مقالة منهجية

البروتوكول المتعلق بتقييم الآثار النسبية للبيئة وعلم الوراثة في قرن الوعل ونمو الجسم سيرفيد المعمرة

7K مشاهدات

DOI:

10.3791/56059

أغسطس 8, 2017

في هذه المقالة

ملخص

الاختلافات المظهرية بين السكان سيرفيد قد تكون متصلة بعلم الوراثة مستوى السكان أو التغذية؛ المميزين وهو صعوبة في البرية. ويصف هذا البروتوكول كيف قمنا بتصميم دراسة الخاضعة للرقابة بحيث ألغى الاختلاف التغذوية. ووجدنا أن الاختلاف المظهرية من الذكور الأبيض – الذيل الغزلان كان أكثر محدودية بالتغذية من علم الوراثة.

الملخص

يمكن وضع سيرفيد النمط الظاهري إلى إحدى الفئتين التاليتين: الكفاءة، التي تروج للبقاء على قيد الحياة على مدى نمو شكلي الإسراف، والترف، مما يعزز نمو حجم كبير من الأسلحة، وهيئة. عرض الأنواع نفس النمط الظاهري كل تبعاً للظروف البيئية. على الرغم من أن حجم قرن الوعل والجسم من الذكور الأبيض – الذيل الغزلان (فيرجينيانوس أودوكويليوس) يختلف حسب المنطقة الفيزيوغرافية في ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية ويرتبط بقوة مع التباين الإقليمي في الجودة التغذوية، لا يمكن تجاهل آثار الوراثة مستوى السكان من الأسهم الأصلية وجهود إعادة التخزين السابقة. ويصف هذا البروتوكول كيف قمنا بتصميم دراسة الخاضعة لمراقبة، بحيث يتم التحكم في العوامل الأخرى التي تؤثر على النمط الظاهري، مثل العمر والتغذية،. جئنا بالإناث الحوامل التي اشتعلت في البرية والظبيان عمره ستة أشهر من ثلاث مناطق متميزة الفيزيوغرافية في ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية إلى "ولاية ميسيسيبي الدولة جامعة صدئ دوكنز التذكارية الغزلان وحدة". كانت تربيتها الغزلان من نفس المنطقة لإنتاج جيل ثان من ذرية، مما يسمح لنا بتقييم الاستجابات بين الأجيال والآثار الأمهات. جميع الغزلان أكلت نفس جودة عالية (20% بروتين خام الغزلان بيليه) النظام الغذائي libitum الإعلانية. ونحن فريد تميز كل الوليد وسجلت هيئة جماعية، وهند سيرا على الأقدام، وطول الجسم الكلي. كل سقوط اللاحقة، مخدراً الأفراد عن طريق حقن البعيد وأخذ عينات نفس مورفوميتريكس بالإضافة إلى قرون من البالغين. ووجدنا أن جميع مورفوميتريكس زيادة في حجم من الأول إلى الجيل الثاني، مع التعويض الكامل لحجم قرن الوعل (التباين الإقليمي الحالي لم يعد) وتعويض جزئي لكتلة الجسم (بعض الأدلة من التباين الإقليمي) واضح في الجيل الثاني. الذكور الجيل الثاني التي نشأت من منطقتنا التربة فقراً نوعية عرض حول نسبة 40 في المائة في حجم قرن الوعل وزيادة بنسبة 25% في كتلة الجسم عند مقارنة بنظرائهم المقطوع البرية. نتائجنا تشير إلى تباين المظهرية من الذيل الغزلان – الأبيض الذكور البرية في ولاية ميسيسيبي تتصل أكثر بالاختلافات في نوعية التغذية من مستوى السكان علم الوراثة.

المقدمة

وقد تؤثر العوامل البيئية الخبرات أم أثناء فترة الحمل والرضاعة النمط الظاهري في نسلها، مستقلة عن النمط الوراثي1،،من23. الأمهات اللاتي تعيش في بيئات عالية الجودة المحتمل سوف تنتج ذرية أن المعرض النمط الظاهري فاخرة (كبيرة قرن الوعل وهيئة المساحة4)، بينما الأمهات اللاتي يسكن في بيئة منخفضة الجودة قد تنتج ذرية أن المعرض كفاءة النمط الظاهري (الصغيرة قرن الوعل وهيئة المساحة4). ولذلك، المستمرة في بيئة عالية الجودة قد تسمح أم إنجاب الذكور مع خواص الكبيرة، التي قد تؤثر بصورة مباشرة في الذرية فرص الإنجاب5،،من67،8 والتأثير غير مباشر اللياقة البدنية الشاملة الأم.

على الرغم من أن التغذية يؤثر مباشرة على خواص عبر الأصناف (Ursus الأمريكية، Ursus arctos9؛ فوسكوسي لياسيس 10؛ لارس ميتشاهيليس 11)، وهناك عدة عوامل قد تؤثر على الأبيض – الذيل الغزلان تعمل في ولاية ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية. حجم الجسم وقرن الوعل حوالي ثلث أكبر لبعض السكان مقارنة بغيرهم12. هذا التغير يرتبط بقوة مع العلف جودة13،14؛ تم العثور على الذكور أكبر في المناطق ذات جودة أكبر من العلف. ومع ذلك، جهود الترميم التاريخي – الأبيض الذيل الغزلان في ميسيسيبي قد أدت إلى اختناقات الوراثية و/أو مؤسس آثار15،16، مما قد يفسر جزئيا أيضا بعض التباين الإقليمي الملحوظ في النمط الظاهري – الأبيض الذيل الغزلان.

