مقالة منهجية

التلاعب صرعي Electrocorticograms (ECoGs) والنوم في الجرذان والفئران التي الوخز بالإبر

DOI:

10.3791/54896

⸱

ديسمبر 22, 2016

 ,  ,  , 
1Department of Sports, Health & Leisure, College of Tourism, Leisure and Sports, Aletheia University, Tainan Campus, 2Department of Neurology, Mackay Memorial Hospital and Mackay Medical College, 3Department of Veterinary Medicine, School of Veterinary Medicine, National Taiwan University, 4Graduate Institute of Brain & Mind Sciences, College of Medicine, National Taiwan University, 5Graduate Institute of Acupuncture Science, College of Chinese Medicine, China Medical University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

توضح هذه الورقة أداء الوخز بالإبر ونماذج الصرع وتحليل النوم في القوارض. يتم وصف إجراء الوخز بالإبر وتحديد نقاط الوخز بالإبر. يستخدم بيلوكاربين أو بنتيلينيتيترازول (PTZ) للحث على الصرع. يتم استخدام مخطط كهربية الكورتيكومتر (ECoG) ، ومخطط كهربية العضل (EMG) ، ودرجة حرارة الدماغ ، وتسجيلات النشاط الحركي لتحليل النوم.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وقد وثق الأدب الصيني القديم أن الوخز بالإبر يمتلك تأثيرات علاجية فعالة على الصرع والأرق. هناك, ومع ذلك, القليل من البحوث للكشف عن الآليات المحتملة وراء هذه الآثار. للتحقيق في تأثير الوخز بالإبر على الصرع والنوم ، يجب معالجة العديد من القضايا. الأول هو تحديد نقاط الوخز التي تتوافق بين البشر والجرذان والفئران. علاوة على ذلك ، يجب تحديد عمق إدخال إبرة الوخز بالإبر ، ودرجة التواء الإبرة في الوخز بالإبر اليدوي ، ومعلمات التحفيز للوخز بالإبر الكهربائية (EA). لتقييم آثار الوخز بالإبر على الصرع والنوم ، يلزم وجود نموذج عملي للصرع في القوارض. نقوم بإعطاء البيلوكاربين في النواة المركزية اليسرى للوزة (CeA) لمحاكاة صرع الفص الصدغي البؤري (TLE) في الفئران. يؤدي الحقن داخل الصفاق (IP) من بيلوكاربين إلى الإصابة بالصرع المعمم وحالة الصرع (SE) في الفئران. خمس حقن IP من البنتيلينيتيترازول (PTZ) مع فاصل يوم واحد بين كل حقنة تسبب بنجاح الصرع المعمم التلقائي في الفئران. تستخدم تسجيلات الكورتيكوبرام الكهربية (ECoGs) ، ومخططات كهربية العضل (EMGs) ، ودرجة حرارة الدماغ ، والنشاط الحركي لتحليل النوم في الفئران ، بينما يتم استخدام ECoGs و EMGs والنشاط الحركي لتحليل النوم في الفئران. يتم زرع أقطاب ECoG في القشرة القذالية الأمامية والجدارية والمقابلة ، ويتم زرع ثرمستور فوق القشرة الدماغية عن طريق الجراحة التجسيمية. يتم زرع أقطاب كهربية كهربية العضل في عضلات الرقبة ، ويحدد كاشف الأشعة تحت الحمراء النشاط الحركي. تستند معايير تصنيف مراحل اليقظة ، بما في ذلك اليقظة ، ونوم حركة العين السريعة (REM) ، والنوم غير REM (NREM) إلى معلومات من ECoGs و EMG ودرجة حرارة الدماغ والنشاط الحركي. ويرد في النص معايير التصنيف التفصيلية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الصرع هو اضطراب عصبي المشترك الذي تحدث النوبات المتكررة طوال عمر المريض. معظم تكرار الصرع يمكن السيطرة عليها تماما من قبل العقاقير المضادة للصرع (صرع). ومع ذلك، حوالي 30٪ من مرضى الصرع تطوير صهر الصرع 1. أسباب الصرع اضطرابات النوم، والتي يمكن أن تزيد من تفاقم تكرار. يوضح دليل على أن الصرع قد إما تعطيل النوم في الليل أو قد يسبب الإفراط 2،3 النعاس خلال النهار. تشير دراساتنا السابقة أيضا أن الصرع التي تحدث في وقت zeitgeber (ZT) 0، أي بداية الفترة الخفيفة في ضوء: دورة الظلام، ويقلل من النوم، هذا هو بوساطة بين الافراج عن القشرية هرمون (CRH)، وهو عامل التماثل الساكن. الصرع في ZT13 (بداية الفترة المظلمة) يعزز التعبير عن عامل التماثل الساكن آخر، انترلوكين 1 (IL-1)، مما يزيد من النوم. يتم تغيير النوم ايقاعات كل يوم عندما يحدث الصرع في ZT6، وسطفترة الخفيفة 4،5. من ناحية أخرى، مشاكل في النوم يزيد من تفاقم تطور وتكرار الصرع 6. استنادا إلى الأدلة المذكورة أعلاه، ونحن نحاول تكشف عن الطريقة العلاجية الأمثل للسيطرة على الصرع في وقت واحد ومنع اضطرابات النوم لدى مرضى الصرع. لقد وجدنا سابقا أن الكهربائي (EA) مع تردد التحفيز 10 هرتز، حيث يتم تسليم كمية معينة من التيار في نقاط الوخز من خلال إبرة الفولاذ المقاوم للصدأ، بنجاح يقمع مخطط كهربية قشر الدماغ (ECoG) الأنشطة الصرع واضطرابات النوم التي يسببها مرض الصرع 7 . EA مع تردد التحفيز 100 هرتز يزيد من تدهور الأنشطة الصرع واضطرابات النوم في الفئران 8،9. هذه التجربة الناجحة تعتمد على ثلاثة عوامل: أولا، نموذج حيواني الصرع ممكنا. ثانيا، طريقة لتسجيل النوم والتحليل في القوارض. وثالثا، ودقة الأداء من الوخز بالإبر ودقة locati نقاط الوخزالإضافات.

وقد تم تصنيف الصرع إلى نوعين رئيسيين: الصرع البؤري والصرع المعمم. ونحن مهتمون في التنسيق الصرع الفص الصدغي (TLE)، الصرع المعمم، حالة صرعية (جنوب شرق)، وتكرار الصرع المعمم من تلقاء أنفسهم. لذلك، يتم تطبيق التلاعب مختلفة لخلق نماذج الصرع مناسبة لتجاربنا. لإنشاء TLE البؤري، وتدار على جرعة منخفضة من بيلوكاربين في النواة المركزية تبقى من اللوزة (CEA). للتحقق من هذا النموذج، يتم زرع ستة أقطاب ECoG على أمامي (F1 و F2)، الجدارية (P1 و P2)، والقذالي (O1 و O2) شحمات في كل من اليسار ونصفي الكرة الأرضية المناسبة، واثنين من أقطاب المرجعية آخر (R1 & R2) وتوضع فوق المخيخ في كل من نصفي الكرة الأرضية. يتم زرع قنية إضافية دليل حقن مكروي جراحيا إلى اليسار CEA (ا ف ب، 2.8 ملم من bregma، ML، 4.2 مم؛ DV، 7.8 مم مقارنة bregma). يتم تكييفها الإحداثيات من باكينوس وWatson الفئران أطلس 10. إذا هو فعل وTLE البؤري بنجاح، إلا أن تسجيل من القطب على اليسار القشرة الجدارية (P1)، التي تقع بالقرب من CEA الأيسر، يجب الحصول على ECoGs صرعي المهيمنة، مع عدم وجود ECoGs صرعي أهمية المسجلة من أقطاب ECoG أخرى. داخل الصفاق (IP) حقن بيلوكاربين في الفئران لحث على تعميم الصرع وSE، ولكن هذا يمكن أن تكون قاتلة. خمس حقن الملكية الفكرية من بنتيلين تترازول (PTZ) مع فاصل زمني ليوم واحد بين كل حقنة لحث بنجاح الصرع المعمم عفوية في الفئران، وكذلك ضمان بقاء الفئران. وزرع قطبين سلك ECoG في الجبهي والجداري القشور في الفئران لاستقبال اشارات ECoG والتحقق من الصرع المتكررة من تلقاء أنفسهم.

دراسة النوم (باريس سان جيرمان) هو أسلوب شامل لتسجيل التغيرات الفسيولوجية التي تحدث أثناء النوم، وأنه يمكن تصنيف موضوعي النوم إلى مراحل مختلفة من الحركة غير العين السريعة (NREM) و rحركة العين APID (REM) النوم. باريس سان جيرمان يسجل المعلمات من وظائف الجسم، بما في ذلك موجات الدماغ (الكهربائي، EEG)، حركات العين (electrooculogram، EOG)، نغمات العضلات والهيكل العظمي (كهربية، EMG)، ضربات القلب (تخطيط القلب، تخطيط القلب)، ومستويات الأكسجين في الدم والمعلمات في الجهاز التنفسي. في الفئران، نسجل ECoGs، EMGS، ودرجة الحرارة القشرية، والنشاط الحركي لتصنيف الدول اليقظة في اليقظة والنوم NREM، والنوم REM. يتم إجراء تحليل النوم في الفئران باستخدام ECoGs، EMGS، والنتائج النشاط الحركي. يتم زرع جراحيا الفئران مع ثلاثة ECoG المسمار الأقطاب في الجبهي، الجداري، والقشور المخيخ المقابل عن طريق الجراحة التجسيمي. وأجرى تقرير ما بعد الاستحواذ على الدول اليقظة (اليقظة والنوم NREM، والنوم REM) وفقا لمعايير تم الحصول عليها من ECoGs، EMG، درجة حرارة الدماغ، والنشاط الحركي. ووصف معايير مفصلة لتصنيف سلوك الحيوان في كل من الجرذان والفئران في تيكان البروتوكول.

تحتاج إلى تخدير مع جرعة منخفضة من zoletil (25 ملغ / كلغ)، وهو نصف جرعة التخدير تدار عادة أثناء الجراحة التجسيمي، قبل تنفيذ الوخز بالإبر اليدوي أو EA كل من الجرذان والفئران. هذه الجرعة تسمح الحيوانات ليستيقظ 30-35 دقيقة بعد الحقن. يتم تنفيذ أي من الوخز بالإبر اليدوي أو EA في بداية الفترة المظلمة، مع فترة زمنية ثابتة لمدة 30 دقيقة، ويتم التعامل كل حيوان على التوالي لمدة يومين أو ثلاثة أيام. يتم تسليم تحفيز التيارات EA في نقاط الوخز خاص من خلال إبرة الفولاذ المقاوم للصدأ التي يتم إدراجها في نقاط الوخز. التيار التحفيز هو قطار من النبضات مربع ثنائي الطور، التي مدة النبضة 150 م وكثافة التحفيز هو 1 مللي أمبير. إذا تم استخدام إبرة الوخز بالإبر الجافة لاليدوي، وإبرة في نقاط الوخز ورفت 10 مرات كل 5 دقائق. الجزء الصعب من الوخز بالإبر اليدوي أو EA هو إضفاء الطابع المحلي على نقاط الوخز في القوارض. في الموضعأوجه من نقاط الوخز في الجرذان أو الفئران مشابه لموقع تشريحي في البشر. على سبيل المثال، توجد نقاط الوخز Fengchi الثنائية 3 ملم بعيدا عن الخلفية خط الوسط على الرقبة، وبين آذان اثنين، والذي يشبه إلى موقع تشريحي في البشر 11. وعلاوة على ذلك، فإن نقاط الوخز مع مقاومة منخفضة على الجلد ويمكن زيادة مؤكدة. الشام الوخز بالإبر أو EA صورية التلاعب ضروري لالوخز بالإبر أو التجارب EA. يجب أن يتم تنفيذ الوخز بالإبر الشام أو EA صورية في غير نقاط الوخز، وتقع على مقربة من نقاط الوخز، مثل بالقرب من الإبط 12.

للتحقيق بنجاح آثار الوخز بالإبر أو EA على الصرع واضطرابات النوم التي يسببها مرض الصرع، ويجب أن تكون العوامل التالية في مكان: نموذج ممكنا الصرع الحيوان، وتحليل دقيق للECoGs صرعي وتكرار الصرع، وهي طريقة لتصنيف الدول اليقظة ، ودقة الأداء الوخز بالإبر أو EA في القوارض.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع البروتوكولات التجريبية من قبل اللجنة المؤسسية رعاية الحيوان واستخدام (IACUC) من جامعة تايوان الوطنية.

1. التجسيمي جراحة لزرع ECoG أقطاب، EMG الأقطاب الكهربائية، والدماغ الحرارية المقاوم، وحقن دليل قنية

  1. بالنسبة للفئران (250-350 غرام، البالغ من العمر 8 أسابيع 6- للفئران سبراغ داولي)
    1. تخدير الفئران عن طريق الحقن IP مع 50 ملغ / كغ zoletil. تأكيد عمق مناسب من التخدير خلال مراقبة عدم استجابة بعد معسر مخلب هند. تطبيق مرهم العين، حلق الفراء، وتعقيم الجلد مع محلول البوفيدون اليود و 75٪ من الإيثانول. حقن مضاد حيوي (البنسلين G) للوقاية من العدوى.
    2. إعداد المشارط، مقص، المرقأة، الشاش، وآلة الكي لعملية جراحية. تعقيم العتاد الجراحية والشاش بواسطة الأوتوكلاف والكي بنسبة 75٪ من الإيثانول.
    3. وضع شريط الأذن في قناة الأذن وجبل الفئران إلى stereotaxis.
    4. عن طريقمشرط، وجعل تقريبي 2 سم شق خط الوسط على الجمجمة على طول الخط الفاصل بين اثنين من آذان، والانتقال caudally. مقطع اللوحات الجلد مع المرقأة لفضح الجمجمة وإزالة الأنسجة على الجمجمة باستخدام مشرط.
    5. حفر ثمانية ثقوب (F1، F2، P1، P2، O1، O2، R1، و R2)، كل ما يقرب من 0.7 مم في القطر، وعلى الجمجمة مع أداة دوارة. المسمار ثمانية أقطاب ECoG على الجبهي، الجداري، والفص القذالي والمخيخ في كل من اليسار واليمين نصفي الكرة الأرضية. وتستخدم هذه الأقطاب الكهربائية للكشف عن الصرع البؤري.
      1. استخدام الإحداثيات التالية للتسجيل أقطاب: أمامي (F1 و F2): +2.0 ملم الأمامي إلى bregma و+2.5 مم من خط الوسط، الجدارية (P1 و P2): -2.0 ملم الأمامي إلى bregma و+3.0 مم من خط الوسط والقذالي (O1 و O2): -5.5 ملم الأمامي إلى bregma و+3.0 مم من خط الوسط.
      2. وضع اثنين من أقطاب المرجعية (R1 و R2) على المخيخ (-11.0 ملم الأمامي إلى bregma و+4.0 ملم من midliشمال شرق).
    6. في مجموعات منفصلة من الفئران، وحفر ثلاثة ثقوب ووضع قطبين EEG المسمار على الجبهي الأيمن (F2) والفص الجداري (P2) من القشور مع الإحداثيات نفسها كما هو موضح في الخطوة 1.1.5.1. وضع القطب الكهربائي EEG الثالث على المخيخ الأيسر (R1)، والذي يعمل على الأرض والحيوان والحد من التحف إشارة. وتستخدم هذه الأقطاب الكهربائية لتأكيد الصرع المعمم وتحليل مراحل اليقظة.
    7. فصل جلد الرقبة والعضلات وادخال اثنين من الأقطاب الكهربائية EMG في عضلة الرقبة.
    8. حفر ثقب آخر في الجمجمة ووضع قنية دليل microinjection في الأيسر CEA (ا ف ب، 2.8 ملم من bregma، ML، 4.2 مم؛ DV، 7.8 مم مقارنة bregma) في الفئران. يتم تكييفها الإحداثيات من باكينوس واتسون الفئران أطلس 10.
    9. حفر حفرة أكبر (التي يبلغ قطرها 1.6 ملم) على الجمجمة وإدراج معايرة الثرمستور 30 ​​كيلو فولت على سطح القشرة الجدارية، والتي سيتم رسخ في وقت لاحق، إلى مونيتور درجة الحرارة القشرية في الفئران.
    10. استخدام الشاش والكي لوقف النزيف عند حدوثه.
    11. مسار يؤدي معزولة من الأقطاب ECoG وأقطاب EMG على قاعدة التمثال وربط الثرمستور إلى حبل. تعزيز قاعدة التمثال وتوجيه قنية في الجمجمة مع الاكريليك الأسنان.
    12. علاج شق موضعيا مع polysporin (باسيتراسين الزنك / بوليميكسين ب سلفات) للوقاية من العدوى. إعطاء الحيوانات على حد سواء ايبوبروفين والبنسلين G في الماء لمدة أسبوع واحد بعد الجراحة.
  2. بالنسبة للفئران (20 - البالغ من العمر 8 أسابيع 30 غرام، 6- لC57BL / C الفئران)
    1. تخدير الفئران عن طريق الحقن IP مع 50 ملغ / كغ zoletil وتأكيد عمق مناسب من التخدير خلال مراقبة عدم استجابة بعد معسر مخلب هند. تطبيق مرهم العين. بعد الحلاقة الفراء، وتعقيم الجلد مع محلول البوفيدون اليود و 75٪ من الإيثانول. حقن مضاد حيوي (البنسلين G) للوقاية من العدوى.
    2. وضع شريط الأذن في قناة الأذن وجبل الماوس إلى stereotaxis.
    3. باستخدام مشرط، وجعل تقريبي 1.5 سم شق خط الوسط على الجمجمة على طول الخط الفاصل بين آذان اثنين، والانتقال caudally. مقطع اللوحات الجلد مع المرقأة لفضح الجمجمة وإزالة الأنسجة على الجمجمة مع مشرط.
    4. كزة اثنين من الثقوب في الجمجمة مع مقص جراحي ووضع قطبين سلك ECoG في الفص الجبهي الأيمن (F2: +2.0 ملم إلى bregma و+1.5 إلى خط الوسط) والأيسر الفص الجداري (P1: -3.0 ملم إلى bregma و-2.5 ملم الى خط الوسط).
    5. فصل جلد الرقبة والعضلات وادخال اثنين من الأقطاب الكهربائية EMG في عضلة الرقبة.
    6. ربط الخيوط معزول من الأقطاب ECoG الأسلاك والأقطاب الكهربائية EMG إلى محطات الإناث وموصل 2.54 ملم، ثم الأسمنت في الجمجمة مع الاكريليك الأسنان.
    7. علاج شق موضعيا مع polysporin (باسيتراسين الزنك / بوليميكسين ب سلفات) للوقاية من العدوى. إعطاء الحيوانات على حد سواء ايبوبروفين والبنسلين G في الماء لمدة وي واحدةك بعد الجراحة.
  3. السماح لجميع الحيوانات لاستعادة لسبعة أيام قبل بدء التجارب.
  4. بيت الفئران أو الفئران بشكل منفصل، في أقفاص تسجيل الفردية، في غرفة معزولة حيث يتم الحفاظ على درجة الحرارة عند 23 ± 1 درجة مئوية، وضوء: الظلام (L: D) يتم التحكم الإيقاع في 12: دورة 12 ساعة (40 W × 4 أنابيب الإضاءة). توفير الغذاء والماء بالمال وبالشهرة أيضا الإعلانية.
  5. ربط ECoG، EMG، والثرمستور من خلال حبل لمكبرات الصوت أسبوع واحد بعد الجراحة لبدء التسجيلات.

2. إنشاء الاتصال TLE الصرع، SE، وبشكل عفوي المتكررة الصرع

  1. بالنسبة للفئران
    1. إدارة 0.5 ميكرولتر من بيلوكاربين (2.4 ملغ / ميكرولتر) في CEA الأيسر من خلال قنية دليل الحقن باستخدام مضخة حقن مكروي. يجب تعيين معدل الحقن في 0.2 ميكرولتر / دقيقة للحث على TLE البؤري.
    2. الملكية الفكرية حقن 300 ملغم / كغم من بيلوكاربين للحث برنامج التحصين الموسع المعممlepsy مع المتكررة SE.
  2. بالنسبة للفئران
    1. IP إدارة PTZ (0.035 ملغ / غ الماوس وزن الجسم) عند نقطة ZT معينة كل يوم. سوف خمس حقن متتالية يؤدي إلى تطوير الصرع المعمم بشكل عفوي ومتكرر.
  3. لكل من الجرذان والفئران
    1. تضخيم الإشارات ECoG من 5000 وتصفية ممر الموجة التناظرية بين 0.1 و 40 هرتز.
    2. استخدام لوحة / D تحويل لتحويل الإشارات التناظرية ECoGs إلى إشارات رقمية مع معدل أخذ العينات 128 هرتز.
    3. استخدام برنامج لتسجيل المرئي وتحليل بداية ومدة الصرع. قياس الفترة الزمنية من أجل تمثيل المدة.
    4. تحديد ECoG الصرع قبل ظهور طفرات الصرع مع سعة أكبر من 2 بالسيارات ومع فترات من أكثر من 30 ثانية 13.

3. تصنيف الولايات اليقظة

  1. بالنسبة للفئران
    1. تحديد الدول اليقظة باستخدام المعلمات تم الحصول عليها من ECoGs، EMG، ودرجات حرارة الدماغ، وتنقل على بعد ق 12 حلقة من التسجيل. ربط ECoG، EMG، والثرمستور من خلال حبل لمكبرات الصوت أسبوع واحد بعد عملية جراحية لبدء عملية التسجيل. يسجل الدول مع البرمجيات حسب الطلب وفقا لخطوات 3.1.5 - 3.1.7.
    2. قياس الأنشطة الحركي باستخدام كاشف الحركة بالأشعة تحت الحمراء، ودمج الإشارات كل 1 ثانية، وتخزين الإشارات.
    3. قياس درجة حرارة القشرية وتخزين الإشارات.
    4. تصنيف الدول اليقظة وفقا لدينا معايير محددة سابقا 14.
    5. يسجل اليقظة باستخدام الخصائص التالية: ECoGs-السعة الصغيرة مع الأطياف عالية التردد، وارتفاع قوة دلتا (0،5-4،0 هرتز)، وطاقة أقل ثيتا (6،0-9،0 هرتز)؛ النشاط الحركي السائد. النشاط EMG عالية. وزيادة تدريجيا درجة حرارة القشرية.
    6. يسجل النوم NREM باستخدام الى ما يلي:ز الخصائص: دلتا موجة ECoGs المهيمنة مع سعة كبيرة، انخفضت النشاط EMG، مخفضا لدرجة الحرارة القشرية، وعدم النشاط الحركي.
    7. يسجل النوم REM باستخدام الخصائص التالية: انخفاض السعة من ECoGs مع التردد السائد ثيتا، وزيادة فجأة درجة الحرارة القشرية، والنشاط EMG الحد الأدنى، وانخفاض النشاط الحركي مع تشنجات الجسم.
  2. بالنسبة للفئران
    1. كرر تصنيف الدول يقظة في الفئران كما أجريت في الفئران، باستثناء وجود درجة حرارة القشرية المسجلة من الثرمستور.

4. أداء الوخز بالإبر اليدوي وEA في الجرذان

  1. هو تخدير الفئران لبروتوكول EA.
  2. تحديد نقاط الوخز بواسطة التشريح وتأكيد مقاومة منخفضة الجلد في نقاط الوخز. ضوء يومض عندما كشف عن انخفاض مقاومة الجلد. ملاحظة: توجد نقاط الوخز Fengchi 3 ملم بعيدا عن الخلفية خط الوسط يكونتوين آذان اثنين، على الرقبة.
  3. إدراج الإبر الفولاذ المقاوم للصدأ في نقاط الوخز على عمق 2 مم.
  4. نشل الإبر إدراج 10 مرات كل 5 دقائق.
  5. باستخدام التحفيز والتشجيع والكهربائية وظيفي، وتقديم قطار من النبضات ثنائية الطور (150 ميكرو ثانية مدة كل منهما) مع كثافة من 1 مللي أمبير لنقاط الوخز من خلال إبرة.
  6. إجراء الوخز بالإبر صورية أو صورية EA كمجموعة تحكم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هناك مختلفة الجرذان والفئران نماذج لتلبية احتياجات أنواع الصرع المختلفة. للحث على TLE البؤري، 0.5 ميكرولتر من بيلوكاربين يدار (2.4 ملغ / ميكرولتر) في CEA الأيسر. يتم الحصول على ECoGs صرعي السائد من القطب ECoG على الفص الجداري من نصف الكرة المخية الأيسر (الشكل 1A: ب)، والأنشطة الصرع نادرة يتم انتقاؤها من بقية الأقطاب ECoG (الشكل 1A: أ، ج، د، ه ،

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اختيار نموذج حيواني الصرع ممكنا من الضروري لكل غرض تجريبي. واحد من أهدافنا هو لتوضيح آثار EA على قمع الصرع. EA هو الطب البديل الذي قد يحمل تأثير علاجي في الصرع وتم توثيقها في الأدب الصيني القديم. ومع ذلك، هناك نقص في الأدلة العلمية التي تثبت ذلك. لتحديد آثار EA على الصرع، وركزنا بشكل أساسي على آثار EA على الصرع البؤري معتدل، بدلا من التركيز على الاستيلاء معمم شديد أو SE. استخدمت دراستنا السابقة نموذجا TLE التنسيق في الفئران للتدليل على آثار التردد المنخفض (10 هرتز) وعالية التردد (...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا العمل من قبل منح وزارة العلوم والتكنولوجيا (MOST) MOST104-2410-H-002-053 & NSC99-2320-B-002-026-MY3. تم تحرير هذه المخطوطة وتدقيقها من قبل السيد بريان تشانغ ، الذي لديه خبرة في مراجعة الوثائق المهنية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
<قوي>المخدرات
زولتيلفيرباك50 ملغ/كغ i.p.
بيلوكاربينسيجما ألدريتشP6503300 مجم / كجم IP. 1.2 ملغ حقن
دقيق PTZسيجما ألدريتشP65000.035 مجم / ماوس
بوليسبورينفايزر
<قوي>جراحة< / قوي>
ECoGقطب كهربائي بلاستيك واحدE363 / 20لولبي للفئران
قاعدة التمثالبلاستيك واحدMS363
قنيةبلاستيك واحدC315G / spc
الثرمستورأوميغا الهندسة44008
الأسنان الاكريليكTempron
Stereotaxic أداةstoeltingDural الذراعين
< قوية > معدات التسجيل < / قوية >
ECoG مكبر للصوتColbourn InstrumentsV75-01
A / D BoardNational InstrumentsNI PCI-6033E
كاشفات الحركة القائمة على الأشعة تحت الحمراءBiobserv GmbH
ICELUSG-System
AxoScope 10 SoftwareMolecular Devices
< قوية > احتياجات الوخز بالإبر < / قوية>
الإبر غير القابل للصدأشنغهاي يانغلونغ المواد الطبية المحدودةمقياس 32 × 1 بوصة
وظائف المحفز الكهربائيI.T.O. ، اليابانالثلاثي 300
AcuPenلاسا OMSالمؤشر Excel II

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Regesta, G., Tanganelli, P. Clinical aspects and biological bases of drug-resistant epilepsies. Epilepsy Res. 34 (2-3), 109-122 (1999).
  2. Malow, B. A., Bowes, R. J., Lin, X. Predictors of sleepiness in epilepsy patients. Sleep. 20 (12), 1105-1110 (1997).
  3. Stores, G., Wiggs, L., Campling, G. Sleep disorders and their relationship to psychological disturbances in children with epilepsy. Child Care Health Dev. 24 (1), 5-19 (1998).
  4. Yi, P. L., Tsai, C. H., Lin, J. G., Lee, C. C., Chang, F. C. Kindling stimuli delivered at different times in the sleep-wake cycle. Sleep. 27 (2), 203-212 (2004).
  5. Yi, P. L., Chen, Y. J., Lin, C. T., Chang, F. C. Occurrence of epilepsy at different zeitgeber times alters sleep homeostasis differently in rats. Sleep. 35 (12), 1651-1665 (2012).
  6. Bazil, C. W. Sleep and epilepsy. Semin Neurol. 22, 321-327 (2002).
  7. Yi, P. L., Lu, C. Y., Jou, S. B., Chang, F. C. Low frequency electroacupuncture suppress focal epilepsy and improves epilepsy-induced sleep disruptions. J Biomed Sci. 22, 49(2015).
  8. Yi, P. L., Lu, C. Y., Cheng, C. H., Tsai, Y. F., Lin, C. T., Chang, F. C. Activation of amygdala opioid receptors by electroacupuncture of Feng-Chi (GB20) acupoints exacerbates focal epilepsy. BMC Complement Altern Med. 13, 290(2013).
  9. Yi, P. L., Lu, C. Y., Cheng, C. H., Tsai, Y. F., Lin, C. T., Chang, F. C. Amygdala opioid receptors mediate the electroacupuncture-induced deteriortation of sleep disruptions in epilepsy rats. J Biomed Sci. 20, 85(2013).
  10. Paxinos, G., Watson, W. The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates (4th edition). , Academic Press. San Diego. (1998).
  11. Siu, F. K. W., Lo, S. C. L., Leung, M. C. P. Electro-acupuncture potentiates the disulphide-reducing activities of thioredoxin system by increasing thioredoxin expression in ischemia-reperfused rat brains. Life Sci. 77 (4), 386-399 (2005).
  12. Yi, P. L., Tsai, C. H., Lin, J. G., Liu, H. J., Chang, F. C. Effects of electroacupuncture at 'Anmian' (extra) acupoints on sleep activities in rats: the implication of the caudal nucleus tractus solitaries. J Biomed Sci. 11 (5), 579-590 (2004).
  13. Jou, S. B., Kao, I. F., Yi, P. L., Chang, F. C. Electrical stimulation of left anterior thalamic nucleus with high-frequency and low-intensity currents reduces the rate of pilocarpine-induced epilepsy in rats. Seizure. 22 (3), 221-229 (2012).
  14. Chang, F. C., Opp, M. R. Blockade of corticotropin-releasing hormone receptors reduces spontaneous waking in the rat. Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 275 (3), Pt 2 793-802 (1998).
  15. Cheng, C. H., Yi, P. L., Lin, J. G., Chang, F. C. Endogenous opiates in the nucleus tractus solitaries mediate electroacupuncture-induced sleep activities in rats. Evid Based Complement Alternat Med. 2011, 159209(2011).
  16. Tsui, P., Leung, M. C. Comparison of the effectiveness between manual acupuncture and electro-acupuncture on patients with tennis elbow. Acupunct Electrother Res. 27 (2), 107-117 (2002).
  17. Napadow, V., Makris, N., Liu, J., Kettner, N. W., Kwong, K. K., Hui, K. K. Effects of electroacupuncture versus manual acupuncture on the human brain as measured by fMRI. Hum Brain Mapp. 24 (3), 193-205 (2005).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة