مقالة منهجية

تنقية البروتينات السطحية للبروتينات الخلية من ريبيسفالوس ميكروبلوس الخلايا الظهارية الظهارية

DOI:

10.3791/55747

⸱

يوليو 23, 2017

 ,  , 
1Queensland Alliance for Agriculture & Food Innovation, The University of Queensland, 2Centre for Comparative Genomics, Murdoch University

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم استخدام منهجية تعديل التدرج الطرد المركزي الكثافة المعدلة لعزل الخلايا الظهارية من الأنسجة ريفيسفالوس ميكروبلوس الأمعاء. والبروتينات سطح ملزمة كانت البيروكسيديز وتنقيته من خلال الخرز المغناطيسي ستريبتافيدين لاستخدامها في التطبيقات المصب.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

رابيسيفالوس ميكروبلوس - علامة الماشية - هو الطفيليات الخارجية الأكثر أهمية من حيث الأثر الاقتصادي على الثروة الحيوانية كمتجه لعدة مسببات الأمراض. وقد تم تكريس الجهود لمراقبة الماشية من أجل الحد من آثاره الضارة، مع التركيز على اكتشاف المرشحين اللقاح، مثل BM86، وتقع على سطح الخلايا الظهارية الأمعاء القراد. وتركز البحوث الحالية على استخدام كدنا والمكتبات الجينومية، للكشف عن المرشحين اللقاح الآخرين. عزل خلايا القناة الهضمية القراد يشكل ميزة هامة في التحقيق في تكوين البروتينات السطحية على غشاء الخلايا الهضمية القراد. هذه الورقة تشكل طريقة جديدة وقابلة للتنفيذ لعزل الخلايا الظهارية، من محتويات القناة الهضمية القراد من شبه محفور R. ميكروبلوس. يستخدم هذا البروتوكول تسيب و إدتا للافراج عن الخلايا الظهارية من الأنسجة دعم تحت الظهارية وتقطيع الكثافة الطرد المركزي المتقطعنت لفصل الخلايا الظهارية من أنواع الخلايا الأخرى. وكانت البروتينات السطحية الخلية البيروكسيديز ومعزولة من الخلايا الظهارية الأمعاء القراد، وذلك باستخدام الخرز المغناطيسي مرتبطة ستريبتافيدين السماح للتطبيقات المصب في فاكس أو لك-مس / MS- التحليل.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

و رابيسيفالوس ميكروبلوس ، علامة الماشية، هو الطفيليات الخارجية الأكثر أهمية من حيث الأثر الاقتصادي على صناعة الماشية في المناطق الاستوائية وشبه الاستوائية كما أنها تتجه حمى القراد البقري (بابيسيوسيس)، أنابلاسموسيس و بيروبلاسموسيس الخيول 1 ، 2 ، 3 ، 4 . وقد تم تكريس الجهود لمراقبة رقعة الماشية، لتقليل التأثير الضار، إلا أن الطرق التقليدية مثل استخدام مبيدات الكيماويات الكيميائية لها عيوب ضمنية، مثل وجود مخلفات كيميائية في الحليب واللحوم، والزيادة في انتشار القراد المقاوم كيميائيا 5 ، 6 ، 7 . ونتيجة لذلك، تم دراسة تطوير طرق بديلة لمراقبة القراد، مثل استخدام الماشية المقاومة الطبيعية، والمكافحة البيولوجية (المبيدات الحيوية) واللقاحاينيس 4 و 5 و 6 و 7 و 8 و 9 .

في السعي وراء البروتينات القادرة على استخدامها كمرشحين لقاح، وتركز البحوث الحالية على القناة الهضمية القراد. تم بناء جدار ميدغوت من طبقة واحدة من الخلايا الظهارية يستريح على الصفيحة القاعدية رقيقة، مع خارج الصفيحة القاعدية تشكيل شبكة من العضلات. وتشير الملاحظات المجهر الخفيفة والإلكترون أن ميدجوت يتكون من ثلاثة أنواع من الخلايا: الاحتياطي (غير متمايزة)، إفرازية، والجهاز الهضمي. يختلف عدد أنواع الخلايا اختلافا كبيرا تبعا للمرحلة الفسيولوجية. الخلايا الإفرازية والهضمية تنشأ من خلايا احتياطية 18 ، 19 ، 20 .

