مقالة منهجية

نموذج من القلب إعادة عرض من خلال انقباض البطن الأورطي في الجرذان

DOI:

10.3791/54818

⸱

ديسمبر 2, 2016

 ,  ,  ,  , 
1Graduate Institute of Pharmacology, College of Medicine, National Taiwan University, 2Division of Pulmonary and Critical Care Medicine, Mackay Memorial Hospital, 3Mackay Medicine, Nursing and Management College, 4School of Medicine, National Taiwan University, 5Department of Internal Medicine, National Taiwan University Hosptial

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
< p class = 'jove_content'> تم وصف نموذج الفئران لانقباض الأبهر البطني الذي يحفز تضخم القلب وإعادة تشكيله. يتم استخدام طريقة فعالة وقابلة للتكرار بدرجة عالية وطفيفة التوغل لتوفير منصة بسيطة ولكنها مفيدة للبحث في تضخم عضلة القلب والخلل الوظيفي.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

قصور القلب هو أحد الأسباب الرئيسية للوفاة في جميع أنحاء العالم. إنها متلازمة سريرية معقدةتشمل التعب وضيق التنفس وعدم تحمل التمارين الرياضية واحتباس السوائل. تتطور التغيرات في بنية عضلة القلب والتوصيل الكهربائي واستقلاب الطاقة مع قصور القلب ، مما يؤدي إلى خلل الانقباض ، وزيادة خطر الإصابة بعدم انتظام ضربات القلب ، والموت المفاجئ. يعد مرض القلب الناتج عن ارتفاع ضغط الدم أحد العوامل الرئيسية المساهمة في إعادة تشكيل القلب المرتبط بقصور القلب. يتم إنشاء النموذج الحيواني الأكثر استخداما الذي يحاكي مرض القلب الناتج عن ارتفاع ضغط الدم من خلال التدخلات الجراحية ، مثل تضييق الشريان الأورطي. انقباض الأبهر البطني هو تقنية تجريبية مفيدة للحث على زيادة الضغط ، مما يؤدي إلى قصور القلب. يمكن إجراء الجراحة بسهولة ، دون الحاجة إلى فتح الصدر أو التهوية الميكانيكية. يتطور أمراض القلب الناجم عن انقباض الأبهر البطني تدريجيا ، مما يجعل هذا النموذج وثيق الصلة بفشل القلب السريري الناجم عن ارتفاع ضغط الدم. يمكن ملاحظة إصابة القلب وإعادة تشكيلها بعد 10 أسابيع من الجراحة. توفر الطريقة الموضحة هنا نهجا بسيطا وفعالا لإنتاج نموذج حيواني لأمراض القلب الناجمة عن ارتفاع ضغط الدم مناسب لدراسة آليات المرض واختبار علاجات جديدة.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

فشل القلب هو متلازمة معقدة السريرية، والأعراض التي تشمل التعب، وضيق التنفس، وممارسة التعصب، واحتباس السوائل في الأنسجة الطرفية. هذا هو السبب الرئيسي للوفاة في الدول المتقدمة 1. وبصرف النظر عن القلب الموروثة التي تسببها طفرات في بروتينات قسيم عضلي أو القنوات الأيونية 2، يمكن أن يكون سبب ضعف عضلة القلب عن طريق مجموعة متنوعة من الظروف الطبية، بما في ذلك ارتفاع ضغط الدم، وأمراض صمامات القلب، والسمنة، ومرض السكري 3. التغييرات في بنية عضلة القلب، التوصيل الكهربائي، والرصاص استقلاب الطاقة إلى عدم كفاية قدرة ضخ القلب لتلبية مطالب الدورة الدموية، مما يؤدي في نهاية المطاف إلى فشل القلب 3،4. التحقيق في الآليات الكامنة وراء فشل القلب، لذلك، أمر بالغ الأهمية في مجال أبحاث القلب والأوعية الدموية. يمكن تحديد الآليات الجزيئية التي تؤدي إلى فشل القلب تطور المساعدات في نهاية المطاف في اكتشاف أهداف علاجية جديدة أو المؤشرات الحيوية مفيدة 1. ولذلك فمن المهم لتطوير نماذج فشل القلب الحيوانات التي تشترك في السمات السريرية الرئيسية المصابين بقصور في القلب لدى البشر 5.

تضخم القلب وإعادة يلعب دورا حاسما في تطوير قصور القلب. أمراض القلب ارتفاع ضغط الدم هو العامل الرئيسي لتضخم القلب وإعادة التأقلم ينظر في المرضى من البشر 1 المساهمة. لتقليد هذه الشروط الإنسان، وغالبا ما يتم وضع النماذج الحيوانية من خلال العمليات الجراحية. على وجه الخصوص، الشريان الأورطي عرضية أو البطن يمكن أن تتقلص إلى زيادة المقاومة ضد البطين الأيسر، الأمر الذي يؤدي في نهاية المطاف إلى الحمل الزائد الضغط في القلب. هذه الظاهرة عادة ما ينتج في تضخم القلب، تعويضا الفسيولوجية للالعضلية لتلبية الطلب الوظيفي للنظام القلب والأوعية الدموية. ومع ذلك، يتجاوز الطلب الوظيفي الآليات التعويضية فسيولوجية طبيعية، مما يؤدي إلى تليف القلب والعقود مع القطاع الخاصبلاط انخفاض القيمة. عرضية انقباض الشريان الأبهر (TAC) لعملية جراحية غالبا ما ينطوي على إجراءات معقدة، بما في ذلك بضع الصدر، والتهوية الميكانيكية، والفصل بين الغدة الصعترية والأنسجة الدهنية من قوس الأبهر. في المقابل، انقباض الشريان الأورطي البطني يتطلب تقنيات تجريبية أبسط 6-8. الشريان الأورطي البطني، بين اليسار والشرايين الكلوية اليمنى، هو ضيق خلال عملية جراحية. تضخم القلب وإعادة عرض يمكن ملاحظة عدة أسابيع بعد جراحة البطن انقباض الشريان الأورطي 6-8. أنها تنتج ارتفاع ضغط الدم وأمراض القلب القوي مماثلة لتلك التي تم إنشاؤها بواسطة عرضية الأورطي جراحة انقباض 9،10. هنا، نحن تصف بروتوكول لإجراء انقباض الشريان الأورطي البطني في الفئران باستخدام وسيلة فعالة، عالية قابلة للتكرار، والحد الأدنى الغازية. وضيقت الشريان الأورطي البطني المتاخمة للشرايين الكلوية بواسطة حلقة 0.72 مم تتكون من خيط الحرير 4-0. بعد عشرة أسابيع من الجراحة، وتضخم القلب واعادة عرضز يمكن ملاحظتها. نموذج الفئران من البطن الأبهري تضخم القلب الناجم عن انقباض يوفر منصة لدراسة آليات المرض والفيزيولوجيا المرضية، فضلا عن تطوير علاجات محتملة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأجريت التجارب على الحيوانات فقط وفقا لدليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية، التي نشرت من قبل المعاهد الوطنية الأميركية للصحة (NIH المنشور رقم 85-23، نقح 1996). وقد وافق هذا البروتوكول من قبل وفقا للمبادئ التوجيهية التي وضعتها رعاية الحيوان واللجنة المؤسسية استخدم في جامعة تايوان الوطنية.

1. جراحة الحيوان

  1. إعداد 22 G حقنة إبرة عن طريق إضعاف غيض من الإبرة على حجر شحذ. باستخدام كماشة، يغضن الإبرة إلى الزاوية اليمنى.
  2. قبل الجراحة، وإعداد الأدوات اللازمة الجراحية والمواد، فضلا عن قفص الانتعاش. الأوتوكلاف جميع الأدوات الجراحية قبل الاستخدام.
  3. الحفاظ على الفئران حوالي 200 غرام وإبقائهم تحت 12 ساعة ضوء / دورات الظلام عند درجة حرارة للرقابة (21 ± 2 درجة مئوية) مع حرية الوصول إلى الغذاء والماء. يشمل على الأقل 6 الفئران في كل مجموعة. تخدير الفئران مع بنتوباربيتال(75 ملغ / كغ في 0.5 مل، والملكية الفكرية) أو وكيل مخدر آخر مناسب. تأكيد عمق التخدير عن طريق اختبار رد الفعل الذيل.
    ملاحظة: إن غياب رد الفعل ذيل مؤشرا التخدير المناسب.
  4. وضع الفئران في موقف ضعيف على منصة جراحة مع وسادة التدفئة للحفاظ على درجة حرارة الجسم. حلق منطقة البطن من الفئران مع المقص وبر وشعر مزيل غسول لتجنب التلوث الجراحية. فرك البطن نظيفة حليق مع betadine أو كاشف التطهير آخر قبل الجراحة.
    ملاحظة: من المهم الحفاظ على مجال معقم طوال الإجراء.
  5. جعل شق 2 سم على طول خط الوسط من البطن مع مشرط. باستخدام محلول ملحي، والحفاظ على جهاز البطن رطبة أثناء الجراحة. تهجير الجهاز الهضمي بعناية إلى الجانب باستخدام كرات القطن لفضح الوريد الأجوف السفلي التي تقع في المنطقة البريتوني الخلفية. تحديد الشريان الأورطي البطني، والتي تقع جنبا إلى جنب لوعادة ما تكون علىتبقى من الوريد الأجوف السفلي.
    ملاحظة: إن الأبهر البطني هو الوعاء الذي ينبض في الوقت المناسب مع معدل ضربات القلب.
  6. تخترق الغشاء البريتوني مع زوج من ملقط للكشف عن السفن تحت. عزل بلطف الشريان الأورطي البطني المتاخمة للشرايين الكلوية وتمرير 8 سم طويلة 4-0 خياطة الحرير تحت الشريان الأورطي البطني بين أصول الحق والشرايين الكلوية نقاط.
  7. جعل عقدة مزدوجة فضفاض مع خياطة. ترك قطر حلقة 3 مم، ووضع أضعفت وعازمة 22 G إبرة داخل الحلقة. تشديد عقدة حول الشريان الأورطي والإبرة، ثم قم بإزالة الإبرة فورا لتحقيق قطرها انقباض 0.7 مم.
  8. إغلاق تجويف البطن مع 6-0 المواد خياطة للامتصاص. خياطة العضلات أو الجلد شقوق مع خيوط متقطعة بسيطة. للوقاية من العدوى، فرك موقع الجراحية مع صبغة اليود.
  9. مراقبة الحيوانات بعناية حتى يستعيد وعيه كافية، كما يتضح من حرية الحركةوتناول الطعام. لا تترك حيوان غير المراقب حتى استعاد وعيه كافية للحفاظ على الاستلقاء القصية. لمنع الألم بعد الجراحة، وعلاج الفئران مع اسيتامينوفين (300 ملغ / كغ في 0.5 مل، والملكية الفكرية).
    ملاحظة: يجب على المستخدمين بإدارة المسكنات التي وافقت عليها السياسات المؤسسية.

2. الأنسجة وجمع عينة الدم

  1. في 10 أسابيع بعد الجراحة، وزن الفئران وتخدير مع بنتوباربيتال (75 ملغ / كغ في 0.5 مل، والملكية الفكرية). قبل الجراحة، تأكيد عمق التخدير عن طريق اختبار رد الفعل ذيله. وضع فأر على صينية معدنية.
  2. جعل شق 2 سم على طول خط الوسط من الرقبة باستخدام مشرط. تهجير العضلات بعناية مع ملقط لفضح القصبة الهوائية. لاحظ بعناية لتحديد الشرايين السباتية، وهي موازية للالقصبة الهوائية وخفق في الوقت المناسب مع معدل ضربات القلب.
  3. جمع الدم من الشريان السباتي في أنبوب جمع الدم المغلفة مع EDTA. على الفور أجهزة الطرد المركزيالدم لمدة 15 دقيقة في 2000 x ج وجمع البلازما. تخزين بلازما الدم عند -80 درجة مئوية لحين الحاجة إليها.
  4. جعل شق 5 سم في منطقة الصدر، وحول خط الوسط من عملية سيفي الشكل. تخترق الحجاب الحاجز مع ملقط حادة. باستخدام زوج من مقص، وقطع وإزالة القفص الصدري على طول خطوط منتصف الترقوة على كلا الجانبين لفضح القلب. استئصال القلب بعناية على طول الحدود القلب والأوعية الدموية. إزالة القلب بلطف دون الاستيلاء على الأنسجة.
  5. جبل قلب على جهاز نضح Langendorff المعدلة من خلال ربط جذع الشريان الأورطي إلى إبرة نضح. يروي القلب مع العازلة كريبس (التي تحتوي على 110 ملي مول كلوريد الصوديوم، 2.6 ملي بوكل، 1.2 ملي KH 2 PO 4، 1.2 ملي MgSO 4، 25 مم NaHCO 3، و 11 ملي الجلوكوز [7.4 درجة الحموضة]) لغسل الدم. وزن القلب وحساب نسبة القلب الوزن إلى وزن الجسم. إصلاح القلب مع 4٪ لامتصاص العرق على الجليد. تذكر أن ارتداء قناع، منذ امتصاص العرق بخار توإكسجيم.

3. الأنسجة الكيسي الكمي

  1. وضع أنسجة القلب الثابتة امتصاص العرق على جهاز باجتزاء الأنسجة وخفض 2 مم أبواب سميكة. وضع المقاطع الأنسجة في الكاسيت التضمين. يذوى الأنسجة من خلال سلسلة من الحمامات الكحول متدرج (50٪، 75٪، 95٪، و 100٪ لمدة 1 ساعة لكل منهما).
  2. اختراق الأنسجة مع الزيلين لمدة 1 ساعة، وأخيرا في الشمع لمدة 1 ساعة. وضع الأنسجة تسلل إلى كاسيت دمج وتضمين مع شمع البارافين. تخزين الأنسجة جزءا لا يتجزأ من كتل البارافين في درجة حرارة الغرفة حتى microtoming.
  3. شريحة الأنسجة جزءا لا يتجزأ في 4 ميكرون أبواب سميكة. وضع المقاطع في حمام الماء 45 درجة مئوية. تراجع شريحة زجاجية في حمام مائي عند زاوية والاقتراب تدريجيا حواف قسم البارافين للسماح مرفق جزئيا إلى الشريحة.
  4. نقل الشرائح داخل وخارج الحمام لإزالة الجيوب الهوائية المحتملة تحت قسم الأنسجة وتسهيل مرفق أفضل. ر الجافانه ينزلق في 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة وتخزينها في درجة حرارة الغرفة لتلطيخ النسيجي.
  5. ضع الشريحة في خزان. Deparaffinize الشريحة مع الزيلين لمدة 30 دقيقة وترطيب في بالتتابع الكحول المخفف (95٪، 75٪، و 50٪ لمدة 3 دقائق لكل منهما)، وأخيرا في الماء المقطر. استخدام كاف picrosirius حل الأحمر لتغطية كامل أقسام الأنسجة لمدة 1 ساعة. شطف الشرائح في محلول حمض الخليك 0.5٪ لمدة التغييرات، ثم قم بإجراء اثنين يشطف في الكحول المطلق.
  6. الهواء الجاف الشريحة وجبل الشريحة في الراتنجات الاصطناعية مع ساترة. تصوير الشريحة في مجال الضوء المرئي.
    ملاحظة: المنطقة الحمراء في الصورة يظهر المنطقة الموجبة الحمراء picrosirius تحت المجهر في 200X التكبير. حساب النسبة المئوية من المنطقة الموجبة الحمراء picrosirius على المساحة الكلية، مما يدل على مدى التليف 11.

4. الدم تروبونين الكمي

  1. تحديد مستويات التروبونين البلازماباستخدام الفحص المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA). مقايسة كل عينة في مكررة. تحميل 50 ميكرولتر من بلازما الدم و50 ميكرولتر من كوكتيل الأجسام المضادة في آبار المناسبة. ختم لوحة واحتضان لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة على شاكر لوحة في 400 دورة في الدقيقة.
    ملاحظة: تروبونين القلب في البلازما هو علامة للإصابة القلب.
  2. نضح السائل وغسل كل بئر مع 250 ميكرولتر من العازلة غسل ثلاث مرات. بعد غسل الماضي، عكس لوحة وصمة عار ضد مناشف ورقية نظيفة لإزالة السائل الزائد.
  3. إضافة 100 ميكرولتر من الركيزة tetramethylbenzidine إلى كل بئر واحتضان لمدة 10 دقيقة في الظلام على شاكر لوحة في 400 دورة في الدقيقة. إضافة 100 ميكرولتر من توقف حل كل بئر. يهز لوحة على شاكر لوحة لمدة 1 دقيقة لخلط. تسجيل الكثافة الضوئية (OD) في 450 نانومتر.
    ملاحظة: إن تركيز التروبونين غير متناسبة مع قيمة OD.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

بعد 10 أسابيع من البطن جراحة انقباض الشريان الأبهر، تم تحليل أمراض القلب الناتجة عن ذلك. تم قياس الأنسجة القلبية عن طريق حساب نسبة وزن القلب لوزن الجسم وعن طريق الكشف عن كمية الكولاجين في القلب. وأكد إصابة القلب عن طريق قياس البلازما تركيز التروبونين القلبي.

كما هو مبين في الشكل 1A، تم توسيع حجم القلب بعد عملية جراحية في البطن انقب...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يمكن أن تؤدي أمراض القلب الناجمة عن ارتفاع ضغط الدم ، وهي مشكلة صحية كبيرة تساهم بشكل كبير في المراضة والوفيات ، إلى تضخم القلب وفشل القلب5. يعد التسبب في أمراض القلب الناجمة عن ارتفاع ضغط الدم وتطورها أمرا معقدا ، لذا فإن النموذج الحيواني المناسب أمر بالغ الأهمية للتحقيق في الآليات الأساسية واختبار العلاجات الجديدة التي تهدف إلى تحسين بنية القلبووظيفتها. يعد نموذج انقباض الأبهر البطني ، الذي يحاكي أمراض القلب المزمنة ، طريقة فعالة لأبحاث القلب والأوعية الدموية. الشريان الأورطي البطني المجاور للشراي...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم عمل المؤلفين بمنحة من وزارة العلوم والتكنولوجيا (MOST 103-2320-B-002-068-MY2) ، والمعهد الوطني للبحوث الصحية (NHRI-EX104-10418SC) ، وجامعة تايوان الوطنية (NTU 104R4000).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
22 جرام إبرة حقنة                                               BD Biosciences                     309572
جمع الدم EDTA    BD Biosciences                     REF365974
4-0 خياطة الحرير                                                   شاربوينت & تجارة; المنتجات                                     DC-2515N
6-0 خياطة حريرية                                                   شاربوينت & تجارة; المنتجات                                     DC-2150N
Pentobarbital                                                     سيجما ألدريتش                                                           1507002
بارافورمالدهايد                                        سيجما ألدريتش                                                         441244
أسيتامينوفينسيجما ألدريتش   ؛                                                        A7085
محلول أحمر Picrosirius                         Abcam                                                                               ab150681
طقم تروبونين القلب                                   Abcam                                                                               ab200016
Imagequantالديناميكيات
Langendorff                                                         ADInstruments                                                       ML870B2
أنابيب الجزيئية

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Houser, S. R., et al. Animal models of heart failure: a scientific statement from the American Heart Association. Circ Res. 111, 131-150 (2012).
  2. Towbin, J. A. Inherited cardiomyopathies. Circ J. 78, 2347-2356 (2014).
  3. Breckenridge, R. Heart failure and mouse models. Dis Model Mech. 3, 138-143 (2010).
  4. van Bilsen, M., van Nieuwenhoven, F. A., van der Vusse, G. J. Metabolic remodelling of the failing heart: beneficial or detrimental? Cardiovasc Res. 81, 420-428 (2009).
  5. Patten, R. D., Hall-Porter, M. R. Small animal models of heart failure: development of novel therapies, past and present. Circ Heart Fail. 2, 138-144 (2009).
  6. Gu, W. L., Chen, C. X., Huang, X. Y., Gao, J. P. The effect of angoroside C on pressure overload-induced ventricular remodeling in rats. Phytomedicine. 22, 705-712 (2015).
  7. Zhang, Y., et al. Alteration of cardiac ACE2/Mas expression and cardiac remodelling in rats with aortic constriction. Chin J Physiol. 57, 335-342 (2014).
  8. Tardif, K., et al. Nestin upregulation characterizes vascular remodeling secondary to hypertension in the rat. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 308, H1265-H1274 (2015).
  9. Li, C., et al. Myeloid mineralocorticoid receptor deficiency inhibits aortic constriction-induced cardiac hypertrophy in mice. PLoS One. 9, e110950(2014).
  10. Ku, H. C., Su, M. J. DPP4 deficiency preserved cardiac function in abdominal aortic banding rats. PLoS One. 9, e85634(2014).
  11. Lee, S. Y., et al. Caffeic acid ethanolamide prevents cardiac dysfunction through sirtuin dependent cardiac bioenergetics preservation. J Biomed Sci. 22, 80(2015).
  12. Gs, A. K., Raj, B., Santhosh, K. S., Sanjay, G., Kartha, C. C. Ascending aortic constriction in rats for creation of pressure overload cardiac hypertrophy model. J Vis Exp. , e50983(2014).
  13. deAlmeida, A. C., van Oort, R. J., Wehrens, X. H. Transverse aortic constriction in mice. J Vis Exp. , e1729(2010).
  14. Schaefer, A., et al. A New Animal Model for Investigation of Mechanical Unloading in Hypertrophic and Failing Hearts: Combination of Transverse Aortic Constriction and Heterotopic Heart Transplantation. PLoS One. 11, e0148259(2016).
  15. Rodriguez-Iturbe, B., Quiroz, Y., Kim, C. H., Vaziri, N. D. Hypertension induced by aortic coarctation above the renal arteries is associated with immune cell infiltration of the kidneys. Am J Hypertens. 18, 1449-1456 (2005).
  16. Ku, H. C., Lee, S. Y., Yang, K. C., Kuo, Y. H., Su, M. J. Modification of Caffeic Acid with Pyrrolidine Enhances Antioxidant Ability by Activating AKT/HO-1 Pathway in Heart. PLoS One. 11, e0148545(2016).
  17. Bovill, J. G. Intravenous anesthesia for the patient with left ventricular dysfunction. Semin Cardiothorac Vasc Anesth. 10, 43-48 (2006).
  18. Inoko, M., Kihara, Y., Morii, I., Fujiwara, H., Sasayama, S. Transition from compensatory hypertrophy to dilated, failing left ventricles in Dahl salt-sensitive rats. Am J Physiol. 267, H2471-H2482 (1994).
  19. Heyen, J. R., et al. Structural, functional, and molecular characterization of the SHHF model of heart failure. Am J Physiol Heart Circ Physiol. 283, H1775-H1784 (2002).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة