Method Article

آخر العمود اشتقاق عن طريق رد الفعل أعمدة تدفق عالية الأداء اللوني السائل

DOI:

10.3791/53462

April 26th, 2016

In This Article

Summary

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتم تقديم بروتوكول لاستخدام أعمدة الكروماتوغرافيا السائلة عالية الأداء لتدفق التفاعل للطرق التي تستخدم اشتقاق العمود اللاحق (PCD).

Abstract

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتم تقديم بروتوكول لاستخدام أعمدة الكروماتوغرافيا السائلة عالية الأداء لتدفق التفاعل للطرق التي تستخدم اشتقاق العمود اللاحق (PCD). تتمثل إحدى الصعوبات الرئيسية في تكييف PCD مع أنظمة وأعمدة HPLC الحديثة في الحاجة إلى ملفات تفاعل كبيرة الحجم تمكن من خلط الكاشف ثم حدوث تفاعل الاشتقاق. يؤدي هذا الحجم الميت الكبير لعمود المنشور إلى توسيع النطاق ، مما يؤدي إلى فقدان كفاءة الفصل المرصودة والكشف عن الحساسية. في اشتقاق عمود ما بعد تدفق التفاعل (RF-PCD) ، يتم ضخ كاشف (كاشفات) الاشتقاق ضد تدفق الطور المتحرك إلى واحد أو اثنين من المنافذ الخارجية لعمود تدفق التفاعل حيث يتم خلطه مع نفايات العمود السائلة داخل فريت موجود داخل تركيب نهاية العمود. تسمح هذه التقنية بخلط أكثر كفاءة للكاشف (الكاشفات) السائلة للعمود والاشتقاق مما يعني أنه يمكن تقليل حجم حلقات التفاعل أو حتى إزالته تماما. وقد وجد أن طرائق الترددات الراديوية - PCD تعمل بشكل أفضل من طرائق PCD التقليدية من حيث كفاءة الفصل المرصودة ونسبة الإشارة إلى الضوضاء. ميزة أخرى لتقنيات RF-PCD هي القدرة على مراقبة النفايات السائلة القادمة من المنفذ المركزي في حالتها المنخفضة. تم حاليا تجربة RF-PCD على نطاق صغير نسبيا من تفاعلات العمود اللاحق ، ومع ذلك ، لا يوجد حاليا سبب للإشارة إلى أنه لا يمكن تكييف RF-PCD مع أي مكون واحد أو اثنين موجودين (طالما تمت إضافة كلا الكواشف في نفس الوقت) تفاعل اشتقاق العمود اللاحق.

Introduction

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عالية الأداء اللوني السائل (HPLC) إلى جانب آخر عمود اشتقاق (PCD) هو أداة قوية يمكن أن يكون مفيدا في حل عدد من القضايا في المختبر التحليلي. ويمكن استخدامه للكشف عن المركبات التي لا يمكن اكتشافها إلا مع مجموعة من أجهزة كشف المتاحة 1،2، وزيادة إشارة الحليلة الهدف، والذي يسمح الحدود الدنيا للكشف وتحديد الكميات 3-5 أو انتقائي derivatize على الحليلة المستهدفة من أجل تجنب آثار مصفوفة 6. وتشمل يشيع استخدامها ردود الفعل PCD رد فعل الأمينات، مثل الأحماض الأمينية، مع أورثو-phthaladehyde 7-9، النينهيدرين 9،10 أو fluorescamine 11،12، واشتقاق من أنواع الاكسجين التفاعلية (ROS) لدى ديفينيل 2،2 1-picrylhydrazil المتطرفة (DPPH •) 13،14 أو 2،2'-azino مكرر (حمض 3-ethylbenzothiazoline-6-السلفونيك (ABTS) 15،16، واستخدام كاشف يوديد-أزيد إلى derivatize الكبريت جمركبات ontaining 17،18.

هناك، ومع ذلك، العديد من المآخذ على استخدام ردود الفعل PCD مع أنظمة HPLC 6. أساسا بين هذه هو استخدام لفائف رد فعل بين نقطة إضافة كاشف اشتقاق (ق) وكاشف، مما يتيح الوقت لخلط ورد فعل لتحدث 8. هذه رد فعل الحلقات غالبا ما يكون حجم 500 ميكرولتر أو أكثر، وهو أمر مهم مقارنة مع حجم ما تبقى من نظام HPLC 19. استخدام هذه ارتفاع حجم رد الفعل حلقات النتائج في زيادة الذروة توسيع بالمقارنة مع ما سيتم الاحتفال به بدون وجود حلقة رد فعل. هذه النتائج في أقصر، قمم الأوسع نطاقا التي لها حدود أعلى من الكميات والكشف وسلبيا يؤثر قرار الكروماتوغرافي. أرقام 1 و 2 تسليط الضوء على تدهور ذروة الشكل الذي ينتج من إضافة المختلفة بعد العمود كميات رد فعل حلقة. هذا التحليلوقد أجريت مع تكوين مرحلة المحمول من 94٪ الميثانول و 6٪ من المياه الملة-Q. وكان معدل تدفق الطور المتحرك 1 مل / دقيقة، وكان حجم حقن 20 ميكرولتر وكان الطول الموجي تحليل 265 نانومتر. أدرجت لفائف من مختلف أحجام الميتة من 20 ميكرولتر إلى 1000 ميكرولتر بين العمود وكاشف لمحاكاة آثار رد فعل حلقة حجم القتلى في أساليب PCD. تم إعداد هذه الحلقات من أنابيب الفولاذ المقاوم للصدأ قطرها الداخلي 0.5 ملم. تم إجراء تجربة على نظام HPLC تتكون من وحدة تحكم (SCL-10AVP)، وانخفاض ضغط متدرجة صمام (FCL-10ALVP)، مضخة (LC-20AD)، والحاقن (SIL-10ADVP)، وكاشف المساعد الشخصي الرقمي ( SPD-M10ADVP). تم ضخ الطور المتحرك من خلال الغاز الراحل قبل إدخالها في نظام HPLC. تم إجراء فصل باستخدام س 4.6 ملم معرف 5 ميكرون العمود 250 ملم. وقد تم اختيار الظروف التجريبية لتكون نموذجية من ردود الفعل PCD أن تم مؤخرا نشرت في الأدب.

الأبسط، ويطلق آخر الأكثر شيوعا الإعداد مفاعل العمود مفاعل أنبوبي غير مجزأة والتي هي بالفعل طويلة، أنبوب رفيع من خلالها السائل يمكن أن تتدفق ورد فعل يمكن أن يحدث. في هذه الذروة نظام توسيع يعتمد على ليس فقط حجم القتلى إضافتها إلى النظام، ولكن أيضا القطر الداخلي للأنبوب نحو ما أبرزته إيجيما وآخرون. 8. وعلاوة على ذلك، لفائف الهندسة تلعب دورا في توسيع العلامة التجارية لوحظ. ستيوارت 20 ذكر أن اللف المفاعل يغير ملامح تدفق الثانوية، مما أدى إلى أفضل خلط، وهذا يعني أن حجم القتلى قد يكون الحد الأدنى. وقد ذكر أن ذروة توسيع ليس كبيرا عند استخدام أنبوبي مفتوحة محبوك لفائف 21. عندما ذروة توسيع هو كبير جدا، ويمكن أيضا اعتبار أنواع أخرى من المفاعلات 20،22. ويمكن أن تشمل هذه المفاعلات السرير أو مفاعلات تدفق مجزأة. هذه المفاعلات هي مفيدة بشكل خاص لردود الفعل البطيئة التي من شأنها أن اشتراطات غير ذلكحلقات رد فعل ه كبير. كما المفاعلات الأنبوبية غير مجزأة هي الأنواع الأكثر شيوعا من المفاعلات المستخدمة في التطبيقات PCD، والباقي من هذه الصفقات المادة مع هذا النوع من الإعداد المفاعل.

تصميم العمود تدفق رد فعل (RF) يشتمل على نهاية المناسب متعددة المنفذ الذي يسمح الطور المتحرك للخروج (أو دخول) العمود إما من خلال منفذ واحد يقع في المنطقة المركزية الشعاعية للعمود أو ثلاثة الموانئ الواقعة على الخارجي منطقة جدار العمود (انظر الشكل 3). يتم فصل هذين التيارين باستخدام المناسب نهاية تحتوي على فريت التي يسهل اختراقها المركزي الذي تحيط به حلقة كتيمة التي هي بدورها محاطة فريت التي يسهل اختراقها الخارجي الذي يمتد إلى جدار العمود. بسبب تدفق حلقة عبر المركزي كتيمة غير ممكن بين المناطق التي يسهل اختراقها اثنين.

خلال رد فعل اللوني التدفق، وضخ كاشف اشتقاق (ق) ضد اتجاه تدفق مرحلة المحمول إلى واحد أو TWس من الموانئ الخارجية للعمود تدفق رد فعل. يتم خلط شاطف عمود مع كاشف اشتقاق (ق) في فريت الخارجي وتمريرها إلى كشف من خلال منفذ خارجي خال. يمكن استخدام تدفق رد فعل إما لاشتقاق كاشف واحد (1 منفذ للكاشف اشتقاق، 1 منفذ لتمرير شاطف العمود إلى كشف و 1 منفذ سدت) أو نظام كاشف المزدوج (2 الموانئ لالكواشف اشتقاق و 1 منفذ ل تمرير شاطف العمود إلى كاشف). إما أن تدفق من التيار المركزي أن تستخدم للكشف عن شاطف العمود underivatized وفعالية الكشف عن الإرسال المتعدد 23، أو تمريرها إلى النفايات.

أسلوب واحد ضبط الرئيسية المتوفرة عند تشغيل RF-PCD اللوني هو نسبة التدفقات المركزية والطرفية. النسبة المثلى لكل اشتقاق يعتمد على عدد من العوامل مثل ما إذا كان سيتم الكشف عن تدفق المركزي أو تمريرها إلى النفايات. لذلك مرة واحدة وقد تم تحديد النسبة المثلىيجب التأكد من أن نسبة تدفق الصحيحة يتحقق قبل كل تشغيل التي يتم تنفيذها.

وقد وجد أن استخدام فريت لخلط تيار العمود شاطف وكاشف اشتقاق في نتائج RF-PCD في خلط أكثر كفاءة مقارنة مع تقنيات خلط التقليدية التي عادة ما تستخدم صفر حجم القتلى T-قطعة أو حجم القتلى منخفض W- قطعة لمزيج من التيارين. وقد سمح ذلك لاستخدام الحلقات رد فعل صغيرة نسبيا، أو حتى القضاء على حلقة رد فعل تماما. الحد من نتائج رد الفعل حجم حلقة في قمم أكثر وضوحا بالمقارنة مع الطرق التقليدية اشتقاق آخر عمود. وهذا يعني أنه على الرغم من حقيقة أن ليس كل من شاطف عمود وderivatized، لوحظ أكبر إشارة إلى نسب الضوضاء وحدود وبالتالي أقل الكشف والكميات لا يمكن أن يتحقق.

وقد وضعت تدفق رد فعل اللوني للتغلب على الصعوبات مع التكيف من رد فعل PCD الصورة الأعمدة الحديثة HPLC والأنظمة، لا سيما الخسارة في الكفاءة الناجمة عن الفرقة توسيع بسبب آخر عمود كميات كبيرة ميتة الناجمة عن الحاجة إلى توظيف رد الفعل حجم كبير حلقات. عمليات خلط أكثر كفاءة في RF-PCD مقارنة PCD التقليدي يعني أن أحجام التداول حلقة رد فعل أصغر قد تكون عاملة مما يؤدي إلى زيادة في كفاءة الفصل المرصودة. وعلاوة على ذلك يظهر RF-PCD اللوني على حد سواء زيادة إشارة وانخفاض الضوضاء بالمقارنة مع التقنيات التقليدية PCD مما أدى إلى الحدود الدنيا من الكشف والكميات بالمقارنة مع الطرق التقليدية PCD. ميزة إضافية لRF-PCD بالمقارنة مع الطرق التقليدية PCD هي القدرة على رصد تيار underivatized أن elutes من الميناء الرئيسي للعمود RF فضلا عن تيار derivatized أن elutes من المنطقة الطرفية من العمود. RF-PCD هي تقنية جديدة نسبيا ولكنها واعدة أن يعرض مزايا عديدة أكثر من الطرق التقليدية PCD.

> ويتحقق اتصال العمود RF في تقريبا بنفس طريقة عمود HPLC التقليدية مع فارق كبير يجري عدد من التجهيزات نهاية على عمود RF. التجهيزات المستخدمة لربط عمود HPLC القياسية لنظام HPLC هي قادرة على أن تستخدم لربط عمود الترددات اللاسلكية لنظام HPLC.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تنبيه: يرجى الرجوع إلى بيانات سلامة المواد (MSDS) لجميع المواد والكواشف قبل الاستخدام (أي، MSDS من الميثانول). ضمان استخدام جميع ممارسات السلامة المناسبة عند التعامل مع المذيبات وعالية الأداء اللوني السائل (HPLC) شاطف. ضمان الاستخدام الملائم للضوابط هندسية من HPLC والتحليلية التوازن وكشف عن الأجهزة، وضمان استخدام معدات الوقاية الشخصية (النظارات الواقية والقفازات ومعطف المختبر، كامل طول السراويل، وأحذية مغلقة اصبع القدم).

ملاحظة: يصف هذا البروتوكول 3 طرق تدفق رد فعل آخر عمود اشتقاق (RF-PCD) تقنيات، مع كل كاشف مختلفة محددة لطبيعة مركب كيميائي من الفائدة. لتحليل ROS انتقل إلى قسم "1. الكشف عن ROS باستخدام DPPH •"، لتحليل الأمينات الأولية انظر القسم "2. الكشف عن الأمينات الأولية باستخدام fluorescamine"، ولتحليل المركبات الفينولية انتقل إلى قسم "3 . الكشف عن الفينولاتباستخدام 4-aminoantipyrene وفيري سيانيد البوتاسيوم ". استخدام مياه نقي للغاية (على سبيل المثال، ميلي-Q المياه) في جميع أنحاء.

ملاحظة: يتم تحقيق اتصال العمود RF في تقريبا بنفس طريقة عمود HPLC التقليدية مع فارق كبير يجري عدد من التجهيزات نهاية على عمود RF. التجهيزات المستخدمة لربط عمود HPLC القياسية لنظام HPLC هي قادرة على أن تستخدم لربط عمود الترددات اللاسلكية لنظام HPLC.

1. الكشف عن ROS باستخدام DPPH

  1. إعداد صك HPLC
    1. إعداد الصك HPLC بالماء٪ 100 على خط والميثانول٪ 100 على خط B كما الطور المتحرك. تطهير المضخات وفقا لمتطلبات الشركة الصانعة.
    2. إعداد مكونات مفيدة HPLC ومضخة اشتقاق إضافية كما هو موضح في الشكل رقم 4A.
    3. تعيين كاشف الأشعة فوق البنفسجية فيس لتحليل عند طول موجي 520 نانومتر.
  2. إعداد لالعمود RF
    1. ربط مدخل العمود RF في الصك HPLC.
    2. توصيل طول 15 سم من 0.13 ملم معرف أنابيب إلى ميناء منفذ المركزي للعمود RF.
    3. قم بتوصيل منفذ الطرفية منفذ للكشف عن الأشعة فوق البنفسجية فيس باستخدام طول 15 سم من 0.13 ملم معرف الأنابيب.
    4. ربط DPPH خط ضخ إلى منفذ الطرفية على منفذ العمود RF.
    5. منع ميناء الطرفية غير المستخدمة على منفذ العمود RF باستخدام سدادة العمود.
    6. جعل معدل تدفق المضخة HPLC إلى 1 مل دقيقة -1 في 100٪ خط B - 100٪ الميثانول.
    7. تتوازن العمود مع الطور المتحرك الميثانول بنسبة 100٪ لمدة 10 دقيقة للحصول على 4.6 ملم معرف × 100 عمود طول مم. يجب تحجيم هذه المرة وفقا لأبعاد الأعمدة الأخرى قد تستخدم المستخدم.
  3. إعداد DPPH كاشف
    1. إعداد محلول / مل 0.1 ملغ من DPPH في الميثانول.
    2. يصوتن القارورة التي تحتوي على DPPH كاشف لمدة 10 دقيقة.
    3. تغطية قارورة في احباط لمنع التعرض للضوء.
    4. تطهير DPPH مضخة مع استعداد DPPH كاشف وفقا لمتطلبات الشركة الصانعة.
  4. ضبط العمود مخرج RF
    1. بدقة تزن سفينتين نظيفة وجافة. تسمية سفينة واحدة مركزية وأخرى هامشية.
    2. جمع النفايات السائلة التي تخرج من ميناء المركزي في الإناء المسمى المركزية ل 1.0 دقيقة.
    3. إعادة تزن السفينة ميناء المركزية وحساب وزن التدفق من ميناء المركزي على النحو التالي:
      الوزن من ميناء الوسطى (ز) = الوزن النهائي من ميناء الوسطى سفينة (ز) - الوزن الأولي من ميناء الوسطى سفينة (ز)
    4. كرر الخطوات من 1.4.2 و 1.4.3 لمياه الصرف الصحي التي تخرج من الأشعة فوق البنفسجية فيس التي يتم تركيبها إلى ميناء الطرفية العمود الترددات اللاسلكية وحساب الوزن للسفينة ميناء الطرفية والتالي:
      الوزن من ميناء الطرفية (ز) = الوزن النهائي من ميناء الطرفية السفينة (ز) - الوزن الأولي من ميناء الطرفية السفينة (ز)
    5. حساب نسبة تدفق القادمة من موانئ المركزية والطرفية كما يلي:
      ٪ المركزي ميناء = الوزن من ميناء الوسطى (ز) / (وزن ميناء الوسطى (ز) + وزن الطرفية ميناء (ز)) × 100
      ٪ الطرفية ميناء = الوزن من ميناء الطرفية (ز) / (وزن ميناء الوسطى (ز) + وزن الطرفية ميناء (ز)) × 100
    6. ضمان نسبة تجزئة بين تدفق المركزي وتدفق المحيطي هو 30:70 (المركزي: الطرفية). إذا كان تدفق المركزي هو فوق 30٪، وانخفاض كمية تدفق الخروج بإضافة بطول 0.13 ملم معرف أنابيب إلى منفذ ميناء المركزي. إذا كان تدفق المركزي هو أقل من 30٪ تخفيض طول 0.13 ملم أنابيب من ميناء المركزي.
    7. كرر الخطوة 1.4.1 إلى 1.4.6 حتى نسبة تجزئة 30:70: ويتحقق (وسط الطرفية).
    8. ضبط معدل تدفق DPPH مضخة كاشف ل-1 0.5 مل دقيقة.
      ملاحظة: عمود RF اقامة مع DPPH كاشف هو الآن على استعداد لتحليلها. يمكن الآن حقن عينات.
  5. آخر تشغيل شروط الاغلاق
    1. مرة واحدة كل من العينات تم حقنها، مشيرا إلى أن على المدى قد انتهت، ووقف تدفق مضخة اشتقاق كاشف.
    2. إزالة DPPH خط ضخ الكاشف من ميناء الطرفية وسدادة الميناء.
    3. تتوازن العمود مع الطور المتحرك الذي يجب ان يكون لتخزينها عن طريق السماح للمرحلة النقالة بالمرور عبر العمود في 1 مل دقيقة -1 لمدة 10 دقيقة.
    4. وقف تدفق المضخة الطور المتحرك على الصك HPLC.
    5. استبدال DPPH كاشف مع الميثانول وتطهير مضخة إضافية.
      ملاحظة: نظام HPLC يمكن أن يكون الآن الاغلاق.

2. الكشف عن الأمينات الأولية عن طريق Fluorescأمين

  1. إعداد الطور المتحرك
    1. إعداد 1 لتر من 10 ملي حل خلات الأمونيوم، وضبط درجة الحموضة من الحل إلى 9.0 مع 5 هيدروكسيد الأمونيوم M قبل التخفيف إلى وحدة تخزين.
    2. إضافة 52.6 مل من الأسيتونتريل (إيه سي) إلى المخزن المؤقت خلات الأمونيوم لبلوغ مرحلة الجوالة خلط من 95:05 (المخزن المؤقت: ACN).
  2. إعداد صك HPLC
    1. إعداد الصك HPLC مع العازلة استعداد قبل مختلطة على خط كمرحلة النقالة. تطهير مضخة وفقا لمتطلبات الشركة الصانعة.
    2. إعداد مكونات مفيدة HPLC ومضخة اشتقاق إضافية كما هو موضح في الشكل رقم 4A.
    3. إرفاق ملف نبض يستمتع إلى المضخة اشتقاق.
    4. انشاء كاشف مضان (الكبد الدهني) مع الطول الموجي الإثارة من 390 نانومتر الطول الموجي وانبعاث 475 نانومتر.
  3. إعداد العمود RF
    1. ربط الالبريد مدخل العمود RF في الصك HPLC.
    2. توصيل طول 15 سم من 0.13 ملم معرف أنابيب إلى ميناء منفذ المركزي للعمود RF.
    3. قم بتوصيل منفذ الطرفية منفذ العمود الترددات اللاسلكية لكشف الكبد الدهني باستخدام طول 15 سم من 0.13 ملم معرف الأنابيب.
    4. ربط خط ضخ اشتقاق إلى منفذ الطرفية على منفذ العمود RF.
    5. منع ميناء الطرفية غير المستخدمة على منفذ العمود RF باستخدام سدادة العمود.
    6. جعل معدل تدفق المضخة HPLC إلى 1 مل دقيقة -1 في 100٪ ألف خط - 10 ملي الأمونيوم خلات درجة الحموضة عازلة 9، خلط مع 5٪ ACN.
    7. تتوازن العمود مع خط المرحلة أ النقالة 100٪ لمدة 10 دقيقة للحصول على 4.6 ملم معرف × 100 عمود طول مم. يمكن تحجيم هذه المرة وفقا لأبعاد الأعمدة الأخرى قد تستخدم المستخدم.
  4. إعداد كاشف fluorescamine
    1. جعل 100 مل من 0.1 ملغ مل -1 fluorescamine كاشف.
    2. <لى> يصوتن لمدة 1 دقيقة.
    3. مع تغطية احباط لمنع التعرض للضوء.
    4. تطهير مضخة كاشف مع كاشف fluorescamine استعداد وفقا لمتطلبات الشركة الصانعة.
  5. ضبط العمود مخرج RF
    1. بدقة تزن سفينتين نظيفة وجافة. تسمية سفينة واحدة مركزية وأخرى هامشية.
    2. جمع النفايات السائلة التي تخرج من ميناء المركزي في الإناء المسمى المركزية ل 1.0 دقيقة.
    3. إعادة تزن السفينة المركزية وحساب وزن التدفق من ميناء المركزي على النحو التالي في الخطوة 1.4.3.
    4. كرر الخطوات من 2.5.2 إلى 2.5.3 لمياه الصرف الصحي التي تخرج من الكبد الدهني التي يتم تركيبها إلى ميناء الطرفية العمود الترددات اللاسلكية وحساب الوزن لالطرفية على النحو التالي في الخطوة 1.4.4.
    5. حساب نسبة تدفق القادمة من موانئ المركزية والطرفية على النحو التالي في الخطوة 1.4.5.
    6. ضمان نسبة تجزئة بين تدفق المركزي والطرفيالتدفق 43:57 (المركزي: الطرفية). إذا كان تدفق المركزي هو فوق 43٪، وانخفاض كمية تدفق الخروج بإضافة بطول 0.13 ملم معرف أنابيب إلى منفذ ميناء المركزي. إذا كان تدفق المركزي أقل من 43٪، وتقليل طول 0.13 ملم أنابيب من ميناء المركزي.
    7. كرر الخطوة 2.5.1 إلى 2.5.6 حتى نسبة تجزئة 43:57: ويتحقق (وسط الطرفية).
    8. ضبط معدل تدفق المضخة الطور المتحرك إلى 0.7 مل دقيقة -1.
    9. ضبط مضخة اشتقاق في التدفق في 0.1 مل دقيقة -1.
      ملاحظة: عمود RF اقامة مع كاشف fluorescamine هو الآن على استعداد لتحليلها. يمكن الآن حقن عينات.
  6. آخر تشغيل شروط الاغلاق
    1. مرة واحدة كل من العينات تم حقنها، مشيرا إلى أن على المدى قد انتهت، ووقف ضخ اشتقاق.
    2. إزالة السطر مضخة اشتقاق من ميناء الطرفية وسدادة.
    3. تتوازن العمود مع الطور المتحرك فيالتي هي ليتم تخزينها من خلال السماح للمرحلة النقالة بالمرور عبر العمود في 1 مل دقيقة -1 لمدة 10 دقيقة.
    4. وقف تدفق المضخة الطور المتحرك.
    5. استبدال كاشف fluorescamine مع الأسيتونتريل وتطهير مضخة اشتقاق.
      ملاحظة: نظام HPLC يمكن أن يكون الآن الاغلاق.

3. الكشف عن الفينولات باستخدام 4-Aminoantipyrene والبوتاسيوم فيري سيانيد

  1. إعداد الطور المتحرك
    1. إعداد 1 لتر من 100 ملي حل خلات الأمونيوم، وضبط درجة الحموضة من الحل إلى 9.0 مع 5 هيدروكسيد الأمونيوم M قبل التخفيف إلى وحدة تخزين.
    2. إضافة 52.6 مل من الميثانول إلى المخزن المؤقت خلات الأمونيوم لبلوغ مرحلة الجوالة خلط من 95: 5 (المخزن المؤقت: الميثانول).
  2. إعداد صك HPLC
    1. إعداد الصك HPLC مع العازلة استعداد قبل مختلطة على خط كمرحلة النقالة. تطهير مضخة حسب الشركة المصنعة؛ ق المتطلبات.
    2. إعداد مكونات مفيدة HPLC واثنين من مضخات كاشف إضافية كما هو موضح في الشكل رقم 4B.
    3. إرفاق ملف نبض يستمتع كل من المضخات كاشف.
    4. تعيين كاشف الأشعة فوق البنفسجية فيس لتحليل عند طول موجي 500 نانومتر.
  3. إعداد العمود RF
    1. ربط مدخل العمود RF في الصك HPLC.
    2. توصيل طول 15 سم من 0.13 ملم معرف أنابيب إلى ميناء منفذ المركزي للعمود RF.
    3. قم بتوصيل منفذ الطرفية منفذ العمود الترددات اللاسلكية لكشف أشعة فوق البنفسجية فيس باستخدام طول 15 سم من 0.13 ملم معرف الأنابيب.
    4. ربط كل كاشف (أي 4 aminoantipyrene وفيري سيانيد البوتاسيوم) خط ضخ إلى منفذ الطرفية على منفذ العمود RF.
    5. جعل معدل تدفق المضخة HPLC إلى 1 مل دقيقة -1 في 100٪ ألف خط - 100 ملي الأمونيوم خلات درجة الحموضة عازلة 9، خلط مع 5٪ الميثانول.
    6. تتوازن العمود ثإيث خط الطور المتحرك 100٪ ولمدة 10 دقيقة للحصول على 4.6 ملم معرف × 100 عمود طول مم. يمكن تحجيم هذه المرة وفقا لأبعاد الأعمدة الأخرى قد تستخدم المستخدم.
  4. إعداد كاشف 4 aminoantipyrene
    1. إعداد العازلة خلات الأمونيوم مع الرقم الهيدروجيني من 9 باتباع الخطوة 3.1.1.
    2. تزن 150 ملغ 4 aminoantipyrene وتذوب في 100 مل من استعداد عازلة خلات الأمونيوم (الرقم الهيدروجيني 9).
    3. يصوتن لمدة 1 دقيقة.
    4. مع تغطية احباط لمنع التعرض للضوء.
    5. تطهير أول مضخة كاشف مع استعداد كاشف 4 aminoantipyrene وفقا لمتطلبات الشركة الصانعة.
  5. إعداد البوتاسيوم فيري سيانيد كاشف
    1. تزن 150 ملغ من فيري سيانيد البوتاسيوم وتذوب في 100 مل من العازلة خلات الأمونيوم (الرقم الهيدروجيني 9) التي أعدت وفقا للخطوة 3.1.1.
    2. يصوتن لمدة 1 دقيقة.
    3. تغطية في احباط لمنع التعرض للضوء.
    4. Purgالبريد مضخة كاشف الثانية مع استعداد كاشف فيري سيانيد البوتاسيوم وفقا لمتطلبات الشركة الصانعة.
  6. ضبط العمود RF
    1. بدقة تزن سفينتين نظيفة وجافة. تسمية سفينة واحدة مركزية وأخرى هامشية.
    2. جمع النفايات السائلة التي تخرج من ميناء المركزي في الإناء المسمى المركزية ل 1.0 دقيقة.
    3. إعادة تزن السفينة المركزية وحساب وزن التدفق من ميناء المركزي على النحو التالي في الخطوة 1.4.3.
    4. كرر الخطوات من 3.6.2 إلى 3.6.3 لمياه الصرف الصحي التي تخرج من الأشعة فوق البنفسجية فيس التي يتم تركيبها إلى ميناء الطرفية العمود الترددات اللاسلكية وحساب الوزن لالطرفية على النحو التالي في الخطوة 1.4.4.
    5. حساب نسبة تدفق القادمة من موانئ المركزية والطرفية على النحو التالي في الخطوة 1.4.5.
    6. ضمان نسبة تجزئة بين تدفق المركزي وتدفق المحيطي هو 50:50 (المركزي: الطرفية). إذا كان تدفق المركزي هو فوق 50٪، وانخفاضكمية تدفق الخروج بإضافة بطول 0.13 ملم معرف أنابيب إلى ميناء المركزي منفذ. إذا كان تدفق المركزي هو أقل من 50٪، وتقليل طول 0.13 ملم أنابيب من ميناء المركزي.
    7. كرر الخطوة 3.6.1 إلى 3.6.6 حتى نسبة تجزئة 50:50: ويتحقق (وسط الطرفية).
    8. ضبط معدل تدفق المضخة 4 aminoantipyrene إلى 0.5 مل دقيقة -1.
    9. ضبط معدل تدفق المضخة فيري سيانيد البوتاسيوم و 0.25 مل دقيقة -1.
      ملاحظة: عمود RF اقامة مع الكواشف اثنين من عناصر جاهز الآن للتحليل. يمكن الآن حقن عينات.
  7. آخر تشغيل شروط الاغلاق
    1. مرة واحدة كل من العينات تم حقنها على المدى قد انتهت، مشيرا إلى أن على المدى قد انتهت، ووقف كل من المضخات كاشف.
    2. إزالة خطوط ضخ الكاشف من الموانئ الطرفية واستبدالها مع 15 سم قطعة من 0.13 ملم أنابيب.
    3. تتوازن العمود مع الطور المتحرك في مبادرة الخوذ البيضاءالفصل هو ليتم تخزينها من خلال السماح للمرحلة النقالة بالمرور عبر العمود في 1 مل دقيقة -1 لمدة 10 دقيقة.
    4. وقف تدفق المضخة الطور المتحرك على الصك HPLC.
    5. استبدال كل من الكواشف على كاشف مضخات مع الميثانول وتطهير مضخات إضافية وفقا لمتطلبات الشركة المصنعة.
      ملاحظة: نظام HPLC يمكن أن يكون الآن الاغلاق.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Results

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

كانت الطريقة PCD الأولى التي تم تكييفها للاستخدام من قبل RF-PCD في اشتقاق من المواد المضادة للاكسدة باستخدام 2،2-ثنائي-1-picrylhydrazil الراديكالي (DPPH •) 24. وقدم هذا رد فعل من جانب Koleva وآخرون. 25 واستخدمت على نطاق واسع منذ ذلك الحين. يعتمد الكشف على إزالة اللون من DPPH و• جذري في وجود أنواع الاكسجين التفاعلية، وبالتالي وجود نتائج المواد المضادة للاكسدة في انخفاض الامتصاصية لوحظ. وDPPH رد فعل في كثير من الأحيان...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

RF-PCD يسمح لخلط الفعال للكاشف اشتقاق مع النفايات السائلة بعد عمود HPLC دون استخدام لفائف رد فعل، والتقليل من آثار توسيع نطاق وتحسين أداء الانفصال. وقد أظهرت أساليب RF-PCD أيضا التحسينات في الاستجابة إشارة فيما يتعلق طريقة الكشف. كان Camenzuli وآخرون. 28 أول من أشار إلى استخدام الأعمدة تدفق رد فعل مع DPPH للكشف عن ROS في عينة صنع قهوة اسبريسو. وشملت الدراسة تحليل وتحسين ظروف الترددات اللاسلكية لتحقيق أقصى قدر من الأداء، واختبار مجموعة من DPPH ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

Acknowledgements

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا العمل من قبل UWS و ThermoFisher Scientific. يقر أحد المؤلفين (DK) بحصوله على جائزة الدراسات العليا الأسترالية.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

List of materials used in this article
NameCompanyCatalog NumberComments
أداة HPLCAgilent1290 Series HPLC
مضخات (مضخات) إضافية لنظام الاشتقاقShimadzuLC-20A
RF columأنابيب نظرة خاطفة غير تجارية
Sigma AldrichZ227307
سداداتمزودة
بقاطع أنبوب PEEKSigma AldrichZ290882
ميزان الميزان التحليلي4 نقاط الميزان التحليلي
ساعةغير العلمية
قوارير جمع المواد أيقارورة صغيرة ذات قاع مسطح ستفي بالغرض ، على سبيل المثال < / em> ، قوارير HPLC
قواريرعلى الأداة المستخدمة
أوعية لحلول (حلول) المرحلة المتنقلة والاشتقاقسيجما ألدريتشZ232211
الأوانيقوارير حجمية ، ماصات ، <م >وما إلى ذلك < / em> تعتمد الكمية والأحجام على طريقة تحضير العينة.
الميثانولسيجما ألدريتش34860
DPPHسيجما ألدريتشD9132
أسيتات الأمونيومسيجما ألدريتش17836
الأمونياسيجما ألدريتش320145أكالة
أسيتونيتريلسيجما ألدريتش34998
فلوريسكامينسيجما ألدريتشF9015
4- أمينوأنتيبيرين أكروس أورجانيكس BVBAAC103151000
فيريسيانيد البوتاسيوم أنالارB10204-30
العمود التوقف المعدات ستعتمد HPLC الزجاجية للمختبر العام

References

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Srijaranai, S., et al. Use of 1-(2-pyridylazo)-2-naphthol as the post column reagent for ion exchange chromatography of heavy metals in environmental samples. Microchem. J. 99, 152-158 (2011).
  2. Kubickova, A., Kubicek, V., Coufal, P. UV-VIS detection of amino acids in liquid chromatography: online post-column solid-state derivatization with Cu(II) ions. J Sep Sci. 34, 3131-3135 (2011).
  3. Quinto, M., Spadaccino, G., Palermo, C., Centonze, D. Determination of aflatoxins in cereal flours by solid-phase microextraction coupled with liquid chromatography and post-column photochemical derivatization-fluorescence detection. J. Chromatogr. A. 1216, 8636-8641 (2009).
  4. Lee, M., Lee, Y., Soltermann, F., von Gunten, U. Analysis of N-nitrosamines and other nitro(so) compounds in water by high-performance liquid chromatography with post-column UV photolysis/Griess reaction. Water Res. 47, 4893-4903 (2013).
  5. Niu, Y., et al. Identification of isoflavonoids in Radix Puerariae for quality control using on-line high performance liquid chromatography-diode array detector-electrospray ionization-mass spectrometry coupled with post-column derivatization. Food Res Int. 48, 528-537 (2012).
  6. Zacharis, C. K., Tzanavaras, P. D. Liquid chromatography coupled to on-line post column derivatization for the determination of organic compounds: a review on instrumentation and chemistries. Anal. Chim. Acta. 798, 1-24 (2013).
  7. Dousa, M., Brichac, J., Gibala, P., Lehnert, P. Rapid hydrophilic interaction chromatography determination of lysine in pharmaceutical preparations with fluorescence detection after postcolumn derivatization with o-phtaldialdehyde. J Pharm Biomed Anal. 54, 972-978 (2011).
  8. Iijima, S., et al. Optimization of an Online Post-Column Derivatization System for Ultra High-Performance Liquid Chromatography (UHPLC) and Its Applications to Analysis of Biogenic Amines. Anal Sci. 29, 539-545 (2013).
  9. Cunico, R. L., Schlabach, T. Comparison of Ninhydrin and o-Phthalaldehyde Postcolumn Detection Techniques for High Performance Liquid Chromatography of Free Amino. J. Chromatogr. A. 1983, 461-470 (1983).
  10. Donahue, E. P., Brown, L. L., Flakoll, P. J., Abumrad, N. N. Rapid Measurement of Leucine-specific Activity in Biological Fluids by Ion-exchange Chromatography and Post-column Ninhydrin Detection. J. Chromatogr. A. 571, 29-36 (1998).
  11. Udenfriend, S., et al. Fluorescamine: A Reagent for Assay of Amino Acids, Peptides, Proteins and Primary Amines in the Picomole Range. Science. 1972, 871-872 (1972).
  12. Samejima, K. Separation of Fluorescamine Derivitices of Aliphatic Diamines and Polyamines by High Speed Liquid Chromatography. J. Chromatogr. A. 96, 250-254 (1974).
  13. Zhang, Y., et al. Evaluation of antioxidant activity of ten compounds in different tea samples by means of an on-line HPLC-DPPH assay. Food Res Int. 53, 847-856 (2013).
  14. Niu, Y., et al. Identification of the anti-oxidants in Flos Chrysanthemi by HPLC-DAD-ESI/MS(n) and HPLC coupled with a post-column derivatisation system. Phytochem Anal. 24, 59-68 (2013).
  15. Raudonis, R., Bumblauskiene, L., Jakstas, V., Pukalskas, A., Janulis, V. Optimization and validation of post-column assay for screening of radical scavengers in herbal raw materials and herbal preparations. J. Chromatogr. A. 1217, 7690-7698 (2010).
  16. Raudonis, R., Raudone, L., Jakstas, V., Janulis, V. Comparative evaluation of post-column free radical scavenging and ferric reducing antioxidant power assays for screening of antioxidants in strawberries. J. Chromatogr. A. 1233, 8-15 (2012).
  17. Zakrzewski, R. Determination of Methimazole in Pharmaceutical Preparations using an HPLC Method Coupled with an Iodine-Azide Post-Column Reaction. J. Liq. Chrom. Rel. Technol. 32, 383-398 (2008).
  18. Zakrzewski, R. Development and validation of a reversed-phase HPLC method with post-column iodine-azide reaction for the determination of thioguanine. J. Anal. Chem. 64, 1235-1241 (2009).
  19. Gritti, F., Guiochon, G. Accurate measurements of the true column efficiency and of the instrument band broadening contributions in the presence of a chromatographic column. J. Chromatogr. A. 1327, 49-56 (2014).
  20. Stewart, J. T. Post cotumn derivatization methodology in high performance liquid chromatography (HPLC). Trends Anal. Chem. 1, 170-174 (1982).
  21. Rigas, P. G. Post-column labeling techniques in amino acid analysis by liquid chromatography. Anal. Bioanal. Chem. 405, 7957-7992 (2013).
  22. Frei, R. W. Reaction Detectors in Modern Liquid Chromatography. Chromatographia. 15, 161-166 (1982).
  23. Pravadil-Cekic, S., et al. Using Reaction Flow Chromatography for the Analysis of Amino Acid: Derivatisation With Fluorescamine Reagent. Microchem. J. , (Accepted Manuscript) (2015).
  24. Camenzuli, M., Ritchie, H. J., Dennis, G. R., Shalliker, R. A. Parallel segmented flow chromatography columns with multiplexed detection: An illustration using antioxidant screening of natural products. Microchem. J. 110, 726-730 (2013).
  25. Koleva, I. I., Niederlander, H. A. G., van Beek, T. A. An On-Line HPLC Method for Detection of Radical Scavenging Compounds in Complex Mixtures. Anal Chem. 72, 2323-2328 (2000).
  26. Selim, M., et al. A Two-component Post-column Derivatisation Method Utilsing Reaction Flow Chromatography. Microchem. J. 116, 87-91 (2014).
  27. Bigley, F. P., Grob, R. L. Determination of Phenols in Water and Wastewater by Post-column Reaction Detection High-performance Liquid Chromatography. J. Chromatogr. A. 350, 407-416 (1985).
  28. Camenzuli, M., Ritchie, H. J., Dennis, G. R., Shalliker, R. A. Reaction flow chromatography for rapid post column derivatisations: The analysis of antioxidants in natural products. J. Chromatogr. A. 1303, 62-65 (2013).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Tags

Post Column DerivatizationReaction Flow ColumnHigh Performance Liquid ChromatographyReaction Flow PCDConventional PCDBand BroadeningSeparation EfficiencySignal to Noise RatioUV VIS DetectorFlow Rate Optimization

Related Articles