يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

بالتكرار عبر الجمجمة التحفيز المغناطيسي إلى جانب واحد نصف الكرة الأرضية من الدماغ الجرذ

12.2K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/54217

⸱

أكتوبر 22, 2016

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Rehabilitation Medicine, Chungnam National University Hospital, Daejeon, 2Department of Biomedical Engineering, Seoul National University College of Medicine, 3Institute of Medical and Biological Engineering, Medical Research Center, Seoul National University, 4Department of Biomedical Engineering, Seoul National University Hospital, 5Department of Nuclear Medicine, Seoul National University Hospital, Seoul National University College of Medicine, 6Department of Rehabilitation Medicine, Gangwon Do Rehabilitation Hospital, 7Department of Rehabilitation Medicine, Seoul National University Hospital, Seoul National University College of Medicine

في هذه المقالة

ملخص

قمنا بتطبيق التحفيز المغناطيسي المتكرر عبر الجمجمة (rTMS) على نصف الكرة الأحادي الجانب لدماغ الفئران ، عن طريق وضع ملف 25 مم على شكل 8 1 سم جانبيا إلى الرأس على الخط ثنائي الأذن وزاوية الملف بمقدار 45 درجة. تم استخدام نظام تبريد المياه الداخلي ل rTMS لأكثر من 20 دقيقة.

الملخص

اعتمدت نماذج القوارض السابقة للتحفيز المغناطيسي المتكرر عبر الجمجمة (rTMS) تحفيز الدماغ بالكامل بدلا من rTMS أحادي الجانب في نصف الكرة الأرضية ، والذي يختلف عن البروتوكولات المستخدمة للبشر. أبلغنا عن تطبيق ناجح للتحفيز المغناطيسي المتكرر عبر الجمجمة على نصف الكرة الأرضية أحادي الجانب من دماغ الفئران. تم تسليم rTMS بتردد منخفض (1 هرتز) أو عالي التردد (20 هرتز) أو بروتوكول تحفيز زائف إلى جانب واحد من الدماغ باستخدام ملف صغير 25 مم على شكل 8. وضعنا مركز الملف على بعد 1 سم من الرأس على الخط ثنائي الأذن وقمنا بزاوية الملف 45 درجة على الأرض لتقليل التأثير المباشر المحتمل ل rTMS على القشرة المقابلة. استخدمنا أيضا نظام تبريد مائي داخلي لتمكين التحفيز المغناطيسي المتكرر لأكثر من 20 دقيقة ، حتى عند تردد تحفيز 20 هرتز. كانت الزيادات في نسخ الجينات المبكرة الفورية (Arc و Junb و Egr2) أكبر بعد rTMS مقارنة بالتحفيز الزائف. بعد 5 أيام متتالية من 20 دقيقة 1-هرتز rTMS ، كان تعبير bdnf mRNA أعلى بشكل ملحوظ في القشرة المحفزة منه في الجانب المقابل. سيوضح النموذج المقدم هنا الآليات الجزيئية ل rTMS من خلال السماح بتحليل الاختلاف بين نصف الكرة الأرضية في تأثيره.

المقدمة

المتكررة عبر الجمجمة التحفيز المغناطيسي (rTMS)، أداة لتحفيز المخ غير الغازية وتعديل العمليات العصبية وقد تم تطبيق، في علاج حالات مختلفة مثل الألم المركزي 1،2، والاكتئاب 3، والصداع النصفي 4، وحتى السكتة الدماغية 5-7. التغير السريع تيار كهربائي من خلال لفائف على رأسه يدفع مجال كهربائي على القشرة المخية وتنشيط الخلايا العصبية الناتجة. استثارة القشرة الدماغية يمكن عن طريق التضمين rTMS، والتي يمكن أن تستمر لأكثر من 30 دقيقة بعد إنهاء التحفيز.

وتشمل الآليات المقترحة لrTMS بعد تأثير طويل الأجل التقوية / مثل الاكتئاب تأثير 8، تحول مؤقت في التوازن الأيوني 9، والتمثيل الغذائي يتغير 10. وبالإضافة إلى ذلك، دي لازارو وآخرون. أقترح أن متقطعة التحفيز المتفجر ثيتا يؤثر على مدخلات متشابك مثير للالهرمية الخلايا العصبية الجهاز، سواء في حفزونصف الكرة الأرضية المقابل 11.

قيود كبيرة، ومع ذلك، فقد أعاقت الباحثين من ترجمة دليل على مقاعد البدلاء لحالات سريرية. أولا، في الدراسات الحيوانية السابقة، وكان يستخدم rTMS لتحفيز كامل الدماغ 12. التحفيز كامل الدماغ يختلف تماما عن البروتوكولات المستخدمة في الدراسات الإنسانية 9. وتتعلق المشكلة الأخرى مع مدة التحفيز. هذا يعزى جزئيا على الأقل إلى حقيقة أن نظام تبريد فعال ومتوفر لفائف صغيرة في الماضي.

في السنوات الأخيرة، وقد تم نشر المواد المنوية اقتراح سبل للتغلب على هذه الصعوبات في التجربة rTMS على الدماغ الحيوانات الصغيرة. من خلال هذه النماذج الحيوانية، تم الكشف عن أن الدماغ الفئران تبين أيضا مماثلة التغييرات استثارة القشرية كما هو الحال في الإنسان ردا على rTMS التردد المنخفض 13. الأهم من ذلك، الآليات الخلوية والجزيئية لrTMS هي باي بشكل متزايدنانوغرام التحقيق باستخدام نماذج حيوانية من rTMS. ومن الأمثلة على ذلك هو أن نوع مميز من عصبون المثبطة هو معروف أن تكون الاكثر حساسية للثيتا متقطعة التحفيز انفجار 14. نماذج القوارض من rTMS، وبالتالي، فرصا جديدة لاستكشاف الأسئلة سعى كثيرا على الأسس الجزيئية للتغيرات rTMS التي يسببها. إذا نماذج حيوانية صغيرة من rTMS يمكن استخدامها في أكثر المختبرات، فإنه قد تعجل إلى حد كبير وتعزيز البحوث في هذا المجال.

وصفنا الآن كيفية تطبيق rTMS إلى نصف الكرة الأرضية من جانب واحد من الدماغ الفئران، امتدادا للعمل السابق 15. تم تقييم التغييرات التي يسببها التحفيز باستخدام التصوير المقطعي الصغيرة بوزيترون الانبعاثات (PET) والمجهرية مرنا لدراسة التغيرات التي يسببها rTMS في قشرة الدماغ حفز.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

واستعرضت كافة الإجراءات باستخدام حيوانات وافقت عليها لجنة رعاية واستخدام الحيوان المؤسسي من مستشفى جامعة سيول الوطنية.

1. إعداد التجريبية

  1. إعداد الحيوان
    1. السماح الذكور سبراغ داولي الفئران 1 أسبوع على التكيف مع بيئتهم الجديدة قبل بدء التجربة.
      ملاحظة: على الرغم من واستخدمت لمدة 8 أسابيع الفئران القديمة في هذه الدراسة، يمكن اختار النامية أو الكبار الدماغ وفقا لفرضيات البحث.
  2. التخدير عن طريق الاستنشاق لتحريض
    1. حمل والحفاظ على التخدير مع 5٪ و 2٪ من الأيزوفلورين حله في 40٪ / 60٪ و 25٪ / 75٪ من الأكسجين / النيتروجين عن طريق الغرفة ومخروط الأنف، على التوالي. ضبط عمق التخدير إلى مستوى إلغاء المنعكس انسحاب دواسة لقرصة أخمص القدمين إلى تأكيد التخدير المناسب.
      ملاحظة: استخدام الحيوانات استيقظت يمكن أن يكون خيارا أفضل من حيث متعدية، ولكن هناك صعوبة في كبح جماح خلال rTMS وريا هم عرضة للإجهاد المفرط.
    2. مراقبة درجة حرارة الجسم مع التحقيق الذي تجريه المستقيم والحفاظ عليه عند 37 درجة مئوية باستخدام بطانية homeothermic. رصد عمق التخدير باستخدام دواسة الانسحاب لا ارادي، ودرجة الحرارة ومعدل التنفس ومعدل ضربات القلب.
  3. التبديل الإفراط في التخدير في الوريد للصيانة
    1. إعداد الذيل مع مسحة الكحول. يقثطر الوريد الذيل الأفقي مع القسطرة الوريدية 24 عيار من أجل الانتقال إلى التخدير الرابع (الشكل 1A). تحميل البروبوفول عن طريق الوريد (1 ملغ / [كغ · دقيقة] أكثر من 10 دقيقة، وذلك باستخدام 10 ملغ / مل مستحلب) للحيوانات. وقف الأيزوفلورين 5 دقائق بعد بدء البروبوفول التحميل.
    2. الحفاظ على البروبوفول التخدير بمعدل ضخ 500-700 ميكروغرام / (كلغ · دقيقة) في كافة مراحل التجربة، كما هو الحال في دراسة سابقة (16). تكملة الأكسجين عند 0.8 لتر / دقيقة عن طريق مخروط الأنف.
      ملاحظة: التخدير مع البروبوفول هو الحد قمع المحتمل لاستثارة القشرية التي inhalوكيل أوجه 17-19. ومع ذلك، والتخدير ليس إلزاميا في التجارب rTMS، ويمكن أيضا أن الحيوانات استيقظت استخدامها. وينبغي أن يتقرر أساليب التخدير في النظر في فرضيات البحث.
    3. استخدام مرهم البيطرية على العينين لمنع جفاف بينما تحت التخدير.
    4. تطبيق التحفيز المغناطيسي (انظر SECTION2) 10 دقيقة بعد الانتقال الكامل إلى التخدير د.
  4. شروط الانتعاش
    1. مراقبة العلامات الحيوية أثناء مرحلة الانتعاش. لا تترك الحيوان غير المراقب حتى استعاد وعيه كافية للحفاظ على الاستلقاء القصية. إذا كان الحيوان قد خضع لعملية جراحية، لا إعادته للشركة من الحيوانات الأخرى حتى تعافى تماما.
      ملاحظة: إذا تم إجراء عملية جراحية لنموذج المرض، وإدارة الألم بعد الجراحة ضرورية. ومع ذلك، ليست هناك حاجة لإدارة الألم لهذه التجربة rTMS.

2. المتكرر عبر الجمجمة التحفيز المغناطيسي

  1. مشجعا واللولب
    1. تطبيق التحفيز باستخدام مشجعا المتكررة من شأنها أن توفر المحفزات ثنائي الطور عبر 25 ملم الرقم 8 لفائف. تحديد موقع مركز لفائف 0.5 سم الوحشي للقمة على الخط بين الأذنين، وangulate لفائف 45 درجة على الأرض.
      ملاحظة: المجال المغناطيسي القوة القصوى لفائف هي 4،0 T. هي التي شنت على لفائف المغناطيسي بقوة على حامل مدمج.
  2. عتبة السيارات
    1. تحديد عتبة السيارات (MT) في البقعة الساخنة، مع مركز لفائف وضع 0.5 سم الوحشي للقمة على الخط بين الأذنين ومع شقة السطح على calvaria. وهذا هو نفس المنهجية المستخدمة في دراسة سابقة 20.
      ملاحظة: تحديد MT كحد ادنى كثافة التحفيز تستحضر 5 أو أكثر اضح تقلصات في forepaw المقابل بنسبة 10 المحفزات متتالية. تحقق ما إذا كان التحفيز هو الذي يسبب تقلص العضلات في المقام الأول المقابل لضمان التحفيز من جانب واحد.
  3. تطبيق rTMS
    1. تطبيق rTMS 10 دقيقة بعد استقرار التخدير العميق. ضع وسط لفائف في موقع rTMS الهدف، يتم اختيارهم من قشرات الدماغ اعتمادا على أسئلة البحث. ثم، إمالة لفائف لضمان الاتصال المباشر بين المركز فائف وسطح الجمجمة عند نقطة التحفيز.
      ملاحظة: على سبيل المثال، angulate لفائف 45 درجة على الأرض للحد من تأثير محتمل مباشر من rTMS على القشرة المقابل (الشكل 1B و1C).
    2. تعرض الحيوانات إلى جلسة 20 دقيقة rTMS من نصف الكرة الأرضية من جانب واحد. باستخدام وحدة تحكم البرمجيات، وتقديم rTMS مع التردد المنخفض (1 هرتز)، عالية التردد (20 هرتز)، أو بروتوكول التحفيز صورية، وتعيين كثافة التحفيز على 100-110٪ من طن متري.
    3. أداء 1 التحفيز هرتز دون راحة. باستخدام برنامج إدخال وحدة التحكم "1200" لقطات ل "20" دقيقة). لمدة 20 التحفيز هرتز، وإجراء 2 ثانية من التحفيز تليها 28ثانية من الراحة. باستخدام برنامج إدخال وحدة التحكم "1600" لقطات ل "20" دقيقة.
    4. لتحفيز مزيف، إمالة لفائف عمودي (90 درجة دوران) إلى calvaria ووضع حافة فائف 2 سم بعيدا عن سطح الرأس (1D الشكل). تحديد صاحب الملف بحزم الجهاز الرئيسي. ليست هناك حاجة لعقد لفائف باليد أثناء التجربة.
      ملاحظة: للتعويض عن الآثار الصوتية وغيرها من المنظمات غير محددة، ينبغي أن تستخدم بروتوكولات خدعة مميزة لبروتوكولات التحفيز متميزة. على سبيل المثال، تحفيز مزيف 1 هرتز يمكن استخدامها ل1 هرتز التجارب rTMS.
  4. تبريد لفائف
    1. استخدام نظام تبريد مائي لتمكين التحفيز المغناطيسي المتكرر لأكثر من 20 دقيقة في 1- و 20 هرتز الترددات التحفيز (الشكل 2). تعميم المياه الجليدية المحيطة طول كل من لفائف خلال التجربة لمنع ارتفاع درجة الحرارة، على الرغم من أن درجة الحرارة لفائف أو مشجعا لا رصدها.
      ملاحظة: يمكن أيضا المتاحة تجاريا لفائف الفئران تبريد استخدامها.
    2. إذا كان ذلك ممكنا، ومراقبة درجة الحرارة لفائف عن طريق عرض قياس تسخين آلة rTMS. ملاحظة: لم تكن هناك آثار سلبية تتعلق التحفيز rTMS. هناك، ومع ذلك، فإن خطر حرق محتمل في حال استخدام بطاقات هوية الأذن المعدنية بالقرب من لفائف محفزة.

3. مايكرو التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني

  1. إعداد الحيوان
    1. إجراء استنشاق التخدير لتحريض والتخدير الرابع للصيانة (راجع الخطوة 1.2.1 و 1.3.1). تطبيق 1-هرتز rTMS إلى حيوان لمدة 10 دقيقة في كثافة التحفيز من 100-110٪ من طن متري.
    2. بعد خمس دقائق الانتهاء من التحفيز rTMS، وضخ 1 زارة التجارة والصناعة لل2- [F-18] الفلورية deoxyglucose (18 FDG) يذوب في 0.5 مل من محلول ملحي في الوريد باستخدام قسطرة الوريد الذيل. سماح 30 دقيقة لمدة 18 FDG امتصاص. ملاحظة: ضع الفئران تحت التخدير خلال كامل الصغرى PEتي التجربة.
  2. تحليل الصور
    1. استخدام الماسح الضوئي PET للتصوير الدماغ لإعادة التأكيد على unilaterality من التحفيز. إعادة بناء الصور مع 3-D خوارزمية تكرارية. لتقييم التغيرات في التمثيل الغذائي الناجمة عن rTMS، وتحديد المناطق ذات الاهتمام (رويس) في صور من أقسام الدماغ عرضية 21.
  3. قتل رحيم
    1. بعد اداء الصغرى PET والتصوير، والموت ببطء الفئران في غرفة مملوءة مسبقا مع ثاني أكسيد الكربون في حين أن الفئران هي في التخدير العميق.

4. مرنا ميكروأري

  1. قتل رحيم
    1. حمل والحفاظ على التخدير مع 5٪ و 2٪ من الأيزوفلورين حله في 40٪ / 60٪ و 25٪ / 75٪ من الأكسجين / النيتروجين عن طريق الغرفة ومخروط الأنف، على التوالي. تخدير عميق إلى مستوى إلغاء المنعكس انسحاب دواسة لقرصة اصبع القدم قبل قطع رأسه.
    2. قطع رأس الفئران للقتل الرحيم 5 دقائق بعد 1 دورة 1 هرتز rTMS.
  2. حصاد الأنسجة
    1. وضع المواد والأدوات الجراحية في ترتيب استخدامها، بما في ذلك المناشف ورقة مطوية، مقراض العظم، microscissors، مقص جراحي أكبر، وmicroforcep، ورقم 10 أو 11 شفرة مشرط، وبغطاء 10 سم طبق بتري زجاجي مملوء الجليد ، وأنابيب 1.5 مل. إعداد كيس من البلاستيك للتخلص من الجثة.
    2. جعل شق خط الوسط الجلد في anterioposteriorly الجمجمة. بصراحة تشريح الأنسجة الرخوة والعضلات المحيطة بها مع مقص جراحي، وإزالة قطعة الجمجمة العظام باستخدام مقراض العظم. تشريح بسرعة الدماغ جديدة بعناية من الجمجمة. ثم، وضع على الجليد باستخدام microforceps وmicroscissors. شطف أنسجة المخ في محلول ملحي بارد كالثلج.
    3. نقل الدماغ على الثلج الجاف على الفور، وبعد ذلك تخزينها في -80 درجة مئوية في أنبوب حتى مزيد من المعالجة.
    4. ذوبان الجليد في أنسجة المخ قبل الحصاد.
    5. وضع الجانب الظهري الدماغ يصل، وحصاد أنسجة المخ من شارعimulated قشرة الدماغ (حوالي بقعة ساخنة في القشرة الحركية الأولية) على الجليد باستخدام microforceps وmicroscissors. وضع الأنسجة التي تحصد في أنبوب 1.5 مل.
  3. إعداد RNA
    1. استخراج الحمض النووي الريبي مجموع من الخليط الأنسجة باستخدام تحلل كاشف 22. عملية الهضم الدناز وإجراءات التنظيف. قياس عينات الحمض النووي الريبي وقسامات وتخزينها في -80 درجة مئوية حتى الاستخدام.
    2. لمراقبة الجودة، وتقييم نقاء RNA وسلامة من تغيير طبيعة هلام الكهربائي، على نسبة OD من 260: 280، وتحليلها على محلل متاحة تجاريا.
  4. وضع العلامات وتنقية
    1. تضخيم وتنقية الحمض النووي الريبي مجموع باستخدام المتاحة تجاريا عدة RNA التضخيم لانتاج كرنا البيروكسيديز. لفترة وجيزة، عكس نسخ 550 نانوغرام من الحمض النووي الريبي مجموع لكدنا] باستخدام التمهيدي T7 بنسبة ضئيلة (DT). تجميع وفي المختبر نسخ [كدنا الثاني حبلا ثم تسميته مع البيوتين NTP.
    2. بعد بورification، تحديد كدنا] باستخدام مقياس الطيف الضوئي.
  5. التهجين وبيانات الصادرات 23
    1. استخدام beadchip التعبير عن تحليل التعبير مرنا. هجن وصفت 750 نانوغرام عينات كدنا] إلى كل فأر-12 التعبير مجموعة حبة ل16-18 ساعة عند 58 درجة مئوية. تنفيذ الكشف عن إشارة مجموعة باستخدام streptavidin-و Cy3.
    2. صفائف تفحص مع ماسح ضوئي متحد البؤر. أداء تجهيز الصادرات مجموعة البيانات وتحليلها باستخدام البرمجيات المتاحة تجاريا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

استخدمت خمسة عشر 8 أسابيع من العمر من الذكور سبراغ داولي الفئران لتحليل موثوقية بين المقيم مستقل من تقرير طن متري. عن طريق ملامسة ارتعاش العضلات، كانت النظام التجاري المتعدد الأطراف التي يمكن الحصول عليها في جميع الفئران وقياس كما 33.00 ± 4.21٪ الانتاج القصوى مشجعا (٪ هيئة علماء المسلمين) و33.93 ± 0.88٪ هيئة علماء المسلمين، على التوالي، من قبل اثنين من الباحثين المستقلين. كان لطيف-التمان التحيز -0.93، وكانت 95٪ من حدود اتفاق -9.13 إلى 7.26٪.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وكان الغرض الرئيسي من هذه الدراسة هو تقديم نموذج حيواني من rTMS من جانب واحد. على الرغم من التحفيز من جانب واحد هو واحد من أهم الخصائص الأساسية للبحث rTMS الإنسان، لم تعتمد العديد من الدراسات في الحيوانات الصغيرة. ومع ذلك، روتنبرغ وآخرون. 15 سجلت البرلمان الأوروبي المقابل مع التحفيز من 100٪ MT باستخدام لفائف الرقم 8 مع قطر الفص الخارجي من 20 ملم، في حين أن التحفيز مع 112.5٪ و 133.3٪ MT إنتاج المماثل وكذلك أعضاء البرلمان الأوروبي المقابل. قد يكون هذا بسبب ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من خلال منحة مؤسسة البحوث الكورية الممولة من الحكومة الكورية (KRF-2008-313-E00458). يشكر المؤلفون Jin-Joo Lee على المساعدة الفنية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
بطانية حرارية منزلية مع مسبار المستقيمجهاز هارفارد507222F
Isoflurane (Forane sol.)Choongwae
Propofol (Provive Inj. 1٪ 20 مل)متكرر من Claris Lifesciences
(Magstim Rapid 2< / sup>) شركةMagstim المحدودة
25 مم لفائف 8 لفائفMagstim Company Ltd1165-00
PET-CTGE كاشف
QIAzolQiagen(براءة اختراع أمريكية رقم 5،346،994)
مجموعة RNeasy Lipid Tissue MiniQiagen74804
RNeasy Mini Spin ColumnsQiagen(حصيرة رقم 1011708) Agilent
2100 BioanalyzerAgilent Technologies
Ambion Illumina طقم تضخيم الحمض النووي الريبيAmbion
NanodropNanoDropND-1000
Illumina RatRef-12 Expression BeadChipIllumina، Inc.
أميرشام فلورولينك ستربتافيدين-Cy3GE للرعاية الصحية للعلوم
محفز مغناطيسي تحلل الرعاية الصحية Kit الحيوية

المراجع

  1. Lefaucheur, J. P., et al. Neurogenic pain relief by repetitive transcranial magnetic cortical stimulation depends on the origin and the site of pain. J Neurol Neurosurg Psychiatry. 75 (4), 612-616 (2004).
  2. Hirayama, A., et al. Reduction of intractable deafferentation pain by navigation-guided repetitive transcranial magnetic stimulation of the primary motor cortex. Pain. 122 (1-2), 22-27 (2006).
  3. O'Reardon, J. P., et al. Efficacy and safety of transcranial magnetic stimulation in the acute treatment of major depression: a multisite randomized controlled trial. Biol Psychiatry. 62 (11), 1208-1216 (2007).
  4. Brighina, F., et al. Facilitatory effects of 1 Hz rTMS in motor cortex of patients affected by migraine with aura. Exp Brain Res. 161 (1), 34-38 (2005).
  5. Lefaucheur, J. P. Stroke recovery can be enhanced by using repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS). Neurophysiol Clin. 36 (3), 105-115 (2006).
  6. Khedr, E. M., Ahmed, M. A., Fathy, N., Rothwell, J. C. Therapeutic trial of repetitive transcranial magnetic stimulation after acute ischemic stroke. Neurology. 65 (3), 466-468 (2005).
  7. Fregni, F., et al. A sham-controlled trial of a 5-day course of repetitive transcranial magnetic stimulation of the unaffected hemisphere in stroke patients. Stroke. 37 (8), 2115-2122 (2006).
  8. Pascual-Leone, A., Valls-Sole, J., Wassermann, E. M., Hallett, M. Responses to rapid-rate transcranial magnetic stimulation of the human motor cortex. Brain. 117 (4), 847-858 (1994).
  9. Ridding, M. C., Rothwell, J. C. Is there a future for therapeutic use of transcranial magnetic stimulation). Nat Rev Neurosci. 8 (7), 559-567 (2007).
  10. Valero-Cabre, A., Payne, B. R., Pascual-Leone, A. Opposite impact on 14C-2-deoxyglucose brain metabolism following patterns of high and low frequency repetitive transcranial magnetic stimulation in the posterior parietal cortex. Exp Brain Res. 176 (4), 603-615 (2007).
  11. Di Lazzaro, V., et al. The physiological basis of the effects of intermittent theta burst stimulation of the human motor cortex. J Physiol. 586 (16), 3871-3879 (2008).
  12. Post, A., Keck, M. E. Transcranial magnetic stimulation as a therapeutic tool in psychiatry: what do we know about the neurobiological mechanisms. J Psychiatr Res. 35 (4), 193-215 (2001).
  13. Muller, P. A., Dhamne, S. C., Vahabzadeh-Hagh, A. M., Pascual-Leone, A., Jensen, F. E., Rotenberg, A. Suppression of motor cortical excitability in anesthetized rats by low frequency repetitive transcranial magnetic stimulation. PLoS One. 9 (3), 91065(2014).
  14. Funke, K., Benali, A. Modulation of cortical inhibition by rTMS - findings obtained from animal models. J Physiol. 589 (18), 4423-4435 (2011).
  15. Rotenberg, A., et al. Lateralization of forelimb motor evoked potentials by transcranial magnetic stimulation in rats. Clin Neurophysiol. 121 (1), 104-108 (2010).
  16. Beom, J., Kim, W., Han, T. R., Seo, K. S., Oh, B. M. Concurrent use of granulocyte-colony stimulating factor with repetitive transcranial magnetic stimulation did not enhance recovery of function in the early subacute stroke in rats. Neurol Sci. 36 (5), 771-777 (2015).
  17. Haghighi, S. S., Green, K. D., Oro, J. J., Drake, R. K., Kracke, G. R. Depressive effect of isoflurane anesthesia on motor evoked potentials. Neurosurgery. 26, 993-997 (1990).
  18. Fishback, A. S., Shields, C. B., Linden, R. D., Zhang, Y. P., Burke, D. The effects of propofol on rat transcranial magnetic motor evoked potentials. Neurosurgery. 37 (5), 969-974 (1995).
  19. Rohde, V., Krombach, G. A., Baumert, J. H., Kreitschmann-Andermahr, I., Weinzierl, M., Gilsbach, J. M. Measurement of motor evoked potentials following repetitive magnetic motor cortex stimulation during isoflurane or propofol anaesthesia. Br J Anaesth. 91 (4), 487-492 (2003).
  20. Lee, S. A., Oh, B. M., Kim, S. J., Paik, N. J. The molecular evidence of neural plasticity induced by cerebellar repetitive transcranial magnetic stimulation in the rat brain: a preliminary report. Neurosci Lett. 575, 47-52 (2014).
  21. Fu, Y. K., et al. Imaging of regional metabolic activity by (18)F-FDG/PET in rats with transient cerebral ischemia. Appl Radiat Isot. 67 (18), 1743-1747 (2009).
  22. Silveyra, P., Catalano, P. N., Lux-Lantos, V., Libertun, C. Impact of proestrous milieu on expression of orexin receptors and prepro-orexin in rat hypothalamus and hypophysis: actions of Cetrorelix and Nembutal. Am J Physiol Endocrinol Metab. 292 (3), 820-828 (2007).
  23. Zidek, N., Hellmann, J., Kramer, P. J., Hewitt, P. G. Acute hepatotoxicity: a predictive model based on focused illumina microarrays. Toxicol Sci. 99 (1), 289-302 (2007).
  24. Hsieh, T. H., Dhamne, S. C., Chen, J. J., Pascual-Leone, A., Jensen, F. E., Rotenberg, A. A new measure of cortical inhibition by mechanomyography and paired-pulse transcranial magnetic stimulation in unanesthetized rats. J Neurophysiol. 107 (3), 966-972 (2012).
  25. Salvador, R., Miranda, P. C. Transcranial magnetic stimulation of small animals: a modeling study of the influence of coil geometry, size and orientation. Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2009, 674-677 (2009).
  26. Parthoens, J., Verhaeghe, J., Servaes, S., Miranda, A., Stroobants, S., Staelens, S. Performance Characterization of an Actively Cooled Repetitive Transcranial Magnetic Stimulation Coil for the Rat. Neuromodulation. , (2016).
  27. Toro, R., et al. Brain size and folding of the human cerebral cortex. Cereb Cortex. 18 (10), 2352-2357 (2008).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

التحفيز المغناطيسي المتكرر عبر الجمجمة أحادي الجانبتحفيز دماغ الجرذملف بشكل رقم 8نظام تبريد مائيتحديد العتبة الحركيةالجينات المبكرة الفوريةتعبير عامل النمو العصبي المشتق من الدماغ (BDNF)استقلاب الجلوكوزالاختلافات بين نصفي الكرة المخية
بالتكرار عبر الجمجمة التحفيز المغناطيسي إلى جانب واحد نصف الكرة الأرضية من الدماغ الجرذ
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.