بناء مكتبات [كدنا]لفحص تكوين الأمعاء القراد أدى إلى تحديد البروتينات المستضدية، مثل Bm86، كما المرشحين المحتملين اللقاح 2 ، 3 ، 4 . ويترجم بروتين سكري Bm86 على سطح خلايا الأمعاء القراد ويحفز استجابة مناعية وقائية ضد القراد الماشية ( R. ميكروبلوس ) في الماشية تطعيم. المضادة لل Bm86 إيغس التي تنتجها المضيف تحصين يتم تناولها من قبل القراد، والتعرف على هذا المستضد على سطح خلايا القناة الهضمية القراد، وبعد ذلك يزعج وظيفة القناة الهضمية الأمعاء والنزاهة. وقد أظهرت اللقاحات التي تستند إلى مستضدات Bm86 السيطرة الفعالة على R. ميكروبلوس و ريبيسفالوس أنولاتوس، عن طريق الحد من عدد والوزن والقدرة الإنجابية للنساء الانخراط ، مما أدى إلى انخفاض الإصابة اليرقات في الأجيال القراد لاحق 4 . ومع ذلك، اللقاحات Bm86 مقرها ليست فعالة ضد جميع مراحل القراد ولهاأظهرت فعالية غير مرضية ضد بعض السلالات الجغرافية من R. ميكروبلوس ، وبالتالي فإن لحوم البقر ومنتجات الألبان اعتمدت بشكل سيء هذه اللقاحات 2 ، 4 .

القدرة على عزل الخلايا الظهارية من الأمعاء القراد هو ابتكار كبير من شأنه أن يتيح تطور البحوث لتحديد تكوين غشاء البروتين بما في ذلك التشكل وعلم وظائف الأعضاء في ظل ظروف بيئية مختلفة. الطريقة الموصوفة هنا تستخدم عامل خلات إثيلينديامينيتتراسيتيك حمض (إدتا) و تريس عامل تخفيض (2-كاربوكسيثيل) فوسفين (تسيب) لاطلاق سراح الظهارة من الأنسجة دعم الظهارية الفرعية 10 . يتم استرداد ظهارة بعد انقطاع الميكانيكية من الأنسجة عن طريق الهز، تليها الطرد المركزي التدرج المتقطع في بيركول. هذه الورقة تصف تقنية مجدية ورائعة لعزل القراد الوراثي إيبيثيليال الخلايا. البروتينات السطحية الخلية البيروكسيديز، معزولة عن سطح هذه الخلايا الظهارية يمكن تحليلها لاحقا في التطبيقات المصب مثل فاكس و / أو لك-مس / MS- التحليل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. تشريح ظهارة الأمعاء من R. ميكروبلوس

  1. جمع القراد شبه انغورجد من الماشية في يوم التجربة. تشريح القراد في غضون 24 ساعة بعد إزالة من المضيف.
  2. التمسك شريط من شريط لاصق إلى الجزء السفلي من 92 ملم × 16 مم طبق بتري. إضافة قطرة من الغراء عظمى على الشريط. وضع القراد، الجانب البطني إلى أسفل على الغراء عظمى، والسماح لتجف لمدة 2 دقيقة.
  3. صب 100 مل من الفوسفات مخزنة المالحة (بس) في طبق بتري، أو حتى القراد هو المغمور تماما.
  4. استخدام حجم 11 مشرط، وقطع من أعلى العينين إلى المهرجانات أسفل، على جانبي القراد.
  5. باستخدام ملقط معقم، وإزالة تماما الترس الطبلي وalloscutum، لفضح الأعضاء الداخلية.
  6. إزالة غرامة بيضاء مثل تشبه الأعضاء (القصبة الهوائية) والأغشية الأخرى لمنع التلوث.
  7. إزالة الأمعاء باستخدام ملقط، من خلال معسر المنطقة العليا وسحب منالذبيحة. إزالة أي أنسجة الأمعاء المتبقية، وضمان عدم وجود أي تشريح الأنسجة الأخرى.
  8. مخزن الأمعاء في الحل الملح المتوازن الجليد هانك الباردة (هبس) دون كلوريد الكالسيوم وكبريتات المغنيسيوم مع كوكتيل بروتينز المانع (بيك). التقط تجميد الشجاعة في الجليد الجاف وتخزينها في -20 درجة مئوية.
    ملاحظة: للمساعدة في تشريح القناة الهضمية وتفاصيل الأعضاء الداخلية القراد تشير إلى الفصل 3.1 من D. سوننشاين، "علم الأحياء من القراد" 19 .

2. الخلايا الظهارية التفكك

  1. صب الأمعاء تشريح على مصفاة الخلية 70 ميكرون داخل أنبوب 50 مل.
  2. مسح الأنسجة الأمعاء مع 50 مل الجليد هبس الباردة مع الموافقة المسبقة عن علم حتى الحل يعمل واضح، والشجاعة تأخذ على مظهر أبيض / واضح.
  3. إعادة تعليق الشجاعة في 30 مل الجليد هبس الباردة مع الموافقة المسبقة عن علم، مزيج بلطف وأجهزة الطرد المركزي في 500 x ج في 4 درجات مئوية لمدة 10 دقيقة إلى بيليه الأمعاء. إزالة طاف وتكرار عملية غسل ثلاث مرات.
  4. تصفية تعليق من خلال مصفاة الخلية 250 ميكرون، دوامة تدفق من خلال وتصفية من خلال مصفاة الخلية 70 ميكرون جمع المتبقية من خلال تدفق.
  5. أجهزة الطرد المركزي تعليق في 500 x ج في 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة لتكوير الخلايا واحدة.

3. عزل الخلايا الظهارية واحدة باستخدام التدرج كثافة الطرد المركزي

  1. إعداد التدرج الكثافة الطرد المركزي (على سبيل المثال ، بيركول) عن طريق الترشيح من خلال ورقة ما قبل التصفية AP15. إعداد 40٪ و بيركول 20٪ في م 2 0 (V / V) وباردة في 4 درجات مئوية لمدة 1 ساعة قبل طبقات التدرج.
  2. استخدام تحويمضخة مجموعة في أدنى سرعة، طبقة 3 مل من 40٪ الكثافة التدرج الطرد المركزي إلى أنبوب 16 مل نابذة فائقة السرعة، والسماح لها لتسوية على الجليد لمدة 15 دقيقة. سرعة المضخة يجب أن يؤدي إلى <1 مل لكل دقيقة معدل التدفق.
  3. إمالة الأنبوب إلى زاوية 45 درجة، استخدام مضخة تحوي لطبقة 20٪ الكثافة التدرج الطرد المركزي على رأس طبقة 40٪. سرعة المضخة ينبغي أن يؤدي إلى <1 مل لكل دقيقة معدل التدفق. السماح للطبقات لتسوية على الجليد لمدة 15 دقيقة.
  4. استخدام مضخة تحوي في <1 مل لكل دقيقة معدل التدفق إلى طبقة 3 مل من دمم المتوسطة التي تحتوي على خلايا الأمعاء القراد على التدرج الطرد المركزي كثافة 20-40٪.
  5. برنامج الطرد المركزي لأقصى تسارع والحد الأدنى التباطؤ. أجهزة الطرد المركزي في 600 x ج لمدة 10 دقيقة. جمع الفواصل بين دمم: 20٪ الكثافة التدرج الطرد المركزي، و 20٪: 40٪ الكثافة التدرجات الطرد المركزي لعزل الخلايا الظهارية واحدة. تخزين البينات التي تم جمعها في 4 درجات مئوية لتحليلات لاحقة.

