مقالة منهجية

باستخدام مخطط كهربية لتقييم وظيفة في القوارض الشبكية وتأثيرات واقية من بعيد الاطراف الدماغية شروط مسبقة

DOI:

10.3791/52658

⸱

يونيو 9, 2015

 , 
1Discipline of Physiology and Bosch Institute, Sydney Medical School, University of Sydney

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

مخطط كهربية الشبكية (ERG) هو جهد كهربائي تولده شبكية العين استجابة للضوء. تصف هذه الورقة كيفية استخدام ERG لتقييم وظيفة الشبكية ، في الفئران المتكيفة مع الظلام ، وكيف يمكن استخدامها لتقييم التدخل الوقائي للأعصاب ، في الحالة الحالية التكييف المسبق الإقفاري عن بعد.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ERG هو مجموع كل نشاط الشبكية. عادة ما يتم تسجيل ERG من القرنية ، والتي تعمل كهوائي يجمع ويجمع الإشارات من شبكية العين. ERG هو مقياس حساس للتغيرات في وظيفة الشبكية التي تكون عموم الشبكية ، ولكنه أقل فعالية في الكشف عن التلف المحصور في منطقة صغيرة من شبكية العين. في العمل الحالي ، نصف كيفية تسجيل ERG "الفلاش" ، وهو الجهد المتولد عندما تتعرض شبكية العين لومض ضوئي قصير. نصف طرق التخدير والحميدية وإدارة القرنية أثناء التسجيل. كيفية الحفاظ على ظلام الشبكية متكيفة ؛ مواد القطب الكهربائي والتنسيب ؛ نطاق ومعايرة طاقة التحفيز ؛ تسجيل المعلمات واستخراج البيانات. نصف أيضا طريقة لإحداث نقص التروية في أحد الأطراف ، وكيفية استخدام ERG لتقييم آثار نقص تروية الشبكية البعيد عن الشبكية على وظيفة الشبكية بعد تلف الضوء. يتم وصف بروتوكول ثنائي الفلاش يسمح بعزل المكون الذي يحركه المخروط من ERG المتكيف مع الظلام ، وبالتالي فصل مكونات القضيب والمخروط. نظرا لأنه يمكن تسجيله بتقنيات طفيفة التوغل ، فقد تم استخدام ERG على نطاق واسع في دراسات علم وظائف الأعضاء وعلم الأدوية وعلم السموم لشبكية العين. نصف مثالا واحدا على هذه الفائدة ، حيث يتم استخدام ERG لتقييم وظيفة شبكية العين التالفة بالضوء ، مع وبدون تدخل وقائي للأعصاب. التكييف المسبق عن طريق نقص التروية عن بعد.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأرج هو إمكانية الكهربائية المولدة عن طريق القرنية في الاستجابة للضوء، والمسجلة من سطح القرنية من العين. عندما تدار شروط تسجيل بعناية، وأرج يمكن استخدامها في مجموعة متنوعة من الطرق لتقييم وظيفة الشبكية. نحن هنا وصف كيفية تسجيل "فلاش أرج"، واحتمال ولدت عندما يتعرض الشبكية إلى وجيزة، ومضة مشرقة المعروضة في خلفية فريق Ganzfeld. وفريق Ganzfeld يشتت ضوء متجانس ومضة من الضوء تصل إلى شبكية العين كلها تقريبا بشكل موحد. إذا شبكية العين ويتم تكييف الظلام قبل التسجيل، ويتم الحفاظ على التكيف مع الظلام، كما يتم إعداد الحيوان للتسجيل، حصل على أرج يتم إنشاؤها من قبل كل من قضيب والمخروط خلايا مستقبلة للضوء.

فلاش أرج تتكيف مع الظلام لديه الموجي مميزة، والتي تم تحليلها بطريقتين. أولا، تم تمييزها المبكرة والمتأخرة مكونات الموجي أرج، وترتبط إلى سلسلة من الخلايا العصبيةتفعيل القاعدة في شبكية العين. أقرب العنصر هو الكمون القصير إمكانية الذهاب سلبيا، وعلى بعد موجة (الشكل 1). ويتبع ذلك عن طريق إمكانية الذهاب إيجابية، ودعا ب الموجة. المرحلة طلوع ب الموجة تظهر التذبذبات، التي تعتبر عنصرا منفصلا (إمكانات متذبذبة أو المكتب). يعتبر من الموجة إلى أن تولدها خلايا مستقبلة للضوء، وب الموجة من قبل خلايا الطبقة النووية الداخلية، والبروتوكولات الاختيارية من قبل خلايا عديم الاستطالات 1.

استنادا إلى قوة التحفيز، وصفته الردود على ومضات خافتة جدا الاستجابة عتبة ظلامية ممكنة. ومن المفهوم الاستجابة عتبة ظلامية أن تتولد من خلايا الشبكية العقدة 2-4. ثانيا، فلاش أرج يمكن فصلها عن طريق التكيف مع الضوء، أو عن طريق بروتوكول اثنين فلاش هو موضح أدناه، إلى مكونات rod- ويحركها مخروط. في ظل ظروف فوتوبيك، وعلى بعد موجة ليست قابلة للكشف في الفئران، لأن السكان مخروط منخفض، ولكن مكتب خدمات المشاريع وأ ب الموجة هيواضح 5. في المقدمات، التي لديها السكان مخروط أعلى شبكية العين، سواء rod- ومسارات cone- توليد للكشف على الموجة 6.

اثنين من التدابير المفيدة في كثير من الأحيان المستخرجة من فلاش أرج هي سعة من A و B موجات يقاس في الشكل 1، مع الردود فلاش النموذجية هو مبين في الشكل (2). وعندما يتم خفض السكان مبصرة، على سبيل المثال من خلال التعرض لدمارا مشرق ضوء، يتم تخفيض جميع مكونات أرج. التدخلات اعصاب، مثل البعيد شروط مسبقة الدماغية (RIP)، ويمكن التصديق عليها من قبل المحافظة على سعة من A و B موجات (الشكل 3). وباختصار، فإن تحليل ERG يتيح مقارنات بين الأصحاء، وعلى ضوء تلف شبكية العين وneuroprotected.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا البروتوكول يتبع المبادئ التوجيهية رعاية الحيوان من جامعة سيدني.

1. صنع أقطاب

  1. بناء القطب الموجب (واحد والتي سوف نتصل القرنية) من مسافة قصيرة (5 سم) طول سلك البلاتين 1-2 مم في القطر. أزياء قبل أن تتحول إلى حلقة بضعة ملليمترات. ربط هذه الحلقة إلى رصاص التقليدي، طويلة بما فيه الكفاية للوصول إلى مرحلة الإدخال من مكبر للصوت (انظر الشكل 4).
  2. بناء القطب السالب (والتي سوف تذهب في فم الحيوان) باستخدام حج / أجكل بيليه 1-2 مم في القطر، وأيضا على صلة الرصاص اتفاقية (انظر الشكل 4).
  3. كما القطب المرجعية (التي سوف تذهب إلى الردف الحيوان)، واستخدام إبرة تحت الجلد نظيفة (23 G)، مرتبطة أيضا بفارق طول المناسب (انظر الشكل 4).
  4. من الناحية المثالية، استخدام الكابلات الثلاثة الرصاص المقدمة من قبل الشركات المصنعة أداة، لتوصيل الأقطاب الثلاثة (إيجابية U94؛ القرنية، سلبي → الفم، إشارة → الكفل) لمكبر للصوت.

2. اتصال ومعايرة ضوء التحفيز وأرج مجموعة المتابعة

  1. إنشاء (أو موقع) مختبر تسجيل صغير، والتي يمكن أن تكون مصنوعة الظلام. تجهيز مع أي من الإفراط في مقاعد البدلاء ضوء مصنوعة أحمر أو أحمر الرأس مصباح أو كليهما.
  2. استخدام متر لوكس للتأكد من أن الضوء الأحمر مضوائية الوصول إلى عين فأر أثناء الإعداد لا تتجاوز 1 لوكس.
    ملاحظة: يمكن استخدام فلتر الكثافة محايدة للحد من سطوع المصباح ومصدر ضوء مصباح يجب أن تنبعث منها على وجه التحديد الضوء الأحمر. وسوف يتأثر التكيف الظلام إذا مصادر الضوء ينبعث الدنيا (مرئية) الأطوال الموجية.
  3. اغلاق كافة الضوء الشارد دخول المختبر تسجيل (هذا غالبا ما يتطلب استمرار مع الشريط مبهمة) وإعداد فلتر الكثافة المحايدة (يمكن شراؤها في ورقة) كبيرة بما يكفي لتناسب أكثر، وخافت جدا، أي شاشة الكمبيوتر سوف يكون في المختبر.
    ملاحظة: ضوء شارد وضوء شاشة تكفي ليمس التكيف مع الظلام من العين الفئران.
  4. توصيل مكبر للصوت الأجهزة الحصول على البيانات. ربط الإيجابية، ويؤدي سلبية وإشارة إلى مكبر للصوت. تأكد من توصيل الكمبيوتر وفريق Ganzfeld الصمام وحدة إمدادات الطاقة بشكل آمن إلى مصدر الأرض.
    ملاحظة: بعض المعامل المتخصصة ونقاط التأريض، متصلة الأرض بناء. النرجيلة هو بديل فعال.
  5. معايرة مصدر ضوء LED مع الاشعاع البحوث ذات الجودة. إصلاح أجهزة الاستشعار المقياس في الموضع الذي سيقع العين الحيوان أثناء التجربة.
  6. برنامج المصابيح فريق Ganzfeld لتشغيل بروتوكول أرج كامل الحقل مع زيادات تدريجية في الطاقة فلاش، مدة فلاش، فلاش التكرار والوقت بين ومضات، ووصف interstimuls الفاصلة (ISI)، إعدادات. لوضع بروتوكول سبيل المثال كامل الحقل أنظر الجدول 1.
    ملاحظة: حقل كامل زيادة ومضات أرج من ومضات خافتة المتكررة لبومضات الصحيحة بطريقة حكيمة الخطوة. يتبع برنامج فلاش مزدوج على من بروتوكول كامل الحقل ويمكن عزل قضيب ومخروط الردود.

3. يوم قبل أرج التجريب

  1. الظلام التكيف مع الفئران سبراغ داولي لمدة 12 ساعة قبل التسجيل. أنه لأمر مريح للقيام بذلك في المختبر التسجيل، مرة واحدة وقد تم القضاء على ضوء شارد.

4. يوم أرج التجريب

  1. ترتيب للحيوان أن تكون ساخنة بلطف أثناء التسجيل. نستخدم منصة المعادن الخفيفة بنيت بحيث رأس الحيوان يمكن أن تبقى عند نقطة الصحيحة عند مدخل إلى فريق Ganzfeld. على منصة لديه أنابيب يحمل في ثناياه عوامل نستطيع من خلالها ضخ المياه مسخن الى 40 درجة مئوية في حمام مائي.
    ملاحظة: تبين التجربة أن هذا يبقي درجة الحرارة الأساسية الحيوان عند 37 درجة مئوية.
  2. وزن الفئران في ظل الظروف المظلمة. سجل الوزن والماكياج الكيتامين الصحيح (60 ملغ / كلغ) وزيلازين (5 ملغ / كلغ) جرعة. كبح جماح الفئران جنرالTLY وحقن مخدر داخل الصفاق.
  3. ملاحظة وقت الحقن. مرة واحدة الحيوان فاقد الوعي (عادة في غضون 5 دقائق) تحقق عمق التخدير بواسطة معسر برفق وسادة قدم واحدة، لمعرفة ما إذا كان رد الفعل المنعكس موجودة. فمن الأفضل أن ننتظر حتى هذا لا ارادي غير موجود أو ضعيف، قبل المتابعة.
  4. تطبيق قطرة واحدة من الأتروبين وآخر من proxmethacaine إلى القرنية.
  5. قطع بطول 10 سم من الخيط الأسود. جعل حلقة مع عقدة بسيطة وزلة حلقة فوق خط الاستواء للعين. تشديد عليه قليلا؛ وأثر هو رسم مقلة العين إلى الأمام قليلا، مع الحد الأدنى من الضغط. هذا يحافظ على القرنية واضحة من الجفون.
  6. قطرات العين تطبيق كربومير على سطح القرنية. تبقى ضمان كربومير على سطح القرنية ولا تسرب على الجفون أو وجهه.
  7. وضع الفراش ماصة على قمة منصة ساخنة.
  8. موقف الفئران على الفراش، مع الرأس في مكان الموصى بها في الجلسة الافتتاحية للفريق Ganzfeld.
  9. إدراج الباحثالتحقيق في درجة الحرارة ernal في المستقيم. التحقيق في درجة الحرارة آمن في الموقف عن طريق تسجيل الحبل التحقيق الى الذيل.
  10. إدراج القطب المرجعية (إبرة 23 G) تحت الجلد في الساق الخلفية، والاتصال مكبر للصوت.
  11. وضع القطب السالب (بيليه حج / أجكل) بشكل آمن في الفم. لمنع هذا الانزلاق خارج الفم، ويضعوا زمام المبادرة بالاتصال على سطح ثابت.
  12. وضع القطب الموجب على مركز للقرنية. باستخدام micromanipulator، تأكد من أن القطب يلمس القرنية بلطف.
  13. تحقق من درجة حرارة الجسم في 37،0-37،5 درجة مئوية.
  14. مرة واحدة يتم وضع الحيوان بشكل صحيح والأقطاب في مكانها الصحيح، ثنى الإعداد كله (فريق Ganzfeld والحيوان) مع مادة مبهمة (للحفاظ على التكيف مع الظلام). نستخدم قطعة قماش سوداء لينة.
  15. في برنامج الحصول على تعيين في معدل أخذ العينات 2 كيلو هيرتز مع الوقت مجموعة من 100-1000 ميللي ثانية مع 5 ميللي ثانية لأخذ العينات قبل المجموعة. تعيين مرشحات تمرير الفرقة 1-1،000يتم تشغيل هرتز والتأكد من أخذ العينات لأخذ عينات من فترة ~ 250 مللي ثانية بعد ومضة.
  16. تحقق من الأساس التسجيل. يجب أن تكون خالية من الضوضاء الدخيلة، ولكن تظهر بعض الضوضاء مكبر للصوت والتذبذب في الجهاز التنفسي.
  17. إذا تبين الأساس الضوضاء الدخيلة، تبدأ المشاكل. ترتبط معظم مشاكل لإنزلاق في موقف القطب، أو التأريض. استخدام قفص فاراداي لضمان التسجيلات خالية من الضوضاء الدخيلة.
  18. تشغيل فلاش اختبار، 0.4 سجل الاسكتلندي cd.sm -2. الموجي أرج على غرار الشكل يجب أن تظهر 2A. في مختبرنا ردود نموذجية ل0.4 سجل الاسكتلندي cd.sm -2 فلاش هي: (أ الموجة: -474 ± 39 μV وب الموجة: 1512 ± 160 μV، ن = 11).
  19. السماح الحيوان مظلمة إعادة التكيف لمدة 10 دقيقة. أنها مريحة لاستخدام هذه 10 دقيقة لإعادة فحص خط الأساس.
  20. بعد تأكيد إشارة مستقرة تبدأ تسجيل.
  21. في نهاية الدورة تسجيل، تأكد من أن temperat الجسمواستمر لدى عودتهم. إزالة الأقطاب. تطبيق البوليمر كربومير لقرنية العين. السماح للحيوان للتعافي على وسادة الحرارة حتى يصبح المحمول بشكل كامل وفعال، قبل أن يعود إلى حظائر الحيوانات.

5. نقص التروية عن بعد

  1. أداء نقص التروية عن بعد في أي من القوارض مستيقظا أو anesthetised.
  2. إذا تم تخدير الحيوان، وضعه على منصة ساخنة (أعلاه)، وتنزلق الكفة مقياس ضغط الدم على الجزء العلوي من أطرافه الخلفية، واضحة في الركبة.
  3. إذا تم استخدام الحيوانات ليجري التعامل معها، فمن الممكن لتنفيذ هذا الإجراء دون تخدير. هذا يتطلب شخصين. شخص واحد يقيد الحيوان برفق والثانية تنطبق الكفة مقياس ضغط الدم ويعمل على مقياس ضغط الدم.
  4. للحيوانات مستيقظا، استخدم قطعة من منشفة ~ 15 سم × 30-50 سم إلى التفاف بلطف الحيوان، مع hindlimb واحد مجانا. وضع الحيوان على ظهرها (ويقول) الساعد الأيسر، مع رئيسها مدسوس بين ذراع حامل والجذع، ومكانصفعة وصفها بأنها مجرد.
  5. فرغ الكفة والتأكد من إغلاق صمام ضغط الهواء. ضخ الكفة إلى 160 مم زئبق في الحيوانات anesthetised، وإلى 180 مم زئبق في الحيوانات مستيقظا. هذا يتجاوز الضغط الانقباضي (عادة 140 مم زئبق و 160 مم زئبق على التوالي).
  6. الحفاظ على هذه الضغوط على النحو المطلوب، وذلك باستخدام مضخة يدوية.
  7. بعد الوقت المخطط له لنقص التروية (نستخدم 2 فترات 5 دقائق مفصولة 5 دقائق ضخه)، فرغ ضغط الكفة عن طريق فك صمام ضغط الهواء.
  8. تأكيد تأثير نقص التروية عن بعد مع تحقيق درجة حرارة الجلد تعلق على قاطع الطريق. درجة حرارة الجلد وعادة ما تقع 32-30 ° C، أكثر من 5 دقائق ويتعافى على ضخه.

6. ضوء الأضرار

  1. تأكد من أن الفئران هي في ليلة وضحاها تكييفها الظلام، قبل إجراء اضرار طفيفة.
  2. في الوقت المناسب بعد نقص تروية الأطراف (في تجاربنا دون تأخير)، يتم وضع كل حيوان منفردة إلى صناديق شبكي، وايالمياه التاسع والمواد الغذائية في حاويات القائم على الأرض.
    ملاحظة: لا يمكن إلا أن يضطلع الضرر الناجم عن الضوء في الحيوانات البيضاء.
  3. التبديل على 1000 لوكس الضوء الأبيض معايرة قبل في وقت قياسي (عادة 9:00) والحفاظ على هذه الحالة لمدة 24 ساعة.

7. أرج استخراج وتحليل البيانات

  1. اكتساب أشكال موجة متوسط ​​من أرج. إذا لزم الأمر، صحيح لخط الأساس غير صفرية، من خلال الطرح.
  2. قياس السعة من على بعد موجة (قدمت في منتصف لشدة التحفيز عالية)، حيث أن فرق الجهد بين خط الأساس والأولى (<30 مللي ثانية الكمون) حوض (الشكل 1).
  3. قياس السعة ب الموجة بالفرق بين الجهد ذروة في الموجة والموجب من الموجة التالية، والتي تحدث عادة في الكمون من 80-100 ميللي ثانية (الشكل 1).
  4. عزل إمكانات متذبذبة باستخدام تحويل فورييه لتصفية البيانات 60-235 هرتز، مع فرقة الانتقال 90 هرتز 7. إذا يمكن بعد ذلك طرح المطلوبة معزولة إشارة محتملة متذبذبة من الموجي فلتر لتأكيد هوية الحوض الصغير على بعد الموجة.
  5. الوقت الضمني (الكمون) من A و B موجة القمم يمكن أيضا أن تكون مقياسا مفيدا (الشكل 1). استخدام مضات التوأم لعزل استجابة قضيب. طرح استجابة مخروط (فلاش 2) من ردود فعل متباينة (فلاش 1) لعزل استجابة قضيب (الشكل 2).
  6. تطبيع شدة الضوء الفردية على الموجة وسعة ب الموجة (بعد العلاج / بعد المعاملة الأساس) أو متوسط ​​لمجموعات العلاج. منحنيات شدة الاستجابة مؤامرة سعة مجموعة والخطأ ضد الطاقة فلاش.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

بروتوكول يمكن استخدامها لقياس وظيفة البصرية من القوارض شبكية العين في الجسم الحي. وعلى بعد موجة، وهو مقياس لوظيفة مبصرة، وب الموجة، وهو مقياس لوظيفة شبكية العين الداخلية، ومشروحة في الشكل 1.

وأرج زيادات إشارة التي يهيمن عليها قضيب مع التحفيز ضوء زيادة، كما هو مبين في الشكل 2A. يصبح على بعد موجة واضحة في ~ 0.4 سجل الاسكتلندي cd.sm -2 والسعة من الزيادات في الموج...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

فلاش طريقة أرج الظلام تكييفها المذكورة أعلاه هو طريقة يمكن الاعتماد عليها لتقييم وظيفة شبكية العين في الفئران. خفضت كل من على بعد موجة وب الموجة التي كتبها اضرار طفيفة. جهاز التحكم عن بعد شروط مسبقة الدماغية التخفيف التخفيضات الناجمة عن الأضرار الخفيفة في لالموجة والموجة ب. هذا الحفاظ على وظيفة الشبكية تشير إلى أن شروط مسبقة الدماغية البعيد قد يسببها العصبية، تشبه الأشكال الأخرى من شروط مسبقة واقية مثل نقص الأكسجين، ونقص التروية وممارسة 10/08. يتم تحديد إشارة أرج التي س...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

جوناثان ستون هو مدير شركة خاصة محدودة الأبيض المتوسط

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

المؤلفون ممتنون للمساعدة السيدة شارون سبانا في رصد القوارض والمناولة والتجريب. تم توفير الدعم المالي الدكتوراه من جامعة سيدني ومركز الأبحاث الأسترالية للتميز في الرؤية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
كمبيوتر
الكمبيوتر Powerlab ، أجهزة الاستحواذ ذات 4 قنواتAD InstrumentsPL 35044الاستحواذ على ERG
Animal Bio AmpAD InstrumentsFE 136مكبر للصوت لمخطط
مختبرInstrumentsبرنامج جمع الإشارات
حلول Ganzfieldالضوئية FS-250Aالتحفيز الخفيف
نظام التشغيل Ganzfieldالقياس الضوئي
أبحاث مقياس الإشعاعتقنيات الإضاءة الدوليةILT-1700معايرة سلسلة الضوء
لوكس مترLX-1010Bتحقق من توضيح الضوء الأحمر
Excelأسلاك Microsoft
Lead ADInstrumentsConnect إيجابية وسلبية أقطاب كهربائية أرضية لمكبر للصوت
أسلاك الرصاص - التمساحAD Instrumentsأرضي ganzfield وأجهزة الاستحواذ على الكمبيوتر
سلك بلاتيني 95٪A & القطب الكهربائي الإيجابي
E قطب الفم Ag / AgCl PelletSDRE205الإكترود السلبي
26 G إبرةBDالكهربائية الأرضية
مضخة
حمام
نظام
بطانية حراري منزلي مع مسبار مرنهارفارد أبارتوس507222F
الأتروبين 1٪ وزن / vBausch & الميدريات الموضعية
Proxmethycaine 0.5٪ وزن / vBausch & Lombمخدر موضعي
Visco الدموع قطرات العينNovartiscarbomer بوليمر
خيطسحب جفن العين
ملاقط
لاصقة قابلة لإعادة الاستخدامBlu tacخافت المصباح الأمامي الأحمر. أقطاب
الفراش الماصة
كيتاميل - الكيتامين 100 مجم / مل - 50 ملTroy Laboratories Pty Ltdالانفصامي
- الزيلازين 100 مجم / مل - 50 ملTroy Laboratories Pty Ltdمرخي
ERG AD حلول للمعادن مياهالمياه أنابيب حمام الماءاللمي أقطاب الزيليوم مقياس للعضلات

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Arden, G. B., Heckenlively, J. Principles and practice of clinical electrophysiology of vision. , MIT Press. 139-183 (2006).
  2. Bui, B. V., Fortune, B. Ganglion cell contributions to the rat full-field electroretinogram. Journal of Physiology-London. 555 (1), 153-173 (2004).
  3. Fortune, B., et al. Selective ganglion cell functional loss in rats with experimental glaucoma. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 45 (6), 1854-1862 (2004).
  4. Alarcon-Martinez, L., et al. Short and long term axotomy-induced ERG changes in albino and pigmented rats. Molecular Vision. 15 (254-255), 2373-2383 (2009).
  5. Lyubarsky, A. L., et al. Functionally rodless mice: transgenic models for the investigation of cone function in retinal disease and therapy. Vision Research. 42 (4), 401-415 (2002).
  6. Bush, R. A., Sieving, P. A. A PROXIMAL RETINAL COMPONENT IN THE PRIMATE PHOTOPIC ERG A-WAVE. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (2), 635-645 (1994).
  7. Liu, K., et al. Development of the electroretinographic oscillatory potentials in normal and ROP rats. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 47 (12), 5447-5452 (2006).
  8. Casson, R. J., Wood, J. P. M., Melena, J., Chidlow, G., Osborne, N. N. The effect of ischemic preconditioning on light-induced photoreceptor injury. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 44 (3), 1348-1354 (2003).
  9. Lawson, E. C., et al. Aerobic Exercise Protects Retinal Function and Structure from Light-Induced Retinal Degeneration. Journal of Neuroscience. 34 (7), 2406-2412 (2014).
  10. Grimm, C., et al. HIF-1-induced erythropoietin in the hypoxic retina protects against light-induced retinal degeneration. Nature Medicine. 8 (7), 718-724 (2002).
  11. Weymouth, A. E., Vingrys, A. J. Rodent electroretinography: Methods for extraction and interpretation of rod and cone responses. Progress in Retinal and Eye Research. 27 (1), 1-44 (2008).
  12. Bayer, A. U., Cook, P., Brodie, S. E., Maag, K. P., Mittag, T. Evaluation of different recording parameters to establish a standard for flash electroretinography in rodents. Vision Research. 41 (17), 2173-2185 (2001).
  13. Pugh, E. N., Lamb, T. D. AMPLIFICATION AND KINETICS OF THE ACTIVATION STEPS IN PHOTOTRANSDUCTION. Biochimica Et Biophysica Acta. 1141 (2-3), 111-149 (1993).
  14. Breton, M. E., Schueller, A. W., Lamb, T. D., Pugh, E. N. ANALYSIS OF ERG A-WAVE AMPLIFICATION AND KINETICS IN TERMS OF THE G-PROTEIN CASCADE OF PHOTOTRANSDUCTION. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 35 (1), 295-309 (1994).
  15. Mizota, A., Adachi-Usami, E. Effect of body temperature on electroretinogram of mice. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 43 (12), 3754-3757 (2002).
  16. Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Research Bulletin. 56 (1), 7-14 (2001).
  17. Charng, J., et al. Conscious Wireless Electroretinogram and Visual Evoked Potentials in Rats. Plos One. 8 (9), (2013).
  18. Galambos, R., Juhasz, G., Kekesi, A. K., Nyitrai, G., Szilagyi, N. NATURAL SLEEP MODIFIES THE RAT ELECTRORETINOGRAM. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 91 (11), 5153-5157 (1994).
  19. Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmar, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 98 (4), 2083-2088 (2001).
  20. Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plasticity. 11 (3-4), 241-250 (2004).
  21. Huang, J. C., Salt, T. E., Voaden, M. J., Marshall, J. NON-COMPETITIVE NMDA-RECEPTOR ANTAGONISTS AND ANOXIC DEGENERATION OF THE ERG B-WAVE IN-VITRO. Eye (London). 5 (4), 476-480 (1991).
  22. Sasovetz, D. KETAMINE HYDROCHLORIDE - EFFECTIVE GENERAL ANESTHETIC FOR USE IN ELECTRORETINOGRAPHY. Annals of Ophthalmology. 10 (11), 1510-1514 (1978).
  23. Mojumder, D. K., Wensel, T. G. Topical Mydriatics Affect Light-Evoked Retinal Responses in Anesthetized Mice). Investigative Ophthalmology & Visual Science. 51 (1), 567-576 (2010).
  24. Fraunfel, F. t, Burns, R. P. ACUTE REVERSIBLE LENS OPACITY - CAUSED BY DRUGS, COLD, ANOXIA, ASPHYXIA, STRESS, DEATH AND DEHYDRATION. Experimental Eye Research. 10 (1), 19(1970).
  25. Calderone, L., Grimes, P., Shalev, M. ACUTE REVERSIBLE CATARACT INDUCED BY XYLAZINE AND BY KETAMINE-XYLAZINE ANESTHESIA IN RATS AND MICE. Experimental Eye Research. 42 (4), 331-337 (1986).
  26. Behn, D., et al. Dark adaptation is faster in pigmented than albino rats. Documenta Ophthalmologica. 106 (2), 153-159 (2003).
  27. Sugawara, T., Sieving, P. A., Bush, R. A. Quantitative relationship of the scotopic and photopic ERG to photoreceptor cell loss in light damaged rats. Experimental Eye Research. 70 (5), 693-705 (2000).
  28. Machida, S., et al. P23H rhodopsin transgenic rat: Correlation of retinal function with histopathology. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 41 (10), 3200-3209 (2000).
  29. Brandli, A., Stone, J. Remote Ischemia Influences the Responsiveness of the Retina. Observations in the Rat. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 55 (4), 2088-2096 (2014).
  30. Maccarone, R., Di Marco, S., Bisti, S. Saffron supplement maintains morphology and function after exposure to damaging light in mammalian retina. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 49 (3), 1254-1261 (2008).
  31. Hood, D. C., Birch, D. G. Assessing abnormal rod photoreceptor activity with the a-wave of the electroretinogram: Applications and methods. Documenta Ophthalmologica. 92 (4), 253-267 (1996).
  32. Robson, J. G., Frishman, L. J. The rod-driven a-wave of the dark-adapted mammalian electroretinogram. Progress in Retinal and Eye Research. 39, 1-22 (2014).
  33. Hood, D. C., Birch, D. G. A COMPUTATIONAL MODEL OF THE AMPLITUDE AND IMPLICIT TIME OF THE B-WAVE OF THE HUMAN ERG. Visual Neuroscience. 8 (2), 107-126 (1992).
  34. Wachtmeister, L. Oscillatory potentials in the retina: what do they reveal. Progress in Retinal and Eye Research. 17 (4), 485-521 (1998).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

ElectroretinogramRetinal FunctionRemote Ischemic PreconditioningDark Adapted ERGA Wave B WaveKetamine Xylazine AnesthesiaGanzfeld StimulationCorneal Electrode PlacementLight Damage ModelPhotoreceptor Response Assessment

مقالات ذات صلة