يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

عزل الأنسجة الجنينية وتشكيل أجهزة تشيميريك السمان-الدجاج باستخدام المثال الغدة الصعترية

6.8K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/58965

⸱

فبراير 16, 2019

في هذه المقالة

ملخص

توفر هذه المقالة طريقة لعزل نقية الأنسجة الجنينية من أجنة السمان والدجاج التي يمكن دمجها إلى النموذج السابقين فيفو تشيميريك الأجهزة.

الملخص

وكان القدرة على عزل الأنسجة الجنينية خطوة أساسية لإقامة نظام الوهم الدجاج السمان، الذي بدوره قد قدمت مساهمات بلا منازع لإزاحة الستار عن العمليات الرئيسية في علم الأحياء التنموي.

وهنا يتم وصف أسلوب أمثل لعزل الأنسجة الجنينية من السمان والدجاج بالجراحة والهضم الأنزيمي مع الحفاظ على خصائصه البيولوجية. بعد عزلة، ترتبط الإنزيم أورجانوتيبيك في المختبر ل h. 48 السمان الأنسجة من كل الأنواع ويمكن التمييز بميزات النووية متميزة والمؤشرات الجزيئية التي تتيح دراسة الحديث عبر الهاتف الخلوي بين أنسجة الدجاج رابطة هيتيروسبيسيفيك للأنسجة. هذا النهج، لذلك، أداة مفيدة لدراسة تفاعلات الأنسجة المعقدة في العمليات الإنمائية مع التعديلات المكانية ديناميكية للغاية، مثل تلك التي تحدث أثناء morphogenesis البلعوم وتشكيل المعي أجهزة المستمدة من الأنسجة. ووضع هذا النهج التجريبي الأولى لدراسة التفاعلات الظهارية الوسيطة خلال المراحل المبكرة من تكوين الغدة الصعترية. في هذا الصدد، بداية الغدة الصعترية المحتملين المستمدة من الأنسجة والمستمدة من ميسوديرم ميسينتشيمي، تم عزل من الأجنة السمان والدجاج، على التوالي.

يمكن اختبار قدرة الأنسجة المرتبطة بها لإنشاء الأجهزة كذلك بتطعيم لهم على الغشاء تشوريوالانتويك (كام) جنين الدجاج. كام توفر المواد الغذائية، ويتيح تبادل الغاز للأنسجة اكسبلانتيد. بعد 10 أيام في التنمية ovo، يمكن تحليل أجهزة تشيميريك في اكسبلانتس المقطوع بالطرق المورفولوجية التقليدية. يسمح هذا الإجراء أيضا دراسة المساهمات الخاصة بالانسجة أثناء تكوين الجهاز، ومن تطورها الأولى (التنمية في المختبر) إلى المراحل النهائية من أورجانوجينيسيس (في التنمية ovo).

أخيرا، توفر طريقة تحسين العزل أيضا ثريديمينسيونالي (3D) الحفاظ على الأنسجة الجنينية، التي يمكن أن تستخدم أيضا لتحليل الطوبوغرافية عالية الاستبانة لأنماط التعبير الجيني الأنسجة على حدة.

المقدمة

في أوائل السبعينات، وضعت نظاما أنيقة الدجاج السمان الوهم Le دارين، فتح آفاقاً جديدة لفهم دور الهجرة الخلية والتفاعلات الخلوية أثناء التنمية1،2. وقد وضع النموذج على الفرضية القائلة بأن الخلية التبادل بين هذين النوعين لا تخل إلى حد كبير امبريوجينيسيس، أكد في وقت لاحق عندما تستخدم لدراسة العمليات الإنمائية العديدة، بما في ذلك تشكيل الجهاز العصبي والمكونة للدم نظم1. أخذ هذا الأخير على سبيل مثال، موجات دورية من فروعه المكونة للدم استعمار بداية الظهارية الغدة الصعترية أولاً لوحظ استخدام نظام الوهم الدجاج السمان3. لذلك، إقليم المحتملين من الغدة الصعترية، الأنسجة الحقائب الثالث والرابع البلعوم (3/4PP)، بمعزولة ميكانيكيا وانزيماتيكالي من الأجنة السمان (q) مرحلة 15 إلى 30-سميط [يوم الجنينية (ه) 1.5-E2.5]. وهذه المراحل تتوافق مع الدجاج الهامبرغر وهاميلتون4 (ح ح)-مراحل 12-17. بدأت إجراءات العزل باستخدام التربسين انزيماتيكالي ننأى الأنسجة من mesenchyme المرفقة. كان المطعمة الأنسجة المعزولة في منطقة سوماتوبليورا جنين الدجاج (ج) المضيف في E3-E3.5 (سمو-مراحل، 20-21). واعتبر هذا mesenchyme مغايرة "المتساهلة" للتنمية ظهارة الغدة الصعترية المساهمة أيضا في تشكيل الجهاز3. بعد ذلك، تسلل موجات متعاقبة من الدجاج المضيف السلف التي يحملها الدم الخلايا نظيره السمان الظهارية الغدة الصعترية الجهات المانحة المساهمة في تكوين الغدة الصعترية في الجنين المضيف3.

في الآونة الأخيرة، كما ثبت نسخة معدلة من هذا النهج مهما لدراسة التفاعلات بين الظهارية الوسيطة خلال المراحل المبكرة من تكوين الغدة الصعترية5. وفي هذا الصدد، معزولة، سواء من الأجنة المانحة والمضيفة، الأنسجة تشارك في تكوين الغدة الصعترية حمل خارج الرحم في الأجنة تشيميريك3 والمرتبطة السابقين فيفو. واستخدمت بروتوكولا محسنة لعزل الأنسجة 3/4PP السمان (E2.5-E3) وميسوديرم سوماتوبليورا الدجاج (E2.5-E3). بإيجاز، عزلت الأنسجة الجنينية الجراحة الدقيقة وتخضع الهضم بنكرياتين في المختبر. أيضا، كانت الأمثل الشروط الهضم الأنزيمي ودرجة الحرارة والوقت من الحضانة وفقا لنوع الأنسجة ومرحلة النمو (الجدول 1).

بعد ذلك، كانت المرتبطة الأنسجة المعزولة في أورجانوتيبيك في المختبر نظام ح 48، كما ذكر سابقا5،6. رابطة الأنسجة في المختبر يحاكي التفاعلات الخلوية المحلية في الجنين، التغلب على بعض القيود للتلاعب في الحية. هذا النظام مفيد بشكل خاص لدراسة التفاعلات الخلوية في أحداث morphogenic المعقدة، مثل تطوير جهاز البلعوم.

مساهمة كل الأنسجة في هيستوجينيسيس الغدة الصعترية، فضلا عن قدرة الرابطة هيتيروسبيسيفيك لتوليد الغدة الصعترية يمكن مواصلة استكشاف استخدام منهجية كام و مفصلة قبل5،،من78. إيجاز، الأنسجة المستزرعة المطعمة على كام cE8 الأجنة ويسمح بوضع في ovo لمدة 10 أيام. بعد ذلك، تم تقييم تكوين الغدة الصعترية بالتحليل المورفولوجي في explants المقطوع. كما هو الحال في الدراسات الكلاسيكية الدجاج السمان3، كان من ظهارة الغدة الصعترية السمان استعمر السلف المكونة للدم الخلايا (هبكس) المستمدة من جنين الدجاج، الذي أبدى في وقت لاحق للمساهمة في تطوير الجهاز9،10 . هبكس هاجروا من الجنين إلى الغدة الصعترية تشيميريك خارج الرحم عن طريق vascularized عالية كام5،،من78. السمان يمكن التعرف ظهارة الغدة الصعترية المشتقة من إيمونوهيستوتشيميستري استخدام الأجسام المضادة إبلاغها (أي، قكبن-ماب السمان بيرينوكلير)، التغلب على الحاجة إلى المؤشرات الخاصة بالانسجة الجزيئية.

يسمح هذا الأسلوب التجريبي، اقتراب خطوتين عنها في المنشور السابق8، تحوير مسالك التنبيه بالإدارة العادية لوكلاء الدوائية خلال في المختبر وفي التنمية ovo. أيضا، يمكن أن تحصد explants في أي وقت نقطة لمسار التجربة8.

أخيرا، البروتوكول العزلة هنا بالتفصيل يسمح الحفاظ على الخصائص الطبيعية و 3D-هندسة الأنسجة الجنينية، مفيدة بشكل خاص لتفصيل أنماط التعبير الجيني في الموقع من الأراضي الجنينية وإلا لا يمكن الوصول إليها من قبل الأساليب التقليدية. وبالإضافة إلى ذلك، يمكن أيضا تطبيق نهج التحليل الترنسكربيتوم، بما في ذلك تسلسل الحمض النووي الريبي أو [ميكروارس]، في الأنسجة المعزولة دون اشتراط البصمات الجينية بينما تقدم تحليلاً "اوميكس" الخاصة بالانسجة عالية إنتاجية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

كل هذه التجارب اتبع المبادئ التوجيهية الأخلاقية دي التاريخ مركز الطب والرعاية الحيوانية يسبوا.

1-المخصبة حضانة بيض السمان والدجاج

  1. مكان بيض السمان الياباني (طائر طائر japonica) المخصب في حاضنة هوميديفيد 38 درجة مئوية لمدة 3 أيام. احتضان البيض (بيضة نهاية حادة) مواجهة في قاعة الهواء.
    ملاحظة: البيئة هوميديفيد ويتحقق عن طريق وضع حاوية مياه في الجزء السفلي من الحاضنة.
  2. احتضان البويضات المخصبة من الدجاج (Gallus gallus) لأيام 2.5 في حاضنة هوميديفيد 38 درجة مئوية. احتضان البيض في وضع أفقي ووضع علامة على الجانب العلوي باستخدام قطعة من الفحم لتحديد مكان الجنين.
    ملاحظة: تبدأ مع 40 من بيض السمان وبيض الدجاج 60 عند وضع هذه التجربة.

2-عزل الأنسجة السمان التي تحتوي على المجال المحتملين من بداية الغدة الصعترية

ملاحظة: استخدم غطاء الاندفاق الصفحي أفقي وتعقيم الأدوات والمواد للبيض التلاعب بالإجراءات في ظروف معقمة.

  1. إزالة منطقة الجنينية التي تحتوي على الإقليم المفترض لبداية الغدة الصعترية، منطقة القوس البلعوم يحتوي على 3rd و 4th الأقواس (3/4PAR)، كما هو موضح7،8.
    1. ملء وعاء كبير البورسليكات زجاج (100 مم × 50 مم؛ 100 سم3) مع 60 مل من البرد المحلول الملحي مخزنة الفوسفات (PBS).
    2. مع مساعدة مقص منحنى، اضغط وقطع حفرة دائرية في شل السمان البيض قد تم المحتضنة لمدة 3 أيام. جعل حفرة على الجانب الآخر من البيض غير حادة ونقل الصفار (مع الجنين) إلى الوعاء مع برنامج تلفزيوني الباردة.
    3. إزالة الجنين من صفار البيض بقطع الغشاء فيتيلين خارجياً للسفن خارج الجنينية استخدام مقص منحنى.
    4. بمساعدة الملقط رقيقة، مليئة نقل الجنين إلى وعاء صغير (60 مم × 30 مم؛ 15 سم3) 10 مل من برنامج تلفزيوني الباردة.
    5. مع المصفاة، نقل الجنين إلى 100 مم طبق بيتري مع قاعدة أسود (انظر الجدول للمواد) التي تحتوي على 10 مل من برنامج تلفزيوني الباردة ووضعها تحت ستيريوميكروسكوبي.
    6. تشريح 3/4PAR، كما هو موضح سابقا8.
    7. أسبيراتي 3/4PAR ونقل إلى طبق زجاج ثلاثة أرباع مملوءة ببرنامج تلفزيوني الباردة استخدام ماصة باستور معقمة من 2 مل.
  2. عزل الأنسجة التي تحتوي على الإقليم المفترض لبداية الغدة الصعترية (الأنسجة 3/4PP) بالهضم الأنزيمي مع بنكرياتين.
    1. مع المساعدة من البسط والملقط رقيقة، مليئة نقل 3/4PAR إلى طبق زجاج ثلاثة أرباع بنكرياتين الباردة (8 ملغ/مل؛ 1:3 إضعاف 25 ملغ/مل مع برنامج تلفزيوني الباردة).
    2. احتضانها ح 1 على الجليد الهضم الأنزيمي.
      ملاحظة: يعتمد وقت الهضم الأنزيمي لمرحلة التنمية (الجدول 1).
    3. ضع الصحن الزجاج تحت ستيريوميكروسكوبي (40 x-60 x التكبير) لعزل الأنسجة من 3/4PAR.
      ملاحظة: تبقى جميع الأسطح وحلول البرد أثناء هذا الإجراء. تغيير إلى حل بنكرياتين باردة جديد إذا أخذ وقتاً طويلاً لتشريح الأنسجة (> 15 دقيقة). كمصدر لإضاءة، استخدام مصابيح LED التي أدرجت في ستيريوميكروسكوبي أو الألياف البصرية، تفكر في الحمل الحراري محدودة.
    4. لعزل الأنسجة من الأنسجة المحيطة بها، استخدم اثنين الفولاذ المقاوم للصدأ ميكروسكالبيلس في أصحاب دبوس.
      ملاحظة: استخدام ميكروسكالبيلس التي يبلغ قطرها بين 0.1 ملم و 0.2 مم والنيكل دبوس حاملي يبلغ قطرها الافتتاحية الفك 0 ملم إلى 1 ملم.
      1. قم أولاً بإزالة الأنبوب العصبي وتعلق على سطح الأنسجة البلعوم الظهرية mesoderm.
      2. مع الجانب الظهرية حتى فصل بعناية وإزالة mesenchyme بين الأقواس البلعوم وفضح الحقائب البلعوم. تنفيذ هذا الإجراء على كلا الجانبين من 3/4PAR.
      3. إزالة أنبوب القلب و mesenchyme المحيطة بالحقائب الأمامي.
      4. مع الجانب البطني حتى قطع الأديم الظاهر في 2nd والأقواس 3rd البلعوم وإزالة بعناية mesenchyme يعلق على الحقائب. كرر هذا الإجراء على الجانب الآخر من 3/4PAR. وفي هذه المرحلة يجب أن تكون بداية الغدة الدرقية مرئية.
      5. قم بإزالة أي الخلايا الوسيطة المتبقية التي تعلق على الأنسجة البلعوم مع ميكروسكالبيلس اثنين.
      6. جعل قطع مستعرضة بين 2nd و 3rd PP، الناي بالانسجة البلعوم يحتوي على 3rd والحقائبال 4 من الجزء الأمامي من الأنسجة بعد بداية الغدة الدرقية و 2nd الحقيبة البلعوم.
      7. مع المساعدة من البسط والملقط رقيقة، مليئة نقل الأنسجة 3/4PP معزولة لطبق زجاج ثلاثة أرباع 100% مصل بقرى الجنين الباردة (FBS).
  3. يبقى الطبق الزجاج مع الأنسجة المعزولة على الجليد أثناء التحضير للفحص في المختبر. وبدلاً من ذلك، يمكن الحفاظ على الأنسجة المعزولة ثريديمينسيونالي وتحليلها في الموقع للتعبير الجيني.

3-عزل الدجاج سوماتوبليورا mesoderm

ملاحظة: إجراء البيض إجراءات التلاعب في ظروف معقمة باستخدام غطاء الاندفاق الصفحي أفقي وتعقيم الأدوات والمواد.

  1. إزالة إقليم الجنينية التي تحتوي على ميسوديرم سوماتوبليورا على مستوى سميتس 19-24 (ss19-24).
    1. إزالة بيض الدجاج من الحاضنة بعد يومين حضانة.
    2. مع مقص منحنى، فتح ثقب صغير في shell. أدخل إبرة ونضح 2 مل الزلال مع حقنه 10 مل لخفض حجم الزلال داخل البيض ومنع الضرر للجنين (الموجودة أسفل منطقة ملحوظ من shell). تجاهل الزلال يستنشق.
    3. قص تعميما هول (تصل إلى ثلثي مساحة السطح العلوي) في منطقة ملحوظ من shell استخدام مقص منحنى.
    4. قص الغشاء فيتيلين خارجياً للسفن اكسترامبريونيك بينما يمسك الجنين بالملقط رقيقة.
    5. تحت ستيريوميكروسكوبي، وضع الجنين في 100 مم طبق بيتري مع قاعدة سوداء التي تحتوي على 10 مل من برنامج تلفزيوني الباردة.
      ملاحظة: استخدم ستيريوميكروسكوبي من هذه النقطة إلى الأمام للتكبير التدريجي لإجراءات الجراحة الدقيقة.
    6. استخدام أربعة دبابيس الحشرات رقيقة للاحتفاظ بالجنين إلى الجزء السفلي من اللوحة. ضع السنون الموجودة في منطقة اكسترامبريونيك تشكيل شكل مربع.
    7. إجراء تخفيضات اثنين بين سميتس 19 و 24 العرض على محور الجنين وعبور جميع الأراضي الجنين، استخدام مقص العين يكر.
    8. الإفراج عن قسم الأجنة، ss19-24، بقطع حواف الجنينية هامشية.
    9. الأنسجة aspirate ss19-24 ونقل إلى طبق زجاج ثلاثة أرباع مملوءة ببرنامج تلفزيوني الباردة استخدام ماصة باستور معقمة من 2 مل.
  2. عزل mesoderm الأفقي من منطقة سوماتوبليورا (ss19-24) عن طريق الهضم الأنزيمي مع بنكرياتين (8 ملغ/مل؛ 1:3 إضعاف 25 ملغ/مل مع برنامج تلفزيوني الباردة).
    1. مع المساعدة من البسط والملقط رقيقة، ونقل طبق الأنسجة ss19-24 لزجاج ثلاثة أرباع مملوءة بحل بنكرياتين الباردة.
    2. احتضان لمدة 30 دقيقة على الجليد الهضم الأنزيمي.
    3. تحت ستيريوميكروسكوبي، عزل mesoderm من الأنسجة المحيطة بها باستخدام ميكروسكالبيلس اثنين في حامل.
      ملاحظة: تبقى جميع الأسطح وحلول البرد أثناء هذا الإجراء. تغيير إلى حل بنكرياتين باردة جديد إذا أخذ وقتاً طويلاً لتشريح الأنسجة (> 10 دقيقة.). كمصدر لإضاءة، استخدام مصابيح LED التي أدرجت في ستيريوميكروسكوبي أو الألياف البصرية، تفكر في الحمل الحراري محدودة.
    4. خلال العزلة mesoderm، قم أولاً بإزالة في الأديم الظاهر على السطح تليها مفرزة حذراً من أنسجة سبلانكنوبليورا بطنيا يقع.
    5. الإفراج عن ميسوديرم حق الجانبية من سوماتوبليورا بقطع في حركة موازية للأنبوب العصبي.
    6. كرر فصل ميسوديرم من الجانب الأيسر للجنين.
      ملاحظة: جعل بطء الحركات ميكروسكالبيل أثناء هذا الإجراء. عصا البروتينات مصفوفة خارج الخلوية المكشوفة للأنسجة ومنع حركة السوائل من الصكوك.
    7. مع المساعدة من البسط والملقط رقيقة مليئة نقل mesoderm معزولة لطبق زجاج ثلاثة أرباع FBS الباردة.
  3. يبقى الطبق الزجاج مع الأنسجة المعزولة على الجليد أثناء التحضير للفحص في المختبر.

4. في المختبر الإنزيم أورجانوتيبيك: جمعية هيتيروسبيسيفيك للأنسجة 3/4PP السمان والدجاج سوماتوبليورا mesoderm

  1. تعد الثقافة المتوسطة مع المتوسط RPMI 1640 تستكمل مع 10% FBS و 1% بكتيريا القلم/3،5.
  2. وضع شبكة معدنية في 35 مم طبق بيتري مع 5 مل من الثقافة المتوسطة.
    ملاحظة: إزالة فائض السائل إلى مستوى السطح المتوسطة مع الجزء العلوي من الشبكة.
  3. بمساعدة الملقط رقيقة، تراجع عامل تصفية الأغشية في المتوسط الثقافة وثم وضعه على رأس الشبكة على سطح واحد على اتصال بالهواء.
    ملاحظة: ربع منطقة الغشاء (بقطر 13 مم) كافية للأنسجة الرابطة.
  4. تحت ستيريوميكروسكوبي، معاون الأنسجة المعزولة على رأس عامل التصفية الغشاء. أولاً نقل الأنسجة 3/4PP (الخطوة 2) من الطبق الزجاج بانزلاق لطيف مع المساعدة من زرع ملعقة (أو الملعقة) ورقيقة الملقط. كرر هذا الإجراء ل mesoderm معزولة (الخطوة 3).
    ملاحظة: مع المساعدة من ميكروسكالبيل، خلط الأنسجة إلى أقصى حد في الرابطة.
  5. بعناية وضع الأنسجة المرتبطة بها في حاضنة هوميديفيد عند 37 درجة مئوية مع 5% CO2 ليمكن المطعمة 48 h. الأنسجة المستزرعة على الغشاء تشوريوالانتويك (كام).
    ملاحظة: تم تشكيل الجهاز حمل خارج الرحم في كام مفصلة قبل8.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تفاصيل البروتوكول وسيلة لعزل الطيور الأنسجة الجنينية لاستخدامها في العديد من النهج التقني البيولوجيا الخلوية والإنمائية. هذا الأسلوب كان يعمل سابقا في دراسة التفاعلات الظهارية الوسيطة خلال المراحل المبكرة من تكوين الغدة الصعترية5. وهنا، تظهر نتائج جديدة في الشكل 1 و الشكل 2، باستخدام نهج مماثل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تم تحسين إجراءات عزل الأنسجة الجنينية مفصلة هنا من الأساليب السابقة لإنتاج أجنة الدجاج السمان تشيميريك في مختلف السياقات البيولوجية3،،من56.

وهذا النهج مناسبة لعزل الأنسجة الجنينية نقية دون الحاجة إلى التلاعب بالجينات أو استخدام علامات خاصة بالانسجة، التي غالباً ما تكون غير محددة، الحد من استخدام نماذج حيوانية معدلة وراثيا. ويمكن استخدامه لدراسة التفاعلات بين الظهارية الوسيطة أثناء التطوير، مع القدرة ع...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الكتاب ليس لها علاقة بالكشف عن.

شكر وتقدير

الكتاب ممتنون إيزابيل الكوبايا لقراءة نقدية من المخطوطة، ماريو إنريكي للسرد الفيديو و Proa فيتور من "دائرة علم الأنسجة" ه هيستولوجيا دي معهد بيولوجيا هل التنمية، دي كلية الطب دي لشبونة، جامعة دي لشبونة، لتقديم الدعم التقني. ونحن مدينون لا سيما كايرو باولو و "هوجو سيلفا" من مقاتلي دي أوديوفيسوايس (الوحدة السمعية البصرية)، دي كلية الطب دي لشبونة، جامعة دي يسبوا على التزامهم المعلقة بإنتاج هذا الفيديو. ونعترف Microsystems إيكا يرجى توفير ستيريوسكوبي مزودة بنظام فيديو وإلى إينتيرافيس--شركة زراعية-سنة, S.A للمساهمة مع السمان يخصب البيض. هذا العمل كان يدعمه دي كلية الطب دي لشبونة، جامعة دي لشبونة (فمول).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
بيض الدجاج المخخص (Gallus gallus< / em>)Pintobar ، مزرعة دواجن البرتغال  ؛
بيض السمان المخصب (Coturnix coturnix)Interaves, PortugalBird farm 
15 مل أنابيب الطرد المركزي PP Corning430052
50 مل أنابيب الطرد المركزي PP Corning430290
60 × 20 مم أطباق بيركسمجموعة دوران21 755 41
100 × 20 مم أطباق بيركسدوران21 755 48
شبكة معدنيةGoodfellowsشبكة دقيقة شبكية   شبكة الفولاذ المقاوم للصدأ
مرشح غشاءMilliporeDTTP013000.6 مم مرشح غشاء Isopore
طبق بتري ، 35 × 10 ممSigma-AldrichP5112 & nbsp ؛
أوعية بيركس 60 × 30 مم (صغيرة الحجم)من السوبر ماركت   ؛
100 × 50 مم أوعية بيركس (حجم كبير)من السوبر ماركت  
ماصات النقلSamco Scientific ، Thermo Fisher Scientific2041S2 مل ماصة بلاستيكية
ماصة زجاجية باستيرنورماكس5426015
شريطمن السوبر ماركت   ؛
السيتوكيراتين (عموم ؛ حمضي وأساسي ، نوع الأول والثاني السيتوكيراتين) ، استنساخ Lu-5BMA BiomedicalsT-1302
مصل الأبقار الجنينيInvitrogen ، Thermo Fisher ScientificStandart FBS
PancreatinSigma-AldrichP-3292تحضير محلول 25 مجم / مل وفقا لتعليمات الشركة المصنعة ؛ جهاز طرد مركزي وفلتر قبل aliquote وتخزينه في -20 درجة مئوية. يمكن الاحتفاظ بكميات مجمدة من أجل عدة سنوات.
بارافورمالديهايدسيجما ألدريتشP6148
البنسلين الستربتومايسينإنفيتروجين ، ثيرمو فيشر العلمي15140-122
محلول ملحي مخزن بالفوسفات (PBS)جيبكو ، ثيرمو فيشر العلمي10010023
الأجسام المضادة QCPNدراسات التنموية الورم الهجين بنكQCPN
RPMI 1640 متوسط ، مكمل جلوتاماكس   ؛جيبكو ، ثيرمو فيشر العلمي61870010
بلوسيل RTV141A / ب سيليكون مطاط 1.1 كجم طقمELKEM / SilmidRH141001KGلتحضير القاعدة الخلفية لطبق بتري
دومون # 5 ملقطأدوات العلوم الدقيقة11251-30   ؛ملقط رفيع
مقص بون ناعم للغاية ،أدوات العلوم الدقيقة14085-08مقص منحني
دبابيس الحشرات   ؛أدوات العلوم الدقيقة26001-300.3 مم دبوس الفولاذ المقاوم
ملعقة صغيرة  أدوات العلوم الدقيقة10087-12ملعقة زرع
دبابيس Minutienأدوات العلومالدقيقة 26002-200.2 مم الفولاذ المقاوم للصدأ microscalpel
Minutien دبابيسأدوات العلوم الدقيقة26002-100.1 مم الفولاذ المقاوم للصدأ microscalpel
موريا مطلي بالنيكل دبوس حاملأدوات العلوم الدقيقة26016-12دبوس مطلي بالنيكل
موريا ملعقة مثقبةأدوات العلوم الدقيقة10370-17مقشدة
Wecker مقص العينأدوات العلوم الدقيقة15010-11
كاميراLeica Microsystems MC170 HD
المجهرلايكا مايكروسيستمز DM2500
NanoZoomer  S360 Digital  الماسح الضوئي للشرائح Hamamatsu PhotonicsC13220-01
StereoscopeLeica Microsystems لايكا M80
مجموعة بلاستيكي شفاف المنحنية للصدأ حامل

المراجع

  1. Le Douarin, N. The Nogent Institute--50 years of embryology. The International Journal of Developmental Biology. 49 (2-3), 85-103 (2005).
  2. Le Douarin, N. M., Teillet, M. A. The migration of neural crest cells to the wall of the digestive tract in avian embryo. Journal of Embryology and Experimental Morphology. 30 (1), 31-48 (1973).
  3. Le Douarin, N. M., Jotereau, F. V. Tracing of cells of the avian thymus through embryonic life in interspecific chimeras. Journal of Experimental Medicine. 142 (1), 17-40 (1975).
  4. Hamburger, V., Hamilton, H. L. A series of normal stages in the development of the chick embryo. 1951. Developmental Dynamics. 195 (4), 231-272 (1992).
  5. Neves, H., Dupin, E., Parreira, L., Le Douarin, N. M. Modulation of Bmp4 signalling in the epithelial-mesenchymal interactions that take place in early thymus and parathyroid development in avian embryos. Developmental Biology. 361 (2), 208-219 (2012).
  6. Takahashi, Y., Bontoux, M., Le Douarin, N. M. Epithelio--mesenchymal interactions are critical for Quox 7 expression and membrane bone differentiation in the neural crest derived mandibular mesenchyme. Embo Journal. 10 (9), 2387-2393 (1991).
  7. Figueiredo, M., et al. Notch and Hedgehog in the thymus/parathyroid common primordium: Crosstalk in organ formation. Developmental Biology. 418 (2), 268-282 (2016).
  8. Figueiredo, M., Neves, H. Two-step Approach to Explore Early-and Late-stages of Organ Formation in the Avian Model: The Thymus and Parathyroid Glands Organogenesis Paradigm Video Link. Journal of Visualuzed Experiments. , (2018).
  9. Nehls, M., et al. Two genetically separable steps in the differentiation of thymic epithelium. Science (New York, N.Y.). 272 (5263), 886-889 (1996).
  10. Morahan, G., et al. The nu gene acts cell-autonomously and is required for differentiation of thymic epithelial progenitors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 93 (12), 5742-5746 (1996).
  11. Jerome, L. A., Papaioannou, V. E. DiGeorge syndrome phenotype in mice mutant for the T-box gene, Tbx1. Nature Genetics. 27 (3), 286-291 (2001).
  12. Nie, X., Brown, C. B., Wang, Q., Jiao, K. Inactivation of Bmp4 from the Tbx1 expression domain causes abnormal pharyngeal arch artery and cardiac outflow tract remodeling. Cells Tissues Organs. 193 (6), 393-403 (2011).
  13. Zou, D., et al. Patterning of the third pharyngeal pouch into thymus/parathyroid by Six and Eya1. Developmental Biology. 293 (2), 499-513 (2006).
  14. Davey, M. G., Tickle, C. The chicken as a model for embryonic development. Cytogenetic and Genome Research. 117 (1-4), 231-239 (2007).
  15. Nowak-sliwinska, P., Segura, T., Iruela-arispe, M. L., Angeles, L. The chicken chorioallantoic membrane model in biology, medicine and bioengineering. Angiogenesis. 17 (4), 779-804 (2014).
  16. Uematsu, E., et al. Use of in ovo chorioallantoic membrane engraftment to culture testes from neonatal mice. Comparative Medicine. 64 (4), 264-269 (2014).
  17. Martyn, I., Kanno, T. Y., Ruzo, A., Siggia, E. D., Brivanlou, A. H. Self-organization of a human organizer by combined Wnt and Nodal signaling. Nature. 558 (7708), 132-135 (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

خيميرة السمان والدجاجعزل الأنسجة الجنينيةالهضم الإنزيمي للجراحة المجهريةالمقايسة العضوية في المختبرتطعيم الغشاء الكوريوني السلويتحليل تكوين الغدة الزعتريةتشريح الجيب البلعوميعزل أديم المتوسط للجدار الجسميدراسات التعبير الجينيمؤشرات نوعية للأنسجة