مقالة منهجية

تسجيل الضغط إينتراكافيرنوسال لتقييم وظيفة الانتصاب في القوارض

DOI:

10.3791/56798

يونيو 6, 2018

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تسجيل الضغط إينتراكافيرنوسال (برنامج المقارنات الدولية) وسيلة هامة لتقييم وظيفة الانتصاب الحيوانات التجريبية. هنا، يتجلى بروتوكول مفصل لإجراءات التسجيل لبرنامج المقارنات الدولية كاثيتيريزينج القضيب كرورا وثم كهربائياً تحفيز الأعصاب الكهفي في الفئران.

الملخص

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ضعف الانتصاب (ED) يعرف بأنه عدم القدرة على تحقيق أو المحافظة على انتصاب من القضيب، وقد أصبح هذا اضطراب جنسي ذكور انتشارا. تستخدم القوارض بالعديد من الدراسات لبحوث علم وظائف الأعضاء/أمراض الانتصاب. يمكن تقييم وظيفة الانتصاب في القوارض بقياس الضغط إينتراكافيرنوسال (برنامج المقارنات الدولية). في الممارسة العملية، يمكن رصد برنامج المقارنات الدولية في أعقاب التحفيز الكهربائي للأعصاب الكهفي (CNs). الضغط الشرياني للشريان السباتي (متوسط الضغط الشرياني) يستخدم كالمرجع لبرنامج المقارنات الدولية. باستخدام برنامج المقارنات الدولية تسجيل البروتوكولات، ويمكن قياس العديد من المعالم الرئيسية لوظيفة الانتصاب من منحنى استجابة برنامج المقارنات الدولية. قياس برنامج المقارنات الدولية توفر معلومات أكثر من اختبار الانتصاب القضيب المستحثة apomorphine، وهو أرخص من رصد القياس البعدي القضيب spongiosum الإحضار، مما يجعل هذا الأسلوب الأكثر شعبية واحدة لتقييم وظيفة الانتصاب. ومع ذلك، مقارنة لاختبار وظيفة الانتصاب التي يسببها APO تنفيذها بسهولة، تسجيلات برنامج المقارنات الدولية الناجحة تتطلب الاهتمام بالتفاصيل، والممارسة، والتمسك بطريقة عملية. في هذا العمل، تقدم مقدمة لتسجيل برنامج المقارنات الدولية في الفئران لتكملة الإجراءات كفاءة.

المقدمة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

اد يعرف بأنه عدم القدرة على تحقيق أو الحفاظ انتصاب القضيب، وأصبح اضطراب جنسي ذكور مشتركة1. وتستخدم الحيوانات التجريبية وتقديم نماذج استنساخه للتحقيق في وظيفة الانتصاب2. لفترة طويلة، وقد استخدمت عدة نماذج حيوانية أكبر للتحقيق في الانتصاب3،،من45. على الرغم من قوارض صغيرة نسبيا مقارنة بغيرها من الحيوانات، كما أنها تستخدم لدراسة الانتصاب الذكور نظراً لنستعرض عدة مزايا6. أولاً، يرد موجز لها الخصائص الجنسية المورفولوجية والوظيفية للبشر في القوارض. ثانيا، بالمقارنة مع أكبر الحيوانات المستخدمة في الدراسات اد، القوارض أكثر اقتصادا لشراء منزل، والحفاظ على. نماذج القوارض المعدلة وراثيا، والثالثة توفر مزايا في الدراسات السلوكية وكذلك العصبية استنساخه واللاحقة. ولذلك، أصبحت القوارض بسرعة الحيوانات الأولية المستخدمة في هذه الدراسة من الذكور من ضعف الانتصاب.

تستفيد من خلفية وراثية نقية وظروف ثقافة متسقة، قدمت نماذج القوارض استنساخه باستمرار البيانات5،6،،من78. من بين العديد من الدراسات المتاحة ذات الصلة بجوانب كثيرة من وظائف الانتصاب، apomorphine (APO)-استجابة الانتصاب المستحث واختبار التحفيز المستحثة الكهربائية برنامج المقارنات الدولية الاستجابة هي الأساليب الأكثر استخداماً التي موثوق بها تعكس الانتصاب وظيفة9،10،،من1112. اختبار وظيفة الانتصاب التي يسببها APO، وضعتها هيتون et al. 13، هو بيو-الإنزيم الذي يستخدم هذه الظاهرة أن إدارة apomorphine الفئران يتسبب الانتصاب والتثاؤب. كسهله وموسع ومستقرة بيو-مقايسة لتقييم وظيفة الانتصاب، اختبار وظيفة الانتصاب التي يسببها APO يستخدم على نطاق واسع في العديد من الدراسات. غير أن هذا التحليل لا يعكس نوعية الانتصاب أو التغيرات الدينامية في تدفق الدم المقترن استجابة الانتصاب14. قياسات برنامج المقارنات الدولية، وضعت في البداية كوينلان et al. 15-في هذا الأسلوب، يتم وضع قسطرة في الشريان السباتي لقياس ضغط الدم النظامية، ويتم إدخال قسطرة أخرى في cavernosum الإحضار ساق لتسجيل برنامج المقارنات الدولية. قبل أو أثناء التسجيل، وعامل فعال في الأوعية و/أو تنشيط الحقل الكهربائي من العقدة الحوض الرئيسية (ميلا في الغالون) برنامج المقارنات الدولية أو CN كثيرا ما أعطيت ل الفئران14. هذا التحليل كان أداة موثوقة لتقييم العلاج والأدوية اد، وسوف يرجح أن تستخدم كأسلوب تقييم حيوي في المستقبل6.

مقارنة لاختبار وظيفة الانتصاب التي يسببها APO تنفيذها بسهولة، تسجيلات برنامج المقارنات الدولية الناجحة تتطلب الاهتمام بالتفاصيل والممارسة، والتمسك بطريقة عملية. ولذلك، هنا، نحن نقدم وصفاً مفصلاً لكيفية إجراء تسجيل برنامج المقارنات الدولية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

عمره ثلاثة أشهر و 18 شهرا الفئران سبراغ داولي واستخدمت في هذه الدراسة. كل الحيوانات عولجت وفقا "المبادئ التوجيهية المعاهد الوطنية للصحة" لرعاية واستخدام الحيوانات المختبرية. الإجراءات التي تشمل مواضيع الحيوان أقرتها لجنة الأخلاق، ورعاية الحيوان المؤسسية المحلية مع محاولة لتقليل معاناة الحيوانات. البروتوكولات وافق على "رعاية الحيوان المؤسسية" واستخدام اللجنة (إياكوك) في جامعة نانجينغ للتكنولوجيا (نانجينغ، الصين).

وتم تقسيم الفئران إلى مجموعتين وفقا لسنهم وأولية للأداء في اختبار وظيفة الانتصاب التي يسببها APO قبل تسجيل برنامج المقارنات الدولية: الشباب العادي (المجموعة YN) والذين تتراوح أعمارهم بين ضعف الانتصاب المجموعة (المجموعة هاء)10.

1-إعداد قبل الجراحة

  1. يدوياً جعل زوج من أقطاب القطبين لتسجيل برنامج المقارنات الدولية (الشكل 1). قليلاً ثني نهايات الأقطاب، وضبط المسافة بين قطبين إلى 1-2 مم على نطاق واسع، كما هو مبين في الشكل 1 ألف.
  2. قم بتوصيل الأقطاب مشجعا استخدام المشابك التماسيح اثنين (الشكل 1 أ، ب).
  3. تجميع نظام القسطرة: أولاً، الاتصال إبرة ز 23 hypodermic محبس الحنفية 3-الطريقة مع الأنابيب، ثم الاتصال محبس الحنفية الضغط على المفاتيح. بعد ذلك، إرفاق حقنه 10 مل إلى نهاية الثالث محبس الحنفية توفير الهيبارين المالحة.
  4. فحص دقيق للتسرب بعد تعبئة النظام بأكمله مع الهيبارين المالحة (200 U/mL). ثم انتقل محبس الحنفية 3-طريقة لإغلاق القناة المحاقن أو الضغط على المفاتيح القناة (الشكل 1).
  5. أرفع مستوى لوح خشبي الإبرة 20 سم. ثم معايرة الضغط تسجيل النظام إلى 20 سم ح2o. وبعد ذلك، نقل ارتفاع الإبرة للتحقق من دقة نظام التسجيل. كرر المعايرة حتى تم تأكيد الدقة.
  6. نقل الفئران من مرفق الحيوان إلى غرفة الجراحة، وتمكينهم من اعتاد إلى غرفة الجراحة لمدة 30 دقيقة على الأقل.
  7. ترش بالصكوك يعقم مع الإيثانول 70% فقط قبل الجراحة

2. إجراء جراحة

  1. تخدير الفئران بحقن داخل الصوديوم بينتوباربيتال بجرعة من 45 مغ/كغ من وزن الجسم، وانتظر 5-10 دقيقة قرصه الأصابع للتأكد من أنيسثيتيزيشن سليم.
  2. يحلق الفراء البطن والرقبة مع ماكينة حلاقة كهربائية، ومكان الفئران على ظهرها وسادة تدفئة.
  3. مسح منطقة الجراحة مع 10% بوفيدون حل غارقة كرات القطن متبوعاً بكرات القطن الإيثانول 70% بالدماء. أيضا، تطبيق مرهم العيون لمنع العينين من الجفاف.
  4. كاثيتيريزي الشريان السباتي الأيسر.
    1. أمسك جلد الرقبة بالملقط وجعل شق أفقي في منتصف الرقبة. جداً في العضلات، بعناية فضح الشريان السباتي الأيسر، وعزل قسم 5 مم من السفينة.
    2. عناية فصل الشريان السباتي من العصب المبهم باستخدام الملقط، رسم خياطة حرير تحت الشريان السباتي، ووضع تعادل فضفاضة على نهاية والذيلية للسفينة، ثم جعل آخر عقده ضيق في نهاية الجمجمة من السفينة.
    3. كودالي المشبك السفينة مع المشبك لدغ أعلاه خياطة لوقف تدفق الدم.
    4. بعناية تجعل شق على متن السفينة مع مقص ميكروسورجيكال، وإدراج قسطرة الشرايين نحو القلب بمساعدة هوك وملقط تشريح الصغرى.
    5. ربط حرف مزدوج والذيلية فضفاضة حول القسطرة لضمان الحصول عليها. إزالة المشبك لدغ لاستعادة تدفق الدم.
  5. عزل CN ومكان مسرى
    1. مع زوج من الملقط، رفع الجلد والعضلات في البطن. مع مقص تشريح، قطع طريق أسفل البطن إلى القضيب جعل شق خط الوسط.
    2. دفع الأمعاء مع مسحه بلطف إلى الجزء العلوي من تجويف البطن.
    3. فهم المثانة مع زوج من الملقط وسحب المثانة من تجويف البطن. كشف الفصوص البطني البروستاتا، الذي يقع في الجزء البطني من مجرى البول.
    4. سحب الفصوص البطني البروستاتا، حويصلة، والاسهر لفضح الفص الظهرية البروستات. العثور على نقطة التصاق الاسهر والبروستاتا.
    5. مساحة بين البروستاتا والاسهر منفصلة. فضح الكبسولة الليفية، التي يقع اللاحق إلى نقطة تقاطع للبروستاتا والاسهر بعناية. ثم العثور العقدة الرئيسية الحوض (الشكل 2).
      ملاحظة: أن العقدة الرئيسية في الحوض والأعصاب الكهفي يمكن رؤية سطح البروستاتا.
    6. المجال CN الجافة بعناية مع مسحه معقمة. عزل وربط العصب الكهفي الحق مع أقطاب القطبين بعناية.
  6. كاثيتيريزي كرورا اليسرى
    1. قص شق صغير في جلد القضيب مع مقص تشريح، ومن ثم سلب الجلد رمح القضيب بعناية.
    2. تشريح عضلات القضيب striated. ابحث عن الفرع العلوي لعظم العانة.
    3. كشف عضلة بولبوسبونجيوسوس، الذي يغطي لمبة سبونجيوس.
    4. تقسيم العضلات بولبوسبونجيوسوس من العضلات إيشيوكافيرنوسوس باستخدام الملقط منحنية.
    5. عزل العضلات إيشيوكافيرنوسوس بعناية مع الملقط منحنى ومن ثم قص العضلات إيشيوكافيرنوسوس لفضح albuginea الغلالة البيضاء من cavernosum الإحضار ساق.
    6. في أعقاب اتجاه cavernosum الإحضار ساق التشريحية، بعناية إدراج الإبرة في cavernosum الإحضار ساق من خلال albuginea الغلالة البيضاء.
      ملاحظة: هذا خطوة حاسمة لقسطرة ناجحة. يمكن حقن كمية صغيرة من المياه المالحة هيبارينيزيد، وينبغي التقيد انتفاخ القضيب طفيف، إذا تم إدراج الإبرة بشكل صحيح.
    7. الإفراج عن الإبرة وتجنب أي انزلاق الإبرة أو تعطل أنبوب يربط بعناية. تفتيش لأي تسرب.

3-الحث على CN

  1. فتح برنامج حاسوبي لتسجيل إشارة الضغط وبدء تسجيل إشارة الضغط.
  2. تعيين المعلمات للتحفيز: 15 هيرتز وعرض النبض الميلي ثانية 5، 5 فولت، لمدة 60 ثانية. حفز CN في تواتر 15 هرتز مع عرض نبض 5 مللي ثانية.
    ملاحظة: يمكن ملاحظة ارتفاع حاد لبرنامج المقارنات الدولية أثناء تطبيق التحفيز الكهربائي.
  3. السماح بفترة الراحة بعد 30 دقيقة بين التحفيز. الحد الأقصى للتحفيز على التوالي في كل الحيوانات ثلاث مرات.

4-في نهاية الإجراء

  1. بعد التسجيل، إدارة القتل الرحيم عن طريق حقن جرعة زائدة من الصوديوم بينتوباربيتال بجرعة 150 مغ/كغ من وزن الجسم. تأكيد وفاة الفئران بالتدقيق على الضغط الشرياني. إزالة الفئران، وتنظيف أدوات الجراحة.

5-بيانات التحليل

  1. حفظ وتصدير البيانات من البرنامج. عادة يتم التعبير عن الاستجابة كالنسبة من برنامج المقارنات الدولية للضغط الشرياني يعني الجهازية (خريطة). وحسبت نسبة الذروة برنامج المقارنات الدولية/خريطة لتقييم وظيفة الانتصاب.
  2. تجميع البيانات من الفئران على الأقل خمسة، وتحليلها مع البرامج الإحصائية. الاختلافات تعتبر يعتد بها إحصائيا عند ف < 0.05، استخدام الاختبار t للطالب.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وأظهرت العديد من الدراسات أن ضعف الانتصاب في المسنين الذكور أصبحت مشكلة شائعة. ومع ذلك، يقتصر العلاج الطبي في إدارة المتصلة بالشيخوخة اد16. في نماذج القوارض من اد المتصلة بالشيخوخة، يتم اختبار العديد من العلاجات في وظيفة الانتصاب من الفئران الذين تتراوح أعمارهم بين. كما قدمنا أعلاه، يمكن استخدام اختبار تسجيل برنامج المقارنات الدولية التمييز بين الحيوانات اد من مجموع السكان في الحيوانات التجريبية، الذي أيضا قيمة لقياس تأثير المخدرات أو العلاج المحتملة على وظيفة الان...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

كتدبير مباشر لوظيفة الانتصاب، هو برنامج المقارنات الدولية طريقة موثوق بها14. أنها تسمح للحصول على بيانات عن القاعدية برنامج المقارنات الدولية، ذروة برنامج المقارنات الدولية، هضبة برنامج المقارنات الدولية، وقت إلى وقت الانتصاب وديتوميسسينسي، ومدة الاستجابة و ما إلى ذلك. وإلى جانب هذه المباشرة قياس البارامترات، هناك بعض المعلمات الأخرى في الفهرس: (1) "T80"، والوقت تصل إلى 80 في المائة ذروة برنامج المقارنات الدولية؛ (2) "D20"، والوقت انخفاض بنسبة 20 في المائة ذروة برنامج المقارنات الدولية؛ (...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الكتاب لا تمت بصلة إلى الكشف عن

شكر وتقدير

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هذا العمل كان تدعمها "أموال البحوث الأساسية" للجامعات المركزية (020814380018، 020814380077)، مجلس المنح الدراسية الصيني (ديوان الخدمة المدنية، رقم 201606195024)، ومؤسسة العلوم الطبيعية بمقاطعة جيانغسو (BK20160138)، ومشروع مفتاح يدعمه العلم والتكنولوجيا مؤسسة التنمية، جامعة نانجينغ الطبية (2014NJMUZD053).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
<قوي>< / قوي >
سلالة الفئران: سبراج داولي العمر: 2-3 أشهر
سلالةالفئران: سبراج داولي العمر: 15-18 شهرا
<قوي>الاسم< / قوي><قوي>الشركة< / قوي><قوي>رقم الكتالوجتعليقات
<قوي > كواشف < / قوي >
سالينسيجما ألدريتش ، S7653يذوب 8.5 جرام كلوريد الصوديوم في الماء المقطر
محلول الصوديوم بنتوباربيتالسيجما ألدريتش ، P3761يذوب 1 جرام في محلول ملحي
بوفيدون اليودBTP Pharmaceutical Co. Limited10٪ (V / V)
الإيثانولشركة المجموعة الصيدلانية الوطنية الصينية (سينوفارم)70٪ (V / V)
الهيبارينسيجما ألدريتش ، H3149يذوب 20000U الهيبارين في 100 مل من المحلول
الملحي < قوي > الاسم < / قوي >< قوي > الشركة < / قوي >< قوي > رقم الكتالوج < / strong > التعليقات < / strong >
المواد < / قوي>
إبرة تحت الجلدشاندونغ ويجاو مجموعة البوليمر الطبية المحدودة  23G
حقنةشاندونغ Weigao مجموعة البوليمر الطبية المحدودة10 مل
ثلاثي الاتجاهاتتشنغدو للأدواتTSK 01
مصنعأدوات تشنغدوالكهربائي JST-1
أنبوب القسطرةمصنع أدوات تشنغدوPE-10 ، PE-50
مقص التشغيلشنغهاي معدات التشغيل مصنعJ22010 ، J22020
مقص تشغيل العيونمعدات تشغيل شنغهايY00010 ، Y00020
ملقط العيونمصنع معدات تشغيل شنغهايJD1010 ، JD1020
MicroScissorsWorld Precision InstrumentsWAA260
خياطة الحريرShandong Weigao Group Medical Polymer Co.، Ltd.   ؛5-0<
قوي>الاسم<قوي>الشركة رقم الكتالوجتعليقات
Equipment
Stimulatorشركة نانجينغ ميداي للعلوم والتكنولوجيا المحدودة (موديل 4C501H)15 هرتز ، نبض 5 مللي ثانية ، 5 فولت ، مدة 60 ثانية وفاصل زمني 5 دقائق
نظام معالجة جمع الإشارات متعدد القنواتشركة نانجينغ ميديز للعلوم والتكنولوجيا المحدودة (موديل 4C501H)نموذج ضغط الدم
محول الضغطبكين شين هانغ شينغ يي شركة للتجارة المحدودة (موديل YP100)40KPa
مصنع مصنع

المراجع

Loading...
$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. NIH Consensus Conference. Impotence. NIH Consensus Development Panel on Impotence. JAMA. 270 (1), 83-90 (1993).
  2. Chung, E., De Young, L., Brock, G. B. Investigative models in erectile dysfunction: a state-of-the-art review of current animal models. J Sex Med. 8 (12), 3291-3305 (2011).
  3. Lue, T. F., Takamura, T., Schmidt, R. A. Hemodynamics of erection in the monkey. J Urol. 130 (6), 1237-1241 (1983).
  4. Carati, C. J., Creed, K. E., Keogh, E. J. Autonomic control of penile erection in the dog. J Physiol. 384, 525-538 (1987).
  5. Steers, W. D., Mallory, B., de Groat, W. C. Electrophysiological study of neural activity in penile nerve of the rat. Am J Physiol. 254 (6 Pt 2), R989-R1000 (1988).
  6. Kapoor, M. S., Khan, S. A., Gupta, S. K. Animal models of erectile dysfunction. J Pharmacol Toxicol Methods. 76, 43-54 (2015).
  7. Burnett, A. L., Lowenstein, C. J., Bredt, D. S. Nitric oxide: A physiologic mediator of penile erection. Science. 257 (5068), 401-403 (1992).
  8. Oh, T. Y., Kang, K. K., Ahn, B. O. Erectogenic effect of the selective phosphodiesterase type 5 inhibitor, DA-8159. Arch Pharm Res. 23 (5), 471-476 (2000).
  9. Ouyang, B., Sun, X., Han, D. Human urine-derived stem cells alone or genetically-modified with FGF2 Improve type 2 diabetic erectile dysfunction in a rat model. PLoS One. 9 (3), e92825(2014).
  10. Pan, F., Xu, J., Zhang, Q. Identification and characterization of the MicroRNA profile in aging rats with erectile dysfunction. J Sex Med. 11 (7), 1646-1656 (2014).
  11. Cho, M. C., Park, K., Kim, S. W. Restoration of erectile function by suppression of corporal apoptosis, fibrosis and corporal veno-occlusive dysfunction with rho-kinase inhibitors in a rat model of cavernous nerve injury. J Urol. 193 (5), 1716-1723 (2015).
  12. Hannan, J. L., Matsui, H., Sopko, N. A. Caspase-3 dependent nitrergic neuronal apoptosis following cavernous nerve injury is mediated via RhoA and ROCK activation in major pelvic ganglion. Sci Rep. 6, 29416(2016).
  13. Heaton, J. P., Varrin, S. J., Morales, A. The characterization of a bio-assay of erectile function in a rat model. J Urol. 145 (5), 1099-1102 (1991).
  14. Mehta, N., Sikka, S., Rajasekaran, M. Rat as an animal model for male erectile function evaluation in sexual medicine research. J Sex Med. 5 (6), 1278-1283 (2008).
  15. Quinlan, D. M., Nelson, R. J., Partin, A. W. The rat as a model for the study of penile erection. J Urol. 141 (3), 656-661 (1989).
  16. Albersen, M., Orabi, H., Lue, T. F. Evaluation and treatment of erectile dysfunction in the aging male: A mini-review. Gerontology. 58 (1), 3-14 (2012).
  17. Hedlund, P., Matsumoto, K., Andersson, K. -E. Animal Models of Erectile Dysfunction. Curr Prot Pharmacol. 29, 5.41.1-5.41.22 (2005).
  18. Giuliano, F., Bernabe, J., Rampin, O. Telemetric monitoring of intracavernous pressure in freely moving rats during copulation. J Urol. 152 (4), 1271-1274 (1994).
  19. Bernabe, J., Rampin, O., Giuliano, F. Intracavernous pressure changes during reflexive penile erections in the rat. Physiol Behav. 57 (5), 837-841 (1995).
  20. Bernabe, J., Rampin, O., Sachs, B. D. Intracavernous pressure during erection in rats: an integrative approach based on telemetric recording. Am J Physiol. 276 (2 Pt 2), R441-R449 (1999).
  21. Adachi, H., Kodama, K., Ishihara, H. Evaluation of erectile response by continuous measurement of penile diameter in rats. J Pharmacol Toxicol Methods. 41 (4), 147-152 (1999).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة