يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تقييم في فيفو لتعطيل حاجز الدم في الدماغ في نموذج الفئران من السكتة الدماغية

11.3K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/57156

⸱

مارس 11, 2018

 ,  ,  , 
1Department of Physiology, Medical School, Ardabil University of Medical Sciences, 2Neurosciences Research Center, Tabriz University of Medical Sciences, 3Research Center for Pharmaceutical Nanotechnology, Faculty of Pharmacy, Tabriz University of Medical Sciences

في هذه المقالة

ملخص

والهدف العام من هذا الإجراء توفير تقنية عالية استنساخه في فيفو التقييم لتعطيل حاجز الدم في الدماغ في نماذج الفئران من السكتة الدماغية.

الملخص

السكتة الدماغية يؤدي إلى فاسوجينيك وذمة دماغية وإصابة في الدماغ الأولية اللاحقة، الذي تم بوساطة من خلال تدمير حاجز الدم في الدماغ (BBB). أنشئت الفئران المستحث السكتة الدماغية واستخدامها كنماذج في فيفو للتحقيق في سلامة BBB الوظيفية. يمكن كشف spectrophotometric إيفانز الأزرق (المجلس التنفيذي) في عينات المخ مع الإصابات الدماغية تبريرا موثوقة لبحوث وتطوير طرائق علاجية مبتكرة. هذا الأسلوب ينشئ نتائج استنساخه، وقابلاً للتطبيق في أي مختبر دون حاجة إلى معدات خاصة. هنا، نحن نقدم توجيهي تصور والتقنية في الكشف عن التسرب من المجلس التنفيذي عقب تنظيم دورات تعريفية للسكتة الدماغية في الفئران.

المقدمة

فاسوجينيك وذمة الدماغ بسبب تعطل حاجز الدم في الدماغ (BBB) يظل مضاعفات هامة من السكتة الدماغية، وعاملا محدداً رئيسيا لمعدل البقاء على قيد الحياة في1،2مرضى السكتة الدماغية. حاجز الدم في الدماغ (بي بي بي)، وهو يتكون من خلايا الدماغ بطانية الشعرية (بسيكس) وتتألف من مكونات متميزة نيوروفاسكولار (مثلاً، تقاطعات ضيق بين بسيكس، بيريسيتيس، أستروجليال، والخلايا العصبية3)، ينص واجهة المتخصصة ودينامية بين الجهاز العصبي المركزي (CNS) والدورة الدموية الطرفية4،5. يمكن تعطيل تكامل وظيفي BBB الشتائم مثل إصابات الاسكيمية-ضخه وتؤدي إلى اختراق لاحقة تعميم الكريات البيضاء إلى حمة الدماغ التي تؤدي في نهاية المطاف إلى الالتهاب الدماغي وإصابات الدماغ الأولية 6 , 7-هناك حاجة إلى نماذج حيوانية للكشف الدقيق عن اختلال وظيفي BBB عقب حدوث جلطة. هذه النماذج ذات أهمية كبيرة لدراسة الآليات الفيزيولوجية المرضية الكامنة والأخذ باستراتيجيات جديدة محصن. في المختبر الخلية المستندة إلى الثقافة نماذج BBB قد تم العالية المتقدمة والمستخدمة للدراسة الجزيئية BBB الفيزيولوجيا المرضية8،،من910. ومع ذلك، في فيفو نماذج حيوانية، التي تنتج الأضرار الدماغية BBB مشابهة للظروف السريرية البشرية، أيضا المفيد جداً في هذا الصدد. الكشف عن كمية التسرب إيفانز الأزرق (EB) هو تقنية مقبولة تماما والحساسة التي استخدمت لتقييم سلامة BBB والدالة في أمراض الأعصاب، بما في ذلك السكتة الدماغية11، 12 , 13 , 14. هذا الأسلوب فعالة من حيث التكلفة ومجدية واستنساخه، وينطبق تماما في أي مختبر تجريبي. لا يتطلب تنفيذه المعدات المتقدمة، مثل تتبع المشعة15 أو التصوير بالرنين المغناطيسي (التصوير بالرنين المغناطيسي)16، التي شروط مسبقة لأساليب أخرى. في هذه المقالة، نظهر صورة شاملة العمليات التقنية الأساسية لتقييم BBB لاستخدام EB التسرب في نماذج الفئران من السكتة الدماغية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وأجريت جميع الإجراءات وفقا للمبادئ التوجيهية التي وضعتها جامعة أردبيل من "مجلس بحوث العلوم الطبية" لإجراء الدراسات الحيوانية (رقم "معرف الأخلاقية": الأشعة تحت الحمراء. أرومس. REC.1394.08). في هذه الدراسة تصور، استخدمنا الفئران سبراغ داولي الذكور البالغين (300-350 غ)، التي تم الحصول عليها من معهد المراعي (طهران).

1-التخدير وفلووميتري

  1. حمل isoflurane 4% باستخدام التخدير والمحافظة عليه مع إيسوفلوراني (1-1.5%) في خليط من أكسيد النيتروز (70% v/v) والأكسجين (30% v/v) طوال مدة الجراحة.
  2. ضع حيوان أنايسثيتيزيد في الموقف الذي عرضه على بطانية تدفئة التغذية المرتدة التي تسيطر عليها، والحفاظ على درجة حرارة الجسم في 37±0.5 درجة مئوية عن طريق تحقيق المستقيم متصل بهذا وحدة التدفئة.
  3. تنطبق على كمية صغيرة من مرهم العيون في كلتا العينين لمنع جفاف.
  4. حلق المنطقة الجراحية على الجانب الأيسر من الجمجمة مع لوس أنجليس كليبرز الكهربائية. استخدم الحل تدين بوسادة شاش لتطهير الجلد. شطف هذه المنطقة مع لوحة عقيمة التي تحتوي على الإيثانول 70% وكرر كل الخطوات لثلاث دورات17.
  5. للتسكين، حقن 0.2 مل بوبيفاكيني 0.5% تحت الجلد في منطقة الجراحة17.
  6. جعل شق جلد طويلة 1 سم في الجمجمة (تمتد من كانتوس الوحشي للعين اليسرى لقاعدة للإذن اليسرى) وتشريح العضلات تيمبوراليس اليسرى لفضح الجمجمة. ثم، إنشاء لدغ صغيرة الثقب الجانبي 5 مم إلى 1 مم الخلفي إلى بريجما18 لسهولة وضع غيض من مقياس التدفق دوبلر قلم التحقيق.
  7. إيقاف الفئران من عرضه لموقف ضعيف، ومن ثم وضع المسبار قلم الليزر في الجمجمة المحفورة سابقا الأعمى-حفرة لمراقبة تدفق الدم الدماغي الإقليمية (rCBF).
  8. تسجيل الأساس ركبف كل الحيوانات واعتبار هذا 100%. جدير بالذكر أن بدء انسداد الشريان الدماغي الأوسط (ماكاو) كلما تم اكتشاف19،20انخفاضا في ركبف لأكثر من 80%.

2-تحريض الاسكيمية المخي المحورية

  1. حلاقة منطقة الرقبة وتطهير الجلد مع الإيثانول تدين الحل و 70%. حقن 0.2 مل بوبيفاكيني 0.5% تحت الجلد في موقع الجراحة لتسكين17.
  2. إجراء شق جراحي طويل 2 سم في السطح البطني للرقبة الوصول إلى الشريان السباتي المشترك الأيسر (لككا). عزل لككا من اللفافة المجاورة والعصب المبهم الوصول إلى التشعب الشريان السباتي الخارجي (اللجنة الاقتصادية لأفريقيا) والشريان السباتي الداخلي (ICA).
  3. اضطر بشكل دائم لككا أو توظف خياطة حرير 5-0 في اللجنة الاقتصادية لأفريقيا وتشريح ICA مجاناً على مستوى الشريان بتيريجوبالاتيني.
  4. ضع فضفاضة تعادل من 5-0 خياطة الحرير حول لككا، وثم مؤقتاً المشبك الحلف مع مقطع الدقيقة والأوعية الدموية.
  5. إجراء شق صغير في لككا قبل التعادل فضفاضة الموضوعة سابقا، ثم إدراج خياطة نايلون المغلفة بالسيليكون 4-0 في الفضاء لومينال للتحالف التعاوني الدولي وتشديد الخياطة حول لككا لتأمين خياطة النايلون ومنع تسرب الدم.
  6. إزالة الأوعية الدموية الصغرى-المقطع من منطقة السيطرة الإسرائيلية. ثم المضي قدما خيوط intraluminal المغلفة سيليكون حتى مراقبة انخفاض ملحوظ في ركبف الذي يشير إلى انسداد منشأ MCA. في نهاية الفترة الدماغية (90 دقيقة)، بدء ضخه بسحب خياطة إينترالومينال21.

3-كانوليشن حبل الوريد وايفانز الزرقاء الحقن (المجلس التنفيذي)

  1. جعل شق طولية 1 سم في الرقبة إلى الجانب الأيسر من خط الوسط وثم صراحة تشريح اللفافة السطحية بعيداً الوصول إلى فرع خارجي من حبل الوريد الأيسر (LGV). ثم، بشكل دائم اضطر الجمجمة نهاية LGV مع خياطة الحرير 5-0. فضفاضة الروابط اثنين حول هذا السياق، وثم مؤقتاً المشبك نهاية LGV مع مايكرو-المشبك الأوعية الدموية القلبية.
  2. إجراء شق صغير في LGV بين خيوط اثنين، وثم إدراج قسطرة هيبارينيزيد المصل شغلها في الفضاء لومينال LGV ومسبقا أنه حوالي 10 ملم. بعد ذلك، تشديد الأربطة حول الوريد لتأمين القسطرة ومنع النزيف. ضخ كميات صغيرة من المصل لتجنب الانهيار في الوريد.
  3. في بداية فترة ضخه، ببطء حقن صبغة EB (1 مل/كجم حل المجلس التنفيذي 2% في المحلول الملحي) على مدى فترة 5 دقائق. وفي وقت لاحق، يغسل القنية بحقن المحلول الملحي العادي 0.5 مل وتنسحب قنية الحقن الوريد12،22.
  4. وأخيراً، خياطة شقوق الرقبة والرأس وحقن البوبرينورفين 0.05 مغ/كغ إينترابيريتونيلي (IP) وتكرار الحقن كل ح 6-8 خلال الفترة ضخه للتسكين بعد العمليات الجراحية17.
  5. ضخ 5 مل saline(IP) المعالجون مسبقاً لتوفير الماء في قفص الانتعاش17.
  6. مكان هذا الحيوان في قفص استرداد خاصة مجهزة بدرجة الحرارة والتحكم في تكييف الهواء ورصد استرداد الحيوان من التخدير.

4-تقييم نفاذية حاجز دم الدماغ

  1. بعد 24 ساعة ضخه، عميق تخدير الحيوان مع بنتوثال الصوديوم. بعد ذلك، فتح تجويف الصدر بإجراء ثقب صغير تحت القص.
  2. جعل فتحه صغيرة في الاذين الأيمن وضخ 250 مل من قبل حرارة المالحة 0.9% (37 ˚C) عند ضغط 110 مم زئبق من خلال البطين الأيسر لمدة 15 دقيقة لغسل EB بعيداً عن التداول حتى مخارج المالحة العادية من الأتريوم يصبح عديم اللون23.
  3. على الفور إزالة الدماغ من الجمجمة ووضعها في مصفوفة الدماغ. تشريح لمبة شمي والمخيخ، ومن ثم استخدام شفرة حلاقة نظيفة، فصل في نصف الكرة الأيسر من الدماغ من اليسار (ليسيونيد) على طول خط الوسط.
  4. تزن كل نصف الكرة الأرضية وتجانسه لهم في 2.5 مل من المحلول الملحي الفوسفات مخزنة بشكل منفصل، ومزيج هذا مع 2.5 مل حمض التريكلوروسيتيك (60%) ل 2 دقيقة باستخدام آلة دوامة.
  5. الطرد المركزي عينات المخ لمدة 30 دقيقة في 1,322 س ز وتسمح العينات لتبرد في ثلاجة 4 درجة مئوية لمدة 10 دقائق.
  6. استخدام سوبيرناتانتس في تقدير امتصاص EB بجهاز المطياف الضوئي في شمال البحر الأبيض المتوسط 61023.
  7. حساب تركيزات EB ضد منحنى قياسي والتعبير عن النتائج ميكروغرام/غرام أنسجة المخ.

5-إنتاج المنحنى القياسي EB

  1. إعداد 10 عينة حلول للمجلس التنفيذي بتركيزات من 1-10 ميكروغرام للمجلس التنفيذي في 5 مل من المحلول الملحي الفوسفات مخزنة مؤقتاً.
  2. قياس قيم امتصاص كل عينة في 610 نيوتن متر باستخدام جهاز المطياف الضوئي.
  3. جعل مخطط مبعثر باستخدام جدول بيانات وتركيزات المجلس التنفيذي الحالي على المحور س، وقيم امتصاص على محور Y (الشكل 1).
  4. تحديد خط اتجاه خطي للمنحنى مع المعادلة لها. ثم استخدم للحصول على تركيز المجلس التنفيذي من العينات.
  5. تقرير النتائج النهائية للتسرب EB ميكروغرام/غرام وزن أنسجة الدماغ.

6-شام العملية

  1. إجراء العملية الجراحية نفسها مع الفئران في المجموعة تعمل بالشام (بما في ذلك إجراء شق في منطقة الرقبة وحقن EB) لكنها تستبعد في ماكاو.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

وكان هناك لا اختلاف كبير في مستويات EB في نصف الكرة الغربي الحق مقابل نصف الكرة الأيسر من الفئران تعمل بالشام (1.06 ± 0.1 ميكروغرام/غرام و 1.1 ± 0.09 ميكروغرام/لتر، على التوالي). كما هو موضح في الأرقام 2 ألف-2، تحريض الاسكيمية العابرة (الاسكيمية 90 دقيقة/ضخه ح 24) بسبب اختلاف كبير في مستويات EB (10.41 ± 0.84 ميكروغرام/لتر، ف < 0.001) في نصف الكرة الأيسر من الفئران الدماغية، مقارنة كل منها نصف الكرة الغربي في الفئران تعمل بالشام. جماعياً، تشير هذه النتائج إلى أ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وحتى الآن، أساليب مختلفة مثل أوتوراديوجرافي والكشف عن تتبع المشعة24،25، الفلورة مجهرية26،27، ونقحت التسرب تقنية20، 23 قد استخدمت لتقييم الضرر حاجز الدم في الدماغ. صبغ المجلس التنفيذي بقوة قادرة على ربط ألبومين المصل ويستخدم الراسم للكشف عن التسرب والأوعية الدموية والتحديد الكمي لل BBB انهيار11،،من

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

الكتاب ممتنون لنائب رئيس الجامعة للبحث أردبيل جامعة للعلوم الطبية (أردبيل، إيران) للدعم المالي (منحة أي: 9607).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
إيزوفلورانبيرامالAWN 3404110020 - 25 درجة ؛ C
2،3،5-Triphenyltetrazolium كلوريد (TTC)Molekula312163684 سنوات
Sprague & ndash ؛ جرذان داولي معهد المراعي (طهران ، إيران)300-350
إيفانز بلو & nbsp ؛سيجما ألدريتش 314-13-6
حمض ثلاثي كلورو أسيتيك  سيجما ألدريتش 76-03-92 سنوات
بوبيفاكائين حمض الهيدروكلوريك (0.5٪)Delpharm Toursأدناه  25 & deg; C
BupernorphineExir (إيران)
كربونات الصوديومSigma-Aldrich 497-19-8
كلوريد الصوديوم سيجما ألدريتش 7647-14-5
ثنائي فوسفات هيدروجين الصوديومEMD Millipore 231-448-7
كلوريد البوتاسيومسيجما-ألدريتش    7447-40-7
الإيثانول سيجما ألدريتش 64-17-5
سيليكون (زانتوبرين)HeraeusEN ISO 4823
منشط عالمي بالإضافة إلىHeraeus66037445
ملقط تشريح دقيقStoelting52100-41
مقصات زنبركيةStoelting52130-00
Operating  مقصRoboz52140-70
مصفوفة الدماغ التخدير Stoelting51390
للحيوانات الصغيرة |  كينت ScientificSS-01
نظام مختبرالطاقة AD InstrumentsML880
مقياس الجريان بالليزر دوبلرAD InstrumentsML191
نظام التغذية الخلفية للتدفئةهارفارد Appratus72-7560
المشبك الجزئي للأوعيةالدموية أدوات FineScienceTools 18055-03
خيط خياطة الحرير 5-0Ethicon682G
خيط خياطة Ethilon 4-0  EH6740GEthicon
جرامآلة

المراجع

  1. Jin, G., et al. Protecting against cerebrovascular injury: contributions of 12/15-lipoxygenase to edema formation after transient focal ischemia. Stroke. 39 (9), 2538-2543 (2008).
  2. Lo, E. H., Dalkara, T., Moskowitz, M. A. Mechanisms, challenges and opportunities in stroke. Nat Rev Neurosci. 4 (5), 399-415 (2003).
  3. Tam, S. J., Watts, R. J. Connecting vascular and nervous system development: angiogenesis and the blood-brain barrier. Annu Rev Neurosci. 33, 379-408 (2010).
  4. Zhang, C., et al. The potential use of H102 peptide-loaded dual-functional nanoparticles in the treatment of Alzheimer's disease. J Control Release. , (2014).
  5. Obermeier, B., Daneman, R., Ransohoff, R. M. Development, maintenance and disruption of the blood-brain barrier. Nat Med. 19 (12), 1584-1596 (2013).
  6. Fang, W., et al. Attenuated Blood-Brain Barrier Dysfunction by XQ-1H Following Ischemic Stroke in Hyperlipidemic Rats. Mol Neurobiol. 52 (1), 162-175 (2015).
  7. Huang, J., et al. CXCR4 antagonist AMD3100 protects blood-brain barrier integrity and reduces inflammatory response after focal ischemia in mice. Stroke. 44 (1), 190-197 (2013).
  8. Omidi, Y., Barar, J. Impacts of blood-brain barrier in drug delivery and targeting of brain tumors. Bioimpacts. 2 (1), 5-22 (2012).
  9. Cho, H., et al. Three-dimensional blood-brain barrier model for in vitro studies of neurovascular pathology. Sci Rep. 5, (2015).
  10. Barar, J., Rafi, M. A., Pourseif, M. M., Omidi, Y. Blood-brain barrier transport machineries and targeted therapy of brain diseases. Bioimpacts. 6 (4), 225-248 (2016).
  11. Kaya, M., et al. Magnesium sulfate attenuates increased blood-brain barrier permeability during insulin-induced hypoglycemia in rats. Can J Physiol Pharmacol. 79 (9), 793-798 (2001).
  12. Pasban, E., Panahpour, H., Vahdati, A. Early oxygen therapy does not protect the brain from vasogenic edema following acute ischemic stroke in adult male rats. Sci Rep. 7 (1), 3221(2017).
  13. Haghnejad Azar, A., Oryan, S., Bohlooli, S., Panahpour, H. Alpha-Tocopherol Reduces Brain Edema and Protects Blood-Brain Barrier Integrity following Focal Cerebral Ischemia in Rats. Med Princ Pract. 26 (1), 17-22 (2017).
  14. Belayev, L., Busto, R., Zhao, W., Ginsberg, M. D. Quantitative evaluation of blood-brain barrier permeability following middle cerebral artery occlusion in rats. Brain Res. 739 (1-2), 88-96 (1996).
  15. Bodsch, W., Hossmann, K. A. 125I-antibody autoradiography and peptide fragments of albumin in cerebral edema. J Neurochem. 41 (1), 239-243 (1983).
  16. Jiang, Q., et al. Quantitative evaluation of BBB permeability after embolic stroke in rat using MRI. J Cereb Blood FlowMetab. 25 (5), 583-592 (2005).
  17. Uluç, K., Miranpuri, A., Kujoth, G. C., Aktüre, E., Başkaya, M. K. Focal cerebral ischemia model by endovascular suture occlusion of the middle cerebral artery in the rat. J Vis Exp. (48), (2011).
  18. Hungerhuber, E., Zausinger, S., Westermaier, T., Plesnila, N., Schmid-Elsaesser, R. Simultaneous bilateral laser Doppler fluxmetry and electrophysiological recording during middle cerebral artery occlusion in rats. J Neurosci Methods. 154 (1-2), 109-115 (2006).
  19. Panahpour, H., Nouri, M. Post-Ischemic Treatment with candesartan protect from cerebral ischemic/reperfusioninjury in normotensive rats. Int J Pharm Pharm Sci. 4 (4), 286-289 (2012).
  20. Panahpour, H., Dehghani, G. A., Bohlooli, S. Enalapril attenuates ischaemic brain oedema and protects the blood-brain barrier in rats via an anti-oxidant action. Clin Exp Pharmacol Physiol. 41 (3), 220-226 (2014).
  21. Panahpour, H., Nekooeian, A. A., Dehghani, G. A. Blockade of Central Angiotensin II AT1 Receptor Protects the Brain from Ischemia/Reperfusion Injury in Normotensive Rats. Iran J Med Sci. 39 (6), 536-542 (2014).
  22. Panahpour, H., Nekooeian, A. A., Dehghani, G. A. Candesartan attenuates ischemic brain edema and protects the blood-brain barrier integrity from ischemia/reperfusion injury in rats. Iran Biomed J. 18 (4), 232-238 (2014).
  23. Kaya, M., et al. The effects of magnesium sulfate on blood-brain barrier disruption caused by intracarotid injection of hyperosmolar mannitol in rats. Life sci. 76 (2), 201-212 (2004).
  24. Schöller, K., et al. Characterization of microvascular basal lamina damage and blood-brain barrier dysfunction following subarachnoid hemorrhage in rats. Brain Res. 1142, 237-246 (2007).
  25. Bodsch, W., Hossmann, K. A. 125I-Antibody Autoradiography and Peptide Fragments of Albumin in Cerebral Edema. J Neurochem. 41 (1), 239-243 (1983).
  26. Sandoval, K. E., Witt, K. A. Blood-brain barrier tight junction permeability and ischemic stroke. Neurobiol Dis. 32 (2), 200-219 (2008).
  27. Zhu, H., et al. Baicalin reduces the permeability of the blood-brain barrier during hypoxia in vitro by increasing the expression of tight junction proteins in brain microvascular endothelial cells. J Ethnopharmacol. 141 (2), 714-720 (2012).
  28. Kucuk, M., et al. Effects of losartan on the blood-brain barrier permeability in long-term nitric oxide blockade-induced hypertensive rats. Life Sci. 71 (8), 937-946 (2002).
  29. Uyama, O., et al. Quantitative evaluation of vascular permeability in the gerbil brain after transient ischemia using Evans blue fluorescence. J Cereb Blood Flow Metab. 8 (2), 282-284 (1988).
  30. Kleinig, T. J., Vink, R. Suppression of inflammation in ischemic and hemorrhagic stroke: therapeutic options. Curr Opin Neurol. 22 (3), 294-301 (2009).
  31. Del Zoppo, G. J., Mabuchi, T. Cerebral microvessel responses to focal ischemia. J Cereb Blood Flow Metab. 23 (8), 879-894 (2003).
  32. Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research. Drug Des Devel Ther. 9, 3445-3454 (2015).
  33. Noor, R., Wang, C. X., Shuaib, A. Effects of hyperthermia on infarct volume in focal embolic model of cerebral ischemia in rats. Neurosci Lett. 349 (2), 130-132 (2003).
  34. Shin, H. K., et al. Mild induced hypertension improves blood flow and oxygen metabolism in transient focal cerebral ischemia. Stroke. 39 (5), 1548-1555 (2008).
  35. Bottiger, B. W., et al. Global cerebral ischemia due to cardiocirculatory arrest in mice causes neuronal degeneration and early induction of transcription factor genes in the hippocampus. Brain Res Mol Brain Res. 65 (2), 135-142 (1999).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

صبغة إيفانز الزرقاءانسداد الشريان الدماغي الأوسطتدفق الدم الدماغي الإقليميالكشف الطيفيقسطرة الوريد الوداجيتجانس أنسجة الدماغمقياس تدفق ليزر دوبلرفترة إعادة التروية
تقييم في فيفو لتعطيل حاجز الدم في الدماغ في نموذج الفئران من السكتة الدماغية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.