ونحن نقدم البروتوكول أننا المستخدمة للتحكم في الجودة التغذوية لاشتعلت البرية الأبيض – الذيل الغزلان، مما يسمح لنا بتقييم ما إذا كان النمط الظاهري الذكور مقيد بواسطة الوراثة مستوى السكان. هذا البروتوكول أيضا يسمح لنا بتقييم ما إذا كانت متخلفة عن آثار الأمهات كانوا حاضرين في سكاننا. لدينا التصميم التي تسيطر عليها تفضيلية للدراسات التي أجريت على السكان بدءاً الحرة التي تقتصر على استخدام المتغيرات البيئية كوكيل لتقييد الغذائية3،17. لدينا التصميم التي تسيطر عليها كما يسمح لمتغيرات أخرى مثل التشديد على إمكانات المزمنة التفاعلات ذات الصلة الاجتماعية المقرر عقده مستمر كما تتعرض جميع الأفراد للمساكن المماثلة وممارسات تربية. بالإضافة إلى ذلك، لأن التغذية يؤثر تأثيراً مباشرا على جوانب أخرى من تاريخ الحياة بدءاً من الاستنساخ للبقاء على قيد الحياة18،19، مراقبة التغذية يسمح للمحققين لتقييم المتغيرات الأخرى التي تؤثر في جوانب تاريخ حياة الثدييات. وقد وصف بروتوكولات مماثلة لتقييم المسائل المتعلقة بجوانب تاريخ الحياة لسائر ذوات الحوافر عبر أمريكا الشمالية (مثلاً،،من 2021).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

بيان الأخلاقيات: وافقت لجنة رعاية الحيوانات واستخدامها المؤسسية في جامعة ولاية ميسيسيبي على جميع تقنيات الالتقاط والتعامل والوسم وفقًا للبروتوكولات 04-068، 07-036، 10-033 و13-034.

1. إنشاء مواقع الاحتجاز، وتثبيت ونقل غزلان الذيل الأبيض البرية

  1. تحديد الممتلكات العامة والخاصة المشتركة في برنامج مساعدة إدارة الغزلان22 وإقامة ≥29 موقع اصطياد عبر ثلاث مناطق مصدرية في ولاية ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية.
    1. تحديد عدة مواقع اصطياد داخل كل منطقة مصدرية لضمان تغطية مدى التنوع الوراثي الموجود في تجمعات السكان الإقليمية.
    2. ملاحظة: تضمنت المناطق المصدرية هنا منطقة دلتا، التي تشكل ما يقرب من 17% من إجمالي مساحة الأراضي في ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية، وتعتبر منطقة تربة عالية الجودة، حيث يُعد الزراعة الاستخدام الأساسي للأرض23,24. تم اصطياد جميع الحيوانات المدروسة من هذه المنطقة ضمن نطاق انتشار O. v. virginianus25. وشملت المناطق الأخرى منطقة التربة الرملية الرقيقة (Thin Loess) (العلوية والسفلية معًا)، التي تشكل ما يقرب من 14% من إجمالي مساحة الأراضي في ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية، وتعتبر منطقة تربة متوسطة الجودة. تُعد الزراعة أيضًا الاستخدام الأساسي للأرض في منطقة التربة الرملية الرقيقة، وإن كانت أقل انتشارًا مقارنةً بمنطقة دلتا23,24. تم اصطياد جميع الحيوانات المدروسة من هذه المنطقة ضمن نطاق انتشار O. v. virginianus21. وأخيرًا، تشكل منطقة السهل الساحلي السفلي (LCP) ما يقرب من 22% من مساحة ميسيسيبي، وتُصنف كمنطقة تربة منخفضة الجودة. تتمثل الاستخدامات الأساسية للأرض في منطقة LCP في إنتاج الخشب الصنوبري وتربية الماشية23,24. كما تتداخل منطقة LCP مع التوزيع الجغرافي لـ O. v. osceola؛ حيث كانت أربع من السكان المصدرية الستة على بعد 21 كم من هذا التوزيع25. وقد وُصف هذا النوع الفرعي بأنه أصغر من O. v. virginianus26.

خريطة مناطق تربة المصدر؛ دلتا، السهل الساحلي السفلي، الرواسب الطينية الرقيقة؛ رسم بياني جغرافي.
الشكل 1: التجمعات المصدرية. المناطق الطبوغرافية التي تم فيها اصطياد الإناث الحوامل والصغار في ولاية ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية. تم تعديل هذا الشكل من المراجع31. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

  1. اختر مواقع احتمالية للإمساك تفي بالمعايير التالية: خصائص الموائل التي تُسهّل حركة الغزلان، والقرب من الطرق للوصول إليها، وتوزيعها عبر منطقة الدراسة.
    ملاحظة: يجب أن تتيح مواقع الإمساك إمكانية إخفاء فني الإمساك.
    1. استخدم مواقع الطُعم مع حوالي 10 كجم من الذرة المقشرة لجذب الغزلان وتشجيعها على الزيارة، وقيّم استخدامها بناءً على استهلاك الطُعم والغزلان التي تم تصويرها بكاميرات حساسة للحركة. انقل الطُعم إلى مواقع بديلة إذا لم تحضر الغزلان إلى مواقع الطُعم خلال 5-7 أيام.
  2. أثناء عمليات الإمساك، اجلس في مكان مُخبأ يُعرف بـ"المنصة".
    1. ضع المنصة على بعد حوالي 20 مترًا في اتجاه معاكس للرياح بالنسبة لموقع الطُعم، مع مراعاة اتجاه الرياح السائد بحيث يقل احتمال شم الغزلان لرائحة فني الإمساك.
      ملاحظة: يُفضّل بشدة استخدام منصات مرتفعة، ويجب استخدام أحزمة الأمان. توجد عدة أنواع من المنصات تختلف حسب المورّد التجاري، وتختلف طريقة استخدامها حسب التفضيل الشخصي. على سبيل المثال، تتضمن منصة القفل المقفلة مقعدًا وسلّمًا مُثبّتًا على الشجرة باستخدام أحزمة. يمكن لفني الإمساك حمل منصات التسلق المتنقلة، مما يتيح له حرية أكبر في اختيار شجرة محددة عند الوصول إلى موقع الإمساك. تقتصر منصات التسلق المتنقلة على الاستخدام في الأشجار المستقيمة التي لا توجد فيها فروع عند الارتفاع المختار.
  3. استخدم بندقية رماية مع طلقة تليسكوبية سعة 3 سم³ لحقن خليط من تيليتامين هيدروكلوريد (4.4 مجم/كجم) وزيلازين هيدروكلوريد (2.2 مجم/كجم).
    1. خطّط لعمليات الإمساك بحيث تتوافق مع دورة النشاط الغسقية النموذجية للغزلان27. ابدأ كل محاولة إمساك قبل غروب الشمس بـ 2-3 ساعات.
    2. استمر في عمليات الإمساك لمدة 2-3 ساعات بعد غروب الشمس باستخدام نظارات الرؤية الليلية وليزر نقطة حمراء لتحديد مكان الإطلاق إذا لم يتم الإمساك بالغزلان خلال ساعات النهار.
    3. أطلق الطلقات على الغزلان عندما تكون في وضع الجنب وساكنة.
      ملاحظة: يُستهدف الفخذ الخلفي للغزال لأنه يحتوي على أنسجة عضلية كبيرة ويقع بعيدًا عن القلب والرئتين.
    4. انتظر حوالي 15 دقيقة حتى تُشلّ الحيوانات المستهدفة (الظباء بعمر ستة أشهر من كلا الجنسين أو الإناث الحوامل) تمامًا قبل تحديدها باستخدام معدات التليسكوب الإرشادية.
    5. تأكّد من أن الحيوانات مُهدأة بالتحقق من استجابات العين (الرمش). ثم ضع مرهمًا عينيًا على العينين واربط عيني الغزال بغطاء لتقليل التوتر.
      ملاحظة: فقدان تنظيم درجة الحرارة هو أحد عواقب التثبيت.
    6. استخدم م thermometer شرجي لتقييم درجة حرارة الجسم بعد الاستعادة. دفّئ الغزلان باستخدام بطانيات ساخنة إذا كانت درجة حرارة الحيوان أقل من 37.7 °C. برد الغزلان باستخدام أكياس ثلج إذا كانت درجة حرارة الحيوان أعلى من 40.0 °C.
    7. ضع الغزال في وضعية صدرية على نقالة على النمط العسكري وانقله من موقع الإمساك إلى مقطورة مغلقة.
    8. بعد وضع الغزال في المقطورة، اعكس تأثيرات زيلازين هيدروكلوريد باستخدام 0.125 مجم/كجم من يوهيمبين هيدروكلوريد28.
    9. انقل جميع الغزلان الممسوكة إلى المرفق المخصص للإيواء (مثل وحدة الغزلان التذكارية روستي دوكنز في جامعة ولاية ميسيسيبي؛ MSU Deer Unit)، واحتفظ بها منفصلة حسب المنطقة المصدرة.

2. المرافق المقيدة وممارسات رعاية الحيوانات البحثية العامة

ملاحظة: يتم تقسيم وحدة الغزلان في جامعة ولاية ميتشيغان إلى خمسة حظائر تتراوح مساحتها بين 0.4 و0.8 هكتار.

  1. غطِّ جميع جوانب كل قلم بالقماش الظليل ليكون بمثابة حاجز بصري وفيزيائي بين الأقلام. يساعد القماش الظليل في تقليل الإصابات ويوفر الظل خلال الأشهر الصيفية.
  2. ضع صندوقين مخبأين مرتفعين (1-2) في أحد طرفي كل حظيرة لتسهيل عمليات التخدير بالسهام أثناء جمع البيانات.
  3. ضع قِدَّين على شكل مغرة في طرفي كل حظيرة على حدة لتقليل التنافس على الطعام بين الغزلان. كما يجب توفير مغرة ماء في كل حظيرة.
  4. قدِّم للغزلان غذاءً عالي الجودة (كريات غذائية للغزلان تحتوي على 20% بروتين خام) حسب الرغبة.
    ملاحظة: هنا، تضمنت العلفات الإضافية المتاحة داخل الحظائر (تريفوليوم سبب.والفيسكيوم (fescue)فستوكة (Festuca spp)إلى جانب الأعشاب والنباتات العشبية الطوعية.
  5. إذا كانت العلفيات متاحة، فاحتفظ بها داخل الحظائر باستخدام خليط من المبيدات الحشرية للسيطرة على الأعشاب العريضة الأوراق والأعشاب العشبية، مع استخدام معدلات الخلط المذكورة على البطاقات الإرشادية الخاصة بكل مبيد.
    ملاحظة: من المرجح أن يلزم استخدام مرافق خارج الحرم الجامعي لإيواء الذكور بعمر 5.5 شهور فأكثر. وتتكون هذه المرافق من حظيرتين بمساحة 0.7 هيكتار لكل منهما في كل واحدة من ثلاث خواص، مع ممارسات تربية مشابهة لوحدة غزلان جامعة ولاية ميتشيغان (MSU Deer Unit).

خريطة ولايات الولايات المتحدة تُبرز مقاطعات ميسيسيبي؛ رسم تخطيطي لتوزيع جغرافي.
الشكل 2: مواقع المرافق المسيرة. المنطقة التي أُجري فيها الدراسة حيث تقع المرافق الفرعية ووحدة الغزلان في جامعة ولاية ميسيسيبي (MSU). تشير المناطق المظللة إلى مقاطعات أوكتيبيها (A)، نوكسيبي (B)، أتالا (C)، سكوت (D)، وكوبيا (E)، في ولاية ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية. تم تعديل هذا الشكل من المراجع34. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

3. مكافحة الطفيليات والأمراض

  1. راقب الحيوانات البحثية بحثًا عن طفيليات الديدان المستديرة (Strongyloides spp) باستخدام طريقة الطفو البرازي مع قياس الطفيليات بوحدة البيوض لكل جرام (EPG).
    1. إذا كانت المستويات مرتفعة، قم بتوفير علاج مضاد للطفيليات عن طريق إعطاء علف محبب يحتوي على دواء فاتح للديدان (المادة الفعالة فينبندازول) بمعدل حوالي 0.77 كجم من العلف المحبب لكل 22.7 كجم من العلف خلال شهر مايو.
    2. إذا بقيت مستويات الطفيليات مرتفعة بعد العلاج الأولي، استخدم علاج الابتكاك بدواء الإيفرمكتين (5 مغ/مل)29، مخلوطًا بنسبة 2 مل/0.45 كجم، وقم بإعطائه للحيوانات بمعدل 0.45 كجم من العلف المعالج لكل 45.4 كجم من كتلة الحيوان.
      ملاحظة: مرض الوبأ النزفي الوبائي هو مرض فيروسي قد يكون قاتلًا ينتشر عن طريق ذبابة صغيرة عاقة (Culicoides spp) خلال الأشهر الصيفية وفترة الخريف. إذا كان المرض موجودًا، قم برش منشأة البحث بمبيد حشري (مبيد حشري بنسبة 5% بحجم منخفض جدًا) 2-3 مرات أسبوعيًا من 1 يوليو إلى 1 أكتوبر لتقليل انتشار النواقل بين الحيوانات البحثية. قم برش هذا المبيد الحشري داخل كل حظيرة وحول محيط المنشأة قبل الغسق الرسمي بنحو 90 دقيقة باستخدام جهاز تبخير. تعتمد الطرق المفضلة للسيطرة على الطفيليات والأمراض على كل منشأة مسجنة بشكل فريد. ويجب استشارة الأطباء البيطريين خلال أي بحث على الحياة البرية المسجنة لضمان صحة وسلامة الحيوانات.

4. جمع البيانات

دراسة تشريح الغزلان، قياس طول الساق باستخدام الشريط القياسي، بحث ميداني، علم الأحياء البرية.
الشكل 3: جمع بيانات حول حديثي الولادة من الغزلان. قياس طول القدم الخلفية لغزال حديث الولادة في وحدة الغزلان التذكارية روستي دوكنز بجامعة ولاية ميسيسيبي في مقاطعة أوكتيبيها، ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

  1. ابحث يوميًا في المرفق المخصص للحيوانات الأسر خلال موسم الولادة عن صغار الغزلان.
    1. قم بوضع علامة فريدة على صغار الغزلان حديثي الولادة باستخدام وسوم بلاستيكية متوسطة الحجم تُثبت في الأذن باستخدام أداة تثبيت الوسوم، مع تطبيق مضاد حيوي على الطرف الذكري من الوسم لمنع حدوث عدوى محتملة. ضع الوسم في منتصف أذن الصغير تقريبًا.
    2. قيس كتلة الجسم (إلى أقرب 0.01 كجم) باستخدام ميزان رقمي معلق، وقيس طول القدم الخلفية والطول الكلي للجسم (إلى أقرب مم).
    3. اجمع عينات من الشعر وأرسلها إلى موقع بعيد لتحديد الأبوة (انظر جدول المواد).
      ملاحظة: تم تحديد الأبوة باستخدام الحمض النووي بناءً على قاعدة بيانات خاصة مبنية على لغة استعلام هيكلية مخصصة وغير إحصائية. في المقارنة الزوجية للألائل، قامت جهة تحديد الأبوة البعيدة بتعيين الأبوة عندما استبعدت جميع الآباء المحتملين ما عدا أبًا واحدًا وأمًا واحدة، استنادًا إلى وجود أليل مشترك من كل والد عند جميع المواقع الجينية المُختبرة (B. G. Cassidy، اتصال شخصي). وقد استُخدمت هذه الطريقة في تحديد الأبوة أيضًا في أبحاث سابقة أُجريت على غزلان الذيل الأبيض في الأسر30,31.
    4. أعطِ 2 مل من مستحضر التوكسويد الخاص ببكتيريا Clostridium perfringens من النوعين C وD، ومستحضر مضاد السموم الخاص بـ Clostridium perfringens من النوعين C وD، عن طريق الحقن تحت الجلد، وأعطِ 0.3 مل/كجم من الإيفرمكتين المذاب في الجلايكول البروبيليني (من كلية الطب البيطري بجامعة ولاية ميسيسيبي، ميسيسيبي، الولايات المتحدة الأمريكية) عن طريق الفم لكل صغير من الغزلان.
  2. أوقف تهدئة الذكور البالغين (الذين تبلغ أعمارهم 1.5 سنة أو أكثر) كيميائيًا خلال شهري أكتوبر ونوفمبر لجمع البيانات.
    1. قم بتهدئة الحيوانات البالغة المحصورة باستخدام نفس المزيج من هيدروكلوريد التيليتامين وهيدروكلوريد الزايلازين المستخدم في احتجاز الحيوانات البرية (الخطوة 1.4).
    2. أثناء أحداث التهدئة، اصطحب الفني الذي سيقوم بالسهم إلى نهاية الحظيرة حيث تقع الأماكن المرتفعة المخصصة للإخفاء. ضع فنيًا واحدًا في كل من هاتين المنطقتين المخفيتين.
    3. اجعل الشخص الذي أصطحب الفني إلى مكان الإخفاء يعود إلى الطرف المقابل من الحظيرة.
      ملاحظة: تبتعد الغزلان عن هؤلاء الفنيين وتتجه إلى المكان الأمامي أمام أماكن الإخفاء، حيث يكون الفنيون في وضع مناسب لتنفيذ سهام أخلاقية على كل غزالة.
    4. قم بإطلاق السهام على الغزلان عندما تكون في وضع جانبي وساكنة (القسم 1.4).
    5. انتظر حوالي 15 دقيقة حتى يُشل الحيوان المُسهم تمامًا قبل الاقتراب منه.
    6. تأكد من أن الحيوان مُهدأ بالتحقق من استجابات العين (الرمش). ضع مرهمًا عينيًا على العينين واغطِ عيني الغزالة لتقليل التوتر.
    7. بعد أن يُهدأ فرد الغزالة بنجاح، راقب معدلات حيوية للغزالة.
      1. استخدم ميزان حرارة شرجي لتقييم درجة حرارة الجسم بعد التعافي. سخّن الغزالة باستخدام بطانيات ساخنة إذا كانت درجة حرارة الحيوان أقل من 37.7 °C. برد الغزالة باستخدام كمادات ثلج إذا كانت درجة حرارة الحيوان أعلى من 40.0 °C.
    8. حمّل الغزالة على نقالة على الطراز العسكري، وانقلها باستخدام مركبة متعددة المهام إلى منطقة محددة مسبقًا لجمع البيانات.
    9. بعد النقل، سجّل نفس القياسات المورفومترية التي سُجلت عند الولادة (الخطوة 4.1).
      1. قيس كتلة الجسم (إلى أقرب 0.01 كجم) باستخدام ميزان رقمي معلق، وقيس طول القدم الخلفية والطول الكلي للجسم (إلى أقرب مم).
        ملاحظة: تتفاعل الغزلان الفردية بشكل مختلف مع مزيج الأدوية المستخدم أثناء أحداث التهدئة، لذا قم بإعطاء حوالي 0.1–0.3 مل من مزيج هيدروكلوريد التيليتامين وهيدروكلوريد الزايلازين (حسب كتلة جسم الغزالة الفردية) إذا استعاد الغزالة وعيه قبل اكتمال جمع البيانات.
    10. أعطِ كميات مناسبة من المضاد الحيوي، والإيفرمكتين، ولقاح الكلوستريديا، ولقاح الحُوَيْضات (الليبتوصبيرا) لكل غزالة بعد نقلها إلى منطقة جمع البيانات (انظر الأقسام 1 و3).
  3. خذ ثلاث قياسات من القرون من الذكور البالغين باستخدام شريط قياس مخصص للقرون أثناء تهدئة الحيوان.
    1. قيس المسافة الداخلية (أوسع مسافة بين السناقيب الرئيسية)، والمحيط القاعدي (أصغر قطر موجود بين النتوء وفرع G1)، وطول السنبوب الرئيسي (المسافة من قاعدة القرن إلى طرف السنبوب الرئيسي) للقرون قبل إزالتها.
    2. أزل القرون على بعد حوالي 3 سم فوق النتوء باستخدام منشار ترددي. لا تقم بإزالة القرون على بعد أقل من 3 سم.

إجراء بي vetري على الحياة البرية باستخدام أداة كهربائية لإزالة القرون، طريقة للحفاظ.
الشكل 4: جمع البيانات من الذكور البالغين. إزالة القرون باستخدام منشار ترددي من غزال ذي ذيل أبيض بالغ مُربى. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

  1. بعد جمع جميع البيانات من الفرد المُهدأ، ضع الغزال في الحظيرة المناسبة وقم بإعطاء إما 0.125 ملغ/كغ من الياهمبين هيدروكلورايد28 أو 4.0 ملغ/كغ من التولازولين هيدروكلورايد32 لعكس تأثيرات الزيلازين هيدروكلورايد. راقب الأفراد للتأكد من بقائهم في وضعية صدرية حتى يستيقظوا من التخدير ويصبحوا مستيقظين بالكامل.
    ملاحظة: إذا حدثت مضاعفات واضطررت إلى تهذيب الحيوان، فإن التهذيب بالفصل الدماغي باستخدام جهاز صاعق أو قطع الوريد اليافوري يُعد من الطرق الأخلاقية للتخلص من الحيوان.
  2. انقل القرون إلى منطقة مخصصة لإكمال قياس حجمها.
    1. قس كل فص فرعي منفرد يبرز من الساق الرئيسية (G1، G2، G3، إلخ) والنقاط غير الاعتيادية الإضافية باستخدام سلك.
      ملاحظة: تُعرَّف النقاط التي لا تملك نظيرًا مطابقًا على الساق الرئيسية المقابلة أو التي لا تتماشى مع تعريف مجموعة قرون نموذجية من قبل نادي بون وكركت33.
    2. لف السلك حول النقطة التي يلتقي فيها الفص بالساق الرئيسية وعلّم تلك النقطة كمرجع.
    3. قس من هذه النقطة المرجعية إلى طرف الفص، وكرر ذلك لكل فص.
    4. اجمع باقي قياسات المحيط من خلال تحديد أصغر نقطة بين الفصين G1 وG2 (محيط H2)، وبين الفصين G2 وG3 (محيط H3)، وبين الفصين G3 وG4 إن وُجد (محيط H4).
    5. إذا لم يكن الفص G4 موجودًا، فقس المسافة بين منتصف الفص G3 ونهاية الساق الرئيسية، ثم قس محيط H4 عند النقطة المتوسطة.
    6. قس أقل من أربع محيطات عندما تحتوي القرون على أقل من ثلاث فصوص.
      ملاحظة: على سبيل المثال، الساق الرئيسية التي تحتوي على نقطتين نموذجيتين تشمل فقط ثلاث قياسات محيط. قد يستخدم الأفراد إرشادات أخرى (نادي السفاري الدولي) لحساب حجم القرون؛ ومع ذلك، يجب استخدام طرق متسقة لكل حيوان من أجل مقارنة صحيحة.
    7. بعد إجراء جميع القياسات، احسب درجة القرون مشابهة لدرجة بون وكركت الإجمالية غير النموذجية33.
    8. وزن القرون لأقرب 0.1 غرام باستخدام ميزان رقمي علمي، وعيّن كتلة حرجة دنيا مقدارها 1 غرام للحيوانات من السنة الأولى التي تمتلك قرونًا أقصر من 3 سم.
  3. أهدر جراءً صغيرة مُحتجزة كيميائيًا في عمر يناهز 5.5 شهرًا باستخدام نفس الطرق المستخدمة للبالغين (القسم 4.2)، ووسم الجراء بوساطة علامة أذن بلاستيكية كبيرة (الخطوة 4.1.1).
    1. استخدم نفس معدلات خليط الدواء لتثبيط البالغين المحتجزين كما استخدمت لتثبيط الغزلان البرية (القسم 1).
    2. اجمع نفس القياسات التي جُمعت عند الولادة (الخطوة 4.1.2)، وقم بإعطاء نفس العلاجات الوقائية كما في البالغين (القسم 4.2).
      ملاحظة: بعد جمع جميع البيانات، انقل كل ذكر صغير إلى منشأته الفرعية المخصصة عشوائيًا باستخدام مقطورة.

5. إنتاج الأبناء من الجيل الأول والثاني

  1. صنّف العوائل التي يبلغ عمرها ستة أشهر والمأخوذة من البرية، والصغار المولودة في المرفق المخصص للإيواء من إناث تم أخذها من البرية، كأفراد من الجيل الأول.
  2. خلال موسم التكاثر، ضع ذكرَين مع 7 إلى 16 أنثى، ليكون متوسط نسبة التكاثر كذكر واحد لكل ثماني إناث.
    ملاحظة: اختر الذكور المخصصة للتكاثر من المرافق الفرعية بناءً على المظهر الجسدي، لأن الذكور الأصحّ (ذوي القرون والأجسام الأكبر حجمًا) هم الأكثر احتمالًا لخدمة الإناث طوال فترة موسم التكاثر دون التعرّض للإصابات الناتجة عن الطبيعة العدوانية للذكور خلال هذا الموسم.
    1. اسمح للغزلان بالتكاثر فقط مع أفراد من نفس المنطقة المصدر (مثلاً: يُزاوج ذكر دلتا مع إناث دلتا، وذكر ثين لويس مع إناث ثين لويس، وذكر LCP مع إناث LCP).
  3. صنّف الغزلان المولودة من أبويْن من الجيل الأول كأفراد من الجيل الثاني. ربّت هذه الأفراد في الأسر منذ الولادة، وغذّها بنفس النظام الغذائي عالي الجودة الذي يُقدّم لآبائها.
    ملاحظة: قد تُنتج الإناث صغارًا خلال سنوات متعددة، لكن عادةً يكون لكل سنة أب مختلف. اجمع نفس البيانات على أفراد الجيل الثاني التي تم جمعها من أفراد الجيل الأول والغزلان المأخوذة من البرية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

سن الفرد ونوعية التغذية وعلم الوراثة تؤثر على النمط الظاهري الأبيض الذكور – الذيل الغزلان. لدينا تصميم الدراسة يسمح لنا التحكم في نوعية التغذية الغزلان تستهلك ويسمح لنا بتحديد سن كل الغزلان لمقارنات صحيحة داخل فصول السنة. بمراقبة التغذية والعمر مع لدينا تصميم الدراسة، أفضل كنا قادرين على فهم ما إذا كان علم الوراثة مستوى السكان كانت تقييد النمط الظاهري للذكور من السكان دراسة اثنين. تحسين التغذية كان له أثر إيجابي على جميع شكلي القياسات على 3.5 سنة الرجل الأبيض – الذيل الغزلان من كل منطقة ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وهناك العديد من الخطوات المرتبطة بأعمالنا البروتوكول؛ ومع ذلك، هناك أربع خطوات الحاسمة التي يجب اتخاذها لضمان نجاح مع هذا البروتوكول. أولاً، أثناء التقاط الغزلان البرية، يجب أن يكون هناك عدة أسر موقعا في جميع أنحاء منطقة مصدر واحد (الخطوة 1.1.1). وبعد القبض على مواقع متعددة يضمن أنه سيتم تمثيل أي التنوع الجيني المرتبطة بمنطقة المصدر بين الغزلان. ثانيا، الغزلان يجب أن تبقى المنفصلة حسب المنطقة المصدر أثناء موسم التكاثر (الخطوات 1.4.9 و 5.2.1). ضمان فصل الحيوانات حسب مصدر يقيد المنطقة أثناء تربية الأيل إلى تربية فقط مع غير...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

ونحن نشكر إدارة ولاية ميسيسيبي للحياة البرية، ومصائد الأسماك والحدائق (مدوفب) للدعم المالي باستخدام الموارد من "المساعدات الاتحادية" في "استعادة قانون الحياة البرية" (ث-48-61). ونحن نشكر علماء الأحياء مدوفب مكينلي دبليو، Blaylock أ وغاري أ ويلف L. لمشاركتهم الواسعة في جمع البيانات. ونشكر أيضا تاكر س. كمنسق مرفق والعديد من طلاب الدراسات العليا والفنيين للمساعدة في جمع البيانات. هذه المخطوطة مساهمة WFA427 ميسيسيبي الدولة الغابات جامعة ومركز أبحاث الحياة البرية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
تسخير
المرتفع
للذرة
المقشر نموذج أعمى
أرضي 196 جهاز عرضPneu-Dart ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية
3cc السهام الراديو للقياس عن بعد(Pneu-Dart ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية)
مختلفة لعبة السهام الرقصية (Pneu-Dart ، بنسلفانيا ، الولايات المتحدة الأمريكية)
Teletamine HCl   ؛(تيلازول ، فورت دودج لصحة ، أيوا ، الولايات المتحدة الأمريكية)
زيلازين هيدروكلوريك & nbsp ؛(صيدلية غرب تكساس Rx ، أماريلو ، تكساس ، الولايات المتحدة الأمريكية)
Yhoimbine HCl
Tolazoline HCl
النمط العسكري Gurney
ترمومتر
المستقيم الظل القماش
20٪ بروتين خام الكريات الغزلان  (Purina AntlerMax Professional High Energy Breeder 59UB ، بورينا ، ميسوري ، الولايات المتحدة الأمريكية)
مغذيات
البرسيم التجاري   ؛(دورانا كلوفر ، شركة بنينجتون للبذور ، جورجيا ، الولايات المتحدة الأمريكية)
العكرش التجاري   ؛(Max-Q Fescue ، شركة Pennington Seed Co. ، جورجيا ، الولايات المتحدة الأمريكية)
بطانيات
حزم ثلج
لمكافحة الحشائش عريضة الأوراق (2 ، 4-DB Herbacide ، Butyrac 200)
Grass Control   ؛(Poast Herbacide ، شركة BASF)
شركة حماية الديدان المحببة،   ؛العنصر النشط فينبيندازول
طفيلي صب على العلاج (إيفوميك ، شركة ميريال)
مبيد حشريريبتيد ، شركة ماكلولين جورملي كينج) 
علامات الأذن البلاستيكية المتوسطة والكبيرة (Allflex ، تكساس ، الولايات المتحدة الأمريكية)
الموقع البعيد الذي عين مديرحلول الحمض النووي للحيوانات (حلول الحمض النووي ، أوكلاهوما ، الولايات المتحدة الأمريكية) مقياس
التعليق الرقمي   ؛(مولتري ، EBSCO Industries، Inc.) 
شريط قياس
المطثية Perfringens الأنواع C و D ذيفان أساسي 3   ؛(شركة كولورادو سيروم)
المطثية Perfringens من النوع C و D من أصل الخيول المضاد للسموم(شركة كولورادو سيروم)
الإيفرمكتين في المضادات الحيوية البروبيلين جلايكول
(Nuflor ، Schuering-Plough Animal Health Corp. ، نيو جيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكية)
Ivermectin   ؛(Norbrook Labratories، LTD.، داون، أيرلندا الشمالية، المملكة المتحدة)
لقاح المكلودي(الرؤية 7 مع SPUR، Ivesco LLC، أيوا، الولايات المتحدة الأمريكية)
لقاح داء البريميات (Leptoferm-5 ، Pfizer، Inc. ، نيويورك ، الولايات المتحدة الأمريكية)
مقطورة للنقل
المنشار الترددي   ؛(ديوالت ، ماريلاند ، الولايات المتحدة الأمريكية)
مقياس رقمي علمي (الصناعة العالمية, شركة المعدات العالمية Inc)
قرن الوعل قياس الشريط
الضباب
البلاستيك الأذن العلامات (Allflex ، تكساس ، الولايات المتحدة الأمريكية)
الأذن البلاستيكية(Allflex ، تكساس ، الولايات المتحدة الأمريكية)
أمان الحامل أحجام نمط الحوض علامة

المراجع

  1. Bernardo, J. Maternal effects in animal ecology. Amer Zool. 36 (2), 83-105 (1996).
  2. Forchhammer, M. C., Clutton-Brock, T. H., Lindstrom, J., Albon, S. D. Climate andpopulation density induce long-term cohort variation in a northern ungulate. J Anim Ecol. 70 (5), 721-729 (2001).
  3. Freeman, E. D., Larsen, R. T., Clegg, K., McMillan, B. R. Long-lasting effects of maternal condition in free-ranging cervids. PLoS ONE. 8 (3), 5873(2013).
  4. Geist, V. Environmentally guided phenotype plasticity in mammals and some of its consequences to theoretical and applied biology. Alternative life-history styles of animals. Burton, M. N. , Kluwer Academic Publishers. Dordrect. 153-176 (1989).
  5. Clutton-Brock, T. H., Guinness, F. E., Albon, S. D. Reproductive success in stags. Red Deer: Behavior and ecology of two sexes. , The University of Chicago Press. Chicago. 151-152 (1982).
  6. Coltman, D. W., Festa-Bianchet, M., Jorgenson, J. T., Strobeck, C. Age-dependent sexual selection in bighorn rams. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 269 (1487), 165-172 (2002).
  7. Festa-Bianchet, M. The cost of trying: Weak interspecific correlations among life-history components in male ungulates. Can J Zool. 90 (9), 1072-1085 (2012).
  8. Kie, J. G., et al. Reproduction in North American elk Cervus elaphus.: Paternity of calves sired by males of mixed age classes. Wildlife Biol. 19 (3), 302-310 (2013).
  9. Welch, C. A., Keay, J., Kendall, K. C., Robbins, C. T. Constraints on frugivory by bears. Ecology. 78 (4), 1105-1119 (1997).
  10. Madsen, T., Shine, R. Silver spoons and snake body sizes: Prey availability early in life influences long-term growth rates of free-ranging pythons. J Anim Ecol. 69 (6), 952-958 (2000).
  11. Saino, N., Romano, M., Rubolini, D., Caprioli, M., Ambrosini, R., Fasola, M. Food supplementation affects egg albumen content and body size asymmetry among yellow-legged gull siblings. Behav Ecol Sociobiol. 64 (11), 1813-1821 (2010).
  12. Strickland, B. K., Demarais, S. Age and regional differences in antlers and mass of white-tailed deer. J Wildl Manage. 64 (4), 903-911 (2000).
  13. Jones, P. D., Demarais, S., Strickland, B. K., Edwards, S. L. Soil region effects on white-tailed deer forage protein content. Southeast Nat. 7 (4), 595-606 (2008).
  14. Strickland, B. K., Demarais, S. Influence of landscape composition and structure on antler size of white-tailed deer. J Wildl Manage. 72 (5), 1101-1108 (2008).
  15. DeYoung, R. W., Demarais, S., Honeycutt, R. L., Rooney, A. P., Gonzales, R. A., Gee, K. L. Genetic consequences of white-tailed deer (Odocoileus virginianus) restoration in Mississippi. Mol Ecol. 12 (12), 3237-3252 (2003).
  16. Sumners, J. A., et al. Variable breeding dates among populations of white-tailed deer in the southern United States: The legacy of restocking. J Wildl Manage. 79 (8), 1213-1225 (2015).
  17. Mech, D. L., Nelson, M. E., McRoberts, R. E. Effects of maternal and grandmaternal nutrition on deer mass and vulnerability to wolf predation. J Mammal. 72 (1), 146-151 (1991).
  18. Therrien, J. F., Còtê, S., Festa-Bianchet, D. M., Ouellet, J. P. Maternal care in white-tailed deer: trade-off between maintenance and reproduction under food restriction. Anim Behav. 75 (1), 235-243 (2008).
  19. Parker, K. L., Barboza, P. S., Gillingham, M. P. Nutrition integrates environmental responses of ungulates. Funct Ecol. 23 (1), 57-69 (2009).
  20. Monteith, K. L., Schmitz, L. E., Jenks, J. A., Delger, J. A., Bowyer, R. T. Growth of male white-tailed deer: consequences of maternal effects. J Mammal. 90 (3), 651-660 (2009).
  21. Tollefson, T. N., Shipley, L. A., Myers, W. L., Keisler, D. H., Nairanjana, D. Influence of summer and autumn nutrition on body condition and reproduction in lactating mule deer. J Wildl Manage. 74 (5), 974-986 (2010).
  22. Guynn, D. C., Mott, S. P., Cotton, W. D., Jacobson, H. A. Cooperative management of white-tailed deer on private lands in Mississippi. Wildl Soc Bull. 11 (3), 211-214 (1983).
  23. Pettry, D. E. Soil resource areas of Mississippi. Mississippi Agricultural and Forestry Experiment Station. , Mississippi State. Information Sheet 1278 (1977).
  24. Snipes, C. E., Nichols, S. P., Poston, D. H., Walker, T. W., Evans, L. P., Robinson, H. R. Current agricultural practices of the Mississippi Delta. Office of Agricultural Communications. , Mississippi State. Bulletin 1143 (2005).
  25. Baker, R. H. Origin, classification, and distribution of the white-tailed deer. White-tailed deer: ecology and management. Halls, L. K. , Stackpole, Pennsylvania. 1-18 (1984).
  26. Barbour, T., Allen, G. M. The white-tailed deer of eastern United States). J Mammal. 3 (2), 65-80 (1922).
  27. Rouleau, I., Crête, M., Ouellet, J. P. Contrasting the summer ecology of white-taileddeer inhabiting a forested and an agricultural landscape. Ecoscience. 9 (4), 459-469 (2002).
  28. Kreeger, T. J. Handbook of wildlife chemical immobilization. , International Wildlife Veterinary Services. Laramie. (1996).
  29. Pound, J. M., Miller, J. A., Oethler, D. D. Depletion rates of injected and ingested Ivermectin from blood serum of penned white-tailed deer, Odocoileus virginianus (Zimmermann) (Artiodactyla: Cervidae). J Medl Entomol. 41 (1), 65-68 (2004).
  30. Jones, P. D., Demarais, S., Strickland, B. K., DeYoung, R. W. Inconsistent relation of male body mass with breeding success in captive white-tailed deer. J Mammal. 92 (3), 527-533 (2011).
  31. Michel, E. S., Flinn, E. B., Demarais, S., Strickland, B. K., Wang, G., Dacus, C. M. Improved nutrition cues switch from efficiency to luxury phenotypes for a long-lived ungulate. Ecol Evol. 6 (20), 7276-7285 (2016).
  32. Miller, B. F., Muller, L. I., Doherty, T., Osborn, D. A., Miller, K. V., Warren, R. J. Effectiveness of antagonists for tiletamine-zolazepam/xylazine immobilization in female white-tailed deer. J Wildl Dis. 40 (3), 533-537 (2004).
  33. Nesbitt, W. H., Wright, P. L., Buckner, E. L., Byers, C. R., Reneau, J. Measuring and scoring North American big game trophies. 3rd edn. , Boone and Crockett Club. Missoula. (2009).
  34. Michel, E. S., Demarais, S., Strickland, B. K., Smith, T., Dacus, C. M. Antler characteristics are highly heritable but influenced by maternal factors. J Wildl Manage. 80 (8), 1420-1426 (2016).
  35. Severinghaus, C. W. Tooth development and wear as criteria of age in white-tailed deer. J Wildl Manage. 13 (2), 195-216 (1949).
  36. Gee, K. L., Webb, S. L., Holman, J. H. Accuracy and implications of visually estimating age of male white-tailed deer using physical characteristics from photographs. Wild Soc Bull. 38, 96-102 (2014).
  37. Storm, D. J., Samuel, M. D., Rolley, R. E., Beissel, T., Richards, B. J., Van Deelen, T. R. Estimating ages of white-tailed deer: Age and sex patterns of error using tooth wear-and-replacement and consistency of cementum annuli. Wild Soc Bull. 38 (1), 849-865 (2014).
  38. Montero, D., Izquierdo, M. S., Tort, L., Robaina, L., Vergara, J. M. High stocking density produces crowding stress altering some physiological and biochemical parameters in gilthead seabream, Sparus aurata., juveniles. Fish Physiol Biochem. 20 (1), 53-60 (1999).
  39. Charbonnel, N., et al. Stress demographic decline: a potential effect mediated by impairment of reproduction and immune function in cyclic vole populations. Physiol Biochem Zool. 81 (1), 63-73 (2008).
  40. Crews, D., Gillette, R., Scarpino, S. V., Manikkam, M., Savenkova, M. I., Skinner, M. K. Epigenetic transgenerational inheritance of altered stress responses. Proc Natl Acad Sci. 109 (23), 9143-9148 (2012).
  41. Maher, J. M., Werner, E. E., Denver, R. J. Stress hormones mediate predator-induced phenotypic plasticity in amphibian tadpoles. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 280 (1758), 20123075(2013).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة