يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

مفاعل حيوي رواية لزراعة ارتفاع كثافة المجتمعات الميكروبية متنوعة

17.1K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/53443

⸱

ديسمبر 25, 2015

 ,  , 
1Civil, Architectural, and Environmental Engineering, Drexel University, 2Chemical and Biomolecular Engineering, University of Pennsylvania

في هذه المقالة

ملخص

يتم تقديم تصميم مفاعل جديد ، صاغ مفاعل حيوي عالي الكثافة (HDBR) ، لزراعة ودراسة المجتمعات الميكروبية عالية الكثافة. هنا ، يتم تطبيق HDBR بنجاح في تكوين المفاعل الحيوي الضوئي (PBR) لدراسة استقلاب النيتروجين بواسطة مجتمع طحالب مختلط عالي الكثافة.

الملخص

يتم تقديم تصميم مفاعل جديد ، صاغ مفاعل حيوي عالي الكثافة (HDBR) ، لزراعة ودراسة المجتمعات الميكروبية عالية الكثافة. قيمت الدراسات السابقة أداء المفاعل لإزالة COD1 وأنواع النيتروجين2-4 بواسطة البكتيريا غير المتجانسة والكيميائية ذاتية التغذية ، على التوالي. يلغي تصميم HDBR متطلبات عمليات التلبد / الترسيب الخارجية مع الاستمرار في إنتاج النفايات السائلة التي تحتوي على مواد صلبة منخفضة العالقة. في هذه الدراسة ، يتم تطبيق HDBR كمفاعل ضوئي حيوي (PBR) من أجل توصيف خصائص إزالة النيتروجين لمجتمع ميكروبي ضوئي قائم على الطحالب. كما ورد سابقا في تصميم HDBR هذا ، تم إنشاء منطقة كتلة حيوية مستقرة مع تحديد واضح بين الجزء النشط بيولوجيا من المفاعل وسائل مفاعل إعادة التدوير ، مما أدى إلى انخفاض النفايات السائلة الصلبة العالقة. لوحظ أن مجتمع الطحالب في HDBR يزيل 18.4٪ من إجمالي أنواع النيتروجين في المؤثر. لم يكن لتركيزات NH4+ و NO3- في العلف تأثير على إزالة NH4+ (n = 44 ، p = 0.993 و n = 44 ، p = 0.610 على التوالي) بينما وجد أن تركيز العلف NH4+ مرتبط سلبا بإزالة NO 3 (n = 44 ، p = 0.000) و NO3- وجد أن تركيز العلف يرتبط ارتباطا إيجابيا ب NO3- الإزالة (ن = 44 ، ص = 0.000). تشير الإزالة المتسقة ل NH4 + ، جنبا إلى جنب مع تراكم أنواع النيتروجين المؤكسدة عند تدفقات NH4+ العالية إلى وجود بكتيريا مؤكسدة للأمونيا والنتريت داخل المجتمع الميكروبي.

المقدمة

يتم التعامل مع مياه الصرف الصحي البلدية عادة مع عمليات الحمأة المنشطة من أجل الحد من المواد الصلبة العالقة (SS)، والطلب البيولوجي الأكسجين (BOD) والنيتروجين العضوي وغير العضوي، والفسفور 5،6. عملية الحمأة المنشطة، وسيلة لمعالجة مياه الصرف الصحي الثانوية، يستتبع أكسدة الكربون العضوي في أحواض التهوية مليئة الخمور مختلطة من مياه الصرف الصحي الواردة والمعاد تدويرها الكائنات الحية الدقيقة غيرية (يشار إلى الحمأة المنشطة) 5-7. الخمور مختلطة ثم يدخل الترسيب كبير نسبيا (تسوية خزان) حيث تستقر الحمأة لتسهيل جمع وإما أن يتم التخلص أو إعادة تدويرها مرة أخرى إلى أحواض التهوية، في حين أن ومياه الصرف الصحي المعالجة وأوضح أن يستمر في المعالجة الثلاثية أو التطهير قبل أن يطلق سراحه في المياه المستقبلة 5-7. الفصل الفعال لمياه الصرف الصحي المعالجة والمواد الصلبة (الحمأة) في الترسيب الثانوي ضروري لوظيفة المناسبة من كاننظام معالجة tewater، لأن أي الحمأة المنشطة مستمرة إلى ما بعد الترسيب سيزيد من BOD وSS في النفايات السائلة 5-8.

ويوجد عدد من العمليات البيولوجية بديلة عن المعالجة الثانوية للمياه العادمة، والتي تقلل أو تلغي الحاجة إلى توضيح الدبابات الكبيرة، بما في ذلك المرفق النمو (بيوفيلم) المفاعلات، المفاعلات الحيوية الغشائية (MBRs)، ومفاعلات الحمأة الحبيبية. في المفاعلات بيوفيلم، وتشكيل الأغشية الحيوية، التي الميكروبات بشكل طبيعي مجموع المباراتين ونعلق على شكل طبقة على سطح صلب، ويسمح للاحتفاظ الكتلة الحيوية وتراكم دون الحاجة لخزان توضيح. ويمكن تصنيف المفاعلات بيوفيلم إلى ثلاثة أنواع: مفاعل معبأة، المفاعلات مميعة، وتدور الملامسات البيولوجية. مفاعل معبأة، مثل خرير الفلاتر وأبراج البيولوجية، والاستفادة من الثابت سطح نموا قويا 5،6. المفاعلات مميعة (FBRs) تعتمد على المرفق من الكائنات الحية الدقيقة إلى جزيئات،مثل الرمل وتنشيط الحبيبية الكربون (GAC)، أو الخرز الزجاجي، التي يتم الاحتفاظ بها في التعليق من ارتفاع معدل التدفق الصاعد 9،10. الدورية المفاعلات البيولوجية تعتمد على الأغشية الحيوية التي شكلت في وسائل الإعلام تعلق على رمح الدورية السماح للبيوفيلم أن تتعرض بالتناوب في الهواء والسائل يعالجون 5،6. MBRs تستخدم وحدات الترشيح الغشائي، سواء داخل (التكوين المغمورة) مفاعل حيوي أو خارجيا عن طريق إعادة تدوير (التكوين الجانب تيار) 5،11. الأغشية تعمل على تحقيق فصل جيد من الكتلة الحيوية والجسيمات الصلبة من السائل تعامل 11،12. مفاعلات الحمأة الحبيبية هي مفاعلات upflow التي يحدث فيها تشكيل حبيبات كثيفة للغاية وتسوية جيدا من الكائنات الدقيقة عندما يتعرضون لارتفاع upflow الهواء السطحي سرعات 13.

كما بديل آخر لعملية الحمأة المنشطة، ونظام مفاعل upflow الرواية، التي تسمى الآن مفاعل حيوي عالي الكثافة (HDBR)، وكان المصممد وبناها المبيعات وShieh (2006) لدراسة إزالة COD قبل الحمأة المنشطة من مجاري النفايات الصناعية في ظروف F / M المنخفضة التي يعرف عنها التسبب في تشكيل الفقيرة الحمأة تصفية (أي يستكثر الحمأة) 1،7،14. نظام HDBR الاستفادة تعديل مفاعل المميعة التي تتكون عادة من مفاعل upflow ودبابة سلة الخارجي. عادة يتم تشغيل المفاعلات قاعدة مميعة مع تيار سلة معدلات تدفق عالية بما فيه الكفاية للحفاظ على قوام نمو بيوفيلم مع وقف التنفيذ ولكن منخفضة بما فيه الكفاية بحيث يتم الاحتفاظ الركيزة المغطاة بيوفيلم. على عكس المفاعلات مميعة، وصفت HDBR في المبيعات وShieh (2006) المستخدمة منخفضة نسبيا معدلات تدفق تيار سلة التي، جنبا إلى جنب مع التهوية الخارجية، منع اختلال المنطقة الكتلة الحيوية شكلت داخل المفاعل 1. وقد أثبتت الدراسات اللاحقة قدرة هذا التصميم المفاعل لعلاج بنجاح مجموعة من تدفقات النيتروجين باستخدام الآزوتية / نازع للنترات البكتيريا 3،4. في كل مسمارالمنشأ تشكيل مستقرة، منطقة كثيفة الكتلة الحيوية داخل HDBR القضاء على الحاجة إلى التلبد عملية / الترسيب الخارجية 1-4.

ونحن هنا التقرير، كما تم اختبار استخدام HDBR أن تنمو الثقافات كثيفة في photobioreactor (PBR) تكوين لزراعة الطحالب. ونحن نناقش مزايا وعيوب هذا النظام مفاعل رواية لزراعة الطحالب وقدرته على التغلب على عقبة كبيرة في تسويق الوقود الحيوي الطحالب المرتبطة حصاد الكتلة الحيوية (أي جيدة فصل الصلبة والسائلة 15،16). يحدد البروتوكول باتباع الخطوات اللازمة لتجميع وبدء التشغيل، عينة من، والحفاظ على HDBR مع الطحالب المجتمع الميكروبي من الفائدة. كما سيتم ذكر الاختلافات في بدء التشغيل وتشغيل بروتوكول الثقافات متغايرة والآزوتية / نازع للنترات. وأخيرا، سيتم تسليط الضوء المزايا العامة والمساوئ، والمجاهيل هذا التصميم مفاعل الرواية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. الجمعية مفاعل

  1. ترتيب مكونات المفاعل وفقا لالتخطيطي في الشكل 1.
    1. وضع مفاعل (R) على طبق من الاختلاط، إضافة بقضيب للمفاعل. وضع خزان سلة (RT) بجانب لوحة ضجة والمفاعل بحيث يتم توجيه النفايات السائلة (أعلى) ميناء للدبابات باتجاه حافة مقاعد البدلاء المختبر.
    2. وضع حاوية النفايات (W) تحت النفايات السائلة (أعلى) ميناء خزان سلة (RT). وضع خزان تغذية (FT) المقبل إلى خزان سلة (RT).
      ملاحظة: خزان تغذية لديه قدرة إجمالية قدرها 5 L.
  2. تأمين مفاعل (R) ضد الانقلاب مع موقف بحجم مناسب والمشبك. وبالمثل، تأمين خزان سلة (RT) لمنع الحركة.
  3. إدراج النيوبرين تحوي مضخة الأنابيب في سلة (مضخة A) وتغذية رؤساء (مضخة B) مضخة. الرجوع إلى جدول المواد للمواصفات أنابيب إضافية. تثبيت رؤساء مضخة على محركات مضخة مع مسامير. نحن نتعاملدائرة التنمية الاقتصادية مع محركات الأقراص المضخة.
  4. توصيل أنابيب ضخ لالمنافذ على المفاعل ودبابات سلة. إدراج نهاية أنابيب مضخة باء في خزان تغذية وخزان سلة. ربط ميناء مفاعل العلوي إلى الخزان سلة مع الأنابيب. تطبيق المشابك للأنابيب في الموانئ المفاعل.
    ملاحظة: قد تستفيد المجتمعات الضوئي من الإضاءة الاصطناعية التي توفرها المصابيح.

2. إعداد حلول الأوراق المالية، حلول مؤثر / تغذية، والطحالب قيحة

  1. تحضير المحلول المعدنية. إضافة ما يلي إلى الحجمي قارورة 1 لتر مع 500 مل من الماء منزوع الأيونات: 200 غرام بيكربونات الصوديوم، 40 جم فوسفات أحادي القاعدة البوتاسيوم، 4 ز كبريتات المغنيسيوم، 4 غرام كلوريد الحديديك، 4 غرام كلوريد الكالسيوم، 1 غرام من النحاس كلوريد، 1 غرام الكوبالت هيكساهيدرات كلوريد، 1 غرام كلوريد النيكل هيكساهيدرات، 1 غرام كبريتات الزنك هيبتاهيدراتي. إضافة 400 مل إضافية من الماء منزوع الأيونات. دوامة بقوة لتشجيع حل الأملاح. ديس التاليةolution من الأملاح، إضافة الماء منزوع الأيونات لتبرزي حجم الكلي للحل ل1 L.
  2. تحضير المحلول الأمونيا. في 1 L الحجمي قارورة، ويحل 38.214 غرام من كلوريد الأمونيوم في حوالي 900 مل من الماء منزوع الأيونات. بعد حل، إضافة الماء منزوع الأيونات، ليصبح إجمالي حجم ما يصل الى 1000 مل.
    ملاحظة: 1 مل من محلول المخزون المخفف إلى 1 L ينتج 10 ملغ L -1 NH 4 + -N الحل.
  3. تحضير المحلول نترات. في 1 L الحجمي قارورة، ويحل 72.413 غرام من نترات البوتاسيوم في حوالي 900 مل من الماء منزوع الأيونات. بعد حل، إضافة الماء منزوع الأيونات، ليصبح إجمالي حجم ما يصل الى 1000 مل.
    ملاحظة: 1 مل من محلول المخزون المخفف إلى 1 L ينتج 10 ملغ L -1 NO 3 - -N الحل.
  4. إعداد الأعلاف / حل مؤثر. لجعل الحل الأعلاف التي تحتوي على 20 ملغ L -1 NH 4 + -N و 20 ملغ L -1 NO 3 - -N، وتمييع 2 مل منmmonia حل سهم و 2 مل من محلول نترات الأسهم إلى 1 L الحجم الإجمالي. قبل التخفيف، إضافة 0.5 مل من محلول المعدنية / L من حل المبذولة. إعداد 5 L من مؤثر في المجموع لبدء المفاعل.
  5. إعداد قيحة الطحالب.
    1. جمع كمية كبيرة (لا يقل عن 10 L) من الماء من هيئة المياه التي تحتوي على الطحالب مثل تيار أو بركة. تسمح الطحالب لتسوية من خلال ترك عينات المياه دون عائق لمدة 24 ساعة.
    2. صب وتجاهل واضح (غير الطحالب التي تحتوي على) المياه في الجزء العلوي من العينات، وترك الطحالب تعليق المركزة داخل زجاجات العينة. الجمع بين تعليق الطحالب من جميع العينات في وعاء واحد وتكرار تسوية والخطوات الصب.
    3. قياس الكتلة الحيوية داخل العينة المركزة.
      1. تجف مرشح ورقة فراغ (0.45 ميكرون MCE مرشح الفراغ) والألمنيوم تزن قارب O / N في الفرن الذي تم تعيينه إلى 103 ° C بعد للتهدئة في مجفف لمدة 30 دقيقة في RT قياس المشتركmbined كتلة تصفية ووزن القارب.
      2. مرشح فراغ 20 مل من الطحالب تعليق المركزة وتعود مرشح وتزن قارب للفرن لتجفيف O / N.
      3. قياس الكتلة المشتركة للتصفية ووزن القارب. حساب كثافة الكتلة الحيوية داخل العينة المركزة.
        ملاحظة: الحجم الكلي للعينة المياه أن المحققين سوف تحتاج إلى جمع سيعتمد على هيئة مصدر المياه.

3. البذر وبدء المفاعل

  1. إضافة 750 مل من محلول تغذية للمفاعل. ملء خزان سلة مع 500 مل من محلول تغذية.
  2. استخدام ماصة طويلة لإضافة بلطف على تعليق تلقيح تحتوي على 1.5 غرام من الطحالب بالقرب من قاع المفاعل. السماح لقيحة لتستقر في قاع المفاعل، وضمان ذلك من خلال الملاحظة البصرية، قبل الانتقال إلى الخطوة التالية.
  3. مرة واحدة وقد استقر الخلايا، وإزالة المشابك الأنابيب وتشغيل مضخة A إلى معدل التدفق البطيء (10 revolutioنانوثانية دقيقة -1 / 38 مل دقيقة -1). سيتم طرد الهواء المحبوس في الأنابيب في المفاعل.
    ملاحظة: إضافة 750 مل للمفاعل منع أي الكتلة الحيوية منزعج من مضخة من مغادرة المفاعل. ضغط الأنابيب للتأكد من أن كل الهواء قد طرد.
  4. تدريجيا إضافة محلول التغذية إلى خزان سلة كما يتم ضخ المحلول في المفاعل. مواصلة بالإضافة إلى كل من المفاعل ودبابات سلة هم في القدرات ويبدأ النفايات السائلة للخروج من دبابة سلة عبر منفذ العلوي.
    ملاحظة: حجم محلول التغذية التي يمكن ان تضاف إلى خزان سلة سوف تختلف مع حجم قيحة وأضاف أن المفاعل.
  5. من أجل حل الأطعمة المتبقية في خزان تغذية.
  6. ضبط مضخة تدوير (مضخة A) إلى 19 دقيقة -1 الثورات، وإنشاء معدل التدفق إعادة تدوير 72.5 مل دقيقة -1. مراقبة الطحالب تبدأ في دور علوي من الجزء السفلي من المفاعل. باستخدام التدرج في المفاعل، وتحديد ثنائية الطحالبارتفاع منطقة omass. تأكد من أن الارتفاع المستمر قبل الانتقال إلى الخطوة التالية.
  7. بدوره على لوحة خلط على سرعة منخفضة جدا. إعداد 1 أو 2 هو المناسب للبدء. سوف شريط الاختلاط يساعد في lofting الكتلة الحيوية أبعد من ذلك، ولكن خلط العدواني يسبب الطحالب إلى ترك المفاعل، أدخل دبابات سلة، وترك في النفايات السائلة. ضبط سرعة الخلط في إعداد اللازمة لإقامة الحدود الطحالب واضح داخل المفاعل (الشكل 2A). يجب أن تكون منطقة الكتلة الحيوية الطحالب سم تقريبا 10-15 في الارتفاع.
  8. بدء تشغيل مضخة تغذية بعد مراقبة حدود واضحة بين المكونات الطحالب وسائل المفاعل. ضبط مضخة إلى 25 دقيقة -1 الثورات، وإنشاء معدل تدفق 1.5 مل دقيقة -1. مراقبة خروج السائل مفاعل ميناء النفايات السائلة نظرا لخطورة والنزوح الناجم عن تيار مؤثر واردة.

4. جمع العينات وتحليل

  1. تنفيذ جمع العينات أنشطة الحزب الثوري المؤسسيأو لإجراء صيانة على نظام المفاعل. جمع 20 مل من العينات السائلة ومؤثر يوميا. جمع عينات من النفايات السائلة من داخل دبابة التدوير. جمع عينات مؤثر مباشرة من خزان تغذية.
  2. عينات مرشح فراغ لإزالة المواد الصلبة قبل تخزينها وتحليلها علقت.
  3. تخزين مؤثر والعينات السائلة عند درجة حرارة -20 درجة مئوية حتى إجراء مزيد من التحليل. الحد من عدد دورات ذوبان الجليد تجميد يتعرضون عينات ل. إذا لزم الأمر، والعينات ويمكن تقسيم إلى قسامات للحفاظ على سلامة العينة.
  4. إجراء تحليل عينة النترات والنتريت، والأمونيا باستخدام التقنيات القياسية 17.
    ملاحظة: المؤلفون تستخدم ايون اللوني (IC) لإنتاج النتائج المقدمة في هذه الوثيقة. الرجوع إلى جدول المواد للمواصفات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم استخدام HDBR لزراعة الطحالب على مدى عدة نسب تركيزات الأمونيا ونترات مؤثر، مع الحفاظ على نسبة النيتروجين الكلي في تغذية في 40 ملغ -NL -1. اتخذت مؤثر وعينات النفايات السائلة يوميا؛ تم أخذ عينات كثافة الكتلة الحيوية في بداية ونهاية كل حالة. استغرق المفاعل في المتوسط ​​3-5 أيام للوصول إلى التوازن حالة مستقرة بعد أن تغيرت الظروف. على نطاق واسع من الظروف مؤثر تأسست منطقة الكتلة الحيوية متميزة، كما لوحظ من الدراسات السابقة (الشكل 2). تم العثور على الثقافة ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وسيبدأ هذا القسم بمناقشة الاختلافات بروتوكول اللازمة لمعالجة القضايا التشغيلية الممكنة فضلا عن استخدام المجتمعات الميكروبية المختلفة. وسيتم مناقشة نقاط القوة في هذا التصميم المفاعل، بما في ذلك القدرة على الحكم السيطرة على تدفق الأكسجين وتشكيل ندف عالية الكثافة داخل المفاعل. كما سيتم ذكرها التحديات الحالية والسبل الممكنة التحقيق.

الفروق والاختلافات بروتوكول
تشغيل HDBRs لزراعة أنواع مختلفة من الثقاف...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

وليس لدى أصحاب البلاغ ما يكشفون عنه ويعلنون أنه ليس لديهم مصالح مالية متنافسة.

شكر وتقدير

يود المؤلفون أن يعرب عن تقديرهم لأسبن ووكر في جامعة بنسلفانيا لمساعدتها في صيانة المفاعل وجمع العينات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
حجر التهويةAlitaAS-3015C
مهويةأعلى زعنفة الهواء-1000
كلوريد الأمونيومSigma AldrichA9434
عمود تحليل الأنيونShodexIC SI-52 4E
دورق (600 مل)كورنينج بيركس1000-600تستخدم كوعاء خلط (MV). إضافة أشواك خرطوم في الأسفل و 500 مل المستويات. القطر الخارجي لانتقادات لاذعة الخرطوم 3/8 بوصة.
كلوريد الكالسيومSigma AldrichC5670
عمود تحليل الكاتيونShodexIC YS-50
سداسي هيدرات كلوريد الكوبالتSigma AldrichC8661
كلوريد النحاسSigma Aldrich222011
كلوريد الحديديكSigma Aldrich157740
مرشح (فراغ)Fisherbrand09-719-2E0.45 &# 956 ؛ مرشح غشاء م ، MCE ، 47 & nbsp ؛ قطر مم
أسطوانة متدرجة (1،000 مل) CorningPyrex3025-1Lتستخدم كوعاء مفاعل (R). إضافة أشواك الخرطوم في القاع ، 500 مل ، و 1 لتر مستويات. القطر الخارجي لانتقادات لاذعة الخرطوم 3/8 بوصة.
HPLC / ICShimadzuProminence
كبريتات المغنيسيومSigma AldrichM2643
Masterflex L / S محرك متغير السرعةMasterflex07553-50محرك لمضخات إعادة التدوير والتغذية (2 مطلوب)
سداسي هيدرات كلوريد النيكلSigma AldrichN6136
نترات البوتاسيومSigma AldrichP8291
(أحادي الأساسي) فوسفات البوتاسيومSigma AldrichP5655
رأس المضخةMasterflex07018-20تدوير رأس
المضخة رأس المضخةMasterflex07013-20رأس مضخة التغذية
أنبوب مضخةMasterflex6404-18تدوير مضخة الأنابيب
مضخةMasterflex6404-13مضخة التغذية
الصوديوم بيكربوناتسيجما ألدريتشS5761
كبريتات الزنك سباعي هيدراتسيجما ألدريتشZ0251
إعادة إعادة أنابيب أنبوب

المراجع

  1. Sales, C. M., Shieh, W. K. Performance of an aerobic/anaerobic hybrid bioreactor under the nitrogen deficient and low F/M conditions. Water Res. 40 (7), 1442-1448 (2006).
  2. Nootong, K. Performance and kinetic evaluations of a novel bioreactor system in the low-oxygen/low-fluid shear reaction environments. , University of Pennsylvania. 3225514(2006).
  3. Nootong, K., Shieh, W. K. Analysis of an upflow bioreactor system for nitrogen removal via autotrophic nitrification and denitrification. Bioresour Technol. 99 (14), 6292-6298 (2008).
  4. Ramanathan, G., Sales, C. M., Shieh, W. K. Simultaneous autotrophic denitrification and nitrification in a low-oxygen reaction environment. Water Sci Technol. 70 (4), 729-735 (2014).
  5. Rittmann, B. E., McCarty, P. L. Environmental Biotechnology: Principles and Applications. , McGraw-Hill Higher Education. (2001).
  6. Tchobanoglous, G., Burton, F. L., Stensel, H. D. Wastewater Engineering: Treatment and Reuse. , 4th edn, McGraw-Hill Science/Engineering/Math. (2002).
  7. Palm, J. C., Jenkins, D., Parker, D. S. Relationship between Organic Loading, Dissolved-Oxygen Concentration and Sludge Settleability in the Completely-Mixed Activated-Sludge Process. Journal Water Pollution Control Federation. 52 (10), 2484-2506 (1980).
  8. Jenkins, D. Towards a Comprehensive Model of Activated-Sludge Bulking and Foaming. Water Science and Technology. 25 (6), 215-230 (1992).
  9. Shieh, W., Keenan, J. Ch. 5 Advances in Biochemical Engineering/Biotechnology. Bioproducts. 33, Springer. Berlin Heidelberg. 131-169 (1986).
  10. Shieh, W. K., Li, C. T. Performance and Kinetics of Aerated Fluidized-Bed Biofilm Reactor. Journal of Environmental Engineering-Asce. 115 (1), 65-79 (1989).
  11. Alvarez-Vazquez, H., Jefferson, B., Judd, S. J. Membrane bioreactors vs conventional biological treatment of landfill leachate: a brief review. Journal of Chemical Technology & Biotechnology. 79 (10), 1043-1049 (2004).
  12. Fenu, A., et al. Activated sludge model (ASM) based modelling of membrane bioreactor (MBR) processes: a critical review with special regard to MBR specificities. Water Res. 44 (15), 4272-4294 (2010).
  13. Liu, Y., Tay, J. H. The essential role of hydrodynamic shear force in the formation of biofilm and granular sludge. Water Res. 36 (7), 1653-1665 (2002).
  14. Chudoba, J., Grau, P., Ottová, V. Control of activated-sludge filamentous bulking-II. Selection of microorganisms by means of a selector. Water Research. 7 (10), 1389-1406 (1973).
  15. Christenson, L., Sims, R. Production and harvesting of microalgae for wastewater treatment, biofuels, and bioproducts. Biotechnol Adv. 29 (6), 686-702 (2011).
  16. Henderson, R., Parsons, S. A., Jefferson, B. The impact of algal properties and pre-oxidation on solid-liquid separation of algae. Water Res. 42 (8-9), 8-9 (2008).
  17. Jackson, P. E. Encyclopedia of Analytical Chemistry. Meyers, R. A. , John Wiley & Sons. Chichester UK. (2000).
  18. Wilkinson, G. N., Rogers, C. E. Symbolic descriptions of factorial models for analysis of variance. Applied Statistics. 22, 392-399 (1973).
  19. Chambers, J. M. Ch. 4. Statistical Models in S. Chambers, J. M., Hastie, T. J. , Wadsworth & Brooks/Cole. (1992).
  20. R Core Team. R: A Language and Environment for Statistical Computing. , R Foundation for Statistical Computing. Vienna, Austria. (2015).
  21. Ramanathan, G., Sales, C. M., Shieh, W. K. Apendix:Simultaneous autotrophic denitrification and nitrification in a low-oxygen reaction environment. Water Science & Technology. 70 (4), 729-735 (2014).
  22. Wastewater Management Fact Sheet - Energy Conservation. 832F06024, Environmental Protection Agency. Washington, DC. 1-7 (2006).
  23. Curtis, T. P. Ch 13. Environmental Biotechnology. Mitchell, R., Gu, J. D. , Wiley-Blackwell. (2010).
  24. Asada, K. THE WATER-WATER CYCLE IN CHLOROPLASTS: Scavenging of Active Oxygens and Dissipation of Excess Photons. Annu Rev Plant Physiol Plant Mol Biol. 50, 601-639 (1999).
  25. Mullineaux, P., Karpinski, S. Signal transduction in response to excess light: getting out of the chloroplast. Curr Opin Plant Biol. 5 (1), 43-48 (2002).
  26. Mallick, N., Mohn, F. H. Reactive oxygen species: response of algal cells. Journal of Plant Physiology. 157 (2), 183-193 (2000).
  27. Fridovich, I. Oxygen toxicity: a radical explanation. J Exp Biol. 201 ((Pt 8)), 1203-1209 (1998).
  28. Doyle, S. M., Diamond, M., McCabe, P. F. Chloroplast and reactive oxygen species involvement in apoptotic-like programmed cell death in Arabidopsis suspension cultures. J Exp Bot. 61 (2), 473-482 (2010).
  29. Eisma, D., et al. Suspended-matter particle size in some West-European estuaries; part II: A review on floc formation and break-up. Netherlands Journal of Sea Research. 28 (3), 215-220 (1991).
  30. Thomas, D. N., Judd, S. J., Fawcett, N. Flocculation modelling: A review. Water Research. 33 (7), 1579-1592 (1999).
  31. Harris, R. H., Mitchell, R. The role of polymers in microbial aggregation. Annu Rev Microbiol. 27, 27-50 (1973).
  32. Raszka, A., Chorvatova, M., Wanner, J. The role and significance of extracellular polymers in activated sludge. Part I: Literature review. Acta Hydrochimica Et Hydrobiologica. 34 (5), 411-424 (2006).
  33. Lakaniemi, A. M., Intihar, V. M., Tuovinen, O. H., Puhakka, J. A. Growth of Dunaliella tertiolecta and associated bacteria in photobioreactors. J Ind Microbiol Biotechnol. 39 (9), 1357-1365 (2012).
  34. Lakaniemi, A. M., Intihar, V. M., Tuovinen, O. H., Puhakka, J. A. Growth of Chlorella vulgaris and associated bacteria in photobioreactors. Microb Biotechnol. 5 (1), 69-78 (2012).
  35. Natrah, F. M. I., Bossier, P., Sorgeloos, P., Yusoff, F. M., Defoirdt, T. Significance of microalgal-bacterial interactions for aquaculture. Reviews in Aquaculture. 6 (1), 48-61 (2014).
  36. Dittami, S. M., Eveillard, D., Tonon, T. A metabolic approach to study algal-bacterial interactions in changing environments. Mol Ecol. 23 (7), 1656-1660 (2014).
  37. Watanabe, K., et al. Symbiotic association in Chlorella culture. FEMS Microbiol Ecol. 51 (2), 187-196 (2005).
  38. Burke, C., Thomas, T., Lewis, M., Steinberg, P., Kjelleberg, S. Composition, uniqueness and variability of the epiphytic bacterial community of the green alga Ulva australis. ISME J. 5 (4), 590-600 (2011).
  39. Krohn-Molt, I., et al. Metagenome survey of a multispecies and alga-associated biofilm revealed key elements of bacterial-algal interactions in photobioreactors. Appl Environ Microbiol. 79 (20), 6196-6206 (2013).
  40. Cooper, E. D., Bentlage, B., Gibbons, T. R., Bachvaroff, T. R., Delwiche, C. F. Metatranscriptome profiling of a harmful algal bloom. Harmful Algae. 37, 75-83 (2014).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

مفاعل حيوي رواية لزراعة ارتفاع كثافة المجتمعات الميكروبية متنوعة
اتصل بنا
أوصِ بها للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

2026 © حقوق الطبع والنشر MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.