يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

الوقاية من الإجهاد الحراري الآثار السلبية في الجرذان التي كتبها

7K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/54122

⸱

يوليو 11, 2016

 ,  ,  , 
1Department of Anatomy, Physiology and Pharmacology, Auburn University

في هذه المقالة

ملخص

< p class = 'jove_content'> وصفنا بروتوكولا للوقاية من آثار الإجهاد الحراري في الفئران عن طريق العلاج المسبق عن طريق الفم بالبكتيريا المفيدة. يمكن تعديل هذا البروتوكول واستخدامه لطرق مختلفة للإعطاء ولتحليل المركبات المختلفة.

الملخص

وقد صممت هذه الدراسة لتقييم تأثير وقائي من سلالة العصوية الرقيقة ضد مضاعفات للإجهاد الحراري. واستخدمت اثنان وثلاثون الفئران سبراغ داولي في هذه الدراسة. تم علاج الحيوانات شفويا مرتين في اليوم لمدة يومين مع B. الرقيقة BSB3 سلالة أو برنامج تلفزيوني. في اليوم التالي بعد العلاج الاخير، تم تقسيم كل مجموعة وضعت مجموعتين تجريبيتين (معاملة واحدة مع برنامج تلفزيوني ومعاملة واحدة مع B. الرقيقة) في 45 درجة مئوية لمدة 25 دقيقة. بقيت مجموعات المراقبة اثنين لمدة 25 دقيقة في درجة حرارة الغرفة. الموت الرحيم كانت جميع الفئران وجرى تحليل العوامل المختلفة في جميع الفئات. يتم تسجيل الآثار الضارة للإجهاد الحراري من انخفاض ارتفاع الزوائد ومجموع سمك الغشاء المخاطي في ظهارة الأمعاء. النبات من البكتيريا من التجويف. زيادة تحوصل من كريات الدم الحمراء ورفع مستوى عديدات سكر شحمية (LPS) مستوى في الدم. يتم تقييم فعالية وقائية من العلاج قبلمداخلة تكلم فيها متكلم من هذه الآثار الجانبية. تم تعيين بروتوكول يصل لعلاج عن طريق الفم للجرذان مع البكتيريا للوقاية من مضاعفات الإجهاد الحراري، ولكن هذا البروتوكول يمكن تعديلها واستخدامها لطرق أخرى للإدارة وتحليل مركبات مختلفة.

المقدمة

تؤثر الضغوطات المختلفة على صحة الإنسان. تعد درجة الحرارة واحدة من أكثر العوامل إرهاقا ، حيث تسبب أمراضا مزمنة وحادة وحتى مميتة1. تم توثيق التغييرات في مورفولوجيا الأمعاء وفقدان سلامة حاجز الأمعاء بعد الإجهاد الحراري في كثير من الحالات2،3. هذا الحاجز الواقي مسؤول عن الدفاع ضد انتقال بكتيريا الأمعاء وسمومها ، ولا سيما عديدات السكاريد الدهنية (LPS) ، من التجويف إلى الدورة الدموية الداخلية4،5. يؤثر استقرار ميكروبات الأمعاء بشكل كبير على وظيفة الحاجز المعوي ، والاستجابة المناعية للمضيف ، وتحمل ظروف الإجهاد6. وبالتالي ، فإن تعديل الجراثيم المعوية يمكن أن يوفر نهجا جديدا للوقاية من الآثار الضارة المرتبطة بالإجهاد.

تم استخدام البكتيريا المفيدة كاستراتيجية واعدة لتعديل ميكروبات الأمعاء للإدارة الناجحة للحالات السريرية المختلفة ، مثل الإسهال ومرض التهاب الأمعاء والتهاب الجلد التأتبي واضطرابات التمثيل الغذائي7-10. وتشمل آثار بروبيوتيك للبكتيريا المفيدة إنتاج نواتج الأيض الأساسية لدعم صحة الأمعاء, تحفيز الجهاز المناعي, تعزيز تحمل اللاكتوز, استعادة الخلل الوظيفي الظهاري. كانت البروبيوتيك فعالة في الوقاية من المضاعفات المرتبطة بالإجهاد في المختبر وفي النماذج الحيوانية11،12.

أعطى الباحثون مزيدا من الاهتمام لبكتيريا Bacillus كبروبيوتيك لأن هذه البكتيريا تدعم التوازن المعوي13 ولها تأثيرات مفيدة على المضيف14. أظهرت بياناتنا السابقة فعالية عالية من بروبيوتيك Bacillus ضد مسببات الأمراض في المختبر15،16 وفي التجارب السريرية17،18. هنا ، نهدف إلى تقييم التأثير الوقائي لسلالة B. subtilis BSB3 ضد المضاعفات بعد الإجهاد الحراري.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وقد وافق جميع الإجراءات التجريبية التي IACUC جامعة أوبورن، صحراء، ولاية ألاباما.

1. إعداد الثقافة وسائل الإعلام، صحون والبكتيرية الثقافة

  1. تطعيم 10 مل من المرق المغذي في قارورة مع مستعمرة واحدة من ثقافة BSB3 العصوية الرقيقة، ونمت بين عشية وضحاها على طبق من المغذيات أجار.
  2. جعل 500 مل من تبوغ المتوسطة 19 (لكل لتر: Bacto المغذيات مرق، 8 غرام؛ 10٪ (ث / ت) بوكل، 10 مل؛ 1.2٪ (ث / ت) MgSO 4 × 7H 2 O، 10 مل، أجار، 15 ز) والأوتوكلاف على 121 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة. السماح لتبرد إلى 50 درجة مئوية وإضافة الحلول العقيمة التالية: 1 M الكالسيوم (NO 3) 2، 1 مل. 0.01 M MnCl 2، 1 مل. FeSO 1 ملم 4، 1 مل.
  3. متوسطة استعداد بارد إلى 40 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة في درجة حرارة الغرفة وتصب 25 مل في كل من 20 أطباق بتري معقمة في الحكومة العقيمة. دع المتوسطة يصلب بين عشية وضحاها.
  4. انتشرت 0.5 مل من الثقافة بين عشية وضحاها من Bacillus الرقيقة BSB3 على سطح المتوسط ​​في أطباق بتري. احتضان الثقافة في 37 درجة مئوية لمدة 5 أيام حتى 90٪ تبوغ. الكشف عن الجراثيم المرحلة المشرقة التي كتبها عالية الدقة المجهر.
  5. البكتيريا الحصاد عن طريق إضافة 1 مل من الفوسفات العقيمة مخزنة المالحة (PBS) على لوحة وكشط البكتيريا من سطح باستخدام رش خلية العقيمة. تخزين تعليق في الثلاجة لحين الحاجة إليها.
  6. تأكيد بقاء البكتيريا عن طريق طلاء 0.1 مل من التخفيف المناسب (10 -5 إلى 10 -6) من تعليق البكتيرية على لوحات متوسطة تبوغ تليها الحضانة ل18 - 24 ساعة على 37 درجة مئوية.
  7. عدد المستعمرات البكتيرية على لوحات باستخدام عداد مستعمرة وحساب عيار البكتيريا في تعليق اختبارها. إعداد تعليق البكتيرية مع التركيز النهائي 1 × 10 8 كفو / مل في برنامج تلفزيوني.

2. الحيوانات

  1. استخدام 32 من ذكور فئران سبراغ داولي (250-300 ز). الحفاظ على الحيوانات في ظل ظروف معينة خالية من مسببات الأمراض مع حرية الوصول إلى طعام بيليه القياسي والمياه. إنشاء متوسط ​​درجة حرارة (21 ± 1 درجة مئوية) والرطوبة (50 ± 5٪)، ودورة ضوء الظلام 12 ساعة.

3. تصميم تجريبي

  1. بدء العلاج من الحيوانات عن طريق أنبوب تغذية عن طريق الفم 11، 2 بعد أيام من التأقلم. استخدام المحاقن مع إبرة أنبوب تغذية عن طريق الفم. علاج 16 الفئران مع B. الرقيقة تعليق BSB3 (1 مل ​​لكل فأر) مرتين في اليوم لمدة يومين (B. مجموعة الرقيقة). علاج 16 الفئران مع برنامج تلفزيوني (1 مل ​​لكل فأر) مرتين في اليوم لمدة يومين (مجموعة PBS) (الشكل 1).
  2. بعد العلاج، تقسيم كل مجموعة (8 الفئران في كل مجموعة) المجموعة: 1- التحكم (PBS / لا الإجهاد)، المجموعة 2- B. الرقيقة (B. الرقيقة / لا الإجهاد)، المجموعة 3- الإجهاد (PBS / الإجهاد الحراري) والمجموعة 4- B. الرقيقة + الإجهاد (B. الإجهاد الرقيقة / الحرارة).
  3. قياس درجة حرارة الجسم من كل فأر باستخدام كهربائيترونيك ميزان الحرارة الرقمي. حافظ على الفئران المجموعات 1 و 2 في درجة حرارة الغرفة لمدة 25 دقيقة. مكان الحيوانات في المجموعات 3 و 4 في غرفة المناخ في 45 درجة مئوية والرطوبة النسبية 55٪ لمدة 25 دقيقة.
  4. بعد ذلك، وقياس درجة حرارة الجسم من كل فأر في جميع الفئات باستخدام ميزان الحرارة الرقمي الالكتروني. إخضاع جميع الحيوانات في درجة حرارة الغرفة لمدة 4 ساعة.
  5. تخدير الفئران مع isoflurane (2-4٪) في جرة التخدير قابل للغلق ومراقبة حتى يتم تخدير الفئران عميقا (غياب استجابة لقرصة أخمص القدمين). الموت ببطء الفئران عن طريق قطع الرأس السريع مع المقصلة.
  6. جمع الدم جذع من كل فأر 20 (15-16 مل) مع ماصات apyrogenic في أنابيب apyrogenic للحصول على المصل وعلى الفور أخذ عينات من الدم (7 ميكرولتر من كل فأر) مع ماصة للفحص المجهري.
  7. وضع أنابيب مع الدم في الثلاجة لمدة 30 دقيقة على الأقل للسماح للتخثر. أنابيب الطرد المركزي في 20 درجة مئوية، 7000 x ج لمدة 10 دقيقة وبسرعةإزالة المصل مع ماصة. قسامة المصل تم الحصول عليها من كل فأر في 50 مجلدا ميكرولتر ومخزن في -20 درجة مئوية حتى الفحص.

4. إجراء العمليات الجراحية

  1. قص / تقليم جميع الفراء من البطن والصدر من الجانب السفلي من الذبيحة مع المقصات الكهربائية. وضع الجثة في خزانة معقمة وعلاج سطح حلق الذبيحة مع 70٪ من الكحول.
  2. استخدام مشرط معقم لخلق شق خط الوسط من البطن. إزالة الكبد والغدد الليمفاوية المساريقي والطحال والأمعاء الدقيقة من كل فأر باستخدام الملقط معقمة.

5. تحليل إزفاء الجرثومي

  1. وضع كل عينة من الكبد والغدد الليمفاوية والطحال المساريقي في أنابيب معقمة قبل وزنه ووزن. حساب وزن العينة أن هناك فرق بين وزن أنبوب مع عينة والوزن من أنبوب فارغ.
  2. إضافة برنامج تلفزيوني العقيمة في أنبوب للحصول على تخفيف 01:10 (ث / ت) لعينة وhomogenize كل عينة مع الخالط الأنسجة زجاجي معقم للحصول على تعليق متجانسة 21.
  3. جعل التخفيفات المتسلسلة (10 -1 إلى 10 -4) من كل عينة في برنامج تلفزيوني العقيمة. لوحة 0.1 مل من جميع التخفيفات من كل الأنسجة على سطح لماكونكي و 5٪ أجار الدم والبروسيلا أجار الدم مع هيمن (0.005 غرام / لتر) وفيتامين K1 (0.01 جم / لتر) لوحات.
  4. احتضان لماكونكي و 5٪ لوحات أجار الدم هوائيا والبروسيلا لوحات أجار الدم تحت الظروف اللاهوائية عند 37 درجة C 22.
  5. عدد مستعمرات البكتيريا الهوائية بعد 24 ساعة، ومستعمرات البكتيريا اللاهوائية بعد 48 ساعة من الحضانة باستخدام عداد مستعمرة. التعبير عن النتائج على النحو عدد الوحدات المكونة للمستعمرة (كفو) في غرام من الأنسجة.

6. تحليل النسيجي

  1. إزالة عينات الأمعاء الصغيرة من كل الفئران من قبل الإجراء الجراحي (الخطوات 4،1-4،2). إصلاح العينات في تثبيتي بوان، تضمينها في البارافين،إعداد 6 ميكرون الأقسام والفروع وصمة عار مع الهيماتوكسيلين ويوزين باستخدام الإجراءات القياسية 23.
  2. استخدام نظام المجهر عالية الدقة لقياس ارتفاع الزغابات المعوية ومجموع سمك الغشاء المخاطي في كل عينة (التكبير 100X) 24. تحليل 4 عينات من كل الفئران وجعل لا يقل عن عشرين القياسات في كل عينة. التعبير عن النتائج في ميكرومتر.

7. خلوى الفحص

  1. استخدام مجموعات تجارية الفئران ELISA لIL-1β. IL-6؛ TNF-α؛ INF-جاما، وIL-10 لقياس مستويات السيتوكينات في المصل وفقا لبروتوكول الشركة المصنعة.
  2. توليد المنحنيات القياسية لكل مجموعة من عينات يعاير باستخدام معايير لعدة ذات الصلة. تحديد مستوى السيتوكينات في كل عينة بمقارنة البيانات التجريبية مع المنحنى القياسي المناسب.

8. lipopolysaccharide في الفحص

  1. تحليل مستوى LPS في مصل الدم باستخدام الفئران عدة LPS ELISA وفقا لبروتوكول الشركة الصانعة. تقدير تركيز LPS في عينات من خلال المقارنة بين القيم التي تم الحصول عليها مع قيم المنحنى القياسي.

9. عالية الدقة المجهر الضوئي من الدم

  1. استخدام نظام المجهر هو موضح سابقا 25،26. استخدام منصة عزل الاهتزاز كقاعدة لنظام المجهر والكاميرا والفيديو والكمبيوتر 25 لتسجيل الصور الحية. معايرة الصور اختبار باستخدام شريحة ريتشاردسون كما هو موضح سابقا (27).
  2. ضع 7 ميكرولتر من الدم المسحوبة الطازجة من كل فأر على شريحة زجاجية، ساترة، صورة وتسجيل عشرة إطارات صورة 72 × 53.3 ميكرون 2 في كل عينة (التكبير 1،700X).
  3. قياس تركيز الحويصلات باستخدام البرمجيات التي توفر عالية الدقة، عرض مباشر الصور الضوئية في الوقت الحقيقي. دراسة ما لا يقل عن 20 لقطة صورة لكل حالة تجريبية 28.

10. Statisالعرات

  1. التعبير عن كل القيم كما المتوسط ​​والانحراف المعياري. إجراء تحليل إحصائي والتآمر الرسم البياني. تحليل النتائج مع اثنين من عينة اختبار t، تعيين مستوى أهمية في 0.05 لتحديد الدلالة الإحصائية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

وكانت درجة حرارة الجسم يعني من الحيوانات قبل ومباشرة بعد الإجهاد الحراري 36.7 ± 0.07 درجة مئوية و40.3 ± 0.17 درجة مئوية على التوالي (P <0.05). أدى تعرض الفئران للحرارة (المجموعة 3) في إعاقة واضحة في ارتفاع الزغب ومجموع سمك الغشاء المخاطي (الشكلان 2 و 3). تناوله عن طريق الفم من سلالة BSB3 قبل الإجهاد حماية الأمعاء من الأثر الضار للحرارة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يؤدي التعرض إلى ارتفاع درجة الحرارة في ظروف صحية خطيرة 29. الوقاية والكشف المبكر عن المضاعفات المتصلة بالإجهاد الحراري هي ذات أهمية حيوية 30. بروتوكول المعروضة يمكن استخدامها لتقييم فعالية من الطرق المختلفة للوقاية من الإجهاد الحراري الآثار السلبية.

خطوات حاسمة في هذا البروتوكول ما يلي: إجراء المعالجة الحرارية (45 درجة مئوية و 25 دقيقة)؛ استخدام المواد apyrogeni...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب تعلن أنه ليس لديهم مصالح مالية المتنافسة.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل صندوق جامعة أوبورن FOP 101002-139294-2050.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)سيجما ألدريتش ،   ؛ سانت لويس ، ميزوريP4417
كحول إيثيلي   ؛فارمكو للمنتجات بروكفيلد ، كونيتيكت ، الولايات المتحدة الأمريكية   ؛64-17-5
AgarVWR97064-334
لوحات أجار ماكونكيVWR470180-742
5٪ لوحات أجار الدمVWR89405-024
لوحة أجار الدم Brucella مع Hemin ، وفيتامين KVWR89405-032
Bouin ' علومالمجهر الإلكتروني المثبت ، هاتفيلد ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية15990
IL-10 Rat ELISA kitInvitrogen ، كاماريلو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةKRC0101
IL-1beta Rat ELISA KitInvitrogen ، Camarillo ، CA ، الولايات المتحدة الأمريكيةKRC0011
IL-6 Rat ELISA KitInvitrogen ، كاماريلو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةKRC0061
INF-gamma Rat ELISA KitInvitrogen ، كاماريلو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةKRC4021
TNF-alpha Rat ELISA KitInvitrogen ، كاماريلو ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةKRC3011
Rat LPS ELISA KitNeoBioLab ، MA ، الولايات المتحدة الأمريكيةRL0275
الغرفة البيئية 6020-1Caron ، Marietta ، OH ، الولايات المتحدة الأمريكية6020-1
أجهزة الطرد المركزي   ؛بيكمان كولتر ، إنديانابوليس ، إنديانا ، الولايات المتحدة الأمريكيةOptima L-90K
Ultra Centrifuge
نظام بصري مجهر ضوئيCitoViva Technology Inc. ، أوبورن ، AL
Colony counterFisher Scientific ، بيتسبرغ ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةRE-3325
فريزرهاير ، بروكلين ، نيويورك ، الولايات المتحدة الأمريكيةHCMO50LA
Ultra microplate قارئBio-Tek Instrument, Winooski, VT, الولايات المتحدة الأمريكيةELx 808
Auto Strip WasherBio-Tek Instrument, Winooski, VT, USAELx50
PipettesGilson, Pipetman, FranceP100, P200, P1000
C24 Incubator ShakerNew Brunswick Scientific, Enfield, CT, USAClassic C24
Rocking Shaker Reliable Scientific، Inc. ، Nesbit ، MS ، الولايات المتحدة الأمريكية55
أطباق بتريفيشر ساينتفيك ، بيتسبرغ ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية875713100 مم × 15 مم
SterilGard III AdvanceThe Baker Company ، سانفورد ، ME ، الولايات المتحدة الأمريكيةSG403
قوارير زراعةالثقافة Corning Incorporated ، Corning ، NY ، الولايات المتحدة الأمريكية4995PYREX 250 مل قوارير Erlenmeyer
مقياس الطيف البصري Genesys 20ثيرمو ساينتيف ، والثام ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة الأمريكية.4001
Sony DXC-33 كاميرا فيديوسوني
ريتشاردسون اختبار الشريحةعلم المجهر الإلكتروني ، هاتفيلد ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية80303
نظام تنقية المياه MilliporeDirect-Q
Image-Pro Plus البرمجياتMedia Cybernetics ، MD ، الولايات المتحدة الأمريكية
Triple Beam BalanceOHAUS Corporation ، Parsippany ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكية
مخالط الأنسجة ، DounceVWR71000-518
شركة

المراجع

  1. Crandall, C. G., Gonzalez-Alonso, J. Cardiovascular function in the heat-stressed human. Acta Physiol. 199, 407-423 (2010).
  2. Lambert, G. P. Role of gastrointestinal permeability in exertional heatstroke. Exerc. Sport Sci. Rev. 32, 185-190 (2004).
  3. Yu, J., et al. Effect of heat stress on the porcine small intestine: A morphological and gene expression study. Comp. Biochem. Physiol. A-Mol. Integr. Physiol. 156, 119-128 (2010).
  4. Moseley, P. L., Gisolfi, C. V. New Frontiers in Thermoregulation and Exercise. Sports Med. 16, 163-167 (1993).
  5. Lambert, G. P. Stress-induced gastrointestinal barrier dysfunction and its inflammatory effects. J. Anim. Sci. 87, 101-108 (2009).
  6. Berg, A., Muller, H. M., Rathmann, S., Deibert, P. The gastrointestinal system - An essential target organ of the athlete's health and physical performance. Exerc. Immunol. Rev. 5, 78-95 (1999).
  7. Khan, M. W., et al. Microbes, intestinal inflammation and probiotics. Expert Rev Gastroent. 6, 81-94 (2012).
  8. Quigley, E. M. M. Prebiotics and Probiotics: Their Role in the Management of Gastrointestinal Disorders in Adults. Nutr Clin Pract. 27, 195-200 (2012).
  9. Gore, C., et al. Treatment and secondary prevention effects of the probiotics Lactobacillus paracasei or Bifidobacterium lactis on early infant eczema: randomized controlled trial with follow-up until age 3 years. Clin Exp Allergy. 42, 112-122 (2012).
  10. Gomes, A. C., Bueno, A. A., de Souza, R. G. M., Mota, J. F. Gut microbiota, probiotics and diabetes. Nutr. J. 13, (2014).
  11. Eutamene, H., et al. Synergy between Lactobacillus paracasei and its bacterial products to counteract stress-induced gut permeability and sensitivity increase in rats. J. Nutr. 137, 1901-1907 (2007).
  12. Ait-Belgnaoui, A., et al. Lactobacillus farciminis treatment attenuates stress-induced overexpression of Fos protein in spinal and supraspinal sites after colorectal distension in rats. Neurogastroenterol. Motil. 21, 585-593 (2009).
  13. Fujiya, M., et al. The Bacillus subtilis quorum-sensing molecule CSF contributes to intestinal Homeostasis via OCTN2, a host cell membrane transporter. Cell Host Microbe. 1, 299-308 (2007).
  14. Cutting, S. M. Bacillus probiotics. Food Microbiol. 28, 214-220 (2011).
  15. Pinchuk, I. V., et al. In vitro anti-Helicobacter pylori activity of the probiotic strain Bacillus subtilis 3 is due to secretion of antibiotics. Antimicrob Agents Ch. 45, 3156-3161 (2001).
  16. Sorokulova, I. B., Kirik, D. L., Pinchuk, I. V. Probiotics against Campylobacter pathogens. J. Travel Med. 4, 167-170 (1997).
  17. Gracheva, N. M., et al. The efficacy of the new bacterial preparation biosporin in treating acute intestinal infections. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. , 75-77 (1996).
  18. Horosheva, T. V., Vodyanoy, V., Sorokulova, I. Efficacy of Bacillus probiotics in prevention of antibiotic-associated diarrhoea: a randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial. JMM Case Report. 1, (2014).
  19. Sorokulova, I. B., Krumnow, A. A., Pathirana, S., Mandell, A. J., Vodyanoy, V. Novel Methods for Storage Stability and Release of Bacillus Spores. Biotechnol. Prog. 24, 1147-1153 (2008).
  20. Vogel, H. G., Vogel, W. H. Drug Discovery and Evaluation: Pharmacological Assays. eds H.G. Vogel & W.H. Vogel. Vogel, H. G., Vogel, W. H. , 658-659 (1997).
  21. Bailey, M. T., Engler, H., Sheridan, J. F. Stress induces the translocation of cutaneous and gastrointestinal microflora to secondary lymphoid organs of C57BL/6 mice. J. Neuroimmunol. 171, 29-37 (2006).
  22. Rakoff-Nahoum, S., Paglino, J., Eslami-Varzaneh, F., Edberg, S., Medzhitov, R. Recognition of commensal microflora by toll-like receptors is required for intestinal homeostasis. Cell. 118, 229-241 (2004).
  23. Leon, L. R., Blaha, M. D., DuBose, D. A. Time course of cytokine, corticosterone, and tissue injury responses in mice during heat strain recovery. J. Appl. Physiol. 100, 1400-1409 (2006).
  24. Ribeiro, S. R., et al. Weight loss and morphometric study of intestinal mucosa in rats after massive intestinal resection. Influence of a glutamine-enriched diet. Rev. Hosp. Clìn. Fac. Med. S. Paulo. 59, 349-356 (2004).
  25. Vainrub, A., Pustovyy, O., Vodyanoy, V. Resolution of 90 nm (lambda/5) in an optical transmission microscope with an annular condenser. Opt Lett. 31, 2855-2857 (2006).
  26. Moore, T., Globa, L., Pustovyy, O., Vodyanoy, V., Sorokulova, I. Oral administration of Bacillus subtilis strain BSB3 can prevent heat stress-related adverse effects in rats. J Appl Microbiol. 117, 1463-1471 (2014).
  27. Richardson, T. M. Test slides: Diatoms to divisions-What are you looking at. Proc Roy Microsc Soc. 22, 3-9 (1988).
  28. Moore, T., Sorokulova, I., Pustovyy, O., Globa, L., Vodyanoy, V. Microscopic evaluation of vesicles shed by rat erythrocytes at elevated temperatures. J Therm Biol. 38, 487-492 (2013).
  29. Leon, L. R., Helwig, B. G. Heat stroke: Role of the systemic inflammatory response. J. Appl. Physiol. 109, 1980-1988 (2010).
  30. Kumar, Y., Chawla, A., Tatu, U. Heat Shock Protein 70 as a Biomarker of Heat Stress in a Simulated Hot Cockpit. Aviat Space Env Med. 74 (7), 711-716 (2007).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

الوقاية من الإجهاد الحراري الآثار السلبية في الجرذان التي كتبها
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.