يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

نهج جديد لرصد الفساد نيوفاسكولاريزيشن في اللثة البشرية

6.5K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/58535

⸱

يناير 12, 2019

 ,  ,  ,  , 
1Department of Conservative Dentistry, Faculty of Dentistry, Semmelweis University

في هذه المقالة

ملخص

ويدخل هذه الدراسة وضع بروتوكول لقياس دوران الأوعية الدقيقة في الغشاء المخاطي الشفوي البشري بليزر البقع واللطخ التباين التصوير. رصد التئام الجروح بعد تعرض فيستيبولوبلاستي جنبا إلى جنب مع طعم الكولاجين إكسينوجينيك على حالة سريرية.

الملخص

ليزر البقع واللطخ التباين التصوير () طريقة جديدة لقياس التروية الدموية سطحية على مساحات واسعة. أنه غير الغازية وتجنب الاتصال المباشر مع منطقة المقاسة، ومناسبة لرصد تغيرات تدفق الدم أثناء التئام الجروح في مرضى البشرية. فيستيبولوبلاستي جراحة اللثة إلى دهليز الفم، تهدف إلى استعادة العمق الدهليزية مع التوسع المتزامن من لثة الكيراتينيه. في هذه الحالة السريرية الخاصة، تم رفع رفرف سمك انقسام في بريمولار العليا الأولى ومصفوفة الكولاجين إكسينوجينيك تم تكييفها للسرير المتلقية الناتجة. لسسي استخدمت لرصد re-ونيوفاسكولاريزيشن الاختلاس والأغشية المخاطية المحيطة بها لمدة سنة واحدة. هو عرض بروتوكول للتعديل الصحيح لقياس دوران الأوعية الدقيقة في الغشاء المخاطي الشفوي، تسليط الضوء على الصعوبات وحالات الفشل المحتملة.

دراسة الحالة السريرية المقدمة بينت أن – يتبع البروتوكول المناسب — لسسي هو أسلوب مناسب وموثوق بها لمتابعة دوران الأوعية الدقيقة في شفاء الجرح في الغشاء المخاطي الشفوي البشري ويعطي معلومات مفيدة عن التكامل الاختلاس.

المقدمة

رصد التغيرات الطويلة الأجل لدوران الأوعية الدقيقة اللثة البشرية في حالة سريرية موضوع ساخن في جراحة الفم واللثة. ومع ذلك، يمكن تقييم موثوق لنضح صعبة. هناك فقط عدد قليل من الطرق التي لا إينفاسيفيلي لقياس التغيرات في الدورة الدموية في الغشاء المخاطي البشري. اثنان من هذه تستخدم ليزر شعاع1،2،،من34، ولكن بطريقة مختلفة. ليزر دوبلر flowmetry (LDF) يجعل من دوبلر استخدام المفتاح shift في ليزر شعاع5،6، بينما على النقيض من البقع واللطخ الليزر التصوير () أسلوب يعتمد على نمط البقع واللطخ ضوء الليزر المستطار لقياس سرعة الدم الحمراء 7من الخلايا.

LDF التدابير إلا في نقطة واحدة، واستنساخه بتوحيد موقف أجهزة الاستشعار مهمة مرغوب فيه لكن من الصعب. وهناك مشكلة أخرى أن التحقيق LDF صغيرة قطرها (1 مم2). قياس في نقاط محددة سلفا قبل جراحة محددة جداً، وقد يكون أعمى لتغييرات الدورة الدموية بعد الجراحة، بينما ذمة أو إزالة الأنسجة، وحركة الأنسجة أو الاختلاس مزروع يسبب تغييرات هامة في الهندسة بعد العملية الجراحية للمتضررين الأنسجة اللينة. قياس المسافة من LDF هو أقل من 1 مم، الذي يحظر استخدام على جبيرة الأسنان مع وجود ثقب محددة سلفا للتحقيق في حالة التغير الحجمي للأنسجة. لسسي لا تتطلب أي أدوات خاصة للتعريب ويمكن قياسها في مجالات عدة سم2. كنتيجة لذلك، يمكن أن يتبع التئام الجروح في جميع أنحاء موقع الجراحية. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن عرض لسسي التروية الدموية في الصور المرمزة في جزء صغير من الثانية، بدقة تصل إلى 20 ميكرو.

يستخدم الجهاز لسسي المعروضة في هذه الورقة معظمها لتطبيقات البحوث الحيوانية حيث دقة عالية في مجالات قياس صغير هو المطلوب. ومع ذلك، نظراً لهيكل وعلم الأنسجة البشرية الغشاء المخاطي الشفوي مختلفة من منطقة إلى منطقة (المرفقة اللثة، اللثة الهامشية، والأغشية المخاطية الدهليزية)، الدورة الدموية هو أيضا غير متجانسة8. ولذلك، قد عالية الدقة بميزة كبيرة على القرار العادي الذي يستخدم عادة في التجارب البشرية.

وتوظف الصك لسسي ليزر غير مرئي (الطول الموجي 785 nm). وتباينت الشعاع هو لإلقاء الضوء على مجال القياس، إنشاء نمط البقع واللطخ. صور كاميرا CCD نمط البقع واللطخ في المنطقة المضاءة. الكاميرا CCD المستخدمة في هذا النظام منطقة تصوير نشطة 1386 x 1034 بكسل وقرارها بين 20-60 ميكرومتر بيكسل تبعاً للحجم من مجال القياس، وعلى الإعداد للبرنامج (منخفضة، متوسطة، عالية). يمكن أن يستغرق الصور بسرعة 16 الإطارات في الثانية، أو حتى أكثر، ما يصل إلى 100 من الإطارات في الثانية، إذا كان يتم تقليل حجم الصورة. ويحسب بالبرنامج المدمج التروية الدموية. أنه يقوم بتحليل التغيرات في نمط البقع واللطخ ويوضحها التباين. التمويه الناجم عن ذلك لون ترميز لإنتاج صورة التروية. ووفقا للنتائج السابقة، يقيم لسسي التروية الدموية للثة مع التكرار وإمكانية تكرار نتائج جيدة9. وهذا يعني أنها أداة موثوقة لرصد التغيرات في دوران الأوعية الدقيقة في الغشاء المخاطي الشفوي في تجارب قصيرة الأجل، بل أيضا أثناء الدراسات الطويلة الأجل لتتبع تطور المرض أو الجرح الشفاء10.

في هذه الورقة، نقدم تقرير حالة سريرية لإثبات أن عالية الدقة المكانية لسسي يجعل من الممكن تكشف عن نمط neovascularization طعم الكولاجين إكسينوجينيك. وعلاوة على ذلك، تبين هذه الحالة أن، نظراً لموثوقيتها العالية، يمكن أن حساسية الكشف عن التباينات الفردية. وهذا مهم كتباين التشريحية محلي كبير وخلفية منهجية مختلفة بين الحالات التي تجعل من الصعب على توحيد التدخل الجراحي في التجارب السريرية لجراحة اللثة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

واستخدمت الأسلوب المبلغ عنها في تجارب سريرية التي منحت الموافقة الأخلاقية من "اللجنة الهنغارية" للتسجيل الصحي ومركز التدريب (رقم الاعتماد: عتيج/034310/2014).

1-الإعداد

  1. التبديل على جهاز الكمبيوتر وأي أجهزة طرفية.
  2. التبديل على الصك لسسي لاستخدامه مع رمز التبديل في اللوحة الخلفية.
  3. تسمح أداة الحارة لمدة 5 دقائق على الأقل. الصك جاهز للقياس عند كل المصابيح في اللوحة الخلفية قد توقفت عن الوميض.
  4. بدء تشغيل البرنامج بواسطة النقر المزدوج فوق رمز البرنامج على سطح المكتب أو من خلال قائمة ابدأ.
  5. انتهى الانتظار حتى الأصفر والمصابيح الخضراء في اللوحة الخلفية توقفت وامض، مما يشير إلى أن الليزر الحارة والتهيئة.
    ملاحظة: عند بدء تشغيل النظام، واحد أحياناً ستطالب لتنفيذ إجراءات التحقق للنظام.

2-نظام التحقق

  1. استخدم المربع المعايرة الموردة. إزالة الغطاء من مربع المعايرة والتخلص منه لتجنب الترسب في تعليق غرواني.
  2. ترك الغطاء لمدة 30 ثانية لتجنب الفقاعات.
  3. وضع الغطاء مرة أخرى على المربع المعايرة.
  4. انقر فوق متقدمة | التحقق | تحقق من أداة.
  5. حدد الروتينية التحقق | المقبل.
  6. تشغيل 90° الرأس وربط مربع المعايرة باستخدام المغناطيس المتكاملة وانقر فوق التالي.
  7. أدخل درجة حرارة الغرفة في مربع النص، حدد درجة مئوية وانقر فوق ابدأ.
  8. انتظر حتى اكتمال المعالج إجراء التحقق.
  9. بعد إجراء تحقق ناجح إغلاق المعالج بالنقر فوق إنهاء.

3-مشارك في إعداد

  1. تأكد من أن يتم إجراء القياس في غرفة التحكم في درجة الحرارة (26 درجة مئوية).
  2. وضع المريض في موقف ضعيف مريحة في كرسي أسنان ثم ضع وسادة فراغ تحت رأسه (الشكل 1).
  3. ترك المريض دون عائق لمدة 15 دقيقة قبل اتخاذ أي قياسات.

4. قياس الصورة دوران الأوعية الدقيقة

  1. في القائمة أدوات ، حدد وانقر فوق محرر المشروع. يفتح نافذة جديدة التي يمكن حفظ الإعدادات شائعة الاستخدام.
  2. في المربع المشاريع، انقر فوق جديد لإنشاء مشروع جديد. أدخل "أبجد"، وانقر فوق موافق.
  3. في المربع مواقع، انقر فوق جديد لإنشاء موقع جديد. أدخل "الأسنان 14" ثم انقر فوق موافق.
  4. تحت لوحة المحتويات 14 الأسنان إضافة "10 سم" كالمسافة المطلوبة العمل عن بعد وأدخل عرض 3 سم وارتفاع 2 سم في المربعين القياس.
  5. تعيين دقة كثافة نقطة إلى عادي ومعدل الإطارات للصور 16/s، وحدد الوقت من القائمة المنسدلة المدة إلى تعيين مدة التسجيل إلى 0:30.
  6. حدد "سجل مع لا في المتوسط" وتعيين معدل التقاط صور ملونة إلى 1 في الثانية.
  7. ثم انقر فوق "تطبيق" و "موافق" لحفظ معلمات المشروع.
  8. في القائمة ملف ، حدد وانقر فوق جديد من تسجيل. سيتم فتح "نافذة الصورة" الجديدة وسيتم عرض لوحة الإعداد.
  9. تحت الإعداد تسجيل، حدد "أبجد" المشروع و "الأسنان 14" 4.9. الموقع.
  10. فتح القائمة المنسدلة هذا الموضوع ، انقر فوق جديد في مربع الحوار تحديد الموضوع ، وقم بإدخال اسم المريض.
  11. انقر فوق موافق، ثم أدخل اسماً للتسجيل في حقل الاسم Rec : مثلاً، يوم 1 (الأيام المنقضية بعد العملية) واسم المشغل في ميدان المشغل .
  12. قبل البدء في قياس الصورة دوران الأوعية الدقيقة وضغط الدم والنبض تدبير المريض.
  13. إخلاء الهواء من وسادة الفراغ لإصلاح رأس المريض في وضع مناسب للمنطقة الخاضعة للتحقيق.
  14. أطلب من المريض أن يفتح فمه.
  15. التراجع عن الشفاه بلطف باثنين من المرايا الأسنان (الشكل 1).
  16. ضبط رئيس الصك موازية لمنطقة المقاسة اللثة. مرئية مضمنة (650 nm) مؤشر الليزر يسهل تحديد المواقع للتصوير بالنسبة إلى فم المريض.
  17. ضبط عامل المسافة إلى 10 سم بنقل الصك بالنسبة للأنسجة. تقاس المسافة باستمرار بالجهاز لسسي ويتم عرضها بالبرنامج كقيمة عامل المسافة المقاسة تحت الإعداد الصورة.
  18. الإيعاز إلى هذا الموضوع بالبقاء لا يزال خلال مدة القياس.
  19. انقر فوق الزر السجل لبدء التسجيل. الآن تغيير لون إطار الصورة إلى اللون الأحمر، مشيراً إلى أن التسجيل في التقدم. يتم استبدال لوحة الإعداد لوحة تسجيل. توقف تسجيل تلقائياً بعد 30 ثانية. عند الانتهاء من التسجيل، يتم استبدال لون التغييرات "نافذة الصورة" إلى اللون الأزرق ولوحة تسجيل فريق الاستعراض.
  20. إزالة مرايا الأسنان والسماح للمريض إغلاق فمه وابتلاع.
  21. قم بالتبديل مرة أخرى إلى الصورة الحية عن طريق الضغط على زر استئناف التسجيل .
  22. كرر الخطوات من 4.14 إلى 4.21 مرتين.
  23. قم بإغلاق الملف. يتم حفظ البيانات تلقائياً.
  24. قياس ضغط الدم والنبض بعد القياسات لسسي.

5-تحليل دون اتصال

  1. تحليل الصور لسسي باستخدام البرمجيات المضمنة. انتقل إلى طريقة عرض الصورة أو تقسيم (الشكل 2).
  2. تحديد المناطق ذات الاهتمام (ROI). ملاحظة: بلغ متوسط قيم بكسل داخل عائد نضح ويعرف قيمة العائد على الاستثمار، أعرب في قيمة عشوائية تسمى وحدة نضح البقع واللطخ الليزر () تدفق الدم.
  3. حدد الشكل عائد الاستثمار المطلوب داخل لوح أدوات دوروا على اليمين.
  4. حدد خيار تطبيق في لوح أدوات العائد على الاستثمار، الذي ينطبق على عمليات دوروا على جميع الصور من التسجيل.
  5. رسم العائد على الاستثمار عن طريق النقر والضغط على زر الماوس في الصورة كثافة والاسترسال العائد على الاستثمار إلى الحجم المطلوب، والإفراج عن الماوس زر (انقر فوق وانقر نقراً مزدوجاً فوق لحر رويس). ضبط الموضع من العائد على الاستثمار أو تغيير حجم أو تدوير، إذا لزم الأمر.
  6. كرر الخطوات من 5، 3. إلى 5.5 عدة مرات حسب العدد المطلوب من رويس (الشكل 3).
  7. تحديد فترات زمنية للفائدة (TOI). وهذا يسمح للمتوسط التروية في عائد على مدى فترة محددة من الزمن (الشكل 2).
  8. انتقل إلى طريقة عرض الرسم البياني أو انقسام. حدد الزر أداة "إضافة توعي".
  9. انقر مع الاستمرار على الرسم البياني في الموضع حيث تريد توعي البدء واسحب المؤشر إلى الموضع الغاية المنشودة. ثم حرر زر الماوس.
  10. تصدير البيانات من الجدول القيمة الوسطية لمزيد من المعالجة.
  11. إنشاء منحنيات تدفق الدم بمناسبة برمجيات المستخدمة للتحليل الإحصائي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

فيستيبولوبلاستي جراحة اللثة إلى دهليز الفم، يهدف إلى زيادة عمق الدهليزية، منطقة اللثة الكيراتينيه وسمك الأنسجة الرخوة لجماليات المحسنة ووظيفة. انقسام واق من سمك رفرف جنبا إلى جنب مع مصفوفة الكولاجين إجراء فيستيبولوبلاستي المستخدمة بشكل متكرر. مصفوفة إكسينوجينيك الكولاجين بديل قابل للتطبيق للاختلاس اللثة الغازي لزيادة كمية اللثة الكيراتينيه11،،من1213؛ ومع ذلك، لا تتوفر بيانات عن اتجاه عودة التوعي ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وكان الهدف من هذه الدراسة إدخال تقنية جديدة لرصد neovascularization من طعم في اللثة البشرية. ووفقا للنتائج السابقة، يقيم لسسي التروية الدموية للثة مع حسن التكرار وإمكانية تكرار نتائج9، عند الوفاء بالتنفيذ الدقيق لكل خطوة بروتوكول المخطط كشرط حاسم. ويعتبر لسسي تقنية نصف كمية التي تتطلب المعايرة دورياً ضمان الدقة والاستقرار. درجة حرارة الغرفة أثناء التحقق، يجب أن تقاس بأعلى دقة ممكنة، لأنه يتم استخدام هذه القيمة من قبل خوارزمية التحقق لحساب التروية.

طريقة لسسي حساسة للغاي...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

تم إنجاز هذا العمل في جزء من الدعم الذي يقدمه "صندوق البحوث العلمية الهنغارية" تحت K112364 عدد المنح، بالوزارة الهنغارية للقدرات البشرية، و "برنامج التميز في التعليم العالي" لجامعة سيملويس، "وحدة أبحاث العلاج"، الوطني للبحوث والتنمية والابتكار مكتب KFI_16-1-2017-0409.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
PeriCam PSI-HRPerimed AB ، ستوكهولم ، السويدنظام PeriCam PSI هو نظام تصوير يعتمد على تقنية LASCA (تحليل تباين LAser Speckle). يقيس النظام نضح الدم السطحي على مناطق واسعة بمعدلات التقاط سريعة. هذا يجعلها مثالية للتحقيق في كل من الديناميكيات المكانية والزمانية للدوران الدقيق في أي نسيج تقريبا.
PIMSoftPerimed AB ، ستوكهولم ، السويدPIMSoft هو برنامج للحصول على البيانات وتحليلها ، مخصص للاستخدام مع نظام PeriCam PSI ونظام PeriScan PIM 3 ، لقياس وتصوير نضح الدم السطحي.
Geistlich MucograftGeistlich ، سويسراإنها مصفوفة كولان ثلاثية الأبعاد فريدة من نوعها مصممة خصيصا لتجديد الأنسجة الرخوة. يشار إليه للحصول على تغطية الأنسجة الكيراتينية والركود.
Omron M4Omron Healthcare Inc. ، كيوتو ، اليابانجهاز قياس ضغط الدم ، والذي يعطي قراءات دقيقة.
Nikon D5200Nikon Corportation, طوكيو, اليابانالتقاط صور شفهية
MS ExcelMicrosoft Corporation, Redmond, Washington, USAالبرنامج المستخدم لإدارة البيانات
IBM SPSS Statistics 25IBM Corp., Armonk, NY, USAالبرنامج المستخدم للتحليل الإحصائي

المراجع

  1. Nakamoto, T., et al. Two-Dimensional Real-Time Blood Flow and Temperature of Soft Tissue Around Maxillary Anterior Implants. Implant Dentistry. 21 (6), 522-527 (2012).
  2. Kajiwara, N., et al. Soft tissue biological response to zirconia and metal implant abutments compared with natural tooth: microcirculation monitoring as a novel bioindicator. Implant Dentistry. 24 (1), 37-41 (2015).
  3. Kemppainen, P., Forster, C., Handwerker, H. O. The importance of stimulus site and intensity in differences of pain-induced vascular reflexes in human orofacial regions. Pain. 91 (3), 331-338 (2001).
  4. Kemppainen, P., Avellan, N. L., Handwerker, H. O., Forster, C. Differences between tooth stimulation and capsaicin-induced neurogenic vasodilatation in human gingiva. Journal of Dental Research. 82 (4), 303-307 (2003).
  5. Riva, C., Ross, B., Benedek, G. B. Laser Doppler measurements of blood flow in capillary tubes and retinal arteries. Investigative ophthalmology. 11 (11), 936-944 (1972).
  6. Humeau, A., Steenbergen, W., Nilsson, H., Stromberg, T. Laser Doppler perfusion monitoring and imaging: novel approaches. Medical & Biological Engineering & Computing. 45 (5), 421-435 (2007).
  7. Briers, J. D., Webster, S. Laser speckle contrast analysis (LASCA): a nonscanning, full-field technique for monitoring capillary blood flow. Journal of Biomedical Optics. 1 (2), 174-179 (1996).
  8. Fazekas, R., et al. Functional characterization of collaterals in the human gingiva by laser speckle contrast imaging. Microcirculation. 25 (3), 12446(2018).
  9. Molnar, E., Fazekas, R., Lohinai, Z., Toth, Z., Vag, J. Assessment of the test-retest reliability of human gingival blood flow measurements by Laser Speckle Contrast Imaging in a healthy cohort. Microcirculation. 25 (2), (2018).
  10. Molnar, E., et al. Evaluation of Laser Speckle Contrast Imaging for the Assessment of Oral Mucosal Blood Flow following Periodontal Plastic Surgery: An Exploratory Study. BioMed Research International. 2017, 4042902(2017).
  11. Sanz, M., Lorenzo, R., Aranda, J. J., Martin, C., Orsini, M. Clinical evaluation of a new collagen matrix (Mucograft prototype) to enhance the width of keratinized tissue in patients with fixed prosthetic restorations: a randomized prospective clinical trial. Journal of Clinical Periodontology. 36 (10), 868-876 (2009).
  12. Nevins, M., Nevins, M. L., Kim, S. W., Schupbach, P., Kim, D. M. The use of mucograft collagen matrix to augment the zone of keratinized tissue around teeth: a pilot study. The International Journal of Periodontics and Restorative Dentistry. 31 (4), 367-373 (2011).
  13. Lorenzo, R., Garcia, V., Orsini, M., Martin, C., Sanz, M. Clinical efficacy of a xenogeneic collagen matrix in augmenting keratinized mucosa around implants: a randomized controlled prospective clinical trial. Clinical Oral Implants Research. 23 (3), 316-324 (2012).
  14. Perry, D. A., McDowell, J., Goodis, H. E. Gingival microcirculation response to tooth brushing measured by laser Doppler flowmetry. Journal of Periodontology. 68 (10), 990-995 (1997).
  15. Yamaguchi, K., Nanda, R. S., Kawata, T. Effect of orthodontic forces on blood flow in human gingiva. Angle Orthodontist. 61 (3), 193-203 (1991).
  16. Molnár, E., et al. Assessment of heat provocation tests on the human gingiva: the effect of periodontal disease and smoking. Acta Physiologica Hungarica. 102 (2), 176-188 (2015).
  17. Gleissner, C., Kempski, O., Peylo, S., Glatzel, J. H., Willershausen, B. Local gingival blood flow at healthy and inflamed sites measured by laser Doppler flowmetry. Journal of Periodontology. 77 (10), 1762-1771 (2006).
  18. Hinrichs, J. E., Jarzembinski, C., Hardie, N., Aeppli, D. Intrasulcular laser Doppler readings before and after root planing. Journal of Clinical Periodontology. 22 (11), 817-823 (1995).
  19. Svalestad, J., Hellem, S., Vaagbo, G., Irgens, A., Thorsen, E. Reproducibility of transcutaneous oximetry and laser Doppler flowmetry in facial skin and gingival tissue. Microvascular Research. 79 (1), 29-33 (2010).
  20. Sasano, T., Kuriwada, S., Sanjo, D. Arterial blood pressure regulation of pulpal blood flow as determined by laser Doppler. Journal of Dental Research. 68 (5), 791-795 (1989).
  21. Ikawa, M., Ikawa, K., Horiuchi, H. The effects of thermal and mechanical stimulation on blood flow in healthy and inflamed gingiva in man. Archives of Oral Biology. 43 (2), 127-132 (1998).
  22. Baab, D. A., Oberg, P. A., Holloway, G. A. Gingival blood flow measured with a laser Doppler flowmeter. Journal of Periodontal Research. 21 (1), 73-85 (1986).
  23. Fazekas, A., Csempesz, F., Csabai, Z., Vág, J. Effects of pre-soaked retraction cords on the microcirculation of the human gingival margin. Operative Dentistry. 27 (4), 343-348 (2002).
  24. Csillag, M., Nyiri, G., Vag, J., Fazekas, A. Dose-related effects of epinephrine on human gingival blood flow and crevicular fluid production used as a soaking solution for chemo-mechanical tissue retraction. Journal of Prosthetic Dentistry. 97 (1), 6-11 (2007).
  25. Tanaka, M., Hanioka, T., Kishimoto, M., Shizukuishi, S. Effect of mechanical toothbrush stimulation on gingival microcirculatory functions in inflamed gingiva of dogs. Journal of Clinical Periodontology. 25 (7), 561-565 (1998).
  26. Rothamel, D., et al. Biodegradation pattern and tissue integration of native and cross-linked porcine collagen soft tissue augmentation matrices - an experimental study in the rat. Head & Face Medicine. 10, 10(2014).
  27. Schwarz, F., Rothamel, D., Herten, M., Sager, M., Becker, J. Angiogenesis pattern of native and cross-linked collagen membranes: an immunohistochemical study in the rat. Clinical Oral Implants Research. 17 (4), 403-409 (2006).
  28. Vergara, J. A., Quinones, C. R., Nasjleti, C. E., Caffesse, R. G. Vascular response to guided tissue regeneration procedures using nonresorbable and bioabsorbable membranes in dogs. Journal of Periodontology. 68 (3), 217-224 (1997).
  29. Oliver, R. C., Loe, H., Karring, T. Microscopic evaluation of the healing and revascularization of free gingival grafts. Journal of Periodontal Research. 3 (2), 84-95 (1968).
  30. Janson, W. A., Ruben, M. P., Kramer, G. M., Bloom, A. A., Turner, H. Development of the blood supply to split-thickness free ginival autografts. Journal of Periodontology. 40 (12), 707-716 (1969).
  31. Mormann, W., Bernimoulin, J. P., Schmid, M. O. Fluorescein angiography of free gingival autografts. Journal of Clinical Periodontology. 2 (4), 177-189 (1975).
  32. Busschop, J., de Boever, J., Schautteet, H. Revascularization of gingival autografts placed on different receptor beds. A fluoroangiographic study. Journal of Clinical Periodontology. 10 (3), 327-332 (1983).
  33. Fazekas, R., et al. A proposed method for assessing the appropriate timing of early implant placements: a case report. Journal of Oral Implantology. , (2018).
  34. Briers, J. D., Fercher, A. F. Retinal blood-flow visualization by means of laser speckle photography. Investigative Ophthalmology & Visual Science. 22 (2), 255-259 (1982).
  35. Srienc, A. I., Kurth-Nelson, Z. L., Newman, E. A. Imaging retinal blood flow with laser speckle flowmetry. Front Neuroenergetics. 2, (2010).
  36. Choi, B., Kang, N. M., Nelson, J. S. Laser speckle imaging for monitoring blood flow dynamics in the in vivo rodent dorsal skin fold model. Microvascular Research. 68 (2), 143-146 (2004).
  37. Ayata, C., et al. Laser speckle flowmetry for the study of cerebrovascular physiology in normal and ischemic mouse cortex. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 24 (7), 744-755 (2004).
  38. Armitage, G. A., Todd, K. G., Shuaib, A., Winship, I. R. Laser speckle contrast imaging of collateral blood flow during acute ischemic stroke. Journal of Cerebral Blood Flow & Metabolism. 30 (8), 1432-1436 (2010).
  39. Lindahl, F., Tesselaar, E., Sjoberg, F. Assessing paediatric scald injuries using Laser Speckle Contrast Imaging. Burns. 39 (4), 662-666 (2013).
  40. Mirdell, R., Iredahl, F., Sjoberg, F., Farnebo, S., Tesselaar, E. Microvascular blood flow in scalds in children and its relation to duration of wound healing: A study using laser speckle contrast imaging. Burns. , (2016).
  41. Zotterman, J., Bergkvist, M., Iredahl, F., Tesselaar, E., Farnebo, S. Monitoring of partial and full venous outflow obstruction in a porcine flap model using laser speckle contrast imaging. Journal of Plastic, Reconstructive & Aesthetic Surgery. 69 (7), 936-943 (2016).
  42. Hecht, N., Woitzik, J., Dreier, J. P., Vajkoczy, P. Intraoperative monitoring of cerebral blood flow by laser speckle contrast analysis. Neurosurgical Focus. 27 (4), E11(2009).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

تصوير تباين بقع الليزرالدورة الدموية الدقيقة في اللثةجراحة تجميل الدهليزقياس تروية الدممراقبة المخاطية الفمويةالتصوير غير الجراحيتتبع التئام الجروحتحليل منطقة الاهتمامتدفق الدم بعد الجراحة
نهج جديد لرصد الفساد نيوفاسكولاريزيشن في اللثة البشرية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.