يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

الخلية الحرة البيوكيميائية المقايسة الانزيمية فلوروميتريك لقياس الفائق وبيروكسيد في البروتين الدهني العالي الكثافة

8.6K مشاهدة

DOI:

10.3791/56325

أكتوبر 12, 2017

في هذه المقالة

ملخص

يصف لنا هنا مقايسة الخلية الحرة بيوكيميائية فلوروميتريك للبت في هدل-وبيروكسيد. هذا الفحص السريع واستنساخه يمكن استخدامها لتحديد دالة الحميد في دراسات واسعة النطاق، ويمكن أن تسهم في فهمنا للدالة الكوليسترول الجيد في الأمراض التي تصيب البشر.

الملخص

مستويات الكوليسترول في الدم (HDL-C) منخفض الكثافة lipoprotein واحدة من تنبؤ السلبية مستقلة أقوى من أمراض القلب والأوعية الدموية تصلب الشرايين (الرسوم التعويضية). هيكل ووظيفة الحميد بدلاً من HDL-C يمكن التنبؤ بدقة أكثر تصلب الشرايين. تحدث عدة الحميد البروتين والدهن التغييرات التركيبية التي تنال من الدالة الحميد في الولايات الملتهبة مثل تصلب الشرايين. الدالة الحميد يتحدد عادة بالخلية على أساس فحوصات مثل الإنزيم افلوكس نسبة الكولسترول في الدم ولكن هذه الاختبارات لها عدة عيوب عدم توحيد. فحوصات مجانية من الخلية قد تعطي تدابير أقوى الحميد وظيفة مقارنة بفحوصات يستند إلى الخلية. ويضعف أكسدة الحميد الحميد الدالة. الحميد دوراً رئيسيا في النقل بيروكسايد المادة الدهنية وهي المتعلقة بكمية عالية من الدهون الأكاسيد الفوقية الشاذ الحميد الدالة. ينبغي النظر في التفاعلات الدهن-التحقيق عند تفسير نتائج الأسفار غير الانزيمية فحوصات لقياس حالة الأكسدة الدهنية. وهذا دافع لنا لتطوير أسلوب الانزيمية الخلية الحرة بيوكيميائية لتقييم الحميد بيروكسايد محتوى الدهون (هدلوكس) أن يسهم في الخلل الوظيفي الحميد. يستند هذا الأسلوب على البيروكسيديز الفجل إنزيم (HRP) و fluorochrome Amplex الأحمر التي يمكن تحديدها كمياً (بدون الكوليسترول أوكسيديز) محتوى الدهن بيروكسايد كل مغ من HDL-C. هنا بروتوكول تحديد ديسكريبيدفور HDL-وبيروكسيد استخدام الكاشف فلوروتشرومي. يمكن الحد من تقلب المقايسة بالتوحيد الصارم للظروف التجريبية. أعلى هدلوكس القيم المرتبطة بانخفاض وظيفة المضادة للأكسدة الكوليسترول الجيد. قراءات من هذا التحليل المقترنة مع قراءات لفحوصات المستندة إلى خلية تم التحقق من صحتها، تدابير بديلة لأمراض القلب والأوعية الدموية والتهاب النظامية والخلل المناعي وتعمل يرتبط بها من مخاطر القلب والأوعية الدموية والايض. وهذا النهج التقني هو وسيلة قوية لتقييم دالة الكوليسترول الجيد في الأمراض البشرية فيها التهاب النظامية والأكسدة والدهون المؤكسدة لها دور رئيسي (مثل تصلب الشرايين).

المقدمة

أمراض القلب والأوعية الدموية تصلب الشرايين (الرسوم التعويضية) هو السبب الرئيسي للوفاة في جميع أنحاء العالم1،2. وقد أظهرت الدراسات الوبائية أن انخفاض مستويات البروتين الدهني الكثافة (HDL) الكوليسترول عموما ترتبط عكسيا مع المخاطر لتطوير تصلب الشرايين1،2. على الرغم من اعتماد العديد من الدراسات بدور أثيروبروتيكتيفي الحميد1،2، هو الآلية التي يخفف الحميد بدء وتطور تصلب الشرايين معقدة 3،4. ومن ثم، اقترح أن هيكل معقد ووظيفة الحميد بدلاً من المستوى المطلق قد التنبؤ أكثر دقة بتصلب الشرايين 5،6،،من78. تحدث عدة الحميد البروتين والدهن التغييرات التركيبية التي تنال من الدالة الحميد في الولايات الملتهبة مثل تصلب الشرايين. هذه ط) خفض بنسبة الكولسترول في الدم افلوكس المحتملة 9، ثانيا) إنقاص للالتهابات وزيادة البروتينات برو-الالتهابات المرتبطة بالحميد 6،7، ثالثا) انخفاض مستويات مضادات الأكسدة عامل والنشاط و HDLs القدرة تمنع أكسدة "البروتين الدهني منخفض الكثافة" (لدلوكس)10 والرابع) زيادة الدهن هيدرو فوق أكسيد تركيز المحتوى والأكسدة النشاط (هدلوكس)9،11. فحوصات قوية أن تقييم وظائف بليوتروبيك الحميد (مثل efflux الكولسترول، الدالة المضادة للأكسدة) قد تكمل تصميم الحميد-HDL-C في العيادة.

هو عادة بالأساليب المستندة إلى الخلية مثل الكوليسترول efflux المقايسة8،12،،من1314تقييم الدالة الحميد. هذه الأساليب والقيود الرئيسية بما في ذلك تغايرية مهمة فيما يتعلق بأنواع الخلايا المستخدمة ونوع قراءات أفادت، والافتقار إلى التوحيد وآثار الخلط الثلاثية 7،15. هذه العيوب تثير صعوبات لدراسات سريرية كبيرة16. فحوصات مجانية من الخلية قد تعطي تدابير أقوى الحميد وظيفة مقارنة بفحوصات يستند إلى الخلية. افلوكس نسبة الكولسترول في الدم واحدة من أهم وظائف الحميد ولكن فإنه لا يمكن تحديده إلا بفحوصات يستند إلى الخلية. نهج أخرى لتحديد دالة الحميد مثل البروتيوميات17،،من1819،20،21،،من2223، 24 وفحوصات إنزيمية الوحيدات يستند إلى الخلية الحميد الدالة 17،،من2225 لا تم توحيد ولا يمكن استخدامها في الدراسات الإنسانية الواسعة النطاق.

وقد هدل الهامة المضادة للأكسدة أثيروبروتيكتيفي تأثير5،6،،من78. وقد تحدد وظيفة المضادة للأكسدة الكوليسترول الجيد حضور LDL في السابق الخلية الحرة فحوصات فلوروميتريك 26. هذه الأساليب فلوروميتريك البيوكيميائية الحميد مضادات الأكسدة مهمة وضعت أصلاً نافاب محمد والن فوغلمان و الزملاء على26. على الرغم من أن العديد من الدراسات البشرية قد استخدمت هذه الأساليب لتحديد الحميد الدالة 17،،من1819،،من2021،22،23 ،24، الدهون (الكوليسترول الجيد)-المادة الدهنية (LDL) والتفاعلات fluorochrome الدهن قد تحد من إمكانية تكرار نتائج لهذه الخلية الحرة غير الانزيمية البيوكيميائية فحوصات الحميد الدالة27،28.

الفائدة الأخيرة ركزت على العواقب الوظيفية لأكسدة الكوليسترول الجيد هو نتيجة لأكسدة كل من الدهون والبروتينات داخل الحميد 27،،من2930. وقد أظهرت الدراسات السابقة أن أكسدة الكوليسترول الجيد يضعف الحميد الدالة 27،،من2930. الحميد دوراً رئيسيا في النقل بيروكسايد المادة الدهنية وهي المتعلقة بكمية عالية من الدهون الأكاسيد الفوقية الشاذ الحميد الدالة. وبالتالي يمكن استخدامها لتحديد الحميد الدالة 9،17،،من2031 الحميد محتوى الدهون بيروكسايد ونظرا لمحدودية المعروفة لفحوصات مسبقة الحميد الدالة7، 15،،من2732، قمنا بتطوير أسلوب بديل فلوروميتريك التي يوضحها الحميد دهن محتوى بيروكسايد (هدلوكس) 32. يستند هذا الأسلوب الإنزيم الفجل البيروكسيديز (HRP) و fluorochrome Amplex الأحمر التي يمكن تحديدها كمياً (بدون الكوليسترول أوكسيديز) محتوى الدهن بيروكسايد كل ملغ من الكوليسترول الجيد-ج 32. البيوكيميائية مبدأ المقايسة يرد في الشكل 1. وقد أظهرنا أن هذا النهج القائم على الأسفار ليس لديه قيود مسبقة الحميد الدالة فحوصات27،28. تم زيادة صقل هذا التحليل وموحدة في المختبر حيث أنه يمكن استخدامه موثوق في الدراسات الإنسانية واسعة النطاق حتى مع البلازما cryopreserved 32،،من3334، 35 , 36 , 37 , 38 , 39 , 40 , 41 , 42-قراءات من هذا الإنزيم يرتبط مع قراءات لفحوصات المستندة إلى خلية تم التحقق من صحتها، تدابير بديلة لأمراض القلب والأوعية الدموية والتهاب النظامية والخلل المناعي وتعمل يرتبط بها من مخاطر القلب والأوعية الدموية والايض 32 , 33 , 34 , 35 , 36 , 37 , 38 , 39-هنا، يمكننا وصف هذا الأسلوب بسيطة، لكنها قوية لقياس الدهن الحميد بيروكسايد المحتوى (هدلوكس). يمكن استخدام هذا التحليل كأداة للإجابة على الأسئلة البحثية الهامة فيما يتعلق بالدور وظيفة الكوليسترول الجيد في الأمراض البشرية فيها التهاب النظامية والأكسدة والدهون المؤكسدة لها دور رئيسي (مثل تصلب الشرايين)32.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

أجريت جميع التجارب باستخدام العينات البيولوجية البشرية بموافقة الأخلاق من الجامعة "كاليفورنيا لوس أنجليس"، ولوس أنجليس ولجنة "الأخلاقيات البشرية مستشفى الفريد"، ملبورن.

ملاحظة: هناك العديد من الاختلافات الدالة fluorochrome الحميد المقايسة (انظر المناقشة) 32. أدناه ونحن سوف تصف البروتوكول الذي يعطي نتائج أكثر اتساقا واستنساخه. نظرة عامة التحليل ويبين الشكل 2-

1-"تجهيز العينة"

المصل طازجة وغير هيموليزيد
  1. الاستخدام (يمكن جمعها في أنابيب فاصل المصل) أو سترات البلازما التي تم الحصول عليها بعد 12-14 ساعة صيام. في حالة استخدام عينات cryopreserved، تتضمن عنصر التحكم المناسب كما هو موضح في هذا البروتوكول-

2. اليوم 0-التحضير للمقايسة

  1. تحضير عمل تخطيط للتجربة مع الضوابط المناسبة، والعينات وإنشاء نسخ متماثلة. قم بتشغيل كل عينة على الأقل في تريبليكاتيس. ممثل 96 تخطيطاً جيدا ويرد في الشكل 3-
  2. حساب كافة وحدات التخزين من الكواشف التي سيتم استخدامها مقايسة على أساس عدد من العينات و replicates.
    ملاحظة: تشمل وحدة تخزين 10% إضافية في كل سهم العامل للتأكد من أن هناك ما يكفي وحدة التخزين لكل كاشف للتجربة محددة.
  3. تسمية أنابيب كل ما يلزم لجميع الخطوات المختلفة للتحليل مثلاً لفصل الكوليسترول الجيد، وقياس HDL-c (اختياري) وفي فلوروتشروميساي-

3. يوم 1--إعداد الضوابط

    1. إنشاء نموذج عنصر تحكم من البلازما المجمعة أو المصل إعداد التحكم المجمعة الخاصة بالدراسة من دراسة جميع العينات. في حالة تشغيل عينات 20 في كل لوحة في ثلاث نسخ، الجمع بين 10 ميليلتر من كل نموذج في عنصر تحكم 200 ميليلتر المجمعة. تعطي قاسمة منفصل لعنصر التحكم هذا المجمع للمختبرات السريرية لتحديد قيمة عنصر التحكم هذا الحميد-ج.
      ملاحظة: استخدم عنصر التحكم هذا المجمع لتوحيد المقايسة وحساب ليعرف كل شيء ممكن (مثل نوع المصل مصفوفة مقابل البلازما، ودورات تجميد أذاب، نعد) والارباك غير معروف قد تؤثر على تجريبية تقلب 27 ، 28-
  1. الإعداد الخاصة بمختبر مراقبة الجودة (جمعية قطر الخيرية)
    1. إعداد مخزون كبير من الكوليسترول الجيد في كل مختبر (على سبيل المثال الحميد معزولة عن 5 مل بلازما من المانحين صحي 10) وكريوبريسيرفي مختبرين عدة من هذا المخزون إلى أدنى حد من دورات تجميد أذاب.
    2. استخدام على الأقل 10 مختلفة وإنشاء نسخ متماثلة من هذا المخزون لتحديد متوسط قيمة هدلوكس. نطاق مقبول من هدلوكس قياس القيم لكل عينة QC المدرجة في كل والرزن داخل < 15 في المائة معامل الاختلاف من متوسط قيمة هذه.
    3. إعطاء
    4. قاسمة منفصل لعنصر التحكم هذا المجمع للمختبرات السريرية لتحديد قيمة عنصر التحكم هذا (مثلاً 40 مغ/دل) الحميد-ج.
      ملاحظة: اتباع نهج مفصل كيفية استخدام الدم من بنوك الدم لإنشاء عناصر التحكم هذه قد سبق وصف 27 ، ، من 28 32. استخدام جمعية قطر الخيرية إضافية حسب الحاجة (مثل واحد من متبرع سليم يعرف أن لها وظيفة الحميد طبيعية وواحدة من إحدى الجهات مانحة التي من المعروف أنها غير طبيعي إلى حد كبير الحميد الدالة.
  2. الأمثل للإشارات الخلفية والقيم الفارغة (اختياري)
    1. لتقليل الخلفية، إضافة المقدار المناسب من كاتالاز (1-4 U/mL) في المتوسط الحضانة إلى سرعة إزالة المشكلة ح 2 س 2 بسبب تأكسد الجو العفوي من المخازن المؤقتة.
      ملاحظة: حيث يتم يجري طرح القيم من الآبار فارغة (لا الكوليسترول الجيد) من قيم العينات الحميد والنتائج يجري ذكرت بالنسبة لعنصر تحكم مجمعة (التي يتم تضمينها في نفس اللوحة جيدا 96)، وجدنا أن هذه الخطوة لا ليس عمليا أفك t النتائج. وهكذا، الاستغلال الأمثل للإشارات الخلفية مع كاتالاز يمكن حذفها، إذا لزم الأمر.

4. يوم 1--فصل من الكوليسترول الحميد هطول الأمطار باستخدام

ملاحظة: استخدم كاشف عجلت الكوليسترول موحدة متاحة تجارياً لعزل المصل apoB المستنفد وفقا للشركة المصنعة ' s تعليمات. هذه الكواشف تستخدم على نطاق واسع في فحوصات قياس الألوان لتحديد مستويات الكولسترول الحميد.

  1. استخدام الطازجة (أو ذوبان الجليد) عينة البلازما أو المصل.
  2. مزيج من كميات متساوية (مثلاً 80 ميليلتر) من البلازما و "يعجل بالكوليسترول الحميد الكاشف" (20% w/v البولي إثيلين غليكول في المخزن المؤقت جليكاين في pH 10.0 (25 درجة مئوية))-
  3. مزيج جيد من قبل بيبيتينج صعودا وهبوطاً.
  4. الطرد المركزي في 1000-2000 × ز للحد الأدنى 10
  5. نضح المادة طافية (الحميد الكسر)-
  6. من الناحية المثالية استخدام فورا الحميد معزولة فلوروتشروميساي الحميد وبيروكسيد. ومع ذلك، إذا كان يتم تشغيل عدة عينات في نفس اليوم وخطوات أخرى مثل قياس تركيز الكوليسترول كما فعلت، ثم تخزين الحميد معزولة في 4 درجات مئوية واستخدامها في اليوم التالي للدالة فلوروتشروميهدل المقايسة.

5. يوم 1--تصميم من HDL-C في الحميد معزولة

ملاحظة: هذا اختياري إذا كان يتم استخدام القيمة من HDL-C من المختبرات السريرية لتطبيع هدلوكس بمقدار الكوليسترول الجيد-ج.

باستخدام معيار قياس الألوان فحوصات
  1. كوانتيفي الكوليسترول من البلازما، 27. إضافة 50 ميليلتر من "كاشف الكولسترول" في كل بئر وتحديد تركيز الكوليسترول باستخدام قارئ لوحة اللونية ومعيار الكولسترول في كل مجموعة.

6. يوم 2: إعداد الكواشف

  1. حلول "إعداد برنامج الصحة الإنجابية" والكولسترول لحل HRP 5 يو/مليلتر (النطاق 1-10 U/mL)-
  2. إعداد 20 مم الحلول فلوروتشرومي (مثلاً، Amplex الأحمر): ذوبان الجليد قنينة من كاشف fluorochrome و [دمس] إلى درجة حرارة الغرفة. قبل الشروع في الاستخدام، حل كاشف فلوروتشرومي (1 ملغ) في 200 ميليلتر من [دمس]. تخزين حل الأرصدة المجمدة في ≤-20 درجة مئوية، محمية من الضوء.
  3. إعداد عناصر إيجابية وسلبية: استخدام 1 X ' رد فعل المخزن المؤقت ' دون نسبة الكولسترول في الدم و 20 مم ح 2 س 2 يعمل الحل كعنصر تحكم سلبية وإيجابية، على التوالي.

7. التحليل 2-فلوروتشرومي اليوم

  1. إضافة 50 ميليلتر من 1 س رد فعل المخزن المؤقت فارغة (مراقبة سلبية).
  2. اختياري: إضافة الحل العامل 20 مم من ح 2 س 2 كمراقبة إيجابية في كل لوح.
  3. لتقليل تقلب التجريبية وضمان أن إضافة الكواشف وعينات تتم دائماً وفي الوقت المناسب، إجراء إضافات جميع العينات في 96 جيدا أسفل المائدة المستديرة، واضحة، البوليسترين أو البولي بروبلين لوح منفصل (لوحة 1). ثم استخدم ماصة متعددة القنوات لنقل كميات محددة إلى 3 96-جيدا لوحات (لوحات 2-4: بوت البوليبروبيلين، مسطحةتوم، أسود) (أن يكون تخطيط متطابقة) ( الشكل 2 و الشكل 3). على سبيل المثال، أولاً بإضافة 160 ميليلتر من الحميد معزولة في كل بئر/عينة من لوحة 1
    1. وثم باستخدام ماصة الأقنية نقل 50 ميليلتر من الكوليسترول من كل بئر/عينة في لوحات أسود 96-جيدا. تغيير نصائح بين كل صف/عمود واستخدم التلميحات غير المصفاة لجميع التحويلات.
  4. ترك عينات في الآبار. عدم تجاهل. وهناك أية خطوات الغسيل بين إضافة الكواشف.
  5. إضافة 50 ميليلتر من برنامج الصحة الإنجابية الحل 5 يو/مليلتر (0.25 يو) لكل بئر.
    ملاحظة: استخدم برنامج الصحة الإنجابية قبل إضافة الكاشف فلوروتشرومي.
  6. احتضانها لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية. عدم تجاهل عينات بعد الحضانة (أي خطوات الغسيل بين إضافات كواشف).
  7. إضافة 50 ميليلتر من فلوروتشروميريجينت لتركيز نهائية من 300 ميكرون. عند هذه النقطة، هو رد فعل مجموع حجم 150 ميليلتر. مزيج جيد وحماية من الضوء.
  8. تقييم قراءات الفلورسنت (في الظلام) كل دقيقة ما يزيد على 120 دقيقة عند 37 درجة مئوية مع قارئ لوحة نيون (530/590 nm مرشحات).
    ملاحظة: استخدام فاصل زمني أقصر لمدة 60 دقيقة مع عينات جديدة. وقد وجدنا أن الفحص 120 دقيقة يعطي المزيد من البيانات القابلة لإعادة الإنشاء باستخدام عينات cryopreserved.
  9. تسجيل البيانات باستخدام البرمجيات المناسبة.

8. تحليل بيانات 3 اليوم

  1. تسجيل الأسفار (وحدات التعسفي) في 120 دقيقة بعد إضافة فلوروتشرومي الكاشف لجميع العينات بما في ذلك الآبار فارغة وكافة عناصر التحكم.
  2. حساب متوسط قيمة الوحدات الفلورية (استناداً على الأقل تريبليكاتيس) (HDL ox_sample). لا تأخذ القيم المتطرفة (> 2 الحزب الديمقراطي الصربي من متوسط القيمة) في الاعتبار-
  3. طرح
  4. fluorescence الخلفية باستخدام المعادلة التالية:
    figure-protocol-1
  5. التطبيع لكمية الكولسترول الحميد (HDL-C): تطبيع قيمة وبيروكسيد دهني هدلوكس لكل عينة (بما في ذلك عنصر التحكم المجمعة) عن طريق HDL-C) (mg/dl). في المقطع "النتائج"، يقدم الحميد الثور ن قياس هدلوكس (HDL-C) ليعكس التعديل ل HDL-c استخدام المعادلة التالية:
    figure-protocol-2
  6. توحيد التعبير عن قيمة وبيروكسيد دهني هدلوكس كل عينة ضد قيمة عنصر تحكم مجمعة. تطبيع n (HDL-C) هدلوكس دهن وبيروكسيد قيمة لكل عينة (تعديل HDL-c) بنون (HDL-C) هدلوكس دهن وبيروكسيد قيمة عنصر التحكم المجمع. في المقطع "النتائج"، يرد الحميد ثور تدبيرا ثور نهدل تعكس التسوية بالنسبة لتقلب التجريبية والحميد-جيم. استخدام المعادلة التالية:
    figure-protocol-3
    ملاحظة: هذا النهج مشابه للنهج التجريبية الأخرى المتبعة للحد من تقلب التجريبية من القياسات مثل وطبعت الدولية نسبة (INR) 44 ، 45. وقد تم التحقق من صحة هذا النهج في الدراسات السريرية 32 ، ، من 33 34 ، ، من 35 36 ، 37 ، 38 ، 39-
  7. إجراء مراقبة جودة النتائج التجريبية باستخدام عينات مراقبة الجودة القياسية. ينبغي لكل مختبر إنشاء ضوابط الجودة الخاصة بهم (جمعية قطر الخيرية). ومن الناحية المثالية هناك مراقبة الجودة نهدلوكس من عينة مع الحميد مختلة المعروفة ومراقبة الجودة نهدلوكس من عينة من المانحين صحية [مثل استخدام المجمع عينة من البالغين الشباب الذين هم المانحون بنك الدم المتبعة ولا الثوي معروفة وعوامل الخطر بالنسبة أمراض القلب والأوعية الدموية بما في ذلك التدخين]. عنصر التحكم هذا الأخير توحد النتائج بين المعامل المختلفة. متوسط قيم هذه جمعية قطر الخيرية هي replicates 5 على الأقل على أساس المنشأة (عادة نستخدم 10 replicates لهذه الخطوة الهامة).
    1. الاختيار ما إذا كان قياس جمعية قطر الخيرية في كل تحليل قد قيم داخل النطاق المتوقع للقيم. افتراض تقلب تجريبية كحد أقصى مقبول بنسبة 15%، ينبغي أن تدخل جميع القيم المقاسة التجريبية في 15 في المائة من متوسط القيم المعروفة للمنشأة ومراقبة الجودة. استخدام المعادلات التالية:
      figure-protocol-4
      figure-protocol-5
      ملاحظة: إذا كانت أما لمراقبة نوعية شملت عينات ( عادي مقابل الحميد مختلة) يعطي قيم هدلوكس خارج النطاق المتوقع (التي أنشئت في كل مختبر) ثم كرر التجربة.
  8. إجراء مراقبة جودة النتائج التجريبية باستخدام معامل الاختلاف (CV) لقياس التغير التجريبية: كرر جميع العينات مع CV % > 15%. استخدام المعادلة التالية:
    figure-protocol-6
    ملاحظة: مقايسة البينية النموذجية (ضمن نفس لوحة) والتحليل بين الوكالات (بين لوحات مختلفة) تجريبية تقلب < 15%. 2) نموذجي السيرة الذاتية داخل مقايسة ما بين 1-7% وإينتيراساي نموذجي السيرة الذاتية ما بين 3-10%-

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يتم إضافة 50 ميليلتر من كل عينة الحميد في كل بئر كما في الخطوة 7، 3. 50 ميليلتر من حل HRP 5 يو/مليلتر (0.25 U) ثم تضاف إلى كل جيدا كما هو الحال في الخطوة 7، 5. هي المحتضنة عينات لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية كما هو الحال في الخطوة 7، 6. ثم تتم إضافة 50 ميليلتر من كاشف فلوروتشرومي في كل بئر كما في الخطوة 7.7 (تركيز النهائية من 300 ميكرون). ويتم تقييم قراءات الفلورسنت (في الظلام) ثم كل دقيقة أكثر من 120 دقيقة عند 37 درجة مئوية مع قارئ لوحة نيون (530/590 nm مرشحات). الأسفار تمثيلية البيانا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

ويوفر البروتوكول الموصوفة هنا أداة قوية للإجابة على الأسئلة البحثية الهامة فيما يتعلق بالدور وظيفة الحميد في تصلب الشرايين، والأمراض التي تصيب البشر. يوضحها المقايسة محتوى الدهن الحميد بيروكسايد كل مغ من HDL-C باستخدام التضخيم الانزيمية (HRP). ويتجنب هذا النهج القيود المعروفة لفحوصات وظيفة الحميد السابقة (مثل فحص الكولسترول efflux) بما في ذلك تغايرية مهمة فيما يتعلق بأنواع الخلايا المستخدمة ونوع من قراءات وأفادت، والافتقار إلى التوحيد وآثار الخلط الثلاثية7،،من

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

هذا البروتوكول والمقايسة ذات الصلة بالبراءات PCT/US2015/018147.

شكر وتقدير

الكتاب امتنان الاعتراف بالعمل للدكتور محمد نافاب والن فوغلمان ريدي سرينفاسا لدورها الرئيسي في تنمية تكرارات السابقة من هذا الطراز. T.A.A. معتمد من قبل معهد ملبورن الملكي الجامعة نائب مدير الجامعة "زمالات ما بعد الدكتوراه". جعفر و AH معتمدة بتمويل المشروع منحة 1108792. معتمد المعارف التقليدية التي تمنح K08AI08272 المعاهد الوطنية للصحة، "منح" المعاهد الوطنية للصحة/نكتس # µL1TR000124 من المعاهد الوطنية للصحة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
<قوي > كواشف تجريبية < / قوي > HDL
PEG (البولي إيثيلين جلايكول) كاشف مرسببوانت ScientificH7511
كاشف أحمر Amplex.Life Technologies ، Grand Island ، NYA12216Amplex لفحص الكوليسترول الأحمر Kit.
& & le ؛ – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& الحماية من الضوء
DMSO.Life Technologies ، Grand Island ، NYA12216Amplex لفحص الكوليسترول الأحمر Kit.
& & le ؛ – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& الحماية من
فجل الحصان الخفيف بيروكسيداز (HRP)Life Technologies, Grand Island, NYA12216Amplex Red Cholesterol Assay Kit.
& & le; – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& يحمي من
إستيراز الكوليسترول الخفيف.Life Technologies ، Grand Island ، NYA12216Amplex لفحص الكوليسترول الأحمر Kit.
& & le ؛ – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& الحماية من ضوء
الكوليسترول المرجعي القياسيLife Technologies ، Grand Island ، NYA12216Amplex Red Cholesterol Assay Kit.
& & le; – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& الحماية من الضوء
Resorufin fluorescense المرجعي القياسيLife Technologies ، Grand Island ، NYA12216Amplex Red Cholesterol Assay Kit.
& bull & le. – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& حماية من الضوء
5x Reaction Buffer.Life Technologies ، Grand Island ، NYA12216Amplex لفحص الكوليسترول الأحمر Kit.
& & le ؛ – 20 درجة ؛ ج & المجفف
& حماية من الضوء
كاشف الكوليسترول الآلي HDLThermoFisher Scientific Co. ، سان خوسيه ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية.TR39601
<قوي>الاسم<قوي>الشركة رقم الكتالوجتعليقات
Plasticware
96-well (بولي بروبيلين، قاع مسطح، شفاف).ألواح Sigma AldrichM0687
ذات 96 بئرا (بولي بروبيلين ، قاع مسطح ، أسود).Sigma AldrichM9936
1.5 مل أنابيب EppendorfEppendorf0030 125.150
ClipTip 200 ، شركةThermoFisher Scientific المعقمة ، سان خوسيه ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية.14-488-058
ماصات Thermo Scientific متعددة القنوات ، 8 قنوات ، 125   ؛شركة ThermoFisher Scientific Co. ، سان خوسيه ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكية.  14-387--955
nameCompanyCatalog NumberComments
Software
Gen5 2.01 SoftwareBiotek، فيرمونت، الولايات المتحدة الأمريكيةNA
strong>Name الشركة< / strong> رقم الكتالوج < / strong> التعليقات < / strong>
Equipment < / strong>
Gen5 قارئ لوحةBiotek ، فيرمونت ، الولايات المتحدة الأمريكيةNA
<

المراجع

  1. Gordon, D. J., Rifkind, B. M. High-density lipoprotein--the clinical implications of recent studies. N Engl J Med. 321, 1311-1316 (1989).
  2. Rubins, H. B., et al. Gemfibrozil for the secondary prevention of coronary heart disease in men with low levels of high-density lipoprotein cholesterol. Veterans Affairs High-Density Lipoprotein Cholesterol Intervention Trial Study Group. N Engl J Med. 341, 410-418 (1999).
  3. Voight, B. F., et al. Plasma HDL cholesterol and risk of myocardial infarction: a mendelian randomisation study. Lancet. 380, 572-580 (2012).
  4. Navab, M., Reddy, S. T., Van Lenten, B. J., Fogelman, A. M. HDL and cardiovascular disease: atherogenic and atheroprotective mechanisms. Nat.Rev Cardiol. 8, 222-232 (2011).
  5. Navab, M., et al. The double jeopardy of HDL. Ann Med. 37, 173-178 (2005).
  6. Navab, M., Reddy, S. T., Van Lenten, B. J., Anantharamaiah, G. M., Fogelman, A. M. The role of dysfunctional HDL in atherosclerosis. J Lipid Res. 50, Suppl . S145-S149 (2009).
  7. Navab, M., Reddy, S. T., Van Lenten, B. J., Fogelman, A. M. HDL and cardiovascular disease: atherogenic and atheroprotective mechanisms. Nat Rev Cardiol. 8, 222-232 (2011).
  8. Patel, S., et al. Reconstituted high-density lipoprotein increases plasma high-density lipoprotein anti-inflammatory properties and cholesterol efflux capacity in patients with type 2 diabetes. J Am Coll Cardiol. 53, 962-971 (2009).
  9. Navab, M., et al. HDL and the inflammatory response induced by LDL-derived oxidized phospholipids. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 21, 481-488 (2001).
  10. Hayek, T., Oiknine, J., Brook, J. G., Aviram, M. Role of HDL apolipoprotein E in cellular cholesterol efflux: studies in apo E knockout transgenic mice. Biochem Biophys Res Commun. 205, 1072-1078 (1994).
  11. Van Lenten, B. J., et al. Anti-inflammatory HDL becomes pro-inflammatory during the acute phase response. Loss of protective effect of HDL against LDL oxidation in aortic wall cell cocultures. J Clin Invest. 96, 2758-2767 (1995).
  12. Undurti, A., et al. Modification of high density lipoprotein by myeloperoxidase generates a pro-inflammatory particle. J Biol Chem. 284, 30825-30835 (2009).
  13. Van Lenten, B. J., et al. Lipoprotein inflammatory properties and serum amyloid A levels but not cholesterol levels predict lesion area in cholesterol-fed rabbits. J Lipid Res. 48, 2344-2353 (2007).
  14. Watson, C. E., et al. Treatment of patients with cardiovascular disease with L-4F, an apo-A1 mimetic, did not improve select biomarkers of HDL function. J Lipid Res. 52, 361-373 (2011).
  15. Annema, W., et al. Impaired HDL cholesterol efflux in metabolic syndrome is unrelated to glucose tolerance status: the CODAM study. Sci Rep. 6, 27367(2016).
  16. Movva, R., Rader, D. J. Laboratory assessment of HDL heterogeneity and function. Clin Chem. 54, 788-800 (2008).
  17. Charles-Schoeman, C., et al. Abnormal function of high-density lipoprotein is associated with poor disease control and an altered protein cargo in rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum. 60, 2870-2879 (2009).
  18. Imaizumi, S., et al. L-4F differentially alters plasma levels of oxidized fatty acids resulting in more anti-inflammatory HDL in mice. Drug Metab Lett. 4, 139-148 (2010).
  19. Khera, A. V., et al. Cholesterol efflux capacity, high-density lipoprotein function, and atherosclerosis. N Engl J Med. 364, 127-135 (2011).
  20. Morgantini, C., et al. Anti-inflammatory and antioxidant properties of HDLs are impaired in type 2 diabetes. Diabetes. 60, 2617-2623 (2011).
  21. Patel, P. J., Khera, A. V., Jafri, K., Wilensky, R. L., Rader, D. J. The anti-oxidative capacity of high-density lipoprotein is reduced in acute coronary syndrome but not in stable coronary artery disease. J Am Coll Cardiol. 58, 2068-2075 (2011).
  22. Watanabe, J., et al. Proteomic profiling following immunoaffinity capture of high-density lipoprotein: association of acute-phase proteins and complement factors with proinflammatory high-density lipoprotein in rheumatoid arthritis. Arthritis Rheum. 64, 1828-1837 (2012).
  23. Watanabe, J., et al. Differential association of hemoglobin with proinflammatory high density lipoproteins in atherogenic/hyperlipidemic mice. A novel biomarker of atherosclerosis. J Biol Chem. 282, 23698-23707 (2007).
  24. Watanabe, J., et al. Hemoglobin and its scavenger protein haptoglobin associate with apoA-1-containing particles and influence the inflammatory properties and function of high density lipoprotein. J Biol Chem. 284, 18292-18301 (2009).
  25. Wang, X. S., et al. A sensitive and specific ELISA detects methionine sulfoxide-containing apolipoprotein A-I in HDL. J Lipid Res. 50, 586-594 (2009).
  26. Navab, M., et al. A cell-free assay for detecting HDL that is dysfunctional in preventing the formation of or inactivating oxidized phospholipids. J Lipid Res. 42, 1308-1317 (2001).
  27. Kelesidis, T., et al. A biochemical fluorometric method for assessing the oxidative properties of HDL. J Lipid Res. 52, 2341-2351 (2011).
  28. Kelesidis, T., et al. Effects of lipid-probe interactions in biochemical fluorometric methods that assess HDL redox activity. Lipids Health Dis. 11, 87(2012).
  29. Navab, M., et al. Mechanisms of disease: proatherogenic HDL--an evolving field. Nat Clin Pract Endocrinol Metab. 2, 504-511 (2006).
  30. Navab, M., et al. The oxidation hypothesis of atherogenesis: the role of oxidized phospholipids and HDL. J Lipid Res. 45, 993-1007 (2004).
  31. Morgantini, C., et al. HDL lipid composition is profoundly altered in patients with type 2 diabetes and atherosclerotic vascular disease. Nutr Metab Cardiovasc Dis. 24, 594-599 (2014).
  32. Kelesidis, T., et al. A high throughput biochemical fluorometric method for measuring lipid peroxidation in HDL. PLoS One. 9, e111716(2014).
  33. Kelesidis, T., Yang, O. O., Kendall, M. A., Hodis, H. N., Currier, J. S. Dysfunctional HDL and progression of atherosclerosis in HIV-1-infected and -uninfected adults. Lipids Health Dis. 12, 23(2013).
  34. Zanni, M. V., et al. HDL redox activity is increased in HIV-infected men in association with macrophage activation and non-calcified coronary atherosclerotic plaque. Antivir Ther. 19, 805-811 (2014).
  35. Roberts, C. K., Katiraie, M., Croymans, D. M., Yang, O. O., Kelesidis, T. Untrained young men have dysfunctional HDL compared with strength-trained men irrespective of body weight status. J Appl Physiol (1985). , 1043-1049 (2013).
  36. Davidson, W. S., et al. Weight loss surgery in adolescents corrects high-density lipoprotein subspecies and their function. Int J Obes (Lond). 41, 83-89 (2017).
  37. Kelesidis, T., et al. Predictors of impaired HDL function in HIV-1 infected compared to uninfected individuals. J Acquir Immune Defic Syndr. , (2017).
  38. Kelesidis, T., et al. Oxidized lipoproteins are associated with markers of inflammation and immune activation in HIV-1 infection. AIDS. 30, 2625-2633 (2016).
  39. Kelesidis, T., et al. Changes in plasma levels of oxidized lipoproteins and lipoprotein subfractions with atazanavir-, raltegravir-, darunavir-based initial antiviral therapy and associations with common carotid artery intima-media thickness: ACTG 5260s. Antivir Ther. , (2016).
  40. Bhattacharyya, D. K., Adak, S., Bandyopadhyay, U., Banerjee, R. K. Mechanism of inhibition of horseradish peroxidase-catalysed iodide oxidation by EDTA. Biochem J. 295 (Pt 2), 281-288 (1994).
  41. Rees, M. D., Pattison, D. I., Davies, M. J. Oxidation of heparan sulphate by hypochlorite: role of N-chloro derivatives and dichloramine-dependent fragmentation. Biochem J. 391, 125-134 (2005).
  42. Mani, K., Cheng, F., Fransson, L. A. Heparan sulfate degradation products can associate with oxidized proteins and proteasomes. J Biol Chem. 282, 21934-21944 (2007).
  43. Finley, P. R., Schifman, R. B., Williams, R. J., Lichti, D. A. Cholesterol in high-density lipoprotein: use of Mg2+/dextran sulfate in its enzymic measurement. Clin Chem. 24, 931-933 (1978).
  44. von Schenck, H., Jacobsson, M. L. Prothrombin assay standardized with an international normalization ratio (INR): goal and reality. Clin Chem. 33, 342(1987).
  45. de Kok, J. B., et al. Normalization of gene expression measurements in tumor tissues: comparison of 13 endogenous control genes. Lab Invest. 85, 154-159 (2005).
  46. Stocker, R., Keaney, J. F. Jr Role of oxidative modifications in atherosclerosis. Physiol Rev. 84, 1381-1478 (2004).
  47. Holzer, M., et al. Aging affects high-density lipoprotein composition and function. Biochim Biophys Acta. 1831, 1442-1448 (2013).
  48. Amundson, D. M., Zhou, M. Fluorometric method for the enzymatic determination of cholesterol. J Biochem Biophys Methods. 38, 43-52 (1999).
  49. Mishin, V., Gray, J. P., Heck, D. E., Laskin, D. L., Laskin, J. D. Application of the Amplex red/horseradish peroxidase assay to measure hydrogen peroxide generation by recombinant microsomal enzymes. Free Radic Biol Med. 48, 1485-1491 (2010).
  50. Lombardi, A., et al. UCP3 translocates lipid hydroperoxide and mediates lipid hydroperoxide-dependent mitochondrial uncoupling. J Biol Chem. 285, 16599-16605 (2010).
  51. Bhattacharya, A., et al. Denervation induces cytosolic phospholipase A2-mediated fatty acid hydroperoxide generation by muscle mitochondria. J Biol Chem. 284, 46-55 (2009).
  52. Havel, R. J., Eder, H. A., Bragdon, J. H. The distribution and chemical composition of µLtracentrifugally separated lipoproteins in human serum. J Clin Invest. 34, 1345-1353 (1955).
  53. Dyerberg, J. Comments on the quantitation of lipoproteins by agarose-gel electrophoresis. Clin Chim Acta. 61, 103-104 (1975).
  54. Warnick, G. R., Cheung, M. C., Albers, J. J. Comparison of current methods for high-density lipoprotein cholesterol quantitation. Clin Chem. 25, 596-604 (1979).
  55. Demacker, P. N., Hijmans, A. G., Vos-Janssen, H. E., van't Laar, A., Jansen, A. P. A study of the use of polyethylene glycol in estimating cholesterol in high-density lipoprotein. Clin Chem. 26, 1775-1779 (1980).
  56. Izzo, C., Grillo, F., Murador, E. Improved method for determination of high-density-lipoprotein cholesterol I. Isolation of high-density lipoproteins by use of polyethylene glycol 6000. Clin Chem. 27, 371-374 (1981).
  57. Patel, P. J., Khera, A. V., Wilensky, R. L., Rader, D. J. Anti-oxidative and cholesterol efflux capacities of high-density lipoprotein are reduced in ischaemic cardiomyopathy. Eur J Heart Fail. 15, 1215-1219 (2013).
  58. Roche, M., Rondeau, P., Singh, N. R., Tarnus, E., Bourdon, E. The antioxidant properties of serum albumin. FEBS Lett. 582, 1783-1787 (2008).
  59. Panzenbock, U., Kritharides, L., Raftery, M., Rye, K. A., Stocker, R. Oxidation of methionine residues to methionine sulfoxides does not decrease potential antiatherogenic properties of apolipoprotein A-I. J Biol Chem. 275, 19536-19544 (2000).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

Amplex Red HDL HDL HDL