مقالة منهجية

توصيف الاستقلابية الحالة في الرئيسيات من غير البشر مع اختبار تحمل الجلوكوز في الوريد

DOI:

10.3791/52895

⸱

نوفمبر 13, 2016

 ,  ,  ,  , 
1Cardiovascular and Metabolism Group, Crown Bioscience

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

والهدف من هذا البروتوكول هو تقديم الطريقة القياسية لأداء الوريد اختبارات تحمل الغلوكوز (IVGTTs) لتقييم مراقبة نسبة السكر في الدم في الرئيسات من غير البشر وتقييم وضعهم الأيض من الأصحاء للdysmetabolic.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اختبار تحمل الجلوكوز في الوريد (IVGTT) يلعب دورا رئيسيا في تحديد خصائص توازن الجلوكوز. عندما تؤخذ جنبا إلى جنب مع لمحات المصل البيوكيميائية، بما في مستويات السكر في الدم في كل من بنك الاحتياطي الفيدرالي وصام الدولة، نسبة HbA1c، ومستويات الانسولين، والتاريخ الطبي من النظام الغذائي، وتكوين الجسم، والجسم الوضع الوزن، وتقييما لمراقبة نسبة السكر في الدم طبيعية وغير طبيعية ويمكن إجراء . ويتم تفسير لIVGTT من خلال قياس التغيرات في مستويات السكر والانسولين مع مرور الوقت فيما يتعلق التحدي الدكستروز. العناصر الأساسية التي يتعين النظر فيها هي: ذروة مستويات السكر والانسولين تم التوصل إليه في ما يتعلق T0 (نهاية ضخ الجلوكوز)، ومعدل إزالة الجلوكوز K المستمدة من المنحدر من إزالة الجلوكوز سريع في دقيقة 20 الأول (T1 إلى T20)، والوقت للعودة إلى خط الأساس الجلوكوز، والمنطقة تحت المنحنى (AUC). ومن شأن هذه التدابير IVGTT تظهر تغييرات مميزة كما يتحرك توازن الجلوكوز من ر صحيالزراعة العضوية المريضة الدولة الأيض 5. هنا سنقوم بشرح توصيف الرئيسيات غير البشرية (قرود المكاك القرد وسينومولوغوس)، والتي هي النموذج الأكثر صلة حيوان من النوع الثاني من مرض السكري (T2D) في البشر وIVGTT وملامح السريرية لهذه الحيوانات من العجاف صحية، لdysmetabolic يعانون من السمنة المفرطة، والدولة 8، 10، 11 T2D.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وIVGTT هو فحص وظيفي مناسب يستخدم عادة لتحديد وظيفة β خلايا في البشر في مختلف الدول الأيضية 5 و 7. وفي النماذج الحيوانية من T2D، فمن المعترف بها وكذلك أداة لوصف الحيوانات التي تظهر تطور المرض الأيضي من صحية لdysmetabolic دولة فرط سكر الدم 8 و 9. ويتجلى هذا النموذج أقرب الحيوانات من T2D في الرئيسيات غير البشرية (الرئيسيات)، والتي ريسوس والرباح قرود المكاك هي الأمثلة البارزة. هذه الحيوانات بشكل طبيعي تطوير T2D مع نفس عوامل الخطر من العمر والسمنة تساهم في حدوثه كما في البشر 10. وعلاوة على ذلك، هناك تطور المرض مماثل، وأمراض البنكرياس تظهر رواسب أميلويد كما تقدم المرض dysmetabolic 11.

نحن هنا تقريرا عن الطريقة المعتادة لدينا من إجراء عملية IVGTT في الرئيسيات كجزء من توصيف مستعمرة من الوضع الأيضي في هذه الحيوانات. هذا الأسلوب هومن السهل أن أداء النسبي على الآخرين المزيد من الوقت، وتستهلك وتقنيات مكلفة 2. وIVGTT هو مفيد لوصف مستعمرة كبيرة من الحيوانات بسرعة وبشكل متكرر. عندما تؤخذ بعين الاعتبار مع مستوى الهيموجلوبين السكري (نسبة HbA1c)، والتاريخ والنظام الغذائي والغذاء تناول الحيوان، وكذلك في المئة العجاف كتلة الجسم والدهون، وIVGTT عادة كافية لوصف الوضع الأيضي الحيوان والتقدم نحو السكري العلني 6 8.

يمثل نسبة HbA1c متوسط ​​مستوى السكر في الدم على مدى عمر خلايا الدم الحمراء، وتوفير مقياس موثوق لمستويات السكر على مدى الأسابيع الستة الماضية إلى ثلاثة أشهر. عندما تقاس من صام عينة الدم الأساسي من IVGTT، هذه القيمة توفر نافذة على السيطرة على السكر خلال الأشهر بين الإجراءات. إذا انتقلت الحيوان من dysmetabolic لمرضى السكري منذ IVGTT آخر، وسيكون قيمة نسبة HbA1c أعلى بكثير من قيمتها السابقة تشيرأن التحول بدأ بعد وقت قصير من IVGTT آخر، وحين، قيمة نسبة HbA1c أقرب إلى قيمتها السابقة تشير إلى أن أنها قد انتقلت مؤخرا فقط. بشكل عام، في قرود المكاك ريسوس، نسبة HbA1c القيم أكبر من يعتبرون 6٪ غير طبيعي، وتشير إلى ضعف السيطرة على نسبة السكر في الدم 10، 23.

ينبغي أن تفسر مستويات السكر في الدم ضمن سياق السلوك والصحة العامة للحيوان ككل. قرود المكاك السكري - مثل البشر - فرط الأكل المعرض، عطاش، وبوال. الإسكان مجموعة من الحيوانات يوفر تحديات كبيرة لقياس هذه المؤشرات والرعاية الفردية اللازمة لdysmetabolic والقردة مرضى السكري. نوصي السكن منفردة الحيوانات من أجل أن الرعاية أكثر تخصيصا قد تكون المقدمة، ويتم رصد العلامات السلوكية للصحة القرد أكثر سهولة 8. بالإضافة إلى ذلك، سوف قرود المكاك السكري تظهر خسارة الوزن، فضلا عن ارتفاع مستوى الدهون (زيادةالكولسترول، وزيادة شحوم الدم) واضطراب استقلاب المعادن في الكيمياء في الدم. من المهم قياس علامات الكبد ووظائف الكلى في الكيمياء في الدم، والأضرار التي لحقت هذه الأجهزة غالبا ما تكون مضاعفات دفع الأيض اضطراب / مرض السكري، ويمكن أن يكون شارك في محددات نسبة السكر في الدم، الدهون وعدم التوازن المعدنية 9، 11، 18، 24 .

عند استخدام هذا الأسلوب، والقيم التاريخية ولدت من متعددة، الأوصاف المتكررة على مدى عمر قرد ذات قيمة خاصة. إذا إجراءات أخرى، مثل المشبك الجلوكوز أو السكر في متدرج ضخ (GGI)، وهناك حاجة لإجراء تقييم كامل الصحة حيوان، فمن عادة على توصيف الأولي عندما تاريخهم غير متوفر. IVGTTs ومع ذلك، مرة واحدة وقد تم إنشاء خط الأساس، وكرر من تردد كل ثلاثة أشهر تكفي عادة لتتبع التقدم المحرز الحيوان. وهذا أمر مهم خاصة عندما التحق الحيوانات في دراسات متعددة في جميع أنحاءالسنة التقويمية استنادا إلى وضعهم الأيض. بينما قد تبقى حالتهم الصحية مستقرة نسبيا لسنوات في وقت واحد، عندما يتأزم الوضع الأيضي للحيوان، يمكن أن تحدث زيادة كبيرة في مقاومة الانسولين والجلوكوز التعصب بشكل سريع جدا. قيم نسبة HbA1c تسمح لبعض الاستيفاء من تراجع أو تحسن من الحالة الصحية للحيوان بين الإجراءات المقرر ثلاثة أشهر على حدة. لهذا السبب، وهذه الطريقة مثالية لوصف الحيوانات المستخدمة في عدة دراسات طولية على مدار حياتها الطبيعية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع الإجراءات الحيوانية من قبل معهد بحوث موردوك ديفيد اتش IACUC تقع في الحرم الجامعي ولاية كارولينا الشمالية بحوث (NCRC)، تحت بروتوكول 14-017، توصيف نموذج الرئيسيات غير البشرية من مرض السكري ومقدمات السكري / مقاومة الانسولين وفعالية العلاجات لتحسين حساسية الأنسولين وظيفة التمثيل الغذائي.

1. اختيار الحيوان وإعداد دراسة

  1. حدد النظام الغذائي والوزن الحيوانات مستقرة استنادا إلى سجلات الاستهلاك الغذائي ووزن الجسم الشهرية.
    لا ينبغي أن تتميز الحيوانات التي عرضت على الانخفاض الأخير في الشهية حتى استقر تناول طعامهم: ملاحظة.
    1. للحيوانات الناضجة (> 5-6 سنة)، عدم تحديد الحيوانات التي تختلف بأكثر من 10٪ دون النظر أولا القرد واستبعاد الأسباب الأخرى من تغيير الوضع الأيضي لتغيير جذري في وزن الأوزان بين أشهر متتالية الجسم.
  2. لالجلوكوز والأنسولين وج-peptiالتحاليل دي، وإعداد ك 2 EDTA أنابيب جمع العينات مع مثبطات الأنزيم البروتيني (أبروتينين وDPP4I).
    ملاحظة: يوفر كوكتيل DPP4I + أبروتينين طائفة واسعة من تثبيط الأنزيم البروتيني ينبغي أن يطلب هذا من أجل التحاليل الإضافية (الجلوكاجون، GLP-1). في حال أن التحاليل الإضافية التي لم تجمع، يجب أن تكون على استعداد للأنابيب الدم في بنفس الطريقة للحفاظ على التناسق في جمع العينات. عينات للفحوصات يتم التحقق من صحة لهذا الأسلوب يجب أن تجمع على حدة، وفقا لتوصيات الشركة المصنعة.
    1. تحضير الكوكتيل مثبط البروتياز عن طريق خلط 100 ملغ مجفف بالتجميد أبروتينين مع 10 مل من DPP4I. إضافة 10 ميكرولتر من خليط أبروتينين + DPP4I إلى كل أنبوب الدم لكل ملليلتر من الدم التي تم جمعها.
    2. إضافة 10 ميكرولتر إضافية من الكوكتيل مثبط البروتياز إلى كل أنبوب لاحتمال الفائض جمع. تخزين أنابيب المعاملة الدم عند درجة حرارة -20 درجة مئوية حتى الاستخدام. إبقاء الأنابيب على الجليد الرطب خلال proceduإعادة وتدور في 4 درجات مئوية.
    3. استخدام أنبوب فاصل مصل لجمع عينة الدم في الأساس لتحليل كيمياء الدم القياسية. لاستكمال عدد خلايا الدم (CBC)، واستخدام معيار ك 2 EDTA دون مثبطات الأنزيم البروتيني. وقد نسج استخدام cryovials إلى البلازما قسامة والمصل بعد عينات الدم باستمرار.
    4. تسمية أنابيب الدم وcryovials بشكل مناسب مع تحديد الحيوان والتاريخ والإجراء، timepoint، وحجم العينة. تسمية cryovials مع الحليلة (ق) في البلازما لفحص المناسب.
  3. إعداد تدفق المياه المالحة heparinized عن طريق حقن 0.15 مل من 1،000 وحدة جامعة جنوب المحيط الهادئ في الهيبارين مل في كيس 250 مل من محلول ملحي. الحصول على حل من 0.06 ملغ الهيبارين / مل. رسم 40 - 60 مل من هذا المحلول إلى قفل المالحة للبيغ بين العينات. رسم 1 مل إضافية و 5 مل إلى المحاقن منفصلة لغسل ميناء ضخ سكر العنب قبل وبعد التسريب، على التوالي.

2.التخدير الحيوانية والتحضير

  1. إزالة الطعام من قفص الحيوان ما لا يقل عن 14 ساعة قبل إجراء العملية، وليس أكثر من 18 ساعة.
    ملاحظة: من المهم أن صام الحيوانات لإجراء العملية لتجنب أي تغيير بعد prandial في القيم نسبة السكر في الدم. وإنما هو أيضا الاحتياطات اللازمة لتجنب قلس وتطلع محتويات المعدة في حين تخدير.
  2. الحيوانات وقور لمدة الإجراء IVGTT مع الكيتامين تعطى في العضل كما التخدير العام، في 10 ملغم / كغم. إدارة الكيتامين إضافية (5-10 ملغ / كلغ) على فترات من 20 - 30 دقيقة، أو حسب الحاجة، أثناء العملية.
    1. وزن الحيوان مخدرا. وضع الحيوان في وضعية الاستلقاء أفقيا على طاولة إجراء ساخنة.
    2. مراقبة المعلمات السريرية كل 15 إلى 20 دقيقة لضمان الحيوان هو في الطائرة مستقرة من التخدير. قياس معدل ضربات القلب (100-200 نبضة في الدقيقة) ومكتب التخطيط الاستراتيجي 2 (> 92٪) مع مقياس التأكسج النبض. قياس معدل التنفس (20-50 الأنفاس / دقيقة) ث إيث ساعة توقيت، عد التنفس بصريا أو باليد أكثر من خمسة عشر ثانية، وضرب من قبل أربعة. درجة الحرارة قياس (> 97 ° F) عن طريق المستقيم. مراقبة لون الغشاء المخاطي حول اللثة والشفتين (رطبة والوردي).
  3. إعداد موقعين قنية. استخدام الشعر كليبرز لتقليم الشعر من منطقة ذات أهمية حيث سيتم ادخال القسطرة، وتعقيم المنطقة بأسرها بالتناوب مع الدعك من الكلورهيكسيدين و 70٪ كحول.
    1. وضع قسطرة واحدة في منطقة عروق اليمين أو اليسار رأسي أو الصافن وإرفاقه مطاردة الهيبارين المالحة (0.06 ملغ الهيبارين / مل) مع ثلاثي محبس. هذا هو أخذ العينات موقع سحب الدم.
    2. وضع القسطرة الثانية في الساق آخر أو تسليحها في منطقة عروق رأسي أو الصافن وإرفاق الميناء. استخدام هذا الموقع لتسريب الدكستروز. استخدام صغيرة، 1 مل دافق من المياه المالحة heparinized للحفاظ على البراءة قنية قبل ضخ الدكستروز.
e_title "> 3. الإجراءات IVGTT

ملاحظة: الإجراء IVGTT يتكون من 8 عينات سحب الدم مرة نقاط (الجدول 1).

  1. أخذ عينة خط الأساس واستخدام غلوكمتر باليد لقياس مستوى السكر في الدم الصيام. الحصول على عينة مصل الدم لتحليل الكيمياء القياسية، وكذلك عينة دم كاملة CBC لمن أجل تقييم الصحة العامة للحيوان. جمع عينات البلازما لفحص مستويات الجلوكوز والأنسولين من العينة الأساسية باستخدام مجموعة التحقق من صحتها للاستخدام مع قرود المكاك وفقا لتعليمات الشركة الصانعة 8 و 9.
    ملاحظة: من المهم أن يكون ما قبل التعادل من 0.5 مل مأخوذة من قنية قبل اتخاذ أي عينة لجمع الدم لإزالة بقايا الدم أو الهيبارين في الفضاء الميت من قنية.
  2. بعد الحصول على عينة خط الأساس، ولبث جرعة من 50٪ سكر العنب (250 ملغ / كغ) أكثر من 30 ثانية إلى ميناء ضخ الدكستروز.
    ملاحظة: نماذج الجرعة العالية (500 ملجم / كجم) يمكن استخدامها،على الرغم من أن جرعة ينبغي أن تكون ثابتة عبر إجراءات من أجل إجراء مقارنات الطولية.
    1. مسح ميناء التسريب مع 5 مل من المياه المالحة heparinized للتأكد من أنه لا يوجد أي سكر العنب اليسار في الميناء. نهاية التسريب هو T0. هل لديك فني محل قفازات، وسكر العنب المتبقية من التسريب قد تلوث عينات من الدم لاحقة.
  3. أول ما بعد ضخ نقطة زمنية العينة في T3 دقيقة من نهاية ضخ سكر العنب، تليها T5 دقيقة، T7 دقيقة، T10 دقيقة، T15 دقيقة، T20 دقيقة، وآخر نقطة زمنية العينة في T30 دقيقة. جمع البلازما من كل timepoint إلى الجلوكوز فحص ومستويات الانسولين مع عينة خط الأساس (راجع الخطوة 3.1).
    1. في T3 دقيقة نقطة زمنية، استخدم غلوكمتر باليد للتأكد مرة أخرى من مستوى السكر في الدم.
      ملاحظة: قراءات غلوكمتر في الأساس وT3 هي فقط لتأكيد ضخ سكر العنب. ينبغي أن يكون مستوى السكر في الدم في T3 دقيقة نقطة زمنية ~ 100 ملغ / دل أعلى التعاونmpared إلى مستوى الجلوكوز في البلازما الصيام الأساس.

4. استعادة الحيوانية وتجهيز العينات

  1. إزالة قنية وممارسة الضغط على المواقع مقسطر عن الارقاء بعد T30 دقيقة وقت نقطة. مراقبة الحيوانات حتى استعاد وعيه والجلوس. وتعافى تماما تغذية عرض مرة واحدة الحيوان.
  2. المكان على الفور كل عينة دم كاملة إلى K 2 أنابيب EDTA على الجليد. أجهزة الطرد المركزي في 3000 دورة في الدقيقة في درجة حرارة 4 درجات مئوية في غضون 10 دقيقة من جمع. عينات قسامة البلازما في cryovials، تجميد وتخزين في -80 درجة مئوية حتى التحليل.
    1. السماح للالدم في أنبوب المصل لتحليل كيمياء الدم القياسية للجلوس في درجة حرارة الغرفة لمدة لا تقل عن 20 دقيقة ولا تزيد عن 30 دقيقة قبل الطرد المركزي في 3000 دورة في الدقيقة في RT. تجميد عينات المصل حتى يعاير خلال 48 ساعة من جمعها.
      ملاحظة: بردت عينات الدم التي تم جمعها كلها لتحليل CBC حتى وقتسيد خلال 24 ساعة من جمعها.

5. معالجة البيانات

  1. بعد إنشاء الانسولين البلازما والجلوكوز منحنيات، وتحديد معدل إزالة الجلوكوز K من منحدر سجل الطبيعي للقيم الجلوكوز فوق خط الأساس 16، 17.
    ملاحظة: قد يكون من المتوقع أن يكون معدل إزالة الجلوكوز K أعلى بكثير من 1، غالبا ما تكون أكبر من 2 أو أكثر، وصحة الحيوان، وغالبا ما يعود إلى قيمها الجلوكوز الأساس في غضون 30 دقيقة وNHP صحي. ومع انخفاض إنتاج الأنسولين الخروج، فإن معدل إزالة الجلوكوز K إسقاط أكثر بشكل كبير، وانخفاض أقل من 1.
  2. حساب مفوضية الاتحاد الأفريقي ككل، كمجموع مجاميع منطقة شبه المنحرف تمثل المنطقة تحت المنحنى لكل قطعة مستقيمة بين الساعة نقاط، من خلال T30 16 و 17.
    ملاحظة: تقليديا، يعتبر الجامعة الأمريكية بالقاهرة من الدقائق العشر الأولى من الإجراء acutالبريد استجابة الأنسولين للجلوكوز (AIR)، في حين أن الجامعة الأمريكية بالقاهرة من دقيقة 20 الأخير من الإجراء يعتبر استجابة أواخر الأنسولين (LIR). كما يصبح الحيوان أكثر dysmetabolic، فإن الجامعة الأمريكية بالقاهرة الأنسولين يزيد، والتي تعكس التعويض عن زيادة حساسية الأنسولين. كما أن التحولات الحيوان لمرض السكري الصريح، ومع ذلك، فإن الجامعة الأمريكية بالقاهرة الانخفاض، في كثير من الأحيان في البداية في مرحلة الأنسولين الحادة، التي تم التقاطها بواسطة الهواء.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وتبين النتائج الموضحة في الشكل رقم 1 هي برهانية من نموذجية الجلوكوز والأنسولين منحنيات من قرود المكاك الرباح ناضجة وصحية لمرضى السكري وعلى مدار IVGTT 30 دقيقة. وتظهر بيانات من القرود السكري صحية والمتقدمة وذلك لتباين واختلافات واضحة بين الحيوانات من طرفي المتطرفة من مجموعة من توصيف الأيض. وقد استخدم هذا البروتوكول IVGTT بنجاح من قبل المؤلفين في قرود المكاك ريسوس مع نتائج مماثلة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وIVGTT يقيم قدرة اطلاق الانسولين حفز الجلوكوز من خلال ضخ الدكستروز واحد على أساس وزن الجسم 5 و 12 و 13. من الفحص، وتحقيق نسبة الجلوكوز في الدم أثناء الصيام ومستوى الأنسولين، وأنه يسمح بتقييم قدرة الحيوان ل الافراج عن الانسولين ويعود مستوى الجلوكوز المرتفع نحو خط الأساس. هذا يوفر للمستخدم مع المعلومات لوصف حيوان هو والجلوكوز العادي ومراقبة صحية مستوى الأنسولين، وهو حيوان dysmetabolic hyperinsulinemic مع سوائية سكر الدم، أو فرط سكر الدم ومقاومة للأنسولين الحيوان السكري. <...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وينتمي الكتاب مع منظمة أبحاث العقد (ولي العهد العلوم البيولوجية) النشطة في مجال أمراض التمثيل الغذائي.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

فإن الكتاب أود أن نشيد بالدعم القوي من موظفي رعاية الحيوانات DHMRI CLAS، مدير مرفق السيد دانيال بيرالتا وحضور الطبيب البيطري الدكتور Glicerio اجناسيو، DVM MRCVS.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
X-15R للطرد المركزي: 4 &# 176; C عند 3,000 دورة في الدقيقة لمدة 10 دقائق
مصل الطرد: 22 &# 176; C عند 3,000 دورة في الدقيقة لمدة 10 دقائق
Thermo Scientific -86 &# 176 ؛ فريزر سي ، سلسلة فورما 88000الموديل: 88500A
تسليم IV D50
الإسفنج الشاش 2 × 2الغرب الأوسط البيطري Suppy366.23000.4مستعمل جاف ، مع 70٪ كحول ، و 2٪ محلول كلوروهيكس
4 مل أنابيب فاصل المصل   ؛الغرب الأوسط البيطري الإمداد366.45000.4أنبوب جمع الدم للوحة superchem
K2< / sub>EDTA ، 2 ملVWR95057-239أنابيب جمع الدم
البروتينين ، 100 مجمSigmaA1153-100MGأنبوب جمع الدم البروتياز المضاف
22 جم × 1 "القسطرةالغرب الأوسط البيطرية Suppy193.75250.2قسطرة IV   ؛
قابس الحقن مع غطاءالغرب الأوسط البيطري Suppy001.11500.2٪ 50 منفذ ضخ سكر العنب
Porus Tape ، 1/2 "× 10 ياردةالغرب الأوسط001.85000.2يحافظ على التصاق القسطرة و hep. أقفال
محلول الكلورهيكسيدين 2٪الغرب الأوسط البيطري Suppy193.08855.3موقع القسطرة الإعدادية
70٪ الإيثانولVWR71001-654موقع القسطرة الإعدادية
عاصبةويبستر07-8003432
3-way stopcockالغرب الأوسط الإمداد البيطري366.28510.4hep. قفل
37 "مجموعةتمديد ويبستر07-8454200hep. lock
Exel 50-60cc LL محاقنالغرب الأوسط البيطرية Suppy001.12250.2المحلول الملحي الهيباريني
250 مل 0.9٪ محلول ملحيويبستر07-8365593دافق
1،000 U هيبارين ، 10 ملويبستر07-883-4916
كيتامين (كيتاسيت) 100 & nbsp ؛ ملغ / ملفورت دودج(طلب AV)
اختبار الجلوكوز Precision Xtra 50 / bxAbbott (السكري الأمريكي بالجملة)9381599728K7اختبار خط الأساس / مستويات الجلوكوز في الدم
T3 ماسيمو راد 57DRE6052057Vالتأكسج النبضي
بافيا ميزان الحرارة الشرجيباترسون07-8391335
الدقة Xtra مقياس السكرأبوت9381599728K7جهاز قياس السكر المحمول
البلازما Allegra المركزي Sorvall ST16Rسكر العنب 50٪ (D50) ويبستر 07-8008986 IV غروب الجلوكوز 3 مل حقنة لوير لوك الغرب الأوسط البيطرية سوبي سحب الدم التسلسلي 5 مل حقنة لوير لوك الغرب الأوسط بيطرية سوبي محلول ملحي هبارين دافق 10 مل حقنة لوير لوك الغرب الأوسط البيطرية سوبي البيطرية البيطري Suppy كيس شرائط مقياس

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Bergman, R., Phillips, L., Cobelli, C. Physiologic evaluation of factors controlling glucose tolerance in man. J. Clin. Invest. 68, 1456-1457 (1981).
  2. Bergman, R., Prager, R., Volund, A., Olefsky, J. M. Equivalence of the insulin sensitivity index in man derived by the minimal model and the euglycemic glucose clamp. J. Clin. Invest. 79, 790-800 (1987).
  3. Hovorka, R., et al. Partitioning glucose distribution/transport, disposal, and endogenous production during IVGTT. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab. 282, E992-E1007 (2002).
  4. Salinari, S., Guidone, C., Bertuzzi, A., Manco, M., Asnaghi, S., Mingrone, G. First-phase insulin secretion restoration and differential response to glucose load depending on the route of administration in type 2 diabetic subjects after beriatric surgery. Diabetes Care. 32 (3), 375-380 (2009).
  5. Clinical Diabetes Research: Methods and Techniques. Roden, M. , John Wiley & Sons. (2007).
  6. Cobelli, C., Pacini, G. Insulin secretion and hepatic extraction in humans by minimal modeling of c-peptide and insulin kinetics. Diabetes. 37, 223-231 (1988).
  7. Lorenzo, C., et al. Disposition index, glucose effectiveness, and conversion to type 2 diabetes: the insulin resistance atherosclerosis study. Diabetes Care. 33, 2098-2103 (2010).
  8. Hansen, B. C. Investigation and treatment of type 2 diabetes in nonhuman primates. Methods Mol Biol. 933, 177-185 (2012).
  9. Hansen, B. C., Bodkin, N. L. Standardization of IVGTT. Importance of method used to calculate glucose disappearance. Diabetes Care. 16 (5), 847(1993).
  10. Hardwood, J. H., Listrani, P., Wagner, J. D. Nonhuman primates and other animal models in diabetes research. J Diabetes Sci Tech. 3, 503-514 (2012).
  11. De Koning, E. J., Bodkin, N. L., Hansen, B. C., Clark, A. Diabetes mellitus in Macaca mulatta monkeys is characterized by islet amyloidosis and reduction in beta-cell population. Diabetologia. 36, 378-384 (1993).
  12. Letiexhe, M. R., Scheen, A. J., Gerard, P. L., Desaive, C., Lefebvre, P. J. Insulin secretion, clearance and action before and after gastroplasty in severely obese subjects. Int J Obes Relat Metab Disord. 18, 295-300 (1994).
  13. Letiexhe, M. R., Scheen, A. J., Gerard, P. L., Desaive, C., Lefebvre, P. J. Postgastroplasty recovery of ideal body weight normalizes glucose and insulin metabolism in obese women. J Clin Endocrinol Metab. 80, 364-369 (1995).
  14. Kim, S. H., Abbasi, F., Chu, J. W., McLaughlin, T. L., Lamendola, C., Polonsky, K. S., Reaven, G. M. Rosiglitazone reduces glucose-stimulated insulin secretion rate and increases insulin clearance in nondiabetic, insulin-resistant individuals. Diabetes. 54, 2447-2452 (2005).
  15. Toffolo, G., Breda, E., Cavaghan, M. K., Ehrmann, D. A., Polonsky, K. S., Cobelli, C. Quantitative indexes of beta-cell function during graded up and down glucose infusion from C-peptide minimal models. Am J Physiol Endocrinol Metab. 280, E2-E10 (2001).
  16. Wang, X., et al. Quantification of beta-cell insulin secretory function using a graded glucose-infusion with C-peptide deconvolution in dysmetabolic, and diabetic cynomolgus monkeys. Diabetology and Metabolic Syn. 5, 40(2013).
  17. Xiao, Y. F., Wang, B., Wang, X., Du, F., Benzinou, M., Wang, Y. X. Xylazine-induced reduction of tissue sensitivity to insulin leads to acute hyperglycemia in diabetic and normoglycemic monkeys. Anesthesiology. 13 (33), (2013).
  18. Porte, D., Kahn, S. β-cell dysfunction and failure in type 2 diabetes potential mechanisms. Diabetes. 50, Suppl 1. S160-S163 (2001).
  19. DeFronzo, R. A., Tobin, J. D., Andres, R. Glucose clamp technique: a method for quantifying insulin secretion and resistance. American Journal of Physiology. 237 (3), G214-G223 (1979).
  20. Ferrannini, E., Gastaldelli, A., Miyazaki, Y., Matsuda, M., Mari, A., DeFronzo, R. A. β-cell function in subjects spanning the range from normal glucose tolerance to overt diabetes: a new analysis. J Clin Endocrinol Metab. 90 (1), 493-500 (2005).
  21. Vaughan, K. L., Szarowicz, M. D., Herbert, R. L., Mattison, J. A. Comparison of anesthesia protocols for intravenous glucose tolerance testing in rhesus monkeys. J Med Primatol. 43, 162-168 (2014).
  22. Kemnitz, J. W., Kraemer, G. W. Assessment of glucoregulation in rhesus monkeys sedated with ketamine. American Journal of Primatology. 3, 201-210 (1982).
  23. Dutton, C. J., Parvin, C. A., Gronowski, A. M. Measurement of glycated hemoglobin percentages for use in the diagnosis and monitoring of diabetes mellitus in nonhuman primates. Am J Vet Res. 64, 562-568 (2003).
  24. Rai, V., Iyer, U., Mani, I., Mani, U. V. Serum biochemical changes in insulin dependent and non-insulin dependent diabetes mellitus and their role in the development of secondary complications. Int J Diab Dev Countries. 17, 33-37 (1997).
  25. Shirasaki, Y., Yoshioka, N., Kanazawa, K., Maekawa, T., Horikawa, T., Hayashi, T. Effect of physical restraint on glucose tolerance in cynomolgus monkeys. J Med Primatol. 42, 165-168 (2013).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة