يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

غرس والتسجيلات مخطط كهربية اللاسلكية والجهد البصري المحرض في الجرذان واعية

8.7K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/54160

⸱

يونيو 29, 2016

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Optometry and Vision Sciences, University of Melbourne, 2Pfizer Neusentis

في هذه المقالة

ملخص

وتبين لنا إجراءات الزرع وتسجيل جراحية لقياس الإشارات الكهربية البصرية من العين (مخطط كهربية) والدماغ (البصرية أثار المحتملة) في الفئران واعية، والتي هي أكثر مشابهة لحالة الإنسان حيث تجرى التسجيلات دون يفند التخدير.

الملخص

في مخطط كهربية كامل الحقل (أرج) وأثار احتمال البصرية (VEP) هي أدوات مفيدة لتقييم شبكية العين ووحدة المسار البصرية في كل من المختبرات والمرافق الصحية. حاليا، يتم تنفيذ القياسات أرج وVEP قبل السريرية مع التخدير لضمان مواضع الكهربائي مستقرة. ومع ذلك، فقد ثبت وجود جدا من التخدير لتلويث الاستجابات الفسيولوجية الطبيعية. للتغلب على هذه يفند التخدير، ونحن نطور منصة جديدة لفحص أرج وVEP في الفئران واعية. يتم زرع أقطاب كهربائية جراحيا دون conjunctivally على العين لفحص وأرج وepidurally على القشرة البصرية لقياس VEP. وهناك مجموعة من السعة وحساسية / ويعاير المعلمات توقيت لكل من أرج وVEP في زيادة الطاقات مضيئة. وتظهر إشارات أرج وVEP أن تكون مستقرة ويمكن تكرارها لمدة 4 أسابيع على الأقل زرع بعد الجراحة. هذه القدرة على تسجيل إشارات أرج وVEP بدون تخدير يفند في الصورة قبل السريريةيجب etting توفير الترجمة متفوقة على البيانات السريرية.

المقدمة

وأرج وVEP هي مينيملي في أدوات الجسم الحي لتقييم سلامة مسارات شبكية العين والبصرية على التوالي في كل من مختبر وعيادة. في الميدان الكامل أرج غلة الموجي المميز الذي يمكن تقسيمها إلى مكونات مختلفة، مع كل عنصر يمثلون فئات مختلفة من الخلايا من 1،2 المسار الشبكية. يتكون الكلاسيكية كامل الحقل أرج الموجي من المنحدر الأولي السلبي (أ الموجة)، وهو ما ثبت لتمثيل مبصرة آخر نشاط ضوء التعرض 2-4. ويتبع الموجة من قبل الموجي ايجابي كبير (ب الموجة) والذي يعكس النشاط الكهربائي للشبكية العين المتوسطة، في الغالب الخلايا ON-القطبين 5-7. وعلاوة على ذلك، يمكن للمرء أن تختلف الطاقة مضيئة وبين التحفيز الفاصل الزمني لعزل مخروط من ردود قضيب 8.

فلاش VEP يمثل إمكانات الكهربائية من قشرة الدماغ والبصرية الجذعية ردا على التحفيز ضوء في شبكية العين9،10. هذا الموجي يمكن تقسيمها إلى مكونات المبكرة والمتأخرة، مع مكون في وقت مبكر مما يعكس نشاط الخلايا العصبية في مسار retino-geniculo مخططة 11-13 والراحل عنصر يمثلون معالجة القشرية التي أجريت في مختلف الصفائح V1 في الفئران 11،13. وبالتالي قياس وقت واحد من أرج وVEP بإرجاع تقييم شامل للهياكل المعنية في مسار البصرية.

حاليا، من أجل تسجيل الكهربية في الحيوانات، ويعمل التخدير لتمكين وضع مستقر من الأقطاب الكهربائية. وكانت هناك محاولات لقياس أرج وVEP في الفئران واعية 14-16 ولكن هذه الدراسات استخدمت الإعداد السلكية، التي يمكن أن تكون مرهقة وربما يؤدي إلى إجهاد الحيوان عن طريق تقييد حركة الحيوانات والسلوك الطبيعي 17. مع التطورات الحديثة في مجال التكنولوجيا اللاسلكية بما في ذلك تحسين التصغير وعمر البطارية، فمن الممكن الآن لتنفيذ نهج القياس عن بعد لأرج لد تسجيل VEP، وخفض الإجهاد المرتبطة التسجيلات السلكية وتحسين جدوى على المدى الطويل. وقد أثبتت زرع مستقرة داخليا بالكامل من تحقيقات القياس عن بعد لتكون ناجحة لرصد مزمن في درجة الحرارة وضغط الدم 18، النشاط 19 وكذلك كهربية 20. وهذا التقدم في التكنولوجيا تساعد أيضا مع التكرار والاستقرار التسجيلات واعية، وزيادة فائدة للمنبر للدراسات المزمنة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وأجريت التجارب على الحيوانات وفقا للقانون الاسترالي لرعاية واستخدام الحيوانات لأغراض العلمية (2013): الأخلاق بيان. تم الحصول على موافقة الأخلاق الحيوانية من لجنة أخلاقيات الحيوان، جامعة ملبورن. المواد هنا هي لتجارب معملية فقط، وليس المقصود للاستخدام الطبي أو الطب البيطري.

1. أقطاب إعداد

ملاحظة: يتم استخدام الارسال ثلاث قنوات لزرع الجراحية والتي تمكن 2 أرج وتسجيل 1 VEP التي ستجرى في وقت واحد. لا بد من الطراز قبل في شكل حلقة قبل الزرع من أجل نعلق على العين أقطاب خاملة ثلاثة النشطة وثلاثة. لأغراض تحديد الهوية، وقد أرفقت الشركة المصنعة الأقطاب الفاعلة في نصف أبيض، أغلفة بلاستيكية ملونة نصف في حين يتم تغطية أقطاب خاملة في الأغماد كاملة ملونة. تبقى القطب الأرض (واضح غمد البلاستيك) لم يتغير. لجميع العاملين وغير العاملين بالكهرباءسلوك قصائد الخطوات 1.1، 1.2، 1.3 و 1.7.

  1. لفك جديلة المزدوجة الذين تقطعت بهم السبل القطب الفولاذ المقاوم للصدأ مع اثنين من كماشة الرؤوس الجميلة.
  2. تقليم واحد من فروع الفولاذ المقاوم للصدأ (حوالي 1 سم من الحافة)، وترك ضفيرة واحدة لفترة أطول على التوالي المتبقية لتشكيل قطب حلقة.
  3. أضعاف واحد حبلا الصلب المقاوم للصدأ الظهر على نفسها وتطور، وتشكيل عصابة على نحو سلس في طرف القطب.
  4. لأرج الأقطاب النشطة الأزياء هذه الحلقة ~ 0،2-0،5 مم في القطر من قبل التواء في قاعدة حلقة (للغرض المبين هنا، وشكل قطبين النشطة في هذا الطريق لتسجيل أرج من كلتا العينين)، ولأرج غير نشطة و أقطاب VEP جعل قطر حلقة ~ قطرها 0.8 ملم (في هذا المثال، القيام بذلك لأحد القطب VEP نشط وجميع أقطاب خاملة ثلاثة).
  5. ربط الدائري VEP القطب نشط حول المسمار الفولاذ المقاوم للصدأ (قطر 0.7 ملم، وطول 3 ملم) حتى القطب تقع على رأس المسمار.
  6. هووك 3 أقطاب خاملة (2 أرج، 1 VEP) حول المسمار الثاني الفولاذ المقاوم للصدأ (قطر 0.7 ملم، وطول 3 ملم).
  7. سحب الغلاف البلاستيكي إلى الأمام على نهايات حادة من حبلا اثنين من الفولاذ المقاوم للصدأ للحد من تهيج.
  8. تعقيم أجهزة الإرسال القياس عن بعد عن طريق نقع في 2٪ غلوتارالدهيد لأكثر من 10 ساعة على ما يقرب من 25 درجة مئوية. ثم شطف الارسال مع ملحي معقم 3 مرات.

2. الارسال زرع

  1. تحضير الحيوانات
    1. تطهير المنطقة الجراحية قبل التجريب عن طريق تنظيف مع 70٪ من الإيثانول. الأوتوكلاف جميع المعدات الجراحية قبل الاستخدام والحفاظ على المعدات في بالكلورهيكسيدين عندما لا تكون قيد الاستعمال خلال عملية جراحية. تغطية حيوان مع ثنى الجراحية أثناء الجراحة للحفاظ على بيئة معقمة. ضمان جميع المجربون ارتداء الأقنعة الجراحية، قفازات معقمة والعباءات.
    2. لحث التخدير مع 1،5-2٪ الأيزوفلورين، بمعدل تدفق من 3 لتر / دقيقة وmaintaiنيد في 1،5-2٪ في 2 لتر / دقيقة طوال الجراحة. تأكيد عمق كاف من التخدير من غياب منعكس دواسة على معسر العضلات بين أصابع القدم.
    3. حلاقة منطقة × 30 ملم 40 ملم على البطن من أعلى الفخذ إلى عظمة القص.
    4. حلاقة منطقة × 20 ملم 30 ملم على جبهته، الخلفي للعين والأمامي للآذان.
    5. تطهير المناطق حلق اثنين. للمنطقة الجبين تطهير مع بوفيدون اليود 10٪ ثلاث مرات (تجنب استخدام المطهرات التي تحتوي على الكحول لمنطقة قريبة من العين، كونها تتفق مع معيار الممارسة التي وضعتها رابطة التكنولوجيين الجراحية). على البطن تطهير مع 10٪ اليود البوفيدون و 70٪ من الإيثانول.
    6. تطبيق 1 قطرة من proxymetacaine إلى القرنية للتخدير الموضعي إضافية.
    7. تطبيق 1 قطرة من الصوديوم كربوكسي ميثيل سلولوز إلى القرنية لمنع جفاف العينين.
  2. زرع الجراحية
    1. جعل شق 10 ملمعلى الرأس على طول خط الوسط العمودي بين الأذنين مع مشرط جراحي.
    2. جعل شق 5 ملم على البطن من خلال طبقة الجلد على طول خط الوسط تحت عظمة القص.
    3. نفق 5 مم قنية تحت الجلد من شق البطن إلى شق رأسه.
    4. تغذية الأسلاك الكهربائي (3 النشطة والخاملة 3) من الارسال من خلال قنية من البطن إلى الرأس.
    5. ترك القطب المرجعية مع قاعدة الارسال وتغطية غيض الكهربائي مع الشاش المعقم.
    6. تغطية نصائح القطب (3 النشطة والخاملة 3) مع الشاش المعقم.
    7. تأمين رأس فأر إلى منصة التجسيمي.
    8. تمديد شق الجبهة إلى 30mm وفي الطول مع مقص جراحي.
    9. فضح منطقة العمليات الجراحية من قبل التراجع الجلد المترهل مع 2 خيوط (3-0) في ~ 3 و 09:00.
    10. كشط غشاء العظم المغطي الجمجمة باستخدام الشاش المعقم لفضح bregma، امدا وخط الوسط الغرز.
    11. حفر اثنين من الثقوب من خلال الجمجمة في VEP نشط (7 ملم بطني إلى bregma 3 مم الجانبي إلى خط الوسط) وغير نشط (5 مم منقاري إلى bregma على خط الوسط) التجسيمي تنسق.
    12. إرفاق VEP الأقطاب النشطة وغير النشطة مع مسامير المرفقة قبل الفولاذ المقاوم للصدأ (قطر 0.7 ملم، وطول 3 ملم) في الجمجمة مع صغيرة برغي سائق ل~ 1 مم في العمق في الثقوب ولم يضف. هذه المراسي المسمار حتى العظم دون الإضرار الأنسجة القشرية الكامنة.
    13. لزرع الأقطاب أرج النشطة استخدام 8-0 خياطة التراجع مؤقتا الجفن العلوي.
    14. اضافة الى وجود 16 إلى 21 G قنية تحت الجلد من وراء العين وصولا إلى القبو الملتحمة متفوقة.
    15. إزالة الإبرة التوجيهية.
    16. تغذية القطب نشط عن طريق القسطرة البلاستيكية تقصير من الجبهة نحو العين. ثم إزالة القسطرة البلاستيكية.
    17. استخدام الخيط مؤقتة (8-0)، والتي هي الخيوط من خلال حلقة الكهربائي، لمنع كهربائيtrode من التراجع إلى الخلف داخل النفق.
    18. جعل شق 0.5 ملم على الملتحمة متفوقة في 12:00، 1 ملم وراء حوف. استخدام تشريح حادة لفضح الصلبة الأساسية.
    19. زرع و8-0 أو 9-0 خياطة فورا وراء حوف في نصف سماكة الصلبة.
    20. إزالة خياطة مؤقتة من أرج القطب النشط.
    21. مرساة القطب أرج النشط للنصف خياطة سماكة الصلبة من خلال ربط 3 عقدة متتالية ضمان غيض من القطب يقع بالقرب من حوف.
    22. إغلاق رفرف الملتحمة باستخدام 1-2 الغرز توقف (8-0 9 - 0). تأكد من أن الملتحمة يغطي تماما القطب أرج لتحسين وسائل الراحة.
    23. إزالة جفن التراجع خياطة.
    24. كرر الإجراء للعين المقابل.
    25. تطبيق هلام cyanoacrylate على الجمجمة لتأمين جميع مسامير غير القابل للصدأ والأسلاك الكهربائي. لا يتم سحبها ضمان الأقطاب أرج النشطة ضيقة جدا قبل تأمين أونحركات العين قادرة.
    26. إغلاق جرح في الرأس باستخدام غير قابل للامتصاص 3-0 خياطة.
    27. تدوير القوارض لفضح منطقة البطن. إطالة شق الجلد في منطقة البطن إلى 40 ملم على طول الخط الأبيض مع مقص جراحي.
    28. جعل شق 35 ملم من خلال الجدار العضلي الداخلي لفضح تجويف البطن الداخلي.
    29. باستخدام اثنين من الغرز (3-0) إرفاق الجسم الإرسال إلى الجانب الأيمن باليد جدار البطن الداخلي الحيوان. تجنب الاتصال الكبد.
    30. حلقة القطب الأرض وآمنة في هذا الشكل مع خياطة (3-0). وضعه مجانا عائمة في تجويف البطن.
    31. إغلاق الصفاق باستخدام خياطة مستمرة (3-0).
    32. إغلاق شق الجلد باستخدام الخيوط الجراحية توقف (3-0).
  3. الرعاية اللاحقة للعمليات الجراحية
    1. مراقبة الحيوانات حتى استعاد وعيه كافية للحفاظ على الاستلقاء القصية. منزل الحيوان منفردة بعد الجراحة.
    2. إدارة carprأوفن تحت الجلد لتسكين الألم (5 ملغ / كلغ) مرة واحدة يوميا لمدة 4 أيام.
    3. إضافة المضادات الحيوية عن طريق الفم وقائية (Enrofloxin، 5 مغ / كغ) إلى مياه الشرب لمدة 7 أيام بعد الجراحة.
    4. تطبيق مرهم مضاد للالتهابات لمواقع شق الجلد للحد من تهيج لأول 7 أيام بعد الجراحة.

3. السلوك أرج وVEP التسجيلات في الجرذان واعية

  1. الظلام التكيف مع الحيوان لمدة 12 ساعة قبل أرج والتسجيلات VEP
  2. إجراء كافة المعالجات التجريبية تحت إضاءة الخافتة الحمراء (17.4 cd.m -2، λ الحد الأقصى = 600 نانومتر)
  3. تطبيق التخدير الموضعي (0.5٪ proxymetacaine) ومعلقا (0.5٪ تروبيكاميد) يسقط إلى القرنية.
  4. توجيه القوارض واعية إلى العرف، رادع واضح.
    ملاحظة: ويبلغ طول هذا الأنبوب البلاستيك يمكن تعديلها لاستيعاب الفئران مختلفة الحجم مع القطر الكلي ثابت عند 60 مم. مدبب الواجهة الأمامية للجهاز للحد من رئيس موvement ويحتوي على ثقوب لتمكين التنفس الطبيعي. هذه الجبهة مدبب تسمح التوافق والاستقرار في رأس الفئران وعيون لفتح المجال فريق Ganzfeld. لاحظ أن القوارض تم متأقلمة إلى رادع (3-5 مناسبات) قبل الجراحة.
  5. وضع القوارض أمام وعاء فريق Ganzfeld مع عيون تتماشى مع افتتاح وعاء.
  6. بدوره على الارسال الساكن عن طريق تمرير المغناطيس داخل ~ 5 سم من جهاز الإرسال. تحقق من أن المرسل هو على طريق التحقق من ضوء حالة الصمام على قاعدة الاستقبال.
  7. جمع إشارات على مجموعة من الطاقات مضيئة (أي -5.6 إلى 1.52 سجل cd.sm -2) كما هو موضح سابقا 21. لفترة وجيزة، متوسط ​​المزيد من الاشارات على الصعيدين باهتة الخفيفة (~ 80 تكرار) وأقل في الطاقة أكثر إشراقا مضيئة (~ 1 تكرار). تدريجيا إطالة فترة interstimulus 1-180 ثانية من الأكثر خفوت لألمع مستوى الضوء.
  8. لعزل قضيب أرجوالاستجابات مخروط الاستفادة من النموذج المزدوج فلاش 8. على سبيل المثال، والشروع في اثنين من ومضات في cd.sm 1.52 سجل -2 مع 500 مللي ثانية الفاصلة بين التحفيز في ما بينهما.
  9. لتسجيل إشارات VEP، متوسط ​​20 يكرر في الطاقات إشراقا مضيئة (أي 1.52 سجل cd.sm -2، 5 ثانية الفاصلة بين التحفيز).
  10. لتقييم الاستقرار الزرع، والتي يتم تقييمها من قبل التباين إشارة مرور الوقت، وإجراء أرج وVEP التسجيلات 7 و 10 و 14 و 21 و 28 يوما بعد الجراحة.
  11. وبعد فترة تجريبية، الموت ببطء الفئران عن طريق الحقن intracardial من pentobarbiturate (1.5 مل / كغ) بعد الكيتامين: التخدير زيلازين (12: 1 ملغ / كلغ).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يتم تحليل استجابة مستقبلة للضوء عن طريق تركيب تأخر التمويه على الحافة الأمامية من الطرف الهابطة الأولي للاستجابة أرج في أعلى 2 الطاقات مضيئة (1.20، 1.52 سجل CSM -2) لكل حيوان، استنادا إلى نموذج من الحمل وبف 22، صيغت من قبل هود وبيرش 23. ترجع هذه الصيغة اتساع ومعلمة حساسية، (الشكل 1C و1D، على التوالي). تم تركيب وظيفة القطعي للاستجابة للطاقة مضيئة من خلايا ثنائية القطب قضيب لكل حيوان،...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

ونظرا لطبيعة الغازية الحد الأدنى من الكهربية البصرية، وتجرى أرج وVEP التسجيلات في المرضى من البشر في ظل ظروف واعية وتتطلب سوى استخدام التخدير الموضعي لوضع قطب كهربائي. في المقابل، يجري الكهربية البصرية في النماذج الحيوانية التقليدية تحت التخدير العام لتمكين مستقر وضع قطب كهربائي من خلال القضاء على العين والجسم الحركات الطوعية. ومع ذلك، التخدير العام المستخدمة عادة تغير الاستجابات أرج وVEP كما يتضح من المنشور السابق لدينا 24 وغيرها 25-27. على هذا النحو تطوير م...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

RG و RF هم موظفان للممول التجاري لهذا البحث (Pfizer Neusentis و Pfizer Global Research). كان MI موظفا في شركة Pfizer Global Research خلال هذا البحث وهو حاليا موظف في Proteostasis Therapeutics (كامبريدج ، الولايات المتحدة الأمريكية).

شكر وتقدير

تود JC أن تعرب عن تقديرها لصندوق ديفيد هاي التذكاري ، جامعة ملبورن للدعم المالي في كتابة هذه المخطوطة. تم توفير تمويل هذا المشروع من خلال 100200129 منحة ARC Linkage (BVB ، AJV ، CTON).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
مكبر للصوت الحيويADnstrumentsML 135يضخم إشارات ERG و VEP
كربوكسي ميثيل سلولوز الصوديوم 1.0٪مسببات الحساسيةCAS 0009000-11-7الحفاظ على ترطيب القرنية أثناء الجراحة
كاربروفين 0.5٪مجموعة فايزر لصحةCAS 53716-49-7تسكين ما بعد الجراحة ، مع محلول ملحي عن طريق الحقن لتجديد السوائل
كلورهيكسادين 0.5٪مختبرات أوريون27411 ، 80085تطهير أداة جراحية
منشط هلام سيانواكريليتمكونات RS473-439يجفف بسرعة جل سيانواكريليت
جل سيانوكريليت   ؛مكونات RS473-423إصلاح مسامير غير قابلة للصدأ للجمجمة
لدغ الأسنانأدوات Storz ، Bausch and LombE0824Aرأس حفر مصغر بقطر ~ 0.7 مم لعمل ثقب صغير في الجمجمة فوق كل نصف كرة لزرع مسامير VEP
DrillBoschDremel 300 seriesمثقاب أوتوماتيكي لنقف
EnrofloxinTroy Laboratoriesالمضاد الحيوي الوقائي جراحية
Ganzfeld دمج حلولالقياس الضوئي الدوليةمحفز الضوء المصمم حسب الطلب: قطر 36 مم ، حجم فتحة 13 سم
مسحات شاشMultigate Medical Products Pty Ltd57-100Bيجفف شق جراحي وسطح الجمجمة المكشوف أثناء الجراحة
Isoflurane 99.9٪Abbott Australasia Pty LtdCAS 26675-46-7اسم الملكية: Isoflo (TM) التخدير الاستنشاقي. مخدر استنشاق من الدرجة الصيدلانية ممزوج بغاز الأكسجين لجراحة زرع القطب الكهربائي VEP
مرهم KenacombAspen Pharma Pty Ltdلتقليل تهيج الجلد والحكة بعد الجراحة
Luxeon LEDsشركة فيليبس للإضاءةللتحفيز الضوئي ، عشرون مصباح LED 5 واط واحد 1 واط ، يتم التحكم فيه بواسطة إبرة برنامج
Scope (الجراحة الكبيرة) WorldPrecision Instruments501959لخياطة جراحة البطن والرأس ، تستخدم مع خياطة 3 - 0 ، إبرة العين ، حافة القطع 5/16 دائرة الحجم 1 ، حامل إبرة 15 مم
(الجراحة الكبيرة)الدقة العالمية500224لعقد الإبرة أثناء جراحة
البطن والرأسحامل إبرة (جراحة مجهرية)World Precision Instruments555419NTلتثبيت الإبرة أثناء جراحة العين
قسطرة أوبتيفاسميث ميديكال إنترناشيونال LTD16 أو 21 جمدليل الأقطاب الكهربائية النشطة للقرنية من الجمجمة إلى الملتحمة
بوفيدون اليود 10٪سانوفي أفنتيسCAS 25655-41-8اسم الملكية: بيتادين ، مطهر لتحضير الجلد المحلوق للجراحة 10٪ ، 500 مل
نظام الحصول على البيانات PowerlabADInstrumentsML 785الحصول على إشارة من جهاز إرسال القياس عن بعد ، مقترنة بمحول بيانات القياس عن بعد
Proxymetacaine 0.5٪Alcon Laboratories   ؛CAS 5875-06-9تسكين العين الموضعي
قطع المصفاةالمصنوعمن الأمام من التقييد مدبب لتقليل حركة الرأس ، ويمكن تعديل الطول لاستيعاب طول الفئران المختلفة ، والقطر الكلي 60 مم.
شفرة سكيبلR.G. SNSM0206 للمستلزمات الطبيةلمقص الشق الجراحي
(الجراحة الجراحية)501225الأدوات الدقيقة العالميةلقطع الأنسجة على مقص الجبهة
(الجراحة المجهرية)الدقة العالمية501232لتشريح الملتحمة لمرفق القطب الكهربائي
برنامج نطاقADInstrumentsالإصدار 3.7.6في نفس الوقت يؤدي إلى تشغيل التحفيز عبر نظام ADI Powerlab ويجمع البيانات
ماكينة حلاقةOsterGolden A5حلاقة الفراء من المناطق الجراحية
مسامير streel غير القابل للصدأ MicroFastenersL001.003CS304قطر عمود 0.7 مم ، طول 3 مم ؛
إطار تجسيميديفيد كوبموديل 900أداة تجسيمية حيوانية صغيرة لتحديد معالم الزرع على الجمجمة
ستارة جراحيةمستلزمات طبية حيويةGM29-612EEضمان بيئة معقمة أثناء الجراحة
خياطة (جراحة كبيرة)إبر طبية نينبو3-0لخياطة جراحة البطن والرأس ، حرير معقم مضفر ،
إبرة خياطة 60 سم ( الجراحة المجهرية)إبر طبية Ninbo8-0 أو 9-0لجراحة العين بما في ذلك ، خياطة القطب الكهربائي للصلبة وإغلاق جرح الملتحمة ، خياطة النايلون ، 3/8 دائرة 1 & مرات ؛ 5 ، 30 سم
محول بيانات القياس عن بعد   ؛DataSciences InternationalR08لإشارة القياس عن بعد بالتفاعل مع برنامج جمع البيانات
مصفوفة تبادل بيانات القياس عن بعدDataSciences Internationalتجمع البيانات من أجهزة الإرسال ، وتقترن بجهاز الاستقبال
استقبال بيانات القياس عن بعدDataSciences InternationalRPC-1يستقبل بيانات القياس عن بعد من جهاز الإرسال
القياس عن بعدDataSciences جهازإرسال القياس عن بعد الدوليF50-EEE
تروبيكاميد 0.5٪مختبرات الكون توسيع قزحية
العين (الجراحة الكبيرة)أدوات الدقة العالمية500092معالجة الأنسجة أثناء جراحة البطن والرأس
ملاقط (جراحة مجهرية)أدوات الدقة العالمية500342معالجة الأنسجة أثناء جراحة العين
أدوات أدوات تسمح جهاز جهاز إرسال 3 قنوات ملاقط

المراجع

  1. Frishman, L. J. Origins of the Electroretinogram. , The MIT Press. (2006).
  2. Granit, R. The components of the retinal action potential in mammals and their relation to the discharge in the optic nerve. J Physiol. 77, 207-239 (1933).
  3. Brown, K. T. The eclectroretinogram: its components and their origins. Vision Res. 8, 633-677 (1968).
  4. Brown, K. T., Murakami, M. Biphasic Form of the Early Receptor Potential of the Monkey Retina. Nature. 204, 739-740 (1964).
  5. Kline, R. P., Ripps, H., Dowling, J. E. Generation of b-wave currents in the skate retina. Proc Natl Acad Sci U S A. 75, 5727-5731 (1978).
  6. Krasowski, M. D., et al. Propofol and other intravenous anesthetics have sites of action on the gamma-aminobutyric acid type A receptor distinct from that for isoflurane. Mol Pharmacol. 53, 530-538 (1998).
  7. Stockton, R. A., Slaughter, M. M. B-wave of the electroretinogram. A reflection of ON bipolar cell activity. J Gen Physiol. 93, 101-122 (1989).
  8. Nixon, P. J., Bui, B. V., Armitage, J. A., Vingrys, A. J. The contribution of cone responses to rat electroretinograms. Clin Experiment Ophthalmol. 29, 193-196 (2001).
  9. Weinstein, G. W., Odom, J. V., Cavender, S. Visually evoked potentials and electroretinography in neurologic evaluation. Neurol Clin. 9, 225-242 (1991).
  10. Sand, T., Kvaloy, M. B., Wader, T., Hovdal, H. Evoked potential tests in clinical diagnosis. Tidsskr Nor Laegeforen. 133, 960-965 (2013).
  11. Brankack, J., Schober, W., Klingberg, F. Different laminar distribution of flash evoked potentials in cortical areas 17 and 18 b of freely moving rats. J Hirnforsch. 31, 525-533 (1990).
  12. Creel, D., Dustman, R. E., Beck, E. C. Intensity of flash illumination and the visually evoked potential of rats, guinea pigs and cats. Vision Res. 14, 725-729 (1974).
  13. Herr, D. W., Boyes, W. K., Dyer, R. S. Rat flash-evoked potential peak N160 amplitude: modulation by relative flash intensity. Physiol Behav. 49, 355-365 (1991).
  14. Guarino, I., Loizzo, S., Lopez, L., Fadda, A., Loizzo, A. A chronic implant to record electroretinogram, visual evoked potentials and oscillatory potentials in awake, freely moving rats for pharmacological studies. Neural Plast. 11, 241-250 (2004).
  15. Szabo-Salfay, O., et al. The electroretinogram and visual evoked potential of freely moving rats. Brain Res Bull. 56, 7-14 (2001).
  16. Valjakka, A. The reflection of retinal light response information onto the superior colliculus in the rat. Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 245, 1199-1210 (2007).
  17. Lapray, D., Bergeler, J., Dupont, E., Thews, O., Luhmann, H. J. A novel miniature telemetric system for recording EEG activity in freely moving rats. J Neurosci Methods. 168, 119-126 (2008).
  18. Lim, K., Burke, S. L., Armitage, J. A., Head, G. A. Comparison of blood pressure and sympathetic activity of rabbits in their home cage and the laboratory environment. Exp Physiol. 97, 1263-1271 (2012).
  19. Nguyen, C. T., Brain, P., Ivarsson, M. Comparing activity analyses for improved accuracy and sensitivity of drug detection. J Neurosci Methods. 204, 374-378 (2012).
  20. Ivarsson, M., Paterson, L. M., Hutson, P. H. Antidepressants and REM sleep in Wistar-Kyoto and Sprague-Dawley rats. Eur J Pharmacol. 522, 63-71 (2005).
  21. He, Z., Bui, B. V., Vingrys, A. J. The rate of functional recovery from acute IOP elevation. Invest Ophthalmol Vis Sci. 47, 4872-4880 (2006).
  22. Lamb, T. D., Pugh, E. N. A quantitative account of the activation steps involved in phototransduction in amphibian photoreceptors. J Physiol. 449, 719-758 (1992).
  23. Hood, D. C., Birch, D. G. Rod phototransduction in retinitis pigmentosa: estimation and interpretation of parameters derived from the rod a-wave. Invest Ophthalmol Vis Sci. 35, 2948-2961 (1994).
  24. Charng, J., et al. Conscious wireless electroretinogram and visual evoked potentials in rats. PLoS Onez. 8, e74172(2013).
  25. Galambos, R., Szabo-Salfay, O., Szatmari, E., Szilagyi, N., Juhasz, G. Sleep modifies retinal ganglion cell responses in the normal rat. Proc Natl Acad Sci U S A. 98, 2083-2088 (2001).
  26. Meeren, H. K., Van Luijtelaar, E. L., Coenen, A. M. Cortical and thalamic visual evoked potentials during sleep-wake states and spike-wave discharges in the rat. Electroencephalogr Clin Neurophysiol. 108, 306-319 (1998).
  27. Nair, G., et al. Effects of common anesthetics on eye movement and electroretinogram. Doc Ophthalmol. 122, 163-176 (2011).
  28. Amouzadeh, H. R., Sangiah, S., Qualls, C. W. Jr, Cowell, R. L., Mauromoustakos, A. Xylazine-induced pulmonary edema in rats. Toxicol Appl Pharmacol. 108, 417-427 (1991).
  29. Charng, J., et al. Retinal electrophysiology is a viable preclinical biomarker for drug penetrance into the central nervous system. J Ophthalmol. , (2016).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

القياس عن بُعد اللاسلكيزرع القطب الكهربائيالقطب تحت الملتحمةالقطب فوق الجافيةاستقرار الإشارةالتسجيل بدون تخديروظيفة الشبكية
غرس والتسجيلات مخطط كهربية اللاسلكية والجهد البصري المحرض في الجرذان واعية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.