ويعرض هذا العمل منهجية تطبيق عالية تركز على كثافة الموجات فوق الصوتية لعرقلة إمكانات العمل للأعصاب الأعصاب السكري.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
أداة بالموجات فوق الصوتية للتوصيل العصبية بلوك في نماذج الفئران السكري
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
وقد أجريت العصب التوصيل كتلة مع محول عالية تركز على كثافة الموجات فوق الصوتية (هيفو) في نماذج حيوانية طبيعية والسكري مؤخرا. يمكن حظر هيفو عكسية التوصيل للأعصاب الطرفية دون الأضرار الأعصاب أثناء استخدام معلمة بالموجات فوق الصوتية مناسبة. كتلة مؤقتة وجزئية من إمكانيات عمل الأعصاب تبين أن هيفو يمكن أن تكون مفيدة علاج السريري لتخفيف الألم. يوضح هذا العمل إجراءات قمع إمكانات عمل الأعصاب الأعصاب في الفئران السكري في فيفو استخدام محول هيفو. الخطوة الأولى لتوليد الكبار ذكور الفئران الأعصاب السكري بحقن بالستريبتوزوتوسين (STZ). والخطوة الثانية لإجراء تقييم اعتلال الأعصاب المحيطية السكري في الفئران السكري الناجم عن STZ تحقيقا فراي فون إلكترونية ولوحة الساخن. والخطوة الأخيرة للسجلات في فيفو إمكانات العمل خارج الخلية العصب مكشوف ل sonication هيفو. الأسلوب الذي أظهر هنا قد تستفيد الدراسة للموجات فوق الصوتية تطبيقات مسكن.
المقدمة
الأدوية عن طريق الفم، الوخز بالإبر1، و تحفيز العصب الكهربائية2 قد استخدمت لعلاج اعتلال السكري مؤلمة. ومع ذلك، الآثار الجانبية للأدوية عن طريق الفم، الغازية عملية الوخز بالإبر، وتحفيز العصب الكهربائية تعوق الفعالية العلاجية، والامتثال للمريض. وقد تم التحقيق كتلة بالموجات فوق الصوتية للأعصاب المحيطية في نماذج حيوانية لعقود3،،من45. التوصيل في المختبر الأعصاب الوركي من الضفادع الخضراء الكبيرة كانت تحول دون عكسية بعد علاج الحبوب 10-20 من التعرض للموجات فوق الصوتية ل 0.4-1.0 s6. عامل واحد كتلة التوصيل العصب هو ارتفاع درجة الحرارة الناجمة عن الموجات فوق الصوتية7. للمرضى الذين يعانون من اعتلال، أنجز قمع إمكانات العمل مجمع العضلات (CMAPs) في العصب الشظوي المعرضة للموجات فوق الصوتية المنخفضة الكثافة ل 2 دقيقة8. وكان الوقت الانتعاش الكامل ضمن مدة 5 دقائق.
في الآونة الأخيرة، إدارة الأغذية والعقاقير في الولايات المتحدة وافق هيفو كعلاج غير الغازية لاورام الرحم الورم الليفي9، بالييشنز الألم العظام الانبثاث10، و11من سرطان البروستاتا. محول طاقة هيفو تنبعث الأشعة الصوتية خارج الجسم، ويحيل في مختلف الأنسجة وسائل الحزم وتتلاقى على الورم المستهدف في التركيز. فورا تشكيل المنطقة المحورية لتوليد آثار المترجمة على الأورام المستهدفة دون إلحاق الضرر بالانسجة المحيطة بها. كما طبق هيفو تعوق التوصيل العصب أو التسبب في إزالة التعصيب الأعصاب في تجارب في فيفو العادي الفئران سبراغ داولي (SD)12. وباﻹضافة إلى ذلك، كانت الآثار القصيرة الأجل والطويلة الأجل هيفو على الأعصاب الأعصاب التحقيق13. أظهرت النتائج السابقة أن كتلة التوصيل العصبية الحسية عكسها أو الدائم يمكن تحقيقه عن طريق هيفو مع المعلمات المناسبة. بالإضافة إلى التطبيقات، ومسكن هيفو قد تستعمل كأداة للتحقيق الإسهام النسبي لمكونات الأجهزة الطرفية والمركزية للعصب التوصيل الحصار للبحوث الأساسية للجهاز العصبي وتطوير الأدوية للألم. ولذلك، هناك حاجة إلى هيفو حظر منصة تكنولوجية محددة للأعصاب المحيطية في نماذج حيوانية. والغرض من هذه المقالة لإثبات إجراءات تسد جزئيا أو كلياً إمكانات العمل للأعصاب الطرفية في الفئران الأعصاب السكري قبل هيفو. تم إنشاء نماذج الفئران السكري وتقييم الأعراض الأعصاب المحيطية. وتقدم منصة هيفو وعمليات تجريبية محددة لعلاج الأعصاب الوركي الفئران.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
رعاية الحيوان المؤسسية واستخدام اللجنة "معاهد الصحة الوطنية" في تايوان وافقت كافة البروتوكولات الحيوان.
1-"التعريف النموذجي السكري" في "الذكور البالغين سبراغ"-داولي (SD) الفئران
- إزالة الكريات غذاء الفئران من القفص إلى سريع ذكور الفئران SD (300-350 غ) ح 6 قبل التعريفي STZ.
- سترات الصوديوم إعداد المخزن المؤقت (0.1 M، الأس الهيدروجيني 4.5).
- حل 1.05 ز مونوهيدرات حامض الستريك (ج 6 ح 8 س 7 · ح 2 س؛ mol. الوزن 210.14) في 50 مل المقطر المياه لجعل حل حمض الستريك 0.1 م.
- 1.47 حل ز سترات صوديوم ثنائي هيدرات (ج 8 ح 5 س 7 · 3 غ 2 ح 2 س؛ mol. بالوزن 294.12) في 50 مل المقطر المياه لجعل حل سترات الصوديوم 0.1 م.
- إضافة 25 مل حمض الستريك الحل إلى الحل سترات الصوديوم 25 مل. رصد سترات الصوديوم العازلة الرقم الهيدروجيني (pH 4.5) باستخدام مقياس الأس الهيدروجيني.
ملاحظة: المخزن المؤقت هو أدلى متساوي التوتر إضافة وحدة تخزين مناسبة للحل سترات الصوديوم 0.1 م.
- STZ تذوب في المخزن المؤقت لسترات الصوديوم 0.1 M العائد 50 ملغم/مل الحل STZ-
ملاحظة: الحل STZ حساسة للضوء، ولذلك، تغطية الحل STZ مع رقائق الألومنيوم واستخدامها ضمن 15-20 دقيقة - رسم الحل STZ 50 مغ/كغ في محقن الأنسولين أو السلين 1 مل مع إبرة مقياس 26 إلى 28-تنظيف مكان الحقن مع جهاز pad إيثانول وحقن إينترابيريتونيلي الحل STZ في الربع العلوي الأيمن من البطن لتجنب إتلاف أجهزة البطن.
- توريد الفئران مع المياه السكروز 10% كمصدر المياه الوحيد ل 48 ساعة بعد الحقن STZ لمنع نقص السكر في الدم.
2. "تأكيد السكري" في الفئران التي يسببها STZ
- مراقبة تركيز جلوكوز البلازما صيام جميع الفئران حقن من قبل STZ وظيفة ح 72 مع مقياس جلوكوز.
- سريع الفئران السكري الناجم عن STZ ح 15 قبل قياس صيام الدم مستوى السكر.
- كبح جماح الفئران في كيس من ضبط النفس وفضح ذيول لجمع الدم خلال قياسات الجلوكوز في الدم- استخدام
- من مجلة لانسيت دم بوخز غيض الذيل للحصول على قطره دم صغيرة. وضع قطره الدم على شريط اختبار من جلوكوز. تسجيل مستويات جلوكوز البلازما الصائم.
ملاحظة: المقياس الجلوكوز يكشف ويعرض مستوى الجلوكوز في الدم في وحدات من مغ/دل. استبعاد الجرذان مع الصيام مستويات الجلوكوز في الدم أقل من 150 ملغ/دل بعد أسبوعين من STZ-الحث.
3. تقييم "اعتلال الأعصاب المحيطية السكري" في "الفئران السكري"
- تقييم اللودينيا الميكانيكية بالالكترونية فون فري.
- روض المستحثة STZ الفئران السكري في قفص على أرضية شبكة معدنية قطرها 1 سم لمدة 30 دقيقة قبل أن يقيم هند مخلب استجابة الانسحاب.
- استخدام تحقيق فراي فون إلكترونية مع نصيحة جامدة (0.8 ملم في القطر) يدوياً تطبيق الضغط على سطح أخمصي مخلب هند من الفئران، وزيادة الضغط تدريجيا حتى ينظر إلى استجابة انسحاب مخلب.
- سجل الضغط الذي يظهر في النظام، وكرر بقياس 5 مرات في الفئران، مع فاصل زمني 30 ثانية بين كل قياس.
- تقييم هايبرالجيسيا الحرارة مع صفيحة ساخنة.
- روض الفئران السكري الناجم عن STZ على صفيحة (24 ± 0.5 درجة مئوية) لمدة 10 دقائق قبل تقييم استجابة الألم.
- إزالة ووضع الفئران في اقفاصها بعد التعود وتسخين صفيحة والحفاظ على صفيحة ' s درجة حرارة 55 ± 0.5 درجة مئوية.
- مكان الفئران على صفيحة ساخنة أثناء بدء جهاز ضبط الوقت في وقت واحد.
- عند الفئران يسلك السلوكيات المتميزة، مثل لعق مخلب هند أو طبيعي عبها هند مخلب وإيقاف جهاز ضبط الوقت وتسجيل الكمون الانسحاب.
ملاحظة: إذا كان فأر لا تعبر عن سلوكيات متميزة بعد 20 s (20 s وقت التوقف)، إنهاء الاختبار صفيحة وإزالة الفئران من صفيحة.
4. في فيفو العصب "انسداد التوصيل" مع "محول هيفو"
ملاحظة: التجربة في فيفو يبدأ في الأسبوع 5 بعد حقن STZ 50 مغ/كغ-
- تنفيذ الإجراءات الحيوان قبل تجميد CMAPs مع sonication هيفو.
- تعقيم الأدوات الجراحية (مشرط ومقص وملقط وربط الزجاج) في اﻷوتوكﻻف قبل الجراحة.
- تخدير الفئران بالحقن داخل الخليط تيليتاميني/زولازيبام (40 مغ/كغ) وإكسيلازيني (10 مغ/كغ) أو عن طريق استنشاق 1.75 في المائة من إيسوفلوراني عبر المبخر إيسوفلوراني. مكان الفئران على منصة تدفئة للحفاظ على درجة حرارة الجسم. ضع
- على الفئران لإجراء عملية جراحية في ريكومبينسي البطني. تطبيق مرهم العين. تمديد ساق الفئران وقرصة سطح أخمص القدم مع أظافر اليدين للتأكد من عمق التخدير. إذا كانت الفئران تظهر استجابات الانسحاب، تطبيق التخدير إضافية.
- إزالة الشعر من الفخذ والسفلي الخلفي الفئران ماكينة كهربائية. تطبيق اليود السائل مع شاش نظيفة في موقع العمليات الجراحية ودائري التحرك الشاش إلى الخارج موقع الجراحية. استخدام جهاز pad الكحول لمسح اليود السائل مع نفس الحركة الدائرية. يتم إجراء هذه التجربة على موقع اليسار واليمين الجراحية. كرر هذا الإجراء في موقع العمليات الجراحية الأخرى عند تنفيذ الخطوة التالية للإجراء.
- استخدام مقص جراحي معقم أو مشرط جعل شق الجلد في الفخذ الظهرية. استخدم المقص جراحية غير حادة لفصل الأنسجة تحت الجلد بعناية وتأمين الجلد مع الجلد هوكس-يمكن النظر إلى عظم الفخذ في العضلات.
- استخدام المقص لفصل العضلات موازية لعظم الفخذ بعناية حتى ألياف العصب الوركي منتصف الفخذ المضمنة في العضلات مرئية. بعناية باستخدام ربط زجاج لفصل العصب الوركي منتصف الفخذ من الأنسجة الضامة المحيطة والعضلات.
- موضع العصب الوركي في منطقة التنسيق هيفو استخدام التبعي عصب مصنوعة خصيصا ( الشكل 1 و الشكل 3)-
ملاحظة: التبعي العصب مصنوعة خصيصا يتكون من 3 عناصر ( الشكل 3). كافة مكونات مصنوعة من polymethylmethacrylate شفافة (البولي ميثيل ميثا اكريلات). الصفحات الخارجية الهيكل العلوي للعنصر الأول هو 2.5 مم طويل القامة و M10XP0.7 ( الشكل 4 أ). البئر وسط 4.0 مم هول من خلال العنصر. افتتاح أسفل البئر مختومة بورقة من الشريط. قطر فتحه 1.2 مم والمسافة بين الطائرة وسط فتحه والسطح العلوي للعنصر الأول هو 3.1 ملم. "المكون الثاني" يتكون من هيئة رئيسية وأربعة أرجل والهيكل السفلي ( الشكل 4 باء). الصفحات الداخلية للهيكل السفلي هو 2.5 مم طويل القامة و M10XP0.7 لتناسب خيط خارجي مكون أنا. قطر الثقب المركزي هو نفس البئر وسط مكون أنا. أبعاد الهيئة الرئيسية 32 مم وقطرها 5.4 مم في السمك. وينتشر شكل متناظر أربعة أرجل. صممت قدمين قصيرة مماثلة للمحاذاة وقدمين طويلة مطابقة العمل لتركيب على العنصر الثالث. القطر الخارجي وارتفاع المكون الثالث هي 41 و 9.2 ملم. مؤشر الترابط الداخلي M36XP1.0 ومن خلال ثقب 27.5 ملم في القطر (< طبقة قوية = "إكسفيج"> 4 الرقم). المخروط تفتق جوفاء مع افتتاح أعلى من 84 ملم في القطر وافتتاح القاع 27.5 ملم في القطر. الارتفاع 57.5 ملم ( الشكل 5A).- قبل التجربة، نقع التبعي العصب اﻷكريليك مصنوعة خصيصا في حل التبييض لمدة 30-60 دقيقة تليها مغطس في الماء المعقم.
- استخدام ربط زجاج، رفع العصب بعناية ووضعها في الفتحة للعنصر أولاً
- المسمار المكون الثاني للعنصر أولاً ملء المركزي جيدا من مكون أنا مع المسابقة ' حل s للحفاظ على الدعوة والأعصاب بالموجات فوق الصوتية-
- المسمار المكون الثالث للمخروط الإسكان هيفو. قفص الاتهام المكون الثالث مع العنصر الثاني من خلال أربعة أرجل العنصر الثاني-
ملاحظة: يتم محاذاة مركز ثلاثة عناصر هندسية ومحول. المسافة بين العصب ومحول مساو للبعد البؤري، الذي يضمن العصب داخل المنطقة المحورية هيفو.
- إدراج زوج واحد من العلاج بوخز الإبر في أصل العصب الوركي وزوج الأخرى في عضلة الساق. توصيل كل زوج من الإبر إلى نظام حيازة الكهربية من خلال كابل محوري كهربائية ( الشكل 1).
ملاحظة: في واحدة من نهاية الكابل هي قصاصتين التمساح مقطع الإبر اثنين بشكل منفصل، وفي الطرف الآخر من الكبل موصل BNC ربط النظام. الأزواج من العلاج بوخز الإبر تعمل كأقطاب محفزة في العصب الوركي وتسجيل أقطاب كهربائية في عضلة الساق.- بتعيين معدل أخذ العينات وعرض النطاق الترددي من نظام حيازة الكهربية إلى 50 كيلو هرتز وهرتز 70--3 كيلو هرتز، على التوالي. تطبيق حافز المرجع الأعلى مع عرض نبض 0.1 مللي ثانية إلى أقطاب كهربائية محفزة في أصل العصب الوركي.
- تسجيل كمابس من أقطاب تسجيل وتضخيم CMAPs مع مكبر للصوت المدمج في نظام اكتساب الكهربية.
ملاحظة: استخدام مكبر للصوت المدمج في نظام اكتساب الكهربية لتضخيم الإشارات العصبية وسجل CMAPs من أقطاب تسجيل مع نظام حيازة الكهربية.
- استخدام محول هيفو ميجاهرتز 2.68 تجارية لقمع كمابس في الفئران الأعصاب السكري.
ملاحظة: يتم وصف مواصفات محول كما يلي: وعاء كروي عنصر مفرد مع فتحه قطرها 6 سم والبعد البؤري 5 سم، ومنطقة تنسيق الاهليلجي 4 ملم في العمق و 0.8 ملم في العرض في الميدان مجاناً. مليئة- تزج تغطي المخروط كروية، محول هيفو والمخروط في الخزان المياه يطرد. وضع محول هيفو في المخروط كروية وإصلاح غطاء المخروط في افتتاح أعلى المخروط كروية قبل 6 مسامير الرأس ( الشكل 5 (ب)). بعد الفقاعات في المخروط كروية يطردون بطبيعة الحال بسبب انخفاض كثافة الفقاعات بالمقارنة مع المياه، ختم افتتاح الواجهة الأمامية للمخروط بشريط شفاف 0.03 mm سميكة. برغي المكون الثالث على مخروط كروية.
- إخراج محول هيفو مع مخروط كروية والمكون الثالث من خزان المياه يطرد.
ملاحظة: مياه التناضح العكسي المستخدمة في هذه الدراسة هو الماء المنقي بعملية التناضح العكسي. هو غلى مياه التناضح العكسي طرد الغاز. بعد التبريد، يتم الحصول على الماء ديجاسيد في دبابة مختومة فردية-
- وضع مكون أنا في الفضاء بين العصب والعضلات بعناية، وموقف العصب في فجوة المكون "أولاً تنفيذ" الخطوات 4.2.3 و 4.2.4 التأكد من أن العصب داخل منطقة التركيز هيفو ( الشكل 3A )-
- ربط مولد دالة ومضخم الترددات الراديوية. قم بتوصيل مكبر للصوت السلطة محول هيفو لتوليد الشعاع هيفو. تعيين يدوياً إخراج الجهد مولد دالة إلى هيفو محول الطاقة عبر مكبر للصوت السلطة. يدوياً إيقاف تشغيل مولد الدالة مرة واحدة وقت التعرض هيفو متروك. مراقبة الوقت باستخدام جهاز ضبط وقت.
ملاحظة: كثافة والطاقة من شعاع هيفو المستخدمة في هذه الدراسة هي 2,810 ث/سم 2 و 84 ي/مم 2، على التوالي.
في نفس الوقت، تسليم - التحفيز عن طريق نظام حيازة الكهربية (الخطوة 4، 3) وشعاع هيفو عبر نظام هيفو (الخطوة 4.6) للعصب الوركي أثناء تسجيل في كمابس. تدريجيا بزيادة التعرض هيفو على العصب الوركي من 3 ق، 5 s إلى 8 s حتى لوحظ انخفاض أو تثبيط السعة كمابس.
شعاع
- سجل CMAPs مرة في الثانية أثناء تسليم هيفو. وبعد مراقبة التغيير في السعة ل CMAPs، إيقاف النظام هيفو ويدويًا انقر على أيقونة سجل في البرنامج اقتناء الكهربية إلى سجل كمابس كل 2 دقيقة في وقت مبكر 10 دقائق، كل 5 دقائق في 30 دقيقة على التوالي، وكل 10 دقيقة في آخر المرحلة حتى وقت التسجيل تصل إلى 2 حاء
- عنصر منفصل الثاني والثالث من العصب التبعي ( الشكل 3) لإزالة محول هيفو من موقع شق. عنصر منفصل الثاني والإفراج عن العصب الوركي المضمون. خياطة الموقع الجراحي للفئران السكري بخيوط الوتر الكروميك 4-0 بعد تسجيل في كمابس. تطبيق اليود السائل إلى موقع الجراحة للوقاية من العدوى.
- وضع الأقفاص في لوحة تدفئة والسماح للفئران لاسترداد في اقفاصها قبل إعادتها إلى مرفق الحيوان. توفر الفئران مع الايبوبروفين في مياه الشرب لمدة 3 أيام أو داخل حقن البوبرينورفين (0.05-0.1 مغ/كغ)-
- إدراج أقطاب محفزة وتسجيلها في أصل العصب الوركي وعضلات الساق الفئران الأعصاب السكري تخديره كما هو موضح في الخطوات 4.1.2 و 4.3 في أيام 7 و 14 و 28 بعد sonication هيفو الأولى. كرر الخطوات من 4.3.1 إلى 4.3.2.
- وضع الأقفاص في لوحة تدفئة والسماح للفئران لاسترداد في اقفاصها قبل نقل الأقفاص لمرفق الحيوان.
- Euthanize في الفئران بعد التجربة. وضع الفئران في غرفة لثاني أكسيد الكربون. انتظر حوالي 5 دقائق للفئران التوقف عن التنفس. التأكد من أن توقف القلب عن الضرب-
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
وبينت الدراسة في فيفو ، مع جرعة هيفو سونيكيشن s 3 في شدتها 2,810 ث/سم2، قمعت كمابس نسبة 20 في المائة من خط الأساس، ولكنها قد تعافي تماما بعد 30 دقيقة (الشكل 2A، الماس) وكانت تقريبا ثابت في فترة 28 يوما (الشكل 2Bوالماس). هيفو s 5 التعرض في نفس الكثافة، CMAPs انخفضت إلى 65.4 في المائة (9.5 في المائة) من خط الأساس في دقيقة 4 وتعافي 73.7 في المائة (12.6%) من خط الأساس خلال 120 دقيقة (الشكل 2A<...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
قمع الجزئية والمؤقتة action potentials الأعصاب الأعصاب من الفئران السكري في فيفو ولحظة وقوع أثر حظر بعد العلاج هيفو على حد سواء وقد لوحظت. أظهرت دراسة متابعة 28 يوما في كمابس أن حصار التوصيل العصبية آمنة يمكن أن تنفذ في تعرض هيفو مناسبة. نتيجة لذلك البروتوكول أعلاه من معاملة هيفو يمكن أن توفر حلاً بديلاً لكتلة التوصيل المعكوس للأعصاب الوركي في الفئران السكري.
في هذا الأسلوب، لا انحطاط العصبية، ويمكن استرداد الأعصاب الحسية تماما على مدى فترة من ساعات إلى عدة أيام في إصابات الأعصاب معتد...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.
شكر وتقدير
الدراسة تدعمها وزارة العلوم والتكنولوجيا (المشروع الأكثر 105-2221-E-400-001) والوطنية الصحية معاهد البحوث (المشروع BN-105-PP-10)، تايوان.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| ستربتوزوتوسين | سيجما | 85882 | |
| حامض الستريك مونوهيدرات | سيجما | C1909 | |
| سترات ثلاثي الصوديوم ثنائي هيدرات | سيجما | W302600 | |
| مقاييس الجلوكوز | روش أكيو-تشيك أكتيف | GC | |
| جهاز فون فراي الإلكتروني | IITC علوم الحياة | 2390 | |
| لوحة ساخنة | IITC علوم | ||
| الحياة بيوباك MP36 نظام الاستحواذ | Biopac Systems، Inc. | ||
| محول الطاقة HIFU | Sonic Concepts | H108 | |
| مولد وظيفة | Agilent | 33250A | |
| مضخم طاقة | إلكترونيات & ابتكار | 1040L | |
| Rats | Biolasco تايوان | Sprague-Dawley | |
| Puralube مرهم بيطري | Dechra | ||
| isoflurane مبخر | باركلاند Scientific | V3000PS | |
| Isoflurance | Attane | ||
| Restraint Bag (Decapicones) | Braintree Scientific | DC 200 |
المراجع
- Abuaisha, B. B., Costanzi, J. B., Boulton, A. J. Acupuncture for the treatment of chronic painful peripheral diabetic neuropathy: A long-term study. Diabetes Res Clin Pract. 39 (2), 115-121 (1998).
- Hamza, M. A., et al. Percutaneous electrical nerve stimulation: A novel analgesic therapy for diabetic neuropathic pain. Diabetes Care. 23 (3), 365-370 (2000).
- Ballantine, H. T. Jr, Bell, E., Manlapaz, J. Progress and problems in the neurologic applications of focused ultrasound. J Neurosurg. 17, 858-876 (1960).
- Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. Image-guided high-intensity focused ultrasound for conduction block of peripheral nerves. Ann Biomed Eng. 35 (1), 109-119 (2007).
- Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. High-intensity focused ultrasound attenuates neural responses of sciatic nerves isolated from normal or neuropathic rats. Ultrasound Med Biol. 41 (1), 132-142 (2015).
- Young, R. R., Henneman, E. Reversible block of nerve conduction by ultrasound. Arch Neurol. 4, 83-89 (1961).
- Lele, P. P. Effects of focused ultrasonic radiation on peripheral nerve, with observations on local heating. Exp Neurol. 8 (1), 47-83 (1963).
- Hong, C. Z. Reversible nerve conduction block in patients with poly- neuropathy after ultrasound thermotherapy at therapeutic dosage. Arch Phys Med Rehabil. 72 (2), 132-137 (1991).
- Okada, A., Morita, Y., Fukunishi, H., Takeichi, K., Murakami, T. Non-invasive magnetic resonance-guided focused ultrasound treatment of uterine fibroids in a large Japanese population: impact of the learning curve on patient outcome. Ultrasound Obstet Gynecol. 34 (5), 579-583 (2009).
- Huisman, M., et al. International consensus on use of focused ultrasound for painful bone metastases: current status and future directions. Int J Hyperthermia. 31 (3), 251-259 (2015).
- Dickinson, L., et al. Medium-term Outcomes after Whole-gland High-intensity Focused Ultrasound for the Treatment of Nonmetastatic Prostate Cancer from a Multicentre Registry Cohort. Eur Urol. 70 (4), 668-674 (2016).
- Foley, J. L., Little, J. W., Vaezy, S. Effects of high-intensity focused ultrasound on nerve conduction. Muscle Nerve. 37 (2), 241-250 (2008).
- Lee, Y. F., Lin, C. C., Cheng, J. S., Chen, G. S. Nerve conduction block in diabetic rats using high-intensity focused ultrasound for analgesic applications. Br J Anaesth. 114 (5), 840-846 (2015).
- Donoff, R. B. Nerve regeneration: basic and applied aspects. Crit Rev Oral Biol Med. 6 (1), 18-24 (1995).
- Fawcett, J. W., Keynes, R. J. Peripheral nerve regeneration. Annu Rev Neurosci. 13, 43-60 (1990).
- Nightingale, S. The neuropathic pain market. Nat Rev Drug Discov. 11 (2), 101-102 (2012).
- Lipton, R. B., et al. Single-pulse transcranial magnetic stimulation for acute treatment of migraine with aura: a randomised, double-blind, parallel-group, sham-controlled trial. Lancet Neurol. 9 (4), 373-380 (2010).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
الوسوم
