundamental and Applied Limnology. 178, 267-286 (2011).
  23. Rufer, M. R., Ferrington, L. C. Sampling Frequency Required for Chironomid Community Resolution in Urban Lakes with Contrasting Trophic States. Boletim do Museu Municipal do Funchal (História Natural) Supplement. 13, 77-84 (2008).
  24. CEN. 15196, European Committee for Standardization. Brussels. 1-13 (2006).
  25. Ferrington, L. C. Collection and Identification of Surface Floating Pupal Exuviae of Chironomidae for Use in Studies of Surface Water Quality. Standard Operating Procedure No. FW 130A. , (1987).
  26. Saither, O. A. Glossary of Chironomid Morphology Terminology (Chironomidae Diptera). Entomologica Scandinavica Supplement. 14, 51(1980).
  27. Pinder, L. C. V., Reiss, F. Chironomidae of the Holarctic region. Keys and Diagnoses Part 2. Pupa. Wiederholm, T. 28, Entomologica Scandinavica Supplement. 299-456 (1986).
  28. Wiederholm, T. Chironomidae of the Holarctic region - Keys and Diagnoses, Part 2, Pupae. 28, Entomologica Scandinavica Supplement. (1989).
  29. Merritt, R. W., Webb, D. W. An Introduction to the Aquatic Insects of North America. , 4th edition, Kendall/Hunt Publishing Company. (2008).
  30. Wilson, R. S., Ruse, L. P., Sutcliffe, D. W. A Guide to the Identification of Genera of Chironomid Pupal Exuviae Occurring in Britain and Ireland (including Common Genera from Northern Europe) and Their Use in Monitoring Lotic and Lentic Fresh Waters. , Freshwater Biological Association. (2005).
  31. Egan, A. T. Communities in Freshwater Coastal Rock Pools of Lake Superior, with a Focus on Chironomidae (Diptera). , University of Minnesota. (2014).
  32. Raunio, J., Heino, J., Paasivirta, L. Non-Biting Midges in Biodiversity Conservation and Environmental Assessment: Findings from Boreal Freshwater Ecosystems. Ecological Indicators. 11, 1057-1064 (2011).
  33. Kavanaugh, R. G., Egan, A. T., Ferrington, L. C. Factors affecting decomposition rates of chironomid (Diptera) pupal exuviae. Chironomus: Newsletter on Chironomidae Research. 27, 16-24 (2014).
  34. Anderson, A. M., Stur, E., Ekrem, T. Molecular and Morphological Methods Reveal Cryptic Diversity and Three New Species of Nearctic Micropsectra (Diptera: Chironomidae). Freshwater Science. 32, 892-921 (2013).
  35. Ekrem, T., Willassen, E. Exploring Tanytarsini Relationships (Diptera: Chironomidae) using Mitochondrial COII Gene Sequences. Insect Systematics & Evolution. 35, 263-276 (2004).
  36. Ekrem, T., Willassen, E., Stur, E. A Comprehensive DNA Sequence Library is Essential for Identification with DNA Barcodes. Molecular Phylogenetics and Evolution. 43, 530-542 (2007).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

Chironomidae
استخدام الوامئات (ذوات الجناحين) العذراء سلخ بمثابة بروتوكول Bioassessment السريع لالمسطحات المائية العائمة السطحية
اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.