مقالة منهجية

ابتلاع فلوري، جسيمات نانوية مغناطيسية لتحديد قدرات امتصاص السوائل في الحشرات

5.9K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/56619

⸱

ديسمبر 20, 2017

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Biological Sciences, Kent State University at Stark, 2Department of Mathematical Sciences, Clemson University, 3Liquid Crystal Institute, Kent State University, 4Brookhaven National Laboratory

في هذه المقالة

ملخص

التغذية بالسوائل الحشرات لديها القدرة على الحصول على كميات من السوائل من الأسطح المسامية. ويصف هذا البروتوكول طريقة لتحديد القدرة للحشرات استيعاب السوائل من الأسطح المسامية باستخدام حلول التغذية مع جسيمات نانوية الفلورسنت والمغناطيسية مباشرة.

الملخص

التغذية بالسوائل الحشرات استيعاب مجموعة متنوعة من السوائل، التي هي موجودة في البيئة كحمامات، والأفلام، أو تنحصر في المسام الصغيرة. الدراسات المتعلقة باقتناء السائل تتطلب تقييم علاقات موثبارت هيكل ووظيفة؛ ومع ذلك، تاريخيا هي الاستدلال آليات امتصاص السوائل من الملاحظات للبنية الهيكلية، غير المصحوبين أحياناً مع الأدلة التجريبية. وهنا، نحن تقرير طريقة جديدة لتقييم قدرات امتصاص السوائل مع الفراشات (قشريات الجناح) والذباب (Diptera) باستخدام كميات صغيرة من السوائل. ويتم تغذية الحشرات بمحلول سكروز 20% مختلطة مع جسيمات نانوية الفلورسنت والمغناطيسية من تصفية أوراق ذات أحجام المسام محددة. إزالة من الحشرات والمحاصيل (البنية الداخلية المستخدمة لتخزين السوائل) على مجهر [كنفوكل]. مغناطيس وهو لوح من المحاصيل لتحديد وجود جسيمات نانوية، التي تشير إلى حالة الحشرات قادرة على استيعاب السوائل. يتم استخدام هذه المنهجية للكشف عن إليه تغذية على نطاق واسع (عمل الشعرية وتشكيل جسر السائلة) التي يحتمل أن تكون مشتركة بين قشريات الجناح و Diptera عند تغذية من الأسطح المسامية. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن استخدام هذا الأسلوب لدراسات التغذية الآليات فيما بين مجموعة متنوعة من الحشرات التغذية بالسوائل، بما في ذلك تلك الأهمية في انتقال المرض وبيوميميتيقا، ويحتمل أن تكون غيرها من الدراسات التي تنطوي على قنوات نانو أو الصغيرة الحجم حيث ويتطلب النقل السائل التحقق.

المقدمة

لدى العديد من المجموعات الحشرات فمها (بروبوسسيسيس) تكييف لتتغذى على السوائل، مثل الرحيق، تعفن الفاكهة وساب التدفقات (مثلاً Diptera1، قشريات الجناح2، غشائيات الأجنحة3)، الخشب (هيميبتيرا4)، الدموع (قشريات الجناح 5)، والدم (فثيرابتيرا6، سيفونابتيرا7، ديبتيرا7، هيميبتيرا8، قشريات الجناح9). قدرة الحشرات لتتغذى على السوائل ذات صلة بصحة النظام الإيكولوجي (مثل التلقيح10)، وانتقال المرض4،11،2،بيوديفيرسيفيكيشن12والدراسات 13من تطور متقاربة. على الرغم من مجموعة واسعة من المصادر الغذائية، هو موضوع بين بعض الحشرات تغذية السوائل القدرة على الحصول على كميات صغيرة من السوائل التي يمكن أن تقتصر على قطرات الحجم الصغير أو نانو أو الأفلام السائل أو الأسطح المسامية.

نظراً لتنوع واسعة النطاق للتغذية بالسوائل الحشرات (أكثر من 20 في المائة من جميع الأنواع الحيوانية14،15) وقدرتهم على إطعام على مجموعة متنوعة من المصادر الغذائية، فهم على تغذية السلوكيات والآليات امتصاص السوائل، وأن هامة في العديد من المجالات. وظائف موثبارت الحشرات، وعلى سبيل المثال، قد لعبت دوراً في تطوير تكنولوجيا المحاكاة البيولوجية، مثلاً، موائع جزيئية الأجهزة التي يمكن تنفيذ مهام مثل الحصول على كميات صغيرة من السوائل باستخدام أساليب مماثلة لتلك المستخدمة قبل16من الحشرات. مشكلة أساسية في دراسات آليات امتصاص السوائل، ومع ذلك، تحديد ليس فقط كيف الحشرات تتغذى على السوائل، ولكن الحصول على الأدلة التجريبية التي تدعم الآلية. فقط باستخدام السلوك (مثلاً، التحقيق مع12،ململه17) كمؤشر لتغذية غير كافية نظراً لأنها لم تؤكد نجاح امتصاص السوائل، كما أنه لا يقدم وسيلة لتحديد الطريق التي السفر السوائل أنها تمر عن طريق الحشرات. وبالإضافة إلى ذلك، إجراء تجارب مع كميات صغيرة من السوائل أفضل يمثل سيناريوهات التغذية الطبيعية حيث تكون السوائل2،موارد يحد12.

الأشعة السينية تم استخدام التصوير بالتباين مع الفراشة مونارك (داناوس بليكسيبوس L.) لتقييم كيفية تغذية الفراشات على كميات صغيرة من السوائل من الأسطح المسامية12مرحلة. استخدام الفراشات الملك عمل الشعرية عبر المسافات بين الإسقاطات كوتيكولار (ليجولاي الظهرية) على طول ململه لإحضار السوائل تنحصر في المسام الصغيرة في قناة الغذاء. تشكل السوائل واردة فيلم على الجدار قناة الغذاء الذي ينمو وانهيار في جسر سائل بهضبة عدم الاستقرار12،18، التي ثم تنقل إلى القناة الهضمية الفراشة بعمل مضخة مص في الرأس. على الرغم من أن التصوير بالأشعة السينية بالتباين المرحلة أداة مثلى لتصور تدفق السوائل داخل الحشرات12،19،،من2021، التقنية ليست متاحة بسهولة وأكثر ملاءمة الأسلوب هو بحاجة للتقييم السريع للحشرات القدرة على امتصاص السوائل واستيعاب لهم.

لتحديد إذا كان إليه التغذية بليكسيبوس دال- ينطبق على سائر قشريات الجناح وأيضا الذباب (Diptera) (كلا الفريقين تتغذى على السوائل من الأسطح المسامية)، لينرت et al. 13 تطبيق تقنية لتقييم القدرة للحشرات لتتغذى على كميات صغيرة من السوائل من الأسطح المسامية، عنها هنا بالتفصيل. على الرغم من أن البروتوكول الواردة هنا للدراسات التي تستخدم مرطب والأسطح المسامية، يمكن تغيير المنهجية للدراسات الأخرى، مثل تلك التي تتناول آليات تغذية بركة. وبالإضافة إلى ذلك، التطبيقات تمتد إلى الميادين الأخرى، بما في ذلك التكنولوجيا ميكروفلويديكس وبيوينسبيريد.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1-الحشرات الأنواع وإعداد الحلول وتغذية محطة الإعداد

ملاحظة: يتم تحديد الفراشات الملفوف (راب لام، بيرد) كالنوع من قشريات الجناح الممثل لأنه فقد استخدمت في دراسات سابقة من قدرات امتصاص السوائل وموثبارت مورفولوجيا22،23. وتستخدم الذباب البيت (مستأنسة الذبابة لام، مسكيدي) والذباب زجاجة الأزرق (فوميتوريا كاليفورا لام، كاليفوريداي) نظراً لأنها غالباً ما يلاحظ تتغذى على الأسطح المسامية13.

  1. ترتيب راباي P. اليرقات من الحشرات المورد والخلفي لهم على اصطناعية حمية (انظر الجدول للمواد) حتى بوباتي والظهور كبالغين في دائرة البيئة لتعيين إلى 23 درجة مئوية وكبيرة ل 18:6. أمر م. مستأنسة و جيم فوميتوريا الخوادر وخلفي لهم في نفس الظروف البيئية راب ص. لم آر الكبار الفراشات والذباب بعد ظهورها من الخوادر قبل تجارب التغذية.
  2. إعداد حل سكروز 20% (المراقبة) وحل نانوحبيبات سكروز 20% لاختبار لامتصاص السوائل. إعداد الحل نانوحبيبات بإضافة جسيمات نانوية مغناطيسية الفلورسنت (أكسيد الحديد مع طلاء حمض polyacrylic، ما يقرب من 20 نانومتر في قطر)24 إلى حل سكروز 20% (1 ملغ/مل dH2س جسيمات نانوية مع السكروز 20% الحل 1:1). تعد حلاً س 1 من الفوسفات مخزنة المالحة (PBS) (10 x المخفف إلى س 1 في dH2س، درجة الحموضة 7.4)، الذي يستخدم لتشريح.
  3. قم بإعداد محطة تغذية يتكون من مناور يدوي مع المشبك ومرحلة تغذية منفصلة (منصة مسطحة) (الشكل 1). ضع شريحة مقعرة في مرحلة الرضاعة ومرشحات النايلون الصافي مع أقطار حجم المسام من 11، 20، 30، 41، أو 60 ميكرومتر والغشاء المرشحات مع أقطار حجم المسام من 1, 5, 8 أو 10 ميكرون القريبة لتجارب التغذية.

2-تغذية البروتوكول

  1. التفاف للحشرة الهيئات والساقين، وأجنحة في ورقة مطوية بالانسجة. ضع الحشرة بحيث يتم كشفها إلا في الرأس وفمها. ضع أجنحة الحشرة بين شريحتين المجهر، التي تعقد معا بالمشبك على مناور حيث أن الحشرة هو تعليق أعلاه مرحلة الرضاعة (الشكل 1).
  2. إدارة معالجة تجميعية 30 ميليلتر من محلول السكروز 20% أو محلول نانوحبيبات السكروز 20% مع ميكروبيبيتي إلى وسط الشريحة مقعرة. ضع ورقة مرشح واحد من حجم المسام محددة على شريحة مقعرة حتى محاذاة وسط الورقة عامل التصفية مع الحبرية الحل نانوحبيبات. الاتصال بين الحبرية وورقة تصفية النتائج في الحل الذي ينتشر على طول الورقة عامل التصفية، ملء المسام (الشكل 1).
    ملاحظة: سيتم وضع ورقة تصفية أعلى الحبرية، وليس على العكس من ذلك، للتقليل من احتمال وجود جسيمات نانوية فوق ورق الترشيح حيث تغذية الحشرات.
  3. ضع الحشرة مع مناور حيث يمكن الاتصال فقط المناطق البعيدة فمها ورقة تصفية ترطب في مرحلة الرضاعة (الشكل 1). استخدام دبوس الحشرات لتمديد فمها على ورق الترشيح والسماح للحشرات لتغذية ل 45 ثانية.
  4. لتقليل الفرصة للحشرات التي تتغذى على الأفلام السائلة التي قد تكون موجودة على سطح الورق تصفية، ضع في فمها بحيث تكون على اتصال بجزء من الورقة عامل التصفية الذي لمس الجزء المسطح من الشريحة (أي. ، لا مباشرة فوق الجزء المقعر من الشريحة). إذا الحشرة لا تعبر عن اهتمامها بالتغذية، يمكن عقد في فمها ورقة تصفية مع دبوس الحشرات لمدة الوقت التغذية.

3-تشريح

  1. ضع الحل برنامج تلفزيوني في زجاج مشاهدة 50 ملم حتى لا يكون هناك حل ما يكفي لتغطية الجسم للحشرة. ضع الزجاج يشاهد تحت الحشرات ستيريوسكوبي وموقف تشريح المعدات (الربيع الصغير تشريح مقص، دبابيس الحشرات، ونقطة غرامة تشريح الملقط) بجوار ستيريوسكوبي.
  2. وبعد التغذية، إزالة الحشرة من المناديل الورقية والاحتفاظ بها مع أجنحة مغلقة. إزالة الرأس والساقين، وأجنحة الحشرة مع مقص تشريح الصغرى في الربيع وتضع الحشرة في حل برنامج تلفزيوني في الزجاج يشاهد (الشكل 2).
  3. إذا لزم الأمر، تخدير الحشرات قبل تشريح. استخدام الملقط لعقد الحشرة ببشرة قرب المنطقة البعيدة من البطن. مع اليد المسيطرة، استخدم الجزئي الربيع تشريح مقص لقص بشرة في اتجاه أمامي على طول الجانب الأفقي من البطن، بدءاً من نهاية الخلفي، حتى يتم التوصل إلى الصدر. عناية خاصة لضمان أن يتم قطع فقط بشرة وأن القناة الهضمية داخل الحشرة لا أضرار (الشكل 2).
  4. إجراء تخفيضات إضافية لبشرة مع مقص تشريح لفتح البطن للكشف عن القناة الهضمية داخل (الشكل 2). إزالة بشرة البطن والدهون في الجسم، وهياكل أخرى بمساعدة دبابيس الحشرات ونقلهم خارج الزجاج مشاهدة للتخلص منها لاحقاً، تاركاً فقط الصدر والقناة الهضمية في الزجاج مشاهدة.
    ملاحظة: سوف تكشف عن التشريح المحصول، وبنية تشبه الكيس (امتداداً للقناة الهضمية) يقع بالقرب من منعطف بين الصدر والبطن.
  5. إذا لم يتعرض هذا المحصول، جعل شقوق إضافية في الصدر مع المقص حتى يتم كشف هذا المحصول. بعد المحصول مرئياً، قطع بعيداً من الأجزاء المتبقية من الحشرات ترك القناة الهضمية فقط مع هذا المحصول في الزجاج يشاهد (الشكل 2).
    ملاحظة: المحصول ليبيدوبتيران تقريبا شفافة ومثل السيلوفان في الطبيعة، والتي قد يكون من الصعب التعرف إذا كان لا مليئة بالسوائل وتوسيع أو إذا فإنه يتم قطع خلال التشريح.
  6. استخدام نقطة غرامة تشريح الملقط لوضع المحصول على ساترة (24 ملم × 24 مم) لتصوير اللاحقة (الشكل 2).

4-تحديد بلعها جسيمات نانوية

  1. موقف المحصول على ساترة مع استخدام الملقط تشريح نقطة غرامة الرعاية لمنع تمزيق المحصول. استخدام قناة CY3 (أو مرحلة التباين) في مجهر مقلوب [كنفوكل] للتصوير في 20 X التكبير. صورة المحصول مباشرة بعد تشريح لمنعها من الجفاف.
  2. عقد ضجة مغناطيسية بار (41.3 في الطول و 8 ملم في القطر) في اليد التي ليست في السيطرة على مرحلة التشغيل من المجهر.
موجه شريط إثارة المغناطيسية ذهابا وإيابا قرب المحاصيل (حوالي 10 ملم في المسافة من المحاصيل) حيث أن كل منها ذهابا وإيابا يأخذ الاقتراح ثانية واحدة تقريبا (الشكل 2).
  • بينما هو لوح شريط إثارة المغناطيسية، تفقد المحاصيل لجسيمات نانوية. تتحرك ببطء مرحلة التشغيل ذهابا وإيابا بينما تبحث من خلال عدسة العين من المجهر لحركة نانوحبيبات داخل المحصول شفاف تقريبا. إذا كانت موجودة جسيمات نانوية في المحاصيل، مما يشير إلى تغذية إيجابية، أنها تستجيب وموجه في انسجام مع المغناطيسي يحرك بار (الشكل 2).

    • الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    النتائج

    دراسة أنماط في قدرات امتصاص السوائل بين السائل-تغذية الحشرات يتطلب تحديد عند حدوث التغذية. يتم استخدام البروتوكول المبينة هنا لاختبار الفرضية حجم المسام الحد بين قشريات الجناح و Diptera13. فرضية حجم المسام تحد الدول أن السائل-تغذية الحشرات لا تستطيع إطعام من المسام مليئة بسائل إذا كان القطر حجم مسام أصغر من قطر قنوات تغذية12. يجب أن تشكل السوائل واردة من السطح المسامية جسر سائل مستقرة، عن طريق عدم الاستقرار الهضبة18، ...

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    المناقشة

    وظائف موثبارت الحشرات تاريخيا يستدل من الدراسات الإجمالية مورفولوجيا (مثلاً.، ململه ليبيدوبتيران وظائف تتصل قش25،مياه شرب26)؛ ومع ذلك، أدت الدراسات الحديثة التي تتضمن أدلة تجريبية نقله نوعية في فهمنا لتعقيدات الحشرات فمها وهيكل-وظيفة علاقات2،،من1213 , 22 , 27-على الرغم من أن توفر تقنيات التصوي...

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    الإفصاحات

    الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

    شكر وتقدير

    وأيد هذا العمل بمؤسسة العلوم الوطنية (NSF) منحة لا. دائرة الرقابة الداخلية 1354956. ونحن نشكر الدكتور أندرو دال وارن (مركز ماجواير قشريات الجناح، والتنوع البيولوجي، فلوريدا متحف التاريخ الطبيعي، جامعة فلوريدا) للحصول على إذن لاستخدام الصور فراشة.

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    المواد

    قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
    الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
    محلول سكروز 20٪سكراللازم لإنتاج محلول السكروز مع dH 2< / sub>O
    محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)Sigma-AldrichP5493تركيز 10X مخفف إلى 1X في dH 2< / sub>O لتشريح الحشرات
    شريحة مقعرةمن الاكتئاب AmScopeBS-C6Slide ضرورية لإعداد
    ورق الترشيحEMD MilliporeNY6004700 (60 & micro; م)مرشحات شبكة النايلون ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق الترشيحEMD MilliporeNY4104700 (41 & micro; م)مرشحات النايلون الصافية ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق ترشيحEMD MilliporeNY3004700 (30 & micro; م)مرشحات شبكة النايلون ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق ترشيحEMD MilliporeNY2004700 (20 & micro; م)مرشحات النايلون الصافية ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق ترشيحEMD MilliporeNY1104700 (11 & micro; م)مرشحات النايلون الصافية ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق الترشيحEMD MilliporeTCTP04700 (10 & micro; م)مرشحات النايلون الصافية ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق ترشيحEMD MilliporeTETP04700 (8 & micro; م)مرشحات نايلون صافي ومرشحات متساوية ضرورية لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق ترشيحEMD MilliporeTMTP04700 (5 & micro; م)مرشحات شبكة النايلون ومرشحات isopore اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    ورق الترشيحEMD MilliporeRTTP04700 (1 & micro; م)مرشحات شبكة النايلون ومرشحات متساوية البومات اللازمة لإنتاج سطح مسامي لتغذية الحشرات
    مقص تشريح دقيق القزحية مقص623555شركة كارولينا للتوريدمقص يستخدم للتشريح
    دبابيس الحشرات 4دبابيس Bioquip Products1208B1دبابيس تستخدم أثناء تجارب التشريح
    والتغذية ملقط تشريح نقطة دقيقةللغاية شركة كارولينا للتوريد البيولوجي624684معدات التشريح
    Leica M205 C StereoscopeLeica MicrosystemsM205 CStereoscope المستخدم في التشريح
    المجهر متحد البؤر المقلوبOlympusIX81المجهر الفلوري المستخدم للكشف عن الجسيمات النانوية المغناطيسية
    Fisherbrand PTFE شريط التحريك القابل للتصرفFisherscientificS68067مغناطيس يستخدم للكشف عن الجسيمات النانوية
    Kimtech Science KimwipesKimberly-Clark Professional34155مناديل تستخدم لتأمين الحشرات أثناء تجارب التغذية
    ذبابة المنزل (Musca domestica) شرانقMantisplace.comحشرات للتجارب
    ذبابة الزجاجة الزرقاء (Calliphora vomitoria) شرانقMantisplace.comالحشرات للتجارب
    فراشة الملفوف (Pieris rapae) يرقاتشركة كارولينا للتوريد البيولوجي144102الحشرات للتجارب
    Finnpipette F1 & nbsp ؛ThermoFisher Scientific4641080Nلتوزيع السوائل
    Finntip 250 أطراف ماصةThermoFisher Scientific9400250أطراف الماصة
    الدقيقة المجهر شرائح غطاء زجاجي (= أغطية) (24 × 24 مم)AmScopeCS-S24-100لعرض محصول الحشرة على المجهر متحد البؤر
    الدومينو واحدة مرحلة التغذية البيولوجي ماصة دقيقة أغطية

    المراجع

    1. Vijaysegaran, S., Walter, G. H., Drew, R. A. I. Mouthpart structure, feeding mechanisms, and natural food sources of adult Bactrocera (Diptera: Tephritidae). Ann Entomol Soc Am. 90, 184-201 (1997).
    2. Lehnert, M. S., Monaenkova, D., Andrukh, T., Beard, C. E., Adler, P. H., Kornev, K. G. Hydrophobic-hydrophilic dichotomy of the butterfly proboscis. J R Soc Interface. 10, 1-10 (2013).
    3. Zhao, J., Wu, J., Yan, S. Erection mechanism of glossal hairs during honeybee feeding. J Theor biol. 386, 62-68 (2015).
    4. Redak, R. A., Purcell, A. H., Lopes, J. R. S., Blua, M. J., Mizell, R. F. 3rd, Andersen, P. C. The biology of xylem fluid-feeding insect vectors of Xylella fastidiosa and their relation to disease epidemiology. Ann. Review Entomol. 49, 243-270 (2004).
    5. Büttiker, W., Krenn, H. W., Putterill, J. F. The proboscis of eye-frequenting and piercing Lepidoptera (Insecta). Zoomorphology. 116, 77-83 (1996).
    6. Light, J. E., Smith, V. S., Allen, J. M., Durden, L. A., Reed, D. L. Evolutionary history of mammalian sucking lice (Phthiraptera: Anoplura). BMC Evol Biol. 10, (2010).
    7. Krenn, H. W., Aspock, H. Form, function and evolution of the mouthparts of blood-feeding Arthropoda. Arthropod Struct Dev. 41, 101-118 (2012).
    8. Lehnert, M. P., Pereira, R. M., Koehler, P. G., Walker, W., Lehnert, M. S. Control of Cimex lectularius using heat combined with dichlorvos resin strips. Med Vet Entomol. 25, 460-464 (2011).
    9. Zaspel, J. M., Kononenko, V. S., Goldstein, P. Z. Another blood feeder? Experimental feeding of a fruit-piercing moth species on human blood in the Primorye Territory of far eastern Russia (Lepidoptera: Noctuidae: Calpinae). J Insect Behav. 20, 437-451 (2007).
    10. Barth, F. G. Insects and flowers: the biology of a partnership. , Princeton University Press. Princeton. (1991).
    11. Foil, L. D., Adams, W. V., McManus, J. M., Issel, C. J. Bloodmeal residues on mouthparts of Tabanus fuscicostatus (Diptera: Tabanidae) and the potential for mechanical transmission of pathogens. J Med Entomol. 24, 613-616 (1987).
    12. Monaenkova, D., et al. Butterfly proboscis: combining a drinking straw with a nanosponge facilitated diversification of feeding habits. J R Soc Interface. 9, 720-726 (2012).
    13. Lehnert, M. S., et al. Mouthpart conduit sizes of fluid-feeding insects determine the ability to feed from pores. Proc. R. Soc. B. 284, (2017).
    14. Grimaldi, D., Engel, M. S. Evolution of the insects. , Cambridge University Press. New York, NY. (2005).
    15. Adler, P. H., Foottit, R. G. Insect biodiversity: science and society. , Wiley Blackwell. Chichester, UK. (2009).
    16. Tsai, C. C., et al. Nanoporous artificial proboscis for probing minute amount of liquids. Nanoscale. 3, (2011).
    17. Krenn, H. W. Proboscis sensilla in Vanessa cardui (Nympahlidae, Lepidoptera): Functional morphology and significance of flower-probing. Zoomorphology. 118, 23-30 (1998).
    18. Plateau, J. A. F. Experimental and theoretical researches on the figures of equilibrium of liquid mass withdrawn from the action of gravity. (Transl). Annual Report of the Board Regents Smithsonian Institution. , Government Printing Office. Washington, DC. 207-285 (1863).
    19. Socha, J. J., Westneat, M. W., Harrison, J. F., Waters, J. S., Lee, W. -K. Real-time phase-contrast x-ray imaging: a new technique for the study of animal form and function. BMC Biol. 5, 6(2007).
    20. Westneat, M. W., Socha, J. J., Lee, W. -K. Advances in biological structure, function and physiology using synchrotron x-ray imaging. Annu Rev Physiol. 70, 119-142 (2008).
    21. Lee, W. -K., Socha, J. J. Direct visualization of hemolymph flow in the heart of a grasshopper (Schistocerca americana). BMC Physiology. 9, 2(2009).
    22. Lehnert, M. S., Mulvane, C. P., Brother, A. Mouthpart separation does not impede butterfly feeding. Arthropod Struct Dev. 43, 97-102 (2014).
    23. Lehnert, M. S., Beard, C. E., Gerard, P. D., Kornev, K. G., Adler, P. H. Structure of the lepidopteran proboscis in relation to feeding guild. J Morphol. 277, 167-182 (2016).
    24. Yan, H., Sung, B., Kim, M. -H., Kim, C. A novel strategy for functionalizable photoluminescent magnetic nanoparticles. Mater. Res. Express. 1, 045032(2014).
    25. Kingsolver, J. G., Daniel, T. L. On the mechanics and energetics of nectar feeding in butterflies. J Theor Biol. 76, 167-179 (1979).
    26. Krenn, H. W. Feeding mechanisms of adult Lepidoptera: Structure, function, and evolution of the mouthparts. Ann Rev Entomol. 55, 307-327 (2010).
    27. Tsai, C. -C., Monaenkova, D., Beard, C. E., Adler, P. H., Kornev, K. G. Paradox of the drinking-straw model of the butterfly proboscis. J Exp Biol. 217, 2130-2138 (2014).
    28. Bauder, J. A. S., Handschuh, S., Metscher, B. D., Krenn, H. W. Functional morphology of the feeding apparatus and evolution of proboscis length in metalmark butterflies (Lepidoptera: Riodinidae). Biol J Linn Soc. 110, 291-304 (2013).

    الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

    إعادة الطباعة والأذونات

    طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

    طلب إذن

    الوسوم

    مقالات ذات صلة