يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

في المختبر البلعمه حطام المايلين التي الضامة المشتقة من نخاع العظام

13.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/56322

⸱

ديسمبر 30, 2017

 ,  ,  , 
1Department of Biomedical Sciences, College of Medicine, Florida State University

في هذه المقالة

ملخص

نقدم أساليب لتقييم قدرة متجولة الضامة مورين الأولية المشتقة من نخاع العظم استخدام الحطام المسمى فلوريسسينتلي المايلين وتلطيخ الحبرية داخل الخلايا الدهنية.

الملخص

المشتقة من نخاع العظم الضامة (بمدمس) هي الكريات البيضاء الناضجة التي تخدم دور حاسم فسيولوجية البالعات المهنية قادرة على مسح مجموعة متنوعة من الجسيمات. عادة، يتم تقييد بمدمس من الجهاز العصبي المركزي (CNS)، ولكن بعد إصابة، سهولة التسلل. مرة واحدة داخل أنسجة الجهاز العصبي المركزي المصابين، بمدمس هي نوع الخلية الابتدائية المسؤولة عن الإزالة الحطام الخلوية المستمدة من الأذى، بما في ذلك كميات كبيرة من الحطام المايلين الغنية الدهن. تداعيات لاثيل بمدم التسلل والمايلين البلعمه الحطام داخل الجهاز العصبي المركزي معقدة وليست مفهومة جيدا. تسمح البروتوكولات المذكورة هنا، لدراسة مباشرة في المختبر من بمدمس في سياق إصابة الجهاز العصبي المركزي. نحن تغطي مورين بمدم العزلة والثقافة وإعداد الحطام المايلين، وفحوصات لتقييم بمدم المايلين الحطام البلعمه. هذه التقنيات إلى نتائج قابلة للقياس الكمي قوية دون الحاجة إلى معدات متخصصة هامة أو المواد، ولكن يمكن تخصيصها بسهولة لتلبية احتياجات الباحثين.

المقدمة

المشتقة من نخاع العظم الضامة (بمدمس) حلقة وصل هامة بين نظم المناعة الفطرية والتكيف. مستضد تقديم الخلايا (Apc)، يمكنهم الاتصال مع الخلايا الليمفاوية عن طريق عرض كل مستضد وسيتوكين الإصدار1،،من23. ومع ذلك، وظيفتها الأساسية البالعات المهنية، لمسح مسببات الأمراض، والذين تتراوح أعمارهم بين الخلايا والحطام الخلوية1،4. بعد إصابة حبل الشوكي (علوم)، يتم إنشاء كميات كبيرة من الحطام المايلين من oligodendrocytes يحتضر، نوع الخلية مسؤولة عن الجهاز العصبي المركزي إكسون مييلينيشن5. نحن وآخرون أظهرت أن إزالة الحطام المايلين تقع أساسا على عاتق من التسلل إلى بمدمس5،،من67. ومع ذلك، ضمن إصابات النخاع الشوكي قد اقترح الإحاطة مواقع الحطام المايلين إزاحة هذه الخلايا للالتهابات عادة نحو8،5،دولة برو تحريضية9. وتعتبر بمدمس الوسطاء الرئيسيون لالتهاب الأعصاب في الحبل الشوكي المصاب، أهداف السريرية الهامة.

للمساعدة في التحقيق في تأثير بمدمس في الحبل الشوكي المصاب، قمنا بتطوير نموذج في المختبر لمباشرة دراسة كيفية الاستجابة بمدمس للحطام المايلين. تحسين أهمية بيولوجية، تستخدم كل من بمدمس مورين الأولية والحطام المايلين طازجة معزولة في هذه التحقيقات. على هذا النحو، بالتفصيل الأساليب المعروضة هنا أيضا بالعزلة وثقافة بمدمس موريني الأولية، وأسلوب تدرج سكروز معدلة المستخدمة لعزل الجهاز العصبي المركزي موريني المستمدة المايلين الحطام10،،من1112. الحطام المايلين يمكن أن توصف بسهولة مع صبغة فلورسنت، إستر سوكسينيميديل كاربوكسيفلوريسسين (CFSE)، إلى المسار في استيعاب بمدمس. كفسي هو مناسبة تماما لهذا التطبيق لأنه غير-السامة للخلايا، ولها تصاريح الطيف الفلورسنت ضيقة الإرسال المتعدد مع غيرها الفلورسنت يسبر13،14. بعد البلعمه، تنقل عن طريق ليسوسوميس الدهون الحطام المايلين والمعلبة كمحايد الدهون داخل الخلايا الدهنية قطرات5. لتحديد مقدار هذا التراكم داخل الخلايا الدهنية، نقدم النفط الأحمر يا (أورو) تلطيخ الأسلوب الأمثل لتحليل الصورة الكمية. ينتج هذا الأسلوب المصبوغة بسيطة النتائج استنساخه قوية وتقدير حجم15. هذه الطرق تسهيل دراسة الحطام المايلين البلعمه والدهن الاحتفاظ مع محدودية المعدات المتخصصة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

الأساليب الموصوفة هنا وفي القسم 2 وافق عليها "رعاية الحيوان فلوريدا دولة جامعة المؤسسية" واستخدام اللجنة (إياكوك) والمبادئ التوجيهية المنصوص عليها في دليل لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية، الطبعةال 8 . جميع الحيوانات المستخدمة في هذا في هذا البروتوكول هي البيت في منشأة حيوانات مختبرية مخصصة حتى الاستخدام. وكان لا التجريب في فيفو السابقة المنجزة للتضحية. إعداد الحيوانات استندت إلى ضرورة تجريبية باستخدام متوسط الخلية ومجموعات المايلين كدليل من أجل الحد من استخدام.

ملاحظة: يصف هذا البروتوكول توليد الضامة المشتقة من نخاع العظم (بمدمس) (الجزء 1)، إعداد الحطام المايلين المستمدة من الدماغ المسمى فلوريسسينتلي (الفرع 2)، الإجراء العام لتحليل المايلين الحطام البلعمه (الفرع 3)، و الإجراء العام لتحليل تراكم الدهن الحطام المايلين (القسم 4). يجب أن يكتمل إعداد كاشف وحصاد الخلية والتلاعب وجمع المايلين ووسم وأداء الفحص في السلامة الأحيائية تدفق الهواء الصفحي مجلس الوزراء.

1-توليد الضامة الأولية المستمدة من نخاع العظام

  1. إعداد بلعم كاملة الثقافة المتوسطة (كمكم)
    ملاحظة:     جيل بلعم من نخاع العظام يتطلب استخدام عامل تحفيز مستعمرة بلعم (م-CSF). ويستخدم هذا الإعداد L929 مورين تنتجها الخلايا الليفية مكيفة وسائل الإعلام كمصدر للخدمات القطرية م.
    1. توليد L929 مورين تنتجها الخلايا الليفية مكيفة وسائل الإعلام بتثقيف الخلايا في أطباق 145 مم مع 50 مل من تعديل النسر المتوسطة (دميم ارتفاع الجلوكوز (4500 مغ/لتر لتر-الجلوكوز) دولبيكو) تستكمل مع 5% مصل العجل المولود الجديد (سي إس) والبنسلين/ستربتوميسين لمدة 7 أيام.
    2. جمع وسائل الإعلام من الثقافات إلى 50 مل الأنابيب المخروطية أجهزة الطرد المركزي وأجهزة الطرد المركزي لمدة 30 دقيقة في 3500 x ز، 4 درجة مئوية.
    3. تصفية سوبيرناتانتس من خلال عامل تصفية حقنه 0.2 ميكرون في أنبوب 50 مل مخروطية أجهزة الطرد مركزي جديدة. ويمكن تخزين الوسائط مكيفة في-80 درجة مئوية لمدة تصل إلى 6 أشهر.
    4. إضافة إلى ارتفاع الجلوكوز دميم، 5% المجلد/المجلد سي إس، 15% المجلد/المجلد L929 موريني تنتجها الخلايا الليفية مكيفة دميم، و 1% البنسلين/ستربتوميسين. يمكن تخزين الوسائط عند 4 درجة مئوية لمدة 2-3 أشهر. الحارة إلى 37 درجة مئوية قبل الاستخدام.
  2. مجموعة من خلايا نخاع العظام الأولية وتحريض بلعم
    ملاحظة: استخدام الماوس واحد هذا البروتوكول سوف تولد حوالي 20 مليون المشتقة من نخاع العظم الضامة (بمدمس).
    1. Euthanize العدد المطلوب من الأسبوع 8-10 الفئران القديمة باستخدام المبادئ التوجيهية الموحدة للخنق2 CO متبوعاً بخلع عنق الرحم.
    2. تطهير الحيوان باستخدام 70% إيثانول (المجلد/المجلد): ح2س، وتشبع الفراء.
    3. قص فتحه صغيرة في البطن وسحب الجلد لتكشف عن الأنسجة الكامنة بعناية. الحرص على عدم ثقب التجويف الصفاقى.
    4. قم بإزالة كلا الخلفيتين بدءاً من الورك وتنتهي في الكاحل. مكان الأنسجة التي تم جمعها في طبق بتري 100 ملم التي تحتوي على 5-10 مل العقيمة الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) وتستكمل مع 1% البنسلين/ستربتوميسين.
      ملاحظة: عند تجهيز العديد من الحيوانات تأكد للحفاظ على الأطباق على الجليد للحد من تدهور الأنسجة.
    5. إزالة العضلات والنسيج الضام من العظام باستخدام مشرط. عظم الفخذ والساق فقط تستخدم لجمع الخلايا، يمكنك تجاهل الشظية.
    6. كشف تجويف نخاع العظام التي تم جمعها عن طريق قطع جزء صغير من كل نهاية مع مشرط.
    7. باستخدام إبرة ز 25، تدفق تجاويف نخاع مع كمكم في أنبوب 50 مل مخروطية أجهزة الطرد مركزي. سوف تظهر العظام بيضاء مرة واحدة وقد تم مسح بما فيه الكفاية.
    8. وبمجرد الانتهاء من جمع، تحرض تبين مع إبرة ز 18 ل 30-90 s إنشاء تعليق خلية مفردة.
      ملاحظة: ويمكن تنفيذ خطوة تحلل اختياري من خلايا الدم الحمراء (RBC) عند هذه النقطة. قد اقترح مؤخرا أن محتوى الحديد داخل الخلايا قد تؤثر على آثار الحطام المايلين على بلعم الاستقطاب16. للحصول على معلومات بشأن إدراج خطوة تحلل ربك الرجوع إلى تروبلين وآخرون. 17.
    9. تصفية التعليق من خلال مصفاة خلية عقيمة 70 ميكرومتر في أنبوب 50 مل مخروطية أجهزة الطرد مركزي جديدة.
    10. البذور التي جمعت الخلايا بالتساوي إلى 145 مم خلية ثقافة الأطباق التي تحتوي على 15-20 مل كمكم. استخدم حوالي ثلاثة أطباق الثقافة الواحدة والتضحية بالماوس. احتضان الثقافات في 37 درجة مئوية، وأول أكسيد الكربون 5%2.
    11. بعد 72 ساعة من غسل الأطباق مرة واحدة مع PBS العقيمة لإزالة الخلايا غير ملتصقة، ثم إضافة 15-20 مل كمكم الطازجة. احتضان الثقافات لمدة 4 يوما إضافيا في 37 درجة مئوية، وأول أكسيد الكربون 5%2. بعد 7 أيام من مجموع الثقافة، سوف تكون الخلايا المكونة للدم في نخاع العظام في البداية عزل بمدمس الناضجة (الشكل 1).

2-جيل حطام المسمى فلوريسسينتلي المايلين المستمدة من الدماغ

ملاحظة: يمكن تخزين جميع المواد الكاشفة عند 4 درجة مئوية لمدة تصل إلى شهر واحد.

  1. إعداد الكواشف جمع الحطام المايلين
    1. إعداد Tris· Cl المخزن المؤقت الحل.
      1. إلى 800 مل مقطر منزوع ح2س (دية2س) إضافة 20 مل من 1 م Tris· Cl، مل الأس الهيدروجيني 7.45 (تركيز النهائي 20 مم) و 20 مم 100 غ2يدتا (تركيز نهائي 2 مم).
      2. ضبط الأس الهيدروجيني إلى 7.45. ضبط حجم الصوت إلى 1000 مل بدية2تصفية O. الحل عن طريق وحدة ترشيح 0.2 ميكرون.
    2. تحضير محلول السكروز 1 متر.
      1. إلى 100 مل Tris· Cl المخزن المؤقت الحل، أضف ز 68.46 السكروز. ضبط حجم الصوت إلى 200 مل مع Tris· Cl المخزن المؤقت الحل. تصفية الحل عن طريق وحدة ترشيح 0.2 ميكرون.
    3. إعداد 200 مل محلول السكروز 0.32 M بتمييع الحل م 1 مع Tris· Cl المخزن المؤقت الحل 0.83:0.16 (المجلد/المجلد).
    4. إعداد 150 مل محلول السكروز 0.83 م بتمييع الحل م 1 مع Tris· Cl المخزن المؤقت الحل 0.83:0.16 (المجلد/المجلد).
  2. جمع الحطام المايلين الخام المستمدة من الدماغ
    ملاحظة: جمع الأسلوب الموصوفة هنا لعزل الحطام المايلين الخام.
    1. Euthanize الفئران 10-12 8-10 أسابيع عمر استخدام CO2 الخنق المبادئ التوجيهية الموحدة متبوعاً بخلع عنق الرحم.
    2. تشريح الأدمغة ووضعها في طبق 100 ملم التي تحتوي على 10 مل محلول السكروز 0.32 م.
يبقى الطبق على الجليد.
  • استخدام مقص الجراحية المعقمة قص العقول إلى قطع حوالي 5 مم3 في الحجم.
  • نقل الأنسجة إلى أنبوب 50 مل مخروطية أجهزة الطرد مركزي، وإضافة حوالي 30 مل محلول السكروز 0.32 م.
  • تجانسه مع الخالطون روتاري اليد عقيمة، حتى يتم تحقيق حل سلس.
  • تمييع العقول المتجانس لوحدة تخزين نهائي 90 مل مع محلول السكروز 0.32 م.
  • لستة 38.5 مل ultracentrifuge البوليبروبيلين رقيقة الجدران أنابيب، بإضافة 20 مل محلول السكروز 0.83 م.
  • إضافة حل المخ المتجانس بلطف إلى الأعلى من محلول السكروز 0.83 متر، مع الحرص على عدم خلط الطبقتين.
  • تحقيق التوازن بين كل أنبوبة مع محلول السكروز 0.32 م.
  • أجهزة الطرد المركزي في س 100,000 ز لمدة 45 دقيقة في 4 درجات مئوية باستخدام مناسب قبل تبريده دوار أولتراسينتريفوجي. تعيين تسريع الدوار والتباطؤ إلى القيم الدنيا الحد من فقدان المايلين الحطام.
  • جمع الحطام المايلين من واجهة كثافات السكروز اثنين.
    ملاحظة: الحطام يجب أن تظهر كعصابة بيضاء نحو المركز الأنبوبة.
  • الجمع بين الأنقاض المايلين الخام في أنبوب 50 مل مخروطية أجهزة الطرد مركزي، وضبط مستوى الصوت إلى ما يقرب من 35 مل باستخدام Tris· Cl المخزن المؤقت الحل.
  • مجانسة الحطام المايلين الخام مع الخالطون روتاري اليد عقيمة ل 30-60 ثانية.
  • تقسم بالتساوي بتعليق بين 6 ultracentrifuge تنظيف الأنابيب والتوازن مع حجم مناسب من Tris· Cl المخزن المؤقت الحل.