4. تقييم عزل الخلية

  1. عدادة الكريات
    1. تنظيف الشريحة هيماسيتوميتر مع الكحول.
    2. .Re تعليق الخلايا عن طريق بيبتينغ بلطف الخلايا صعودا وهبوطا. ماصة 100 ميكرولتر من تعليق الخلية ومكان في أنبوب ميكروسنتريفوج 1.5 مل.
    3. إضافة 400 ميكرولتر من 0.4٪ تريبان الأزرق. مزيج بلطف عن طريق عبها أنبوب.
    4. ماصة 100 ميكرولتر من تريبان تعليق خلية المعالجة الزرقاء لملء ببطء كل ​​من غرف الكريات.
    5. وضع عدادة الكريات تحت المجهر الضوئي، مع التركيز على خطوط الشبكة من عدادة الكريات مع هدف 10X.
    6. باستخدام عداد رصيده باليد، عد الخلايا غير ملوثين الحية ضمن مجموعة من 16 المربعات. داخل المربع نفسه، عد الخلايا الميتة الزرقاء. استمر في العد حتى يتم حساب أربع مجموعات من 16 مربعا.
    7. حساب مجموع الخلايا لكل مل باستخدام الصيغة:
      47eq1.jpg "/>
    8. حساب بقاء الخلية المئوية باستخدام الصيغة:
      figure-protocol-1
  2. خلية عزل التصور
    1. تمييع 1 ميكرولتر من الخلايا المعزولة في 9 ميكرولتر من هبس في أنبوب ميكروسنتريفوج 1.5 مل. نفض الغبار أنبوب ميكروسنتريفوج بلطف لخلط.
    2. ماصة 5 ميكرولتر من الخلايا المعزولة في هبس في منتصف شريحة زجاجية. تطبيق ثلاث قطرات من وسط تصاعد مع 4 '، 6-دياميدينو-2-فينيليندول (دابي).
    3. احتضان الشريحة في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق. ضع بعناية غطاء زلة على التحضير، وتجنب فقاعات الهواء.
    4. تصور الخلايا الملطخة دابي في الإثارة 360 نانومتر والانبعاثات في 460 نانومتر تحت المجهر الفلورسنت.

5. خلية بروتين السطح بيوتينيلاتيون

  1. بيوتينيلات 100 ميكرولتر من الخلايا الظهارية خلية واحدة باستخدام البيوتين (نوع A) الإقترانمجموعة، في نسبة المولي من 1: 1 سطح البروتين إلى تصريف، وفقا لتعليمات الشركة الصانعة
  2. لتحلل الخلية، إضافة 100 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني، 1٪ تريتون X-100، 10٪ الجلسرين، 100 ميكرومتر الجلوتاثيون المؤكسد و بيك إلى الخلايا البيروكسيديز. احتضان على الجليد لمدة 1 ساعة مع خلط لطيف كل 10 دقيقة.
  3. أجهزة الطرد المركزي الخلايا البيروكسيديز في 20،000 زغ في 4 درجات مئوية لمدة 20 دقيقة لبيليه المواد غير قابلة للذوبان. جمع طاف تحتوي على السيتوبلازمية، والبروتينات الغشاء البيروكسيديز.
  4. تحديد تركيز البروتين باستخدام مقايسة برادفورد.

6. عزل البروتينات السطحية البيروكسيديز

  1. إضافة 50 ميكرولتر من ستريبتافيدين الخرز المغناطيسي إلى أنبوب ميكروسنتريفوج 1.5 مل.
  2. وضع أنبوب في موقف المغناطيسي، وجمع الخرز ضد الجانب من الأنبوب. إزالة وتجاهل طاف.
  3. إضافة 1000 ميكرولتر من تبس، 0.1٪ توين 20 إلى الأنبوب. مزيج بلطف وجمع الخرز مع ستان المغناطيسيد. إزالة وتجاهل طاف.
  4. الجمع بين 40 ميكروغرام من البروتينات سطح الخلية البيروكسيديز، المخفف إلى 300 ميكرولتر في برنامج تلفزيوني 1X مع الخرز المغناطيسي غسلها. احتضان لمدة 2 ساعة في درجة حرارة الغرفة مع الإثارة.
  5. جمع الخرز مع موقف المغناطيسي، وإزالة وتجاهل طاف.
  6. إضافة 300 ميكرولتر من تبس، 0.1٪ توين -20 إلى أنبوب، بلطف خلط لإعادة تعليق الخرز. جمع الخرز، وإزالة وتجاهل طاف. كرر هذه الخطوة غسل مرتين.
  7. إضافة 100 ميكرولتر من 0.1 M الجلايسين الرقم الهيدروجيني 2.0 إلى الخرز المغناطيسي، واحتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق. جمع الخرز وإزالة طاف تحتوي على إلوتيد البروتينات السطحية البيروكسيديز.
  8. تصور البروتينات السطحية المعزولة على 4-20٪ تريس-موبس هلام سدز-بادج.

7. تقييم البروتين السطحي البيروكسيديز

  1. نقطة لطخة
    1. قطع 7 سم × 3 سم قطاع غشاء النيتروسليلوز.
    2. تطبيق 10 ميكروغرام مجموع القراد غو(من 1.8 أعلاه)، و 10 ميكروغرام من البروتين السطح البيروكسيديز إلى الغشاء. السماح للتجفيف لمدة 15 دقيقة في درجة حرارة الغرفة.
    3. نقل إلى وعاء وغمر في 100 مل من عرقلة العازلة. احتضان في درجة حرارة الغرفة مع الإثارة لمدة ساعة. تجاهل العازلة حظر.
    4. غسل غشاء النتروسليلوز في 100 ميكرولتر برنامج تلفزيوني، 0.05٪ توين 20 لمدة 5 دقائق مع الإثارة. تجاهل غسل العازلة وكرر يغسل لمدة ثلاث مرات.
    5. احتضان في 1/5000 Streptavidin- البيروكسيداز الفجل (هرب) في 100 ميكرولتر برنامج تلفزيوني، 0.05٪ توين 20 لمدة 2 ساعة مع التحريض في درجة حرارة الغرفة، وتجاهل أي حل المتبقية.
    6. غسل غشاء النتروسليلوز في 100 ميكرولتر من برنامج تلفزيوني، 0.05٪ توين 20 لمدة 5 دقائق مع الإثارة. تجاهل غسل العازلة وكرر غسل ثلاث مرات.
    7. للكشف، حل 1 قرص من 4-كلورو-1-نابثول في 10 مل من الميثانول الجليد الباردة. إضافة 4 مل من مخزون الميثانول إلى 20 مل من تبس. إضافة 10 ميكرولتر من 30٪ بيروكسيد الهيدروجين الطازجة و إميدياتنطبق على غشاء النيتروسليلوز.
    8. احتضان مع التحريض في درجة حرارة الغرفة حتى الركيزة تنتج منتج نهاية الأزرق غير قابلة للذوبان. هذا قد يستغرق ما بين 2-15 دقيقة.
    9. تجاهل حل الكشف وغسل الغشاء ثلاث مرات في 100 ميكرولتر م 2 O.
  2. إليسا الفحص
    1. تمييع 200 نانوغرام من كل عينة مع 400 ميكرولتر من 100 ملي كربونات عازلة عازلة ومعطف 2 الممرات من الصف الأول (A #) من لوحة إليسا (آبار القاع المسطح)
    2. إضافة 100 ميكرولتر من 100 ملي عازلة طلاء كربونات لجميع الآبار المقابلة الأخرى في الصفوف (ب).
    3. إعداد التخفيفات المسلسل لكل عينة من قبل بيبتينغ 100 ميكرولتر من كل بئر في الصف ألف، ونقل إلى الصف B. مزيج بلطف بواسطة بيبتينغ وتجنب إنتاج فقاعات. كرر التخفيفات أسفل كل صف، والتخلص من 100 ميكرولتر النهائي من كل بئر في الصف H.
    4. تغطية لوحة مع بارافيلم واحتضان عند 4 درجات مئوية بين عشية وضحاها.
    5. غسل بلاته مع 200 ميكرولتر برنامج تلفزيوني، 0.05٪ توين 20 لكل بئر ثلاث مرات.
    6. إضافة 200 ميكرولتر من عرقلة العازلة إلى الآبار المغلفة، وتغطي مع بارافيلم واحتضان عند 4 درجات مئوية بين عشية وضحاها.
    7. تمييع 1 / 15،000 ستريبتافيدين-هرب في عرقلة العازلة وإضافة 100 ميكرولتر إلى كل بئر من لوحة. تغطية مع بارافيلم واحتضان عند 4 درجات مئوية بين عشية وضحاها.
    8. غسل لوحة في 200 ميكرولتر برنامج تلفزيوني، 0.05٪ توين -20 لكل بئر خمس مرات.
    9. للكشف، إضافة 100 ميكرولتر من كاشف تمب لكل بئر. بعد تطوير اللون كافية، وعادة ما بين 10-15 دقيقة، إضافة 100 ميكرولتر من 1 M حامض الفوسفوريك لوقف رد الفعل.
    10. قراءة الامتصاصية لكل بئر في λ = 450nm.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم عزل الخلايا الظهارية من أنسجة الأمعاء من R. ميكروبلوس وفقا للتخطيطي المقدمة في الشكل 1 . وترد مضان صور مضان المجهري من القراد الأمعاء الخلايا الظهارية أعدت باستخدام هذا البروتوكول في الشكل 2A و 2 باء. كما يتم إجراء العزلة الخلية على شبه محفور R. ميكروبلوس، تظهر الخلايا كما المفرد، كروية،...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وتشكل إصابات القراد الماشية مشكلة رئيسية في صناعة الماشية في المناطق المدارية وشبه الاستوائية في العالم، حيث تعتمد الطريقة الأكثر شيوعا للسيطرة على استخدام مبيدات أكاريدس 1 ، 4 . تم تحديد Bm86 سابقا ضمن سطح الظهارة الأمعاء الظهارية كمستضد واقية ضد R. ميكروبلوس الإصابة 10 ، مع نجاح محدود كاستراتيجية لقاح بسبب Bm86 الاختلاف تسلسل الجغرافية ومتطلبات تعزيز العادية 4 .

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب ليس لديهم ما يكشف.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ويود المؤلفون أن يشكروا مستعمرة بيوسكوريتي تيك كولوني (إدارة ولاية كوينزلاند للزراعة ومصائد الأسماك في أستراليا) على توفير علامات ميكروبلوس ريبيسفالوس المستخدمة لهذه الدراسة، ولوكاس كاربانويتز للمساعدة في تصوير الفيديو.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.4٪ تريبان بلوثيرموفيشر 15250061
1.5 مل أنبوب الطرد المركزي الدقيقEppendorf3322
100 ملي مولار كربونات عازلة3.03 جم Na2CO3 ، 6.0 جم NaHCO3 1000 مل الماء المقطر درجة الحموضة 9.6
16 مل أنابيب الطرد المركزي مع غطاء مانع للتسربThermo Scientific3138-0016بارد في الجليد قبل التدرج
250 & micro ؛ مصفاة الخلية MThermo Fisher87791
3،3 & prime ؛ 5،5 & -tetramethylbenzidine (TMB) نظام الركيزة السائلة ل ELISASigmaT0440المخزنة في 4C
30٪ بيروكسيد الهيدروجينLabsceneBSPA5.500
4-20٪ Tris-MOPS GelGen ScriptM42015
4-Chloro-1-Nepalthol TabletSigma-AldrichC6788
50 مل أنبوب فالكونكورنينج بلو30 × 115 مم. أنبوب مخروطي البولي بروبلين.
70 وميكرو ؛ مصفاة خلية MBD Falcon352350
AP15 ورق ترشيحMilliporeAO1504200
Biotin (النوع A) طقم الاقترانAbcamAb102865
مجهر تشريحأوليمبوسSZX7
DP Manager   ؛أوليمبوس2.2.1.195برنامج صور الخلية
شريط لاصقهوم بارع48 مم × 25 مم شريط لاصق
Dulbecco s معدل النسر المتوسطGibco11995-065DMEM - الجليد البارد للبروتوكول
EDTAAmresco0105-500G
F96 Maxisorp Immuno PlateNunc439454
مصل الأبقار الجنينيSigma-Aldrich12003CFCS
مجهر مضان    أوليمبوس BX51
Fluoroshield مع DAPISigma-AldrichF6057-20MLDAPI
ComppsDumont# 9 Dumont - Switerzland
GlycerolSigma-AldrichG5516Glycerol للبيولوجيا الجزيئية >99٪
GlycineSigma-Aldrich410225
مكاتبعداد محمول باليديعمل JA0376230
هانك s محلول الملح المتوازنSigma Life SciencesH9394HBSS & ndash ؛ الجليد البارد للبروتوكول
الدمOptik Lakor-
L-Glutathione المؤكسدSigma-AldrichG4376
حامل الفصلالمغناطيسي Novagen-4-Tubeالفصل المغناطيسي
الميثانولسيجما-ألدريتش179337
Milli-Q WaterMilliporeZRXQ003WW نظام تنقية المياه المتكامل لغشاء
النيتروسليلوزللمياه علوم الحياة6648530 سم × 3 م غشاء النيتروسليلوز النقي
PageRuler سلم البروتين الملونThermo-FisherSM0671
PBS1.16 جم Na2HPO4 ، 0.1 جم KCl ، 0.1 جم K3PO4 ، 4.0 جم كلوريد الصوديوم (500 مل ماء مقطر) درجة الحموضة 7.4
PercollSigma-AldrichP1644-500ML
مضخة التمعجMasterflex7518-10
حمض الفوسفوريكSigma-AldrichP6560
بيرس خال من البروتين T20 PBS حجب العازلةالحراريةالعلمية 37573مخزنة عند 4 درجة مئوية.
مانع مانع البروتيازالعازلة Sigma-AldrichP8215-5MLالموافقة المسبقة عن علم – مخزنة في -20 &DG; < / b>C
بداية سريعة كاشف صبغ برادفورد 1xBiorad500-0205لفحص برادفورد
بدء سريع معايير BSAمعايير Biorad500-0207BSA لمختبر مشرط برادفورد
.11 مشرط
SilverQuest TM طقم تلطيخInvitrogenLC6070
Simply Blue TM Safe Stain   ؛InvitrogenLC6060
Sorvall C6 + أجهزة الطرد المركزيالفائقة الحرارة العلمية46910
ستربتافيدين (HRP) AbcamAB7403
Streptavidin الخرز المغناطيسينيو إنجلاند BiolabsS1420S
Super Glue - فائق السرعة MiniUHUUHU Super Glue 1 mg. جهاز طرد مركزي صغير سريع
Eppendorf22331
TCEPثيرمو فيشر20490
تريتون X-100بيوراد161-0407
توين -20سيجماP2287-500 مل
دوامة خلاطRatekVM1
منحة حمام مائيGD100
مقياس رف عالي النقاء كوكتيل للمعاشر مقاس مشترك للغاية

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Rodriguez-Valle, M., et al. Efficacy of Rhipicephalus (Boophilus) microplus Bm86 against Hyalomma dromedarii and Amblyomma cajennense tick infestations in camels and cattle. Vaccine. 30, 3453-3458 (2012).
  2. De Rose, R., et al. Bm86 antigen induces a protective immune-response against Boophilus microplus following DNA and protein vaccination in sheep. Vet. Immunol. Immunopathol. 71, 151-160 (1999).
  3. García-García, J. C., et al. Sequence variations in the Boophilus microplus Bm86 locus and implications for immunoprotection in cattle vaccinated with this antigen. Exp. Appl. Acarol. 23, 883-895 (1999).
  4. Abbas, R. Z., Zaman, M. A., Colwell, D. D., Gilleard, J., Iqbal, Z. Acaricide resistance in cattle ticks and approaches to its management: The state of play. Vet. Parasitol. 203, 6-20 (2014).
  5. Kearney, S. Acaricide (chemical) resistance in cattle ticks. , AgNote No. K58. (2013).
  6. Foil, L. D., et al. Factors that influence the prevalence of acaricide resistance and tick-borne diseases. Vet. Parasitol. 125, 163-181 (2004).
  7. Rodriguez, M., et al. High level expression of the B. microplus Bm86 antigen in the yeast Pichia pastoris forming highly immunogenic particles for cattle. J Biotechnol. 33, 135-146 (1994).
  8. Rodriguez, M., et al. Effect of vaccination with a recombinant Bm86 antigen preparation on natural infestations of Boophilus microplus in grazing dairy and beef pure and cross-bred cattle in Brazil. Vaccine. 13 (18), 1804-1808 (1995).
  9. Lew-Tabor, A. E., Rodriguez Valle, M. A review of reverse vaccinology approaches for the development of vaccines against ticks and tick borne diseases. Ticks Tick Borne Dis. 7, 573-585 (2016).
  10. Capella, A. N., Terra, W. R., Ribeiro, A. F., Ferreira, C. Cytoskeleton removal and characterization of the microvillar membranes isolated from two midgut regions of Spodoptera frugiperda (Lepidoptera). Insect Biochem. Mol. Biol. 27, 793-801 (1997).
  11. Cioffi, M., Wolfersberger, M. G. Isolation of separate apical, lateral and basal plasma membrane from cells of an insect epithelium. A procedure based on tissue organization and ultrastructure. Tissue Cell. 15, 781-803 (1983).
  12. Koefoed, B. M. A simple mechanical method to isolate the basal lamina of insect midgut epithelial cells. Tissue Cell. 17, 763-768 (1985).
  13. Roche, J. K. Isolation of a purified epithelial cell population from human colon. Methods Mol. Med. 50, 15-20 (2001).
  14. Terra, W. R., Costa, R. H., Ferreira, C. Plasma membranes from insect midgut cells. An. Acad. Bras. Ciênc. 78, 255-269 (2006).
  15. Vargas, A. E., Markoski, M. M., Cañedo, A. D., Helena, F., Nardi, N. B. Identification, isolation and culture of intestinal epithelial stem cells from murine intestine. Stem Cells. 879, 479-490 (2012).
  16. Autengruber, A., Gereke, M., Hansen, G., Hennig, C., Bruder, D. Impact of enzymatic tissue disintegration on the level of surface molecule expression and immune cell function. Eur. J. Microbiol. Immunol. 2, 112-120 (2012).
  17. Karhemo, P. R., et al. An optimized isolation of biotinylated cell surface proteins reveals novel players in cancer metastasis. J. Proteomics. 77, 87-100 (2012).
  18. Obenchain, F. R., Galun, R. Physiology of Ticks. Current Themes in Tropical Science Volume 1. , Pergamon Press. 201-205 (1982).
  19. Sonenshine, D., Roe, R. Chapter 3.1. "Biology of Ticks". 1, Two, Oxford University Press. (2014).
  20. Raikhel, A. S., Balashov, Y. S. "An Atlas of Ixodid Tick Ultrastructure" (English Translation). , Entomology Society of America Entomological Society of America. (1983).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة