$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
تم إقران جميع الحيوانات في ظل ظروف قياسية (12 ساعة ضوء / الظلام، وبيئة درجة الحرارة الثابتة، وحرية الوصول إلى الغذاء والماء) وفقا للمبادئ التوجيهية لوزارة العلوم والتكنولوجيا الصينية مختبر الحيوانات وتمت الموافقة على التجارب من قبل اللجنة الأخلاقية المحلية لجامعة قوانغتشو. هذا إجراء عدم البقاء على قيد الحياة.
ملاحظة: بالنسبة للبيانات المبينة في النتائج التمثيلية، استُخدمت الضوابط المزدوجة الجينات من نوع الفئران والنفايات البرية في 3-5 أشهر من العمر في التسجيلات (ن = 10، لكل مجموعة) من الفئران ذات الجينات المزدوجة.
1. التخدير الحيواني والجراحة
- وزن وتخدير الماوس من خلال نظام التخدير المعتمد من لجنة رعاية الحيوانات المحلية الخاصة بك.
- إجراء قرصة ذيل أو اصبع القدم مع ملقط لتأكيد التخدير العميق قبل الجراحة.
- وضع الماوس في جهاز مجسموإصلاح وإصلاح رأسه.
- تطبيق مرهم العين على كلتا العينين للحفاظ على رطبة. اتبع إرشادات الرعاية الحيوانية المحلية الخاصة بك فيما يتعلق بالتخدير قبل وبعد الجراحة.
- حلاقة الشعر باستخدام كليبرز الجراحية. إجراء شق صغير (12-15 ملم) في منتصف المنطقة الجراحية المكشوفة مع مقص. باستخدام ملقط، سحب بلطف فروة الرأس بعيدا عن خط الوسط.
- افصل الجلد برفق وأزال الأنسجة المتبقية. تنظيف الجمجمة باستخدام براعم القطن المغلفة بيروكسيد الهيدروجين.
- حفر اثنين من الثقوب الصغيرة من رادي 1.0-1.5 ملم على كلا الجانبين الأيسر والأيمن من الجمجمة للسماح بإدخال الأقطاب الدقيقة تسجيل في المناطق M2 تحت مجهر ستيريو (الشكل1A).
ملاحظة: مواقع مجسمة من M2 الثنائية: 1.94 مم أمامي إلى البريما، 1.0 مم الجانبي إلى خط الوسط، و 0.8-1.1 مم بطني إلى دورا.
- إزالة الأم دورا بعناية مع إبرة التنغستن.
- سحب البورسليكات الزجاجية micropipettes (القطر الخارجي: 1.0 مم) كما تسجيل الأقطاب الدقيقة مع مقاومة 1-2 MΩ.
- إدراج اثنين من الأقطاب الدقيقة تسجيل منفصلة مليئة 0.5 M NaCl في الثقوب باستخدام micromanipulators الميكانيكية (في 60 درجة، الشكل 1B).
2. LFP التسجيلات في M2 الثنائية من الفئران
- خفض الأقطاب الزجاجية اليسرى واليمنى ببطء في الإحداثيات المناسبة من M2 الثنائية (الشكل1C).
- لمراقبة الجودة، اختبار مقاومة كل قطب باستخدام مكبر للصوت التفاضلي ة قبل التقاط LFPs.
- تعيين عملية التسجيل في 0.1 هرتز عالية تمرير و 1000 هرتز تمريرمنخفض مع 1000x التضخيم.
- جمع البيانات الخام الرقمية LFP من ما لا يقل عن 60 ق الأنشطة العفوية في حالة مستقرة، مع الفئران التنفس بالتساوي بمعدل التنفس من 2 التنفس في الثانية تحت التخدير.
- بعد التسجيل، رفع ببطء الأقطاب الكهربائية من الدماغ، ثم قتل الفئران عن طريق خلع عنق الرحم بسرعة.
- حفظ البيانات وتحليل دون اتصال.
3- تحليل الترابط المتبادل
- انقر فوق تحليل - ارتباط الموجي في برنامج التحليل واستيراد البيانات.
- إعدادات المعلمة
- تعريف إشارة قناة موجية واحدة كالقناة الأولى والأخرى كمرجع. تعيين العرض كـ 2 وإزاحة كـ 1 (الشكل2A).
- تعيين مدة كل من LFPs لـ 100 s عن طريق تحديد وقت البدء ووقت الانتهاء. اضغط على زر العملية لإجراء تحليل الترابط المتبادل (الشكل2B).
ملاحظة: الإشارات الثنائية المتزامنة مع مثل هذه المدد ستكون طويلة بما فيه الكفاية لإظهار الأنشطة العفوية العصبية، وبالتالي الكشف عن الخصائص الأساسية للتزامن.
- انقر فوق ملف - تصدير باسم، ثم احفظ نتائج الارتباط المتبادل المقابلة للمخطط المنبثق الناتج بتنسيق .txt.
- افتح الملف .txt (الشكل2C)، وقم بإزالة قيم الارتباط في فترات تأخير الوقت تراوحت 0 ± 0.01 s (بما أن موجتي غاما المستمرتين لها فاصل زمني 0.01 s على الأقل)، ثم متوسط بقية بيانات الارتباط المتبادل في جزء تأخر الوقت السالب أو المتوسط بقية بيانات الترابط المتبادل في جزء تأخر الوقت الإيجابي.
4 - تحليل الاتساق
- استيراد البيانات وتشغيلها في برنامج التحليل.
- تعيين إشارات LFP اثنين لتكون القنوات الموجي الأول والثاني بشكل منفصل. ثم قم بتعيين قيمة حجم الكتلة (الشكل3A).
ملاحظة: حجم الكتلة يعني عدد نقاط البيانات المستخدمة في FFT. كلما كان حجم الكتلة أكبر، كلما كان دقة التردد أفضل. هنا نوصي بوضعه كـ 4096.
- نقل الخطوط المنقطة يدوياً لضمان دقة الوقت للإشارات في كلتا القناتين يتم تعيين نفس الفترة (الشكل3B). اضغط على الزر إضافة ناحية لتحميل المنطقة وإجراء تحليل التماسك.
- انقر فوق ملف - حفظ باسم لحفظ نتائج التماسك المقابلة للمخطط المنبثق الناتج بتنسيق .txt (الشكل3B).