  • أجهزة الطرد المركزي في س 100,000 ز لمدة 45 دقيقة في 4 درجات مئوية باستخدام مناسب قبل تبريده دوار أولتراسينتريفوجي. تعيين تسريع الدوار والتباطؤ إلى قيمها كحد أقصى.
  • كما الآن ستكون مرئية الكريات البيضاء الصلبة، تجاهل المادة طافية وإعادة تعليق الكريات في 10-15 مل Tris· Cl المخزن المؤقت الحل.
  • تقسم بالتساوي التعليق بين 2 ultracentrifuge تنظيف الأنابيب والتوازن مع حجم مناسب من Tris· Cl المخزن المؤقت الحل.
  • أجهزة الطرد المركزي مرة أخرى في س 100,000 ز لمدة 45 دقيقة في 4 درجات مئوية باستخدام مناسب قبل تبريده دوار أولتراسينتريفوجي. تعيين تسريع الدوار والتباطؤ إلى قيمها كحد أقصى.
  • تجاهل المادة طافية وريسوسبيند الكريات في 5-6 مل PBS العقيمة وتقسيم التعليق بين عدد مناسب من أنابيب صغيرة-أجهزة الطرد المركزي قبل وزنه 1.5 مل.
  • أجهزة الطرد المركزي في 22,000 س ز لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية.
  • تجاهل المادة طافية وتحديد وزن الكريات الحطام المايلين.
  • إعادة تعليق الكريات في برنامج تلفزيوني لتركيز نهائي من 100 ملغ/مل.
    ملاحظة: أدمغة عشرة إلى اثني عشر بما فيه الكفاية لإنتاج 10-15 مل حطام المايلين 100 ملغ/مل. يمكن أن يكون الحطام المايلين مخزن في-80 درجة مئوية لمدة 6 أشهر.
  • المايلين الحطام وسم نيون
    1. إعداد 50 ميكرون كاربوكسيفلوريسسين سوكسينيميديل إستر (CFSE) الحل فورا قبل الاستخدام.
      1. باستخدام برنامج تلفزيوني العقيمة، تمييع حل أسهم 5 مم من كفسي أعد مع 100% ثنائي ميثيل سلفوكسيد ([دمس]) لتركيز عمل نهائي من 50 ميكرومتر.
      2. تصفية الحل من خلال عامل تصفية حقنه 0.2 ميكرون.
    2. ذوبان الجليد المبلغ المطلوب من 100 مغ/مل المايلين الحطام وإعادة تعليق بإبرة معقمة ز 29.
      ملاحظة: تجميد الحطام المايلين يؤدي إلى الانقطاع عن الحل يتطلب استثارة قبل الاستخدام.
    3. نقل الحطام المايلين إلى أنبوب مايكرو--أجهزة الطرد مركزي قبل وزنه 1.5 مل.
    4. أجهزة الطرد المركزي في 14,800 س ز لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية.
    5. ريسوسبيند الحطام المايلين في 200 ميليلتر لحل كفسي الواحد 100 ميليلتر المايلين الحطام القريبون.
    6. احتضان لمدة 30 دقيقة في درجة حرارة الغرفة (RT) محمية من الضوء.
    7. أجهزة الطرد المركزي في 14,800 س ز لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية.
    8. ريسوسبيند بيليه في 600-800 ميليلتر من المخزن المؤقت للمياه والصرف الصحي (0.2 ميكرون فلتر تعقيم 100 مم جليكاين في برنامج تلفزيوني).
    9. أجهزة الطرد المركزي في 14,800 س ز لمدة 10 دقائق في 4 درجات مئوية. تجاهل المادة طافية.
    10. كرر الخطوات 2.3.8-2.3.9 أكثر من مرتين.
    11. وبعد الغسيل النهائي، تحديد وزن بيليه الحطام المايلين وتعليق إعادة إلى 100 مغ/مل مع PBS العقيمة.
      ملاحظة: يمكن الحطام المسمى المايلين مخزن في-80 درجة مئوية لمدة تصل إلى 6 أشهر.

    • 3-المايلين الحطام البلعمه الإنزيم

    ملاحظة: ما يلي هو الطريقة الأساسية لمراقبة البلعمه حطام المسمى فلوريسسينتلي المايلين. بالإضافة للعلاج والظروف التجريبية الأخرى ستحتاج إلى تكون الأمثل من قبل المحقق.

    1. إعداد لوحات العلاج
      1. لكل لوحة 145 مم، جمع بمدمس ناضجة في أنبوب الطرد مركزي مخروطية 15 مل مل 5-6 من 10 ملم حمض الإيثيلين (يدتا) باستخدام في الفوسفات مخزنة المالحة دولبيكو (دببس) (الرقم الهيدروجيني 7.4).
        ملاحظة: لا تستخدم التربسين كما أنها قد تغير حالة تنشيط الخلايا18.
      2. إضافة وحدة تخزين متساوية من كمكم المعالجون مسبقاً لكل أنبوبة من الخلايا التي يتم جمعها.
      3. أجهزة الطرد المركزي في 180 x ز لمدة 8 دقائق في 20 درجة مئوية. تجاهل المادة طافية.
      4. إعادة تعليق الخلايا في كمكم والعد.
      5. لكل بئر من لوحة الثقافة خلية 24-حسنا، إضافة 1 × 105 خلايا في 1 مل كمكم.
      6. احتضان عند 37 درجة مئوية، 5% CO2 ل 24 ساعة.
    2. العلاج الحطام المايلين والتحليل
      1. إضافة 10 ميليلتر من 100 مغ/مل كفسي المسمى الحطام المايلين لكل بئر (تركيز 1 ملغ/مل النهائي).
      2. احتضان لمدة 1-3 ساعة عند 37 درجة مئوية، 5% CO2.
      3. أغسل لوحة 3 مرات مع PBS العقيمة لإزالة الحطام غير اجتاحت المايلين.
      4. إضافة 400 ميليلتر من بارافورمالدهيد 4% لكل بئر. احتضان لمدة 30 دقيقة في الرايت
      5. أغسل لوحة 2 مرات مع PBS العقيمة.
      6. إضافة 400 ميليلتر من هويشت 33258 الحل لكل بئر. احتضان لمدة 5 دقائق في الرايت محمية من الضوء.
      7. غسل الأطباق 2 مرات مع PBS العقيمة.
      8. إضافة 200 ميليلتر من جل مخفضات مع تريس المخزن المؤقت لكل بئر للحد من فوتوبليتشينج.
      9. صورة الخلايا باستخدام مجهر قادرة على مقلوب برنامج التحصين الموسع-فلوري.
        ملاحظة: هي موجات الإثارة والانبعاثات من كفسي 494 نانومتر و 521 شمال البحر الأبيض المتوسط، على التوالي.
      10. القسمة عدد الخلايا إيجابية كفسي عدد الأنوية لتحديد امتصاص الحطام المايلين النسبية.
      11. قبل التصوير، والحفاظ على لوحات لمدة تصل إلى 7 أيام في 4 درجات مئوية محمية من الضوء.

    4-التحديد الكمي للدهون داخل الخلايا عن طريق النفط تلطيخ الأحمر-O

    ملاحظة: ما يلي هو الطريقة الأساسية لمراقبة الدهون داخل الخلايا المستمدة من الحطام المايلين.لا ينصح استخدام كفسي المسمى الحطام المايلين نيون التقدير الكمي لاورو تلطيخ بسبب التداخل الطيفي. بالإضافة للعلاج والظروف التجريبية الأخرى ستحتاج إلى تكون الأمثل من قبل المحقق.

    1. إعداد تلطيخ الحلول
      1. إعداد الحل المصبوغة النفط الأحمر-O (أورو) 0.5%.
        1. إضافة 100 مل من 100% بروبيلين غليكول (1، 2-بروبانيديول) ببطء إلى 0.5 غرام الذهب (1-([4-(Xylylazo)xylyl]azo)-2-naphthol) أثناء التحريك.
        2. الحرارة الحل عند 95 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة، أو حتى يتم حل جميع الجزيئات الكبيرة.
          ملاحظة: لا حرارة أكثر من 100 درجة مئوية.
        3. تصفية الحل عن طريق قطعة من ورق الترشيح في حين لا يزال حارا في حاوية جديدة.
        4. السماح بحل للمبيت بارد في حل الرايت يمكن تخزينها لمدة تصل إلى سنة واحدة في الرايت
      2. إعداد حل 85% بروبيلين غليكول.
        1. إضافة مل 85 من 100% بروبيلين غليكول إلى 15 مل دية2إثارة O. حتى مختلطة. حل يمكن تخزينها لمدة تصل إلى سنة واحدة في الرايت
    2. إعداد لوحات العلاج
      1. إعداد لوحة 24-كذلك اتباع الطريقة المبينة في الفرع 3.
      2. احتضان عند 37 درجة مئوية، 5% CO2 ل 24 ساعة.
    3. العلاج الحطام المايلين
      1. إضافة 10 ميليلتر من الحطام المايلين 100 مغ/مل لكل بئر (تركيز 1 ملغ/مل النهائي).
      2. احتضانها ح 1-3 في 37 درجة مئوية، وأول أكسيد الكربون 5%2.
      3. أغسل لوحة 3 مرات مع PBS العقيمة لإزالة الحطام المايلين غير هضمها.
        ملاحظة: عند هذه النقطة، لوحات يمكن الخضوع أما للتثبيت الفوري أو كمكم جديدة يمكن أن تضاف، والخلايا وعاد إلى حضانة للنقاط الزمنية الإضافية.
      4. إضافة 400 ميليلتر من بارافورمالدهيد 4% لكل بئر. احتضان لمدة 30 دقيقة في الرايت
      5. أغسل لوحة 2 مرات مع برنامج تلفزيوني ثم بروكسيد لتلطيخ العقيمة.
    4. تلوين أورو والتحليل
      1. أغسل لوحة ثابتة 3 مرات بدية2o.
      2. إضافة 400 ميليلتر من جليكول 100% لكل بئر واحتضان لمدة 5 دقائق في الرايت
        ملاحظة: هذا سوف يقلل من ترحيل دية2o.
      3. نضح البروبيلين غليكول وإضافة 400 ميليلتر من حل أورو لكل بئر.
      4. احتضان لمدة 8 دقائق في 60 درجة مئوية.
      5. نضح الحل أورو. ثم إضافة 400 ميليلتر من 85% بروبيلين غليكول لكل بئر واحتضانها مينومينتيس 5 في الرايت
      6. لوحة الغسيل 3 مرات مع دية2o.
      7. إضافة 400 ميليلتر من هويشت 33258 الحل لكل بئر. احتضان لمدة 5 دقائق في الرايت، محمية من الضوء.
      8. غسل الأطباق 2 مرات مع PBS العقيمة.
      9. إضافة 200 ميليلتر من جل مخفضات مع تريس المخزن المؤقت لكل بئر.
      10. صورة الخلايا باستخدام مجهر قادرة على مقلوب برنامج التحصين الموسع-فلوري. يمكن تصويرها أورو باستخدام تصفية مجموعة قياسية تكساس الأحمر أو دسريد.
      11. التحديد الكمي للاحتفاظ بالدهن النسبي بتحديد منطقة أورو إيجابية في كل حقل صورة وتقسيمه بعدد الأنوية.
      12. الحفاظ على لوحات لمدة 7 أيام في 4 درجات مئوية محمية من الضوء.

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    النتائج

    علاج بمدمس مع كفسي المسمى الحطام المايلين ينبغي أن تسفر عن استيعاب واضح (الشكل 2). في حين وقت تفاعل 3 ساعات غير كافية من أجل بمدمس البلعمه الحطام المايلين وأضاف كافية للكشف عن المصب قوية، يمكن ملاحظة تراكم داخل الخلايا مع أقل من 1 ساعة للتفاعل. ومع ذلك، بعض الحطام المايلين قد يكون موجودة على سطح الخلية بعد الغسيل. قد يكون هذا بسبب الغسيل غير كافية، أو جسيمات لا يجري استيعابه تماما خلال المراحل المبكرة من البلعمه.

    بينما يمكن استيعاب بمدمس سرعة الحطام المايلين، مطلو...

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    المناقشة

    استخدام الإجراءات المذكورة هنا CNS الخام الطازج معزولة المايلين الحطام والضامة الأولية المستمدة من نخاع العظام. لتقليل النفقات الحيوانية، نوصي بأن كلا العقول وأن تحصد خلايا نخاع العظام من كل الماوس في وقت التضحية. ويمكن إعداد اثنين من الباحثين يعملون معا كل من المواد في نفس الوقت. وبدلاً من ذلك، يمكن تخزين العقول في-80 درجة مئوية في برنامج تلفزيوني وتستكمل مع المضادات الحيوية قبل عزلة الحطام المايلين. وكان يمكن الحفاظ على تجربتنا أن العقول في مثل هذه الظروف لمدة تصل إلى شهر واحد مع عدم فقدان ملحوظ لإمكانات توليد الحطام ا...

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    الإفصاحات

    الكتاب قد لا الكشف.

    شكر وتقدير

    الكتاب يود أن يشكر جلين سانغر-هودجسون، "أخصائي وسائط الإعلام" في "كلية طب الاتحاد السوفياتي السابق" لكل عمله في إنتاج الفيديو وتحريرها والتعليق الصوتي.

    وأيد هذا العمل "المعاهد الوطنية للصحة" (R01GM100474 و R01GM072611).

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    المواد

    قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
    الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
    DMEMGE Healthcare Life SciencesSH30243.01نسبة عالية من الجلوكوز مع L-الجلوتامين ، محلول بيروفات الصوديوم
    بنسلين الستربتومايسينCorning30-002-CI100X Solution
    New Born Calf Serum (NCS) RockyMountain BiologicsNBS-BBT-5XMاستنساخ NCTC Origin الولايات المتحدة
    929 [خلية L ، L-929 ، مشتق من السلالة L]   ؛ATCCCCL-1L929 خط الخلية لإعداد الوسائط المكيفة 24
    بئر لوحات ثقافة الخلاياVWR10062-896   ؛
    طبق ثقافة الخليةGreiner Bio-One639960البوليسترين ،
    طقم تكاثر الخلايا CFSEمم Thermo FisherC34570DMSO ل Reconsitution المزود
    بالفلورو هلام مع Tris Buffer   ؛علوم المجهر الإلكتروني17985-11
    زيت أحمر Oسيجما ألدريتشO0625
    <قوي>معدات< قوي>
    <قوي>مواد<قوي>الشركة<قوي>رقم الكتالوج<قوي>تعليقات
    أنابيب الطرد المركزي الفائقةبيكمان كولتر326823Thinwall ، بولي بروبيلين ، 38.5 مل ، 25 × 89 مم
    SW 32 Ti جهاز طرد مركزي فائق الدواربيكمان كولتر369650SW 32 Ti الدوار ، دلو متأرجح ، خيط دوار يدوي من التيتانيوم
    فيشر ساينس08-451-71
    145/20 /strong

    المراجع

    1. Wynn, T. A., Chawla, A., Pollard, J. W. Macrophage biology in development, homeostasis and disease. Nature. 496 (7446), 445-455 (2013).
    2. Unanue, E. R. Antigen-presenting function of the macrophage. Annu Rev Immunol. 2, 395-428 (1984).
    3. Cavaillon, J. M. Cytokines and macrophages. Biomed Pharmacother. 48 (10), 445-453 (1994).
    4. Ren, Y., Savill, J. Apoptosis: the importance of being eaten. Cell Death Differ. 5 (7), 563-568 (1998).
    5. Wang, X., et al. Macrophages in spinal cord injury: phenotypic and functional change from exposure to myelin debris. Glia. 63 (4), 635-651 (2015).
    6. Goodrum, J. F., Earnhardt, T., Goines, N., Bouldin, T. W. Fate of myelin lipids during degeneration and regeneration of peripheral nerve: an autoradiographic study. J Neurosci. 14 (1), 357-367 (1994).
    7. Greenhalgh, A. D., David, S. Differences in the Phagocytic Response of Microglia and Peripheral Macrophages after Spinal Cord Injury and Its Effects on Cell Death. J Neurosci. 34 (18), 6316(2014).
    8. Sun, X., et al. Myelin activates FAK/Akt/NF-kappaB pathways and provokes CR3-dependent inflammatory response in murine system. PLoS One. 5 (2), e9380(2010).
    9. Gensel, J. C., Zhang, B. Macrophage activation and its role in repair and pathology after spinal cord injury. Brain Res. , 1-11 (2015).
    10. Bourre, J. M., Pollet, S., Daudu, O., Le Saux, F., Baumann, N. Myelin consists of a continuum of particles of different density with varying lipid composition: major differences are found between normal mice and quaking mutants. Biochimie. 59 (10), 819-824 (1977).
    11. Larocca, J. N., Norton, W. T. Current Protocols in Cell Biology. , John Wiley & Sons, Inc. (2001).
    12. Norton, W. T., Poduslo, S. E. Myelination in rat brain: method of myelin isolation. J Neurochem. 21 (4), 749-757 (1973).
    13. Wang, X. Q., Duan, X. M., Liu, L. H., Fang, Y. Q., Tan, Y. Carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester fluorescent dye for cell labeling. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai). 37 (6), 379-385 (2005).
    14. Parish, C. R. Fluorescent dyes for lymphocyte migration and proliferation studies. Immunol Cell Biol. 77 (6), 499-508 (1999).
    15. Deutsch, M. J., Schriever, S. C., Roscher, A. A., Ensenauer, R. Digital image analysis approach for lipid droplet size quantitation of Oil Red O-stained cultured cells. Anal Biochem. 445, 87-89 (2014).
    16. Kroner, A., et al. TNF and increased intracellular iron alter macrophage polarization to a detrimental M1 phenotype in the injured spinal cord. Neuron. 83 (5), 1098-1116 (2014).
    17. Trouplin, V., et al. Marrow-derived Macrophage Production. J Vis Exp. (81), e50966(2013).
    18. Chen, S., So, E. C., Strome, S. E., Zhang, X. Impact of Detachment Methods on M2 Macrophage Phenotype and Function. J Immunol Methods. 426, 56-61 (2015).
    19. Guo, L., et al. Rescuing macrophage normal function in spinal cord injury with embryonic stem cell conditioned media. Mol Brain. 9 (1), 48(2016).
    20. Bosco, D. B., et al. A new synthetic matrix metalloproteinase inhibitor reduces human mesenchymal stem cell adipogenesis. PLOS ONE. 12 (2), e0172925(2017).
    21. Ramírez-Zacarías, J. L., Castro-Muñozledo, F., Kuri-Harcuch, W. Quantitation of adipose conversion and triglycerides by staining intracytoplasmic lipids with oil red O. Histochem. 97 (6), 493-497 (1992).
    22. Koopman, R., Schaart, G., Hesselink, M. K. Optimisation of oil red staining permits combination with immunofluorescence and automated quantification of lipids. Histochem Cell Biol. 116 (1), 63-68 (2001).
    23. Fang, H., et al. Lipopolysaccharide-Induced Macrophage Inflammatory Response Is Regulated by SHIP. J Immunol. 173 (1), (2004).
    24. Martinez, F. O., Sica, A., Mantovani, A., Locati, M. Macrophage activation and polarization. Front Biosci. 13, (2008).
    25. Mosser, D. M., Edwards, J. P. Exploring the full spectrum of macrophage activation. Nat Rev Immunol. 8 (12), 958-969 (2008).

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    إعادة الطباعة والأذونات

    الوسوم

    بلعمة حطام الميالينالطرد المركزي الفائق بتدرج السكروزوسم CFSEصبغ Oil Red-Oعزل نخاع العظمزراعة الخلايا البلعميةتحضير حطام الميالينمقايسة البلعمةالمجهر الفلوري فوق البنفسجي
    في المختبر البلعمه حطام المايلين التي الضامة المشتقة من نخاع العظام
    تواصل معنا
    أوصِ به للمكتبة

    الخصوصية

    شروط الاستخدام

    السياسات

    حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.