هنا ، نقدم بروتوكولا لإدارة غاز التخدير بشكل أكثر أمانا وكفاءة للفئران باستخدام نظام تخدير رقمي منخفض التدفق باستخدام مبخر حقن مباشر يعمل بالحقنة.
مقالة منهجية
استخدام نظام التخدير الرقمية منخفضة لتدفق الفئران والجرذان
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
يعتمد المرذاذ التقليدي على الغاز المتدفق والضغط الجوي لتبخير التخدير السلبي. تستخدم مبخرات الحقن المباشر المطورة حديثا مضخة حقنة لإدارة التخدير المتطاير مباشرة في تيار الغاز. على عكس المرذاذ التقليدي ، يمكن استخدامه بمعدلات تدفق منخفضة جدا ، مما يجعله مثاليا للاستخدام على الفئران والجرذان.
يمكن أن تؤدي قدرة المعدات على استخدام معدلات تدفق منخفضة إلى توفير كبير في التكاليف بسبب انخفاض الحاجة إلى عوامل التخدير والغاز المضغوط وفلاتر كسح الفحم1. يعني معدل التدفق المنخفض إهدارا أقل لغاز التخدير ومن المحتمل أن يقلل من خطر التعرض للتخدير لموظفي المختبر. وبالتالي ، فإن المستويات العالية من الدقة والسلامة المرتبطة بمبخرات الحقن المباشر ، إلى جانب انخفاض الحاجة إلى عوامل التخدير والغازات المضغوطة وفلاتر الفحم مفيدة للأبحاث التي تتطلب تخديرا للحيوانات الصغيرة.
الهدف من هذا البروتوكول هو إثبات استخدام مبخر الحقن المباشر الذي يعمل بالحقنة كجزء من نظام تخدير رقمي منخفض التدفق. مبخر الحقن المباشر قادر على توصيل التخدير بدقة بمعدلات تدفق منخفضة جدا مقارنة بالمرذاذ التقليدي ، مما يجعله بديلا واعدا لتوصيل الغاز المخدر المتحكم فيه إلى القوارض.
المقدمة
هناك العديد من المبخر الدقة المتاحة للاستخدام البيطري التي تعمل بين معدلات تدفق 0.5-10 لتر / دقيقة 2. هذه معدلات التدفق ليست مثالية للقوارض، ومجموعة مرتفع مقارنة مع حجم دقيقة التنفسي صغر. لا ينصح معدلات تدفق عالية في ممارسة الطب البيطري بسبب ترقيتهم من انخفاض حرارة الجسم وجفاف 3،4 الجهاز التنفسي. وعلاوة على ذلك، فإن العديد من الكتيبات البيطرية المصنعة المرذاذ المشتركة يحذرون من أن معدلات تدفق عالية قد يسبب زيادة في حدوث تقلبات احداهما. وقد تبين أيضا أن العديد من المبخر القياسية تصبح غير دقيقة أقل من معدلات التدفق من 500 مل / دقيقة، ويعتبر هذا المعدل على أنه معدل تدفق الحد الأدنى في مجال الطب البيطري 5-7.
يمكن الحفاظ على حيوان على حلبة T-قطعة أو تعديل الدوائر باين باستخدام معدل تدفق منخفضة تصل إلى حجم 1،5-2،2 مرات الحيوان دقيقة 8-10. وتعتبر هذه معدلات تدفق sufficienر لمنع إعادة التنفس من الغازات منتهية الصلاحية ومنع زيادة تركيز ثاني أكسيد الكربون في الدم 8. باستخدام هذه التوصية معدل التدفق، ويمكن الحفاظ على الماوس 30 ز بمعدل تدفق منخفضة تصل إلى 52 مل / دقيقة، ما يقرب من عشر مرات أقل من المقبول 500 مل / دقيقة الحد الأدنى من المرذاذ التقليدي.
في حين المرذاذ التقليدي يعتمد على تدفق الغاز وضغط الغلاف الجوي للتبخير مخدر السلبي، المرذاذ الحقن المباشر يقيس اجمالي تدفق الغاز الطازجة ويحقن البخار مباشرة في مجرى الغاز 2. بعض التبخير الحقن المباشر الاستفادة من ضخ حقنة لإدارة مخدر في مجرى الغاز. الضوابط المحوسبة تسمح هذه الأنظمة لضبط سرعة ضخ حقنة تلقائيا لحقن حجم العامل السائل المطلوبة للوصول إلى التركيز المطلوب من التخدير. هي حقنة مدفوعة المبخر المتاحة والمعتمدة للاستخدام السريري والأطفال، وتعتبر العديد من تكوينات مماثلة لجمالي أجهزة المحافظة في الممارسة السريرية 11-16. بعد وقت قصير من موافقتهم، تم تكييف أجهزة يحافظ على مخدر مع المبخر ضخ حقنة للاستخدام في الدراسات الحيوانية 8،17،18. على عكس المرذاذ التقليدي، ونظام الحقن المباشر باستخدام مضخة الحقنة لا يقتصر بمعدل تدفق الحد الأدنى من أجل الحفاظ على دقة. لهذا السبب، وهذه التكنولوجيا هي مثالية للاستخدام في التخدير القوارض وغيرها من الحالات ضرورية معدلات تدفق منخفضة. فوائد وتحقيق وفورات في التكاليف المحتملة المرتبطة مع هذا التصميم المرذاذ ألهمت تطوير نظم التخدير جديدة مصممة خصيصا للقوارض 1،19،20. يتضمن هذا النظام الجديد أيضا المدمج في مضخة الهواء، مما يتيح للمستخدم لإدارة التخدير دون الحاجة إلى مصدر للغاز مضغوط. وكفائدة إضافية، هذا النظام هو للاستخدام مع كل من الأيزوفلورين وسيفوفلوران معايرة مسبقا. مع إدخال هذه التكنولوجيا المرذاذ في مجال الحيوانات المختبرية، طر من الممكن الآن لتخدير الحيوانات المختبرية صغيرة في معدلات تدفق أقرب إلى المستويات الموصى بها من دون الحاجة إلى الغاز المضغوط.
البروتوكول
تم الانتهاء من جميع الدراسات وفقا للمبادئ التوجيهية التنظيمية والمؤسسية. تم تقييم جوانب الحيوان من هذه الدراسة من قبل برنامج استخدام الحيوان مؤسسة العلمي كينت، التي وافقت عليها لجنة رعاية واستخدام بوردو الحيوان (PACUC)، وتنفيذ وفقا لدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية 22.
ملاحظة: تم تجهيز نظام التخدير الرقمية منخفضة التدفق المستخدمة في هذا البروتوكول مع نبض مقياس التأكسج متكامل.
1. إعداد نظام التخدير منخفض التدفق مع نبض مقياس التأكسج المتكاملة
- لتسليم الأيزوفلورين
- تحديد مصدر الغاز الناقل. لاستخدام مضخة الهواء الداخلي، فك مدخل الميناء على ظهره، والسماح للمضخة داخلية لهواء الغرفة المدخول.
- ربط الفحم اسطوانة لاستنفاد الميناء.
- قم بتوصيل محول Y إلى أمام التدفق المنخفض، ونظام التخدير الرقمي. استخدام لقطات مرمزة لربط فروع البيضاء إلى tانه مخروط الأنف، وفروع الزرقاء إلى غرفة الاستقراء.
- وثيقة المشابك كليب الأبيض والأزرق المفتوح كليب المشابك لتوجيه تدفق الهواء إلى غرفة.
- اختيار ما بين 2 مل حقنة.
- لرصد الفسيولوجي، باستخدام نبض مقياس التأكسج المتكاملة
- توصيل نبض مقياس التأكسج مخلب استشعار لمنفذ على الجزء الخلفي من نظام التخدير منخفضة التدفق، وصفت "AUX".
2. تكوين إعدادات
- لالتخدير
- الطاقة على النظام التخدير، والوصول إلى القائمة إعداد. الصحافة اقامة للوصول إلى القائمة> التخدير> إعداد الرئيسية باللون الأحمر.
- اختيار وكيل مخدر. الصحافة تعيين ما يصل إلى تسليط الضوء على نوع Anest باللون الأحمر. استخدام أعلى وللأسفل لتحديد الأيزوفلورين.
- تعيين حجم الحقنة. الصحافة التي أنشئت لتسليط الضوء على سير الحجم. استخدام أعلى وللأسفل لتحديد حقنة 2 مل.
- تعيين الوظيفة الخالي. الصحافة تعيين ما يصل إلى ساعةتعيين ighlight فارغ باللون الأحمر. تأمين فارغة، حقنة زجاجية الاكتئاب تماما في الحقنة الاحتفاظ بلوك عن طريق وضع الحقنة بحيث يجلس القابضة المشبك الحقنة على ذوي الياقات البيضاء المعادن من الحقنة. اضغط على أعلى أو لأسفل الأسهم للتحرك كتلة مروج المخدرات بحيث كتلة مروج المخدرات يجعل ضوء الاتصال مع الجزء العلوي من المكبس حقنة. اضغط اختيار لتحديد موقف فارغ.
- الصحافة التي أنشئت لتسليط الضوء على إزالة باللون الأحمر. إزالة حقنة وملء الحقنة مع isoflurane باستخدام محول زجاجة أعلى.
- ربط الحقنة لنظام التخدير.
- رئيس أنابيب تسليم مخدر. الصحافة التي أنشئت لتسليط الضوء برايم أنبوب باللون الأحمر. اضغط لأسفل حتى مخدر ينتقل عن طريق حقنة وفي تركيب سوداء على كتلة المرذاذ.
- تمكين التخدير. الصحافة التي أنشئت لتسليط الضوء على تمكين باللون الأحمر. استخدام أعلى وللأسفل لتحديد نعم. الصحافة تشغيل / السابق للعودة إلى القائمة الرئيسية.
- حدد لالعرض الأشعة تحت الحمراء وحجم دقيقة. الصحافة تعيين ما يصل إلى تسليط الضوء على توريد الهواء باللون الأحمر. استخدام أعلى وللأسفل لتحديد مضخة الداخلية. الصحافة التي أنشئت لتسليط الضوء على المجلد دقيقة باللون الأحمر. تعيين معدل التدفق الى 250 مل / دقيقة.
- لرصد الفسيولوجي
- تعيين الحد الأدنى الكشف عن معدل ضربات القلب إلى ماوس (240). الصحافة إعداد للوصول إلى القائمة الرئيسية> MouseStat. استخدم الأسهم صعودا وهبوطا لتحديد الحد الأدنى للمعدل ضربات القلب.
3. تبدأ تسليم تخدير
- حمل ماوس
- الصحافة تشغيل / عودة مرتين للدخول في وضع تشغيل وبدء تدفق الهواء.
- ضع الماوس في غرفة تحريض، وإغلاق الغطاء بإحكام. ضبط تركيز مقبض الباب وكيل مخدر إلى 3٪.
- مراقبة حتى وصلت الماوس الطائرة المطلوب من التخدير، والتي تحددها فقدان المنعكس التقويمي. ضبط تركيز وكيل مخدر عند الضرورة.
- مرة واحدة يفقد الحيوان في المقوم لا ارادي لالثاني هو تخدير بما فيه الكفاية، وتحويل تركيز الطلب التخدير إلى 0٪. وقد وجد واضعو سبق أن السماح للتدفق الهواء لطرد غرفة تحريض 30-60 ثانية كافية لتطهير الغرفة دون عكس عمق مخدر 1.
- فتح بسرعة المشابك البيضاء لتوجيه الهواء إلى قناع، وإغلاق المشابك الزرقاء المؤدية إلى غرفة الاستقراء.
- فتح الغرفة بعيدا عن الباحث، وإزالة الماوس، وتناسب على الفور مخروط الأنف.
- تركز الحيوان على وسادة الاحترار الأشعة تحت الحمراء، مستعدة للحفاظ على درجة حرارة الجسم عند 37 درجة مئوية خلال التحقيق المستقيم في حلقة مفرغة.
- عند الفأر هو مستقر على مخروط الأنف، وضبط تركيز الأيزوفلورين إلى 1.5٪ أو حسب الحاجة لأعمال الصيانة من خلال تحويل التركيز مقبض الباب وكيل مخدر.
- تقليل حجم دقيقة للصيانة. معدل تدفق الحد الأدنى لدعم الحيوان يساوي 1،5-2،2 مرات حجم دقيقة الحيوان (لمدة 30 ز الماوس،ما لا يقل عن 52 مل / دقيقة). الرجوع إلى تعليمات الشركة المصنعة لمعدل تدفق أوصى بوضع محددة لنمط مخروط الأنف وتعديل حسب الضرورة. الصحافة اقامة للوصول إلى القائمة الرئيسية، ثم اضغط على تعيين حتى يتم تمييز المجلد الدقائق باللون الأحمر. استخدام أعلى وللأسفل لضبط تدفق الهدف. الصحافة تشغيل / السابق للعودة إلى الشاشة الرئيسية.
- تأكيد عمق التخدير على النحو الذي يحدده عدم وجود رد فعل الانسحاب خلال قرصة بين الأصابع. تطبيق مرهم للعين للعيون لمنع جفاف أثناء التخدير.
4. بدء مراقبة الفسيولوجي
- وضع جهاز استشعار على وسادة من مخلب هند. ضع استشعار بحيث الضوء الأحمر هو تحت مخلب وينير مخلب. استخدم الأسهم صعودا وهبوطا على الشاشة لعرض oxiwave. والآن تخدير الحيوان بشكل آمن باستخدام التدفق المنخفض، يحركها حقنة، المرذاذ الرقمية.
5. إزالة الحيوان
- أطفأ التسليم التخدير.
- لوقف تسليم مخدر، وتحويل وكيل مخدر تركيز مقبض الباب لمين (أو 0٪) وإزالة الحيوان من قناع.
- مراقبة الماوس أثناء الانتعاش التخدير. مرة واحدة على الماوس أصبح المتنقلة تماما، إعادته إلى القفص.
النتائج
الحيوانات
تم تخدير وصيانتها مع 1،3-1،5٪ الأيزوفلورين في حين تم رصد معدل ضربات القلب، وتشبع الأكسجين، ومعدل التنفس، 3 الكبار C57 / BL6NTac إناث الفئران (وزن 15 + 1 غرام تاكونيك، سن 6-7 أسابيع). وكانت جميع الفئران الفئران خالية من مسببات الأمراض على النحو الذي يحدده اختبار بائع الروتيني قبل وصوله إلى المرفق. كانت هذه الحيوانات في حبس microisolation وقدمت حرية الوصول إلى طعام القوارض القياسية والمياه زجاجة يضم مجموعة.
استخدام الأيزوفلورين
نظام التخدير انخفاض تدفق يقيس كمية من مخدر وكيل المتبقية في حقنة أثناء الاستخدام. ، كما تم قياسها من قبل النظام التخدير، لوحظ حجم في المحقنة كما تم نقل الحيوان إلى مخروط الأنف، ومرة أخرى في نهاية فترة الصيانة. الحجم النهائي ثكما تطرح من حجم الأولي لقياس كمية من مخدر المستهلكة خلال فترة الصيانة (الشكل 1).
معلمات الفسيولوجية
تم رصد معدل ضربات القلب، مكتب التخطيط الاستراتيجي 2، ومعدل التنفس أثناء الصيانة عبر نبض قياس التأكسج (الشكلان 2-4). كان الحفاظ على درجة حرارة الجسم 37.5 درجة مئوية عن طريق وحة ظاهرة الاحتباس الأشعة تحت الحمراء. واستمر كل فأر بنجاح في معدلات تدفق منخفضة من 100 مل / دقيقة من هواء الغرفة تحت الطائرة من التخدير الجراحي لمدة 60 دقيقة، على النحو الذي يحدده عدم وجود رد فعل الانسحاب من قرصة بين الأصابع. لم الماوس لا مستيقظا أو الرد على القرصات بين الأصابع تطبيقها بشكل متقطع خلال فترة الصيانة. وظلت معدلات القلب للحيوانات (الشكل 2)، الأكسجين في الدم (الشكل 3)، ومعدل التنفس (الشكل 4) تعصب مستقرة ively طوال فترة الدراسة. بسبب الحيوانية وجهاز استشعار لتحديد المواقع، وكانت إشارة معدل التنفس من الفأرة (1) والفأر 3 متقطعة وانقطع القياس. عندما تم تعديل وضع الحيوان، تحسن الإشارة وكان معدل التنفس يقاس مقارنة مع الآخرين في نقاط زمنية مماثلة. استخدام نظام التخدير الرقمية منخفضة التدفق في المتوسط 0.63 مل من الأيزوفلورين خلال دقيقة 60 من فترة الصيانة (الشكل 1).
الشكل 1:.. الاستخدام الأيزوفلورين كمية الأيزوفلورين المستخدمة في مل لمدة ثلاثة الفئران مختلفة أكثر من 1 ساعة من الصيانة التخدير باستخدام نظام التخدير منخفضة التدفق الرقمي الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
س: المحافظة على together.within الصفحات = "1"> 
الشكل 2:.. معدل ضربات القلب ومعدل ضربات القلب من ثلاثة الفئران في نبضة في الدقيقة (بي بي إم) 5-60 دقيقة بعد الاستقراء مخدر الأولي مع نظام التخدير منخفضة التدفق الرقمي الرجاء النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
الشكل (3):.. تشبع الأكسجين مستويات الأكسجين في الدم التشبع (٪) من ثلاثة الفئران 5-60 دقيقة بعد الاستقراء مخدر الأولي مع نظام التخدير منخفضة التدفق الرقمي الرجاء انقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
ه = "1"> 
الرقم 4: التنفس Rate هي معدل التنفس من ثلاثة الفئران في نفسا في الدقيقة (بي بي إم) 5-60 دقيقة بعد الاستقراء مخدر الأولي مع نظام التخدير منخفضة التدفق الرقمي الرجاء النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.
المناقشة
نظام التخدير منخفضة التدفق الرقمي يسمح للمستخدم لتخدير فعال الفئران في معدلات تدفق منخفضة للغاية من دون استخدام أي غاز مضغوط. هذا يختلف كثيرا عن المبخر السلبي القياسية، ومعظمها يحتاج إلى مصدر الغاز المضغوط في معدلات تدفق الحد الأدنى من حوالي 500 مل / دقيقة. المبخر القياسية تستخدم الأوجه التي تفتقر إلى الدقة بين التدرج، وأنها يجب أن تكون خدمتها سنويا للحفاظ على دقة. ويمكن لحقنة يحركها نظام مخدر توفر تركيز معين من مخدر بمعدل تدفق مجموعة لحساب سرعة اللازمة بالضبط من ضخ حقنة. المعايرة الروتينية ليست ضرورية، مما أدى إلى وفورات إضافية التكلفة والوقت.
معدل تدفق الحد الأدنى الموصى به للحفاظ على حيوان على حلبة عدم إعادة التنفس، هو 1،5-2،2 مرات حجم دقيقة الحيوان. تجاوز معدل التدفق من 100 مل / دقيقة المستخدمة في هذه الدراسة هذا الحد الأدنى لتقديم مخدر يكفي لهذه الحيوانات. وsettin معدل التدفقع بالغة الأهمية بالنسبة لهذه التقنية تسليم التخدير، كما يرتبط معدل التدفق مباشرة لكمية من الأيزوفلورين استخدامها لفترة زمنية معينة. عندما تستخدم في معدلات تدفق منخفضة، ويمكن لهذا الأسلوب يقلل كثيرا من كمية الأيزوفلورين المطلوبة أثناء الاستخدام، في حين لا يزال تخدير الحيوان بشكل فعال 1،19-21.
تكاليف المعدات الجديدة بين التبخير التقليدية وانخفاض تدفق المبخر الرقمية قابلة للمقارنة. ومع ذلك، فإن نظام التخدير منخفضة التدفق الرقمي لديه القدرة على تقديم أي الأيزوفلورين أو سيفوفلوران. هذا يلغي الحاجة إلى الأيزوفلورين المعينة والمبخر الدقة سيفوفلوران، وخفض تكاليف المعدات الأولية للمجموعات باستخدام كل من وكلاء مخدر. وقد اقترح المقارنات التي نشرت مؤخرا بين التقنيات المرذاذ وفورات في التكاليف مع مرور الوقت عند استخدام منخفضة التدفق المرذاذ الرقمية 1،19،20. نتائج هذه المقارنات يمكن أن تستخدم لتقريب وفورات في التكاليف المحتملة على مدار السنة. مثلsuming إعدادات الاستخدام النموذجي أجريت في 2 زيادات ساعة، 5 أيام في الأسبوع لمدة 52 أسبوعا، فإن الأيزوفلورين المرذاذ التقليدية تستهلك 3.8 لتر من الأيزوفلورين، أو اثني عشر 250 مل الزجاجات. ومن شأن المرذاذ الرقمية منخفضة التدفق المستخدمة في نفس التردد تستهلك فقط 0.32 L، أو اثنين 250 مل الزجاجات. كما خفضت استهلاك الفحم العلبة. على افتراض أن كل اسطوانة تحمل 50 غرام من غاز النفايات بكسح، سوف المرذاذ التقليدي ملء ما يقرب من 21 اسطوانات الفحم على مدار السنة. وبالمقارنة، فإن انخفاض تدفق المرذاذ الرقمية تتطلب 6 أو أقل. ومن شأن المرذاذ التقليدية تتطلب ما يقرب من 5 اسطوانات غاز كبيرة سنويا، تبلغ سعة كل من 9500 لام مضخة الهواء الداخلية، المتوفرة في بعض نماذج من المبخر منخفضة التدفق الرقمية، ويزيل الحاجة إلى الغاز المضغوط. إذا كان الغاز المضغوط لاستخدامها، فإن النظام استخدام اسطوانة 1 فقط في السنة 1.
هذه التقنية يمكن تعديلها على أساس الحاجة. انخفاض تدفق vaporiz الرقميةالمتطلبات البيئية تسمح للمستخدم لضبط عمق مخدر بسرعة وبدقة. إذا يجب زيادة عمق مخدر أو انخفض، يمكن للمستخدم أن تزيد من تركيز مخدر في 0.1٪ زيادات باستخدام الاتصال الهاتفي على رأس النظام. ويمكن أيضا أن يتم ضبط معدل تدفق حسب الحاجة في جميع أنحاء الداخلي. هذا البروتوكول يستخدم حقنة 2 مل، على الرغم من أحجام حقنة أكبر متاحة للإجراءات أطول. مضخة الهواء الداخلية تقدم للمستخدمين الخيار لتخدير الحيوانات دون الحاجة إلى مصدر للغاز مضغوط. للحصول على إجراءات تتطلب غاز مضغوط أو بالأكسجين والمستخدم لديه خيار لربط مصدر الغاز إلى نظام التدفق المنخفض بدلا من استخدام الهواء المحيط. يمكن للمستخدم مواصلة تقديم مصدر الهواء مختارة في جميع أنحاء الداخلي، أو يمكن التبديل بين المضخة الداخلية ومصدر الغاز المضغوط حسب الحاجة. على سبيل المثال، يمكن للمستخدم تحديد نظام لتقديم هواء الغرفة عن طريق مضخة الداخلية خلال الاستقراء والصيانة، ولكن تقديم أوكسي التكميليجنرال خلال الانتعاش.
على الرغم من أن هناك العديد من المزايا لاستخدام المرذاذ الرقمية منخفضة التدفق، وهناك قيود كذلك. لأنه لم يتم تضمين صمام تدفق، تدفق الغرفة مع الهواء النقي يدويا قبل الافتتاح هو السبيل الوحيد لتطهير غرفة الاستقراء. تم تصميم هذا النظام للعمل في معدلات تدفق منخفضة فقط ولا يتم تسليم التخدير فوق معدلات تدفق 800 مل / دقيقة، حيث التبخير التقليدية يمكن استخدامها مع معدلات تدفق تصل إلى 10 لتر / دقيقة. ولهذا نظام معين لا يصلح إلا لأنواع الحيوانات الصغيرة. بالإضافة إلى ذلك، فإن النظام يحمل أقل عامل مخدر مقارنة مع المرذاذ التقليدي. قد تكون هناك حالات حيث يجب ملء الحقنة أثناء إجراء. ومع ذلك، والتأخير خلال إعادة تعبئة يمكن الحد من قبل ملء حقنة الثانية في مكان قريب لتحل محل حقنة فارغة. تتوفر لتقليل الحاجة إلى إعادة ملء المحاقن منتصف إجراء أحجام حقنة تصل إلى 10 مل. وأخيرا، على عكس المرذاذ التقليدية، والمنخفض فلوريدايتطلب المرذاذ الرقمية آه الكهرباء. تتوفر للاستخدام في حالات البطاريات حيث الطاقة الكهربائية غير متوفرة أو في حالة انقطاع التيار الكهربائي.
وقد أظهرت دراسات سابقة أن الأنظمة الرقمية منخفضة التدفق تستهلك أقل الأيزوفلورين والغاز الناقل، وقنابل الفحم مقارنة مع نظام التخدير التقليدية 1،19،20. انخفاض غاز مخدر بكسح أيضا يمكن تحديد الحد من غاز مخدر النفايات، على الرغم من حاجة لمزيد من العمل في هذه المجالات. الأشعة تحت الحمراء الطيفي الغاز يمكن استخدامها لمراقبة إنتاج الأيزوفلورين النفايات، وشارات الجرعات يمكن استخدامها لقياس التعرض الأيزوفلورين إلى العاملين في المختبرات في المقارنات في المستقبل.
وباختصار، فإن هذه التقنية للتسليم مخدر تكون مفيدة لمجموعة أداء القوارض التخدير نتيجة لتحسين سلامة وفعالية، ودقة أكثر من النظم التقليدية.
الإفصاحات
وقد أيد هذا المشروع بالمعدات والتمويل من قبل شركة كينت العلمي، وجمعية القلب الأميركية إلى CJ Goergen (SDG18220010)، وجامعة بوردو. الكتاب كريستا Bigiarelli وايرينا Toore والعاملين في شركة العلم كينت التي تنتج المعدات المستخدمة في هذه المقالة. برعاية المنشور الوصول المفتوح من هذه المادة من قبل شركة كينت العلمي.
شكر وتقدير
المؤلفون ليس لديهم أي اعترافات.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| معدات التخدير< / em> | |||
| SomnoSuite نظام التخدير الرقمي منخفض التدفق | Kent Scientific Corporation | SOMNO | محول علوي مضاد للانسكاب ومضاد للبخار. أنابيب محول Y. مرشح كسح الفحم |
| الماوسمقياس التأكسج النبضي STAT & جهاز مراقبة معدل ضربات القلب | Kent Scientific Corporation | SS-MSTAT-Module | مدمج في SomnoSuite |
| MouseSTAT Mouse Paw Sensor Kent | Scientific Corporation | MSTAT-MSE | |
| 2 مل حقنة زجاجية | Kent Scientific Corporation | SOMNO-2ML | |
| غرفة تحريض منخفضة التكلفة ، 0.5 لتر | Kent Scientific Corporation | SOMNO-0705 | |
| قناع وجه منخفض المستوى ، X-Small | Kent Scientific Corporation | SOMNO-0304 | |
| Animal Warmming< / em> | |||
| PhysioSuite نظام المراقبة الفسيولوجية مع RightTemp Homeheatmic Warming | Kent Scientific Corporation | PS-RT | يتضمن وسادة الاحترار بالأشعة تحت الحمراء ، ومسبار المستقيم ، ومسبار درجة حرارة الوسادة |
| عوامل التخدير والأدوية < / em> | |||
| إيزوفلوران (زجاجة 250 مل) | بيرامال للرعاية الصحية | ||
| بورالوب مرهم بصري | بيريغو |
المراجع
- Damen, F. W., Adelsperger, A. R., Wilson, K. E., Goergen, C. J. Comparison of traditional and integrated digital anesthetic vaporizers. JAALAS. 54 (6), 756-762 (2015).
- Chakravarti, S., Basu, S. Modern Anaesthesia Vapourisers. Indian J Anaesth. 57 (5), 464-471 (2013).
- Carroll, G. Small Animal Anesthesia and Analgesia. , Blackwell Publishing. Ames, IO. (2008).
- Lumb and Jones' veterinary anesthesia and analgesia. Tranquilli, W. J., Thurmon, J. C., Grimm, K. A. , John Wiley & Sons. Hoboken, NJ. 23-86 (2013).
- Ambrisko, T. D., Klide, A. M. Evaluation of isoflurane and Sevoflurane vaporizers over a wide range of oxygen flow rates. Am J Vet Res. 67 (6), 936-940 (2006).
- McKelvey, D. H. Veterinary Anesthesia and Analgesia. , Mosby. St. Louis, MI. (2003).
- Thomas, J., Lerche, P. Anesthesia and Analgesia for Veterinary Technicians. , 4th ed, Mosby. St. Louis, MI. 335(2011).
- Flecknell, P. Laboratory animal anaesthesia. , Academic Press, Elsevier. London, UK. (2009).
- Mapleson, W. W. The elimination of rebreathing in various semiclosed anaesthetic systems. Brit J Anaesth. 26 (5), 323-332 (1954).
- Ward, C. S. Physical principles and maintenance. Anaesthetic equipment. , W. B. Saunders. London. (1985).
- El-Attar, A. M. Guided isoflurane injection in a totally closed circuit. Anaesthesia. 46 (12), 1059-1063 (1991).
- Lockwood, G., Chakrabarti, M. K., Whitwam, J. G. A computer-controller closed anaesthetic breathing system. Anaesthesia. 48 (8), 690-693 (1993).
- Lowe, H. J., Cupic, M. Dose-regulated automated anesthesia (Abstract). Br. J. Clin. Pharmacol. 12 (2), 281-282 (1971).
- Soro, M., et al. The accuracy of the anesthetic conserving device (Anaconda) as an alternative to the classical vaporizer in anesthesia. Anes Analg. 111 (5), 1176-1179 (2010).
- Walker, T. J., Chackrabarti, M. K., Lockwood, G. G. Uptake of desflurane during anaesthesia. Anaesthesia. 51 (1), 33-36 (1996).
- Weingarten, M., Lowe, H. J. A new circuit injection technic for syringe-measured administration of methoxyflurane: a new dimension in anesthesia. Anes Analg. 52 (4), 634-642 (1973).
- Enlund, M., Wiklund, L., Lambert, H. A new device to reduce the consumption of a halogenated anaesthetic agent. Anaesthesia. 56 (5), 429-432 (2001).
- Kelly, J. M., Kong, K. L. Accuracy of ten isoflurane vaporisers in current clinical use. Anaesthesia. 66 (8), 682-688 (2011).
- Matsuda, Y., et al. NARCOBIT - A newly developed inhalational anesthesia system for mice. Exp Anim. 56 (2), 131-137 (2007).
- Matsuda, Y., et al. Comparison of newly developed inhalation anesthesia system and intraperitoneal anesthesia on the hemodynamic state in mice. Biol Pharm Bull. 30 (9), 1716-1720 (2007).
- Voightsverger, S., et al. Sevoflurane ameliorates gas exchange and attenuates lung damage in experimental lipopolysaccharide-induced lung injury. Anesthesiology. 111 (6), 1238-1248 (2009).
- Garber, J., et al. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. , 8th edn, The National Academic Press. Washington DC. (2011).
إعادة الطباعة والأذونات
