مقالة منهجية

فصل البشرة الجرذ والأدمة مع Thermolysin للكشف عن موقع محدد الحمض النووي الريبي الالتهابي والبروتين

DOI:

10.3791/59708

⸱

سبتمبر 29, 2021

 ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Anatomy and Cell Biology, Oklahoma State University Center for Health Sciences, 2Institute for Shock Physics, Washington State University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا هو بروتوكول لفصل البشرة من الأدمة لتقييم إنتاج الوسيط الالتهابي. بعد الالتهاب ، يتم فصل البشرة مخلب الجرذ الخلفي من الأدمة عن طريق الدلس الحراري عند 4 درجة مئوية. ثم يتم استخدام البشرة لتحليل الحمض النووي الريبي عن طريق RT-PCR وتقييم البروتين عن طريق وصمة عار الغربية والكيمياء المناعية.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هناك حاجة إلى تقنيات سهلة الاستخدام وغير مكلفة لتحديد إنتاج محدد الموقع من الوسطاء الالتهابية والأعصاب أثناء إصابة الجلد والالتهاب و / أو التوعية. الهدف من هذه الدراسة هو وصف بروتوكول فصل البشرة الجلدية باستخدام الهريسين الحراري ، وهو بروتين ينشط عند 4 درجات مئوية. لتوضيح هذا الإجراء ، يتم تخدير فئران سبراغ دولي ، ويتم حقن الكفوف الخلفية اليمنى بالكاراجينان. بعد ست واثنتي عشرة ساعة من الحقن ، يتم قتل الفئران ذات الالتهاب والجرذان الساذجة ، ويتم وضع قطعة من مخلب هندى ، جلد جلابروس في متوسط النسر المعدل في Dulbecco البارد. ثم يتم فصل البشرة في غشاء الطابق السفلي من الأدمة عن طريق الليسين الحراري في برنامج تلفزيوني مع كلوريد الكالسيوم. بعد ذلك ، يتم تأمين الأدمة عن طريق ملقط التشظي الدقيق ، ويتم مضايق البشرة بلطف. تلطيخ الأزرق Toluidine من أقسام الأنسجة تبين أن البشرة يتم فصلها بشكل نظيف من الأدمة في غشاء الطابق السفلي. جميع طبقات خلايا الكيراتينية لا تزال سليمة، ويلاحظ بوضوح التلال rete البشرة جنبا إلى جنب مع المسافات البادئة من الحليمات الجلدية. يستخدم نوعي وفي الوقت الحقيقي RT-PCR لتحديد عامل نمو الأعصاب ومستويات التعبير interleukin-6. يتم إجراء النشاف الغربي والكيمياء المناعية أخيرا للكشف عن كميات من عامل نمو الأعصاب. يوضح هذا التقرير أن هضم الهضم الحراري البارد هو طريقة فعالة لفصل البشرة عن الأدمة لتقييم الحمض النووي الريبي وتعديلات البروتين أثناء الالتهاب.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تقييم الوسطاء الالتهابية والعوامل العصبية من الجلد يمكن أن تكون محدودة بسبب عدم التجانس من أنواع الخلايا الموجودة في الأدمة الملتهبة والبشرة1،2،3. وقد استعرضت مؤخرا العديد من الإنزيمات والكيميائية والحرارية ، أو التقنيات الميكانيكية التي تنطوي على فصل طبقتين أو لأداء تفكك الخلايا للتقييم4. حمض, القلويات, الملح محايد, والحرارة يمكن تقسيم البشرة من الأدمة بسرعة, ولكن تورم الخلوية وخارج الخلية غالبا ما يحدث5,6. تريبسين, البنكرياس, الاستاز, keratinase, كولاجيناز, بروناز, ديسباس, وثيرمليسين هي الانزيمات التي استخدمت لفصل البشرة الجلدية4,7. التريبسين والإنزيمات البروتيوليكية واسعة النطاق الأخرى نشطة في 37-40 درجة مئوية ولكن يجب مراقبتها بعناية لمنع تفكك طبقات البشرة. Dispase يشق البشرة في densa lamina، ولكن يتطلب 24 ساعة لفصل في الباردة4،8 أو أقصر timepoints في 37 °C4،9. ومن السمات التي تحد من كل هذه التقنيات هو الاضطراب المحتمل لمورفولوجيا الأنسجة وفقدان سلامة الحمض النووي الريبي والبروتين.

للحفاظ على سلامة الحمض النووي الريبي والبروتين، ينبغي أن يتم إجراء طريقة فصل الجلد في البرد لفترة قصيرة من الزمن. في تقييم تقنيات فصل الجلد لدراسات الالتهاب ، يعد الهسين الحراري إنزيما فعالا لفصل البشرة عن الأدمة في درجات الحرارة الباردة4. Thermolysin نشطة في 4 درجة مئوية، يشق البشرة hemidesmosomes من لامينا لوسيدا، ويفصل البشرة من الأدمة في غضون 1-3 ح4،8،10. الهدف من هذا التقرير هو تحسين استخدام الثيرمولين لفصل البشرة الفئران الملتهبة من الأدمة للكشف عن الحمض النووي الريبي ومستويات البروتين للوسطاء الالتهابية والعوامل العصبية. تم تقديم العديد من التقارير الأولية11،12،13،14،15. الهدف من هذه المخطوطة هو وصف تقنية فصل الجلد الأمثل باستخدام اللدائن الحرارية وإظهار الكشف عن 1) علامات الالتهاب، 2) إنترلوكين-6 (IL-6) مرنا، و 3) عامل نمو الأعصاب (NGF) مرنا والبروتين في البشرة من الفئران مع التهاب الناجم عن الكاراجينان (C-II)16،17. تقرير أولي باستخدام نموذج المساعد فروند الكامل يشير إلى أن NGF مرنا ومستويات البروتين زيادة في وقت مبكر خلال التهاب15. في الفئران، والحساسية الجلد مع التطبيق الموضعي لأوكسيازولون يسبب ارتفاع مبكر في IL-6 مرنا باستخدام التهجين في الموقع36. وقد تورط كل من IL-6 وNGF في C-II18,19, ولكن لم تكن هناك تقارير تصف الحمض النووي الريبي أو مستويات البروتين لIL-6 أو NGF على وجه التحديد من البشرة خلال المراحل الحادة من C-II.

تقنية الهسين الحراري غير مكلفة ومباشرة لأداء. وعلاوة على ذلك، فصل الحرارة من البشرة من الأدمة يسمح لرنا، لطخة الغربية، والتحليل المناعي الكيميائي للوسطاء الالتهابات والعوامل العصبية خلال عملية الالتهاب15. يجب أن يكون المحققون قادرين على استخدام هذه التقنية بسهولة في كل من الدراسات قبل السريرية والسريرية لالتهاب الجلد.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يتبع هذا البروتوكول إرشادات رعاية الحيوان لمركز جامعة ولاية أوكلاهوما للعلوم الصحية IACUC (#2016-03).

1. التهاب الناجم عن كاراجينان (C-II)

  1. تخدير الفئران الذكور و / أو الإناث سبراغ دولي (200-250 غرام؛ 8-9 أسابيع من العمر) مع isoflurane (أو مخدر عن طريق الحقن).
  2. تحقق من عمق التخدير عن طريق لمس القرنية وقرص مخلب الخلفي الأيسر بخفة. عندما يتم تخدير الحيوان بشكل مناسب ، لن يلاحظ أي استجابة للقرنية أو مخلب.
  3. حقن تحت الجلد في glabrous الحق، مخلب الخلفي مع 100 ميكرولتر من 1٪ (ث / v) λ-كاراجينان المخفف في المالحة الفوسفات العازلة (PBS)20.
    1. تأكد من استخدام الضوابط المناسبة، مثل الفئران السذاجة دون isoflurane في هذا التقرير. وتشير الدراسات الأولية إلى أن الفئران السذاجة مع أو بدون ايزوفلوران لديها نفس التعبير القاعدي من البشرة IL-6 و NGF.
      ملاحظة: الفئران السذاجة هي المفضلة ضوابط لدراسات التهاب منذ تحت الجلد المالحة أو PBS يسبب التهاب المحلية23،37.
  4. تقييم وذمة الفئران C-II لضمان فعالية كاراجينان (الشكل 1)20. تحديد كمية وذمة عن طريق قياس سمك مشط القدم مخلب الخلفي مع الفرجار.
  5. في 6-12 ساعة، والقتل الرحيم الفئران معثاني أكسيد الكربون (أو جرعة زائدة مخدر عن طريق الحقن) وقطع 1 مم × 2 ملم قطعة من الجلد مخلب هند glabrous مع مشرط حاد. إذا تم استخدام الجلد المشعر، ثم حلق قبل قطع 1 مم × 2 ملم من الجلد.
    ملاحظة: تأكد من اختيار النقاط الزمنية المناسبة وفقا للدراسات المحددة.
  6. باستخدام ملقط التحلل الدقيق، نقل الجلد إلى 1 مل من متوسط النسر المعدلة دولبيكو الباردة (DMEM) في أنبوب الطرد المركزي الدقيق على الجليد والحفاظ على البرد لمدة 15-60 دقيقة.

2. فصل الثيرمو يسين من البشرة والأدمة

  1. إعداد وتنشيط الثيرمولين.
    1. إعداد حل من thermolysin، بإضافة 5 ملغ من geobacillus stearothermophilus إلى 10 مل من برنامج تلفزيوني، في درجة الحموضة = 8 (تركيز 500 ميكروغرام / مل).
    2. إعداد محلول 1 M من كلوريد الكالسيوم (CaCl2 اللامائية) عن طريق إضافة 1.11 غرام إلى 10 مل من المقطر H2O.
    3. لمنع التحلل الذاتي للتحلل الحراري، أضف 10 ميكرولتر من كلوريد الكالسيوم إلى 10 مل من محلول التحلل الحراري. وسيكون التركيز النهائي كلوريد الكالسيوم 1 mM.
    4. Aliquot 1 مل من الديناميل الحراري المنشط في 10 آبار من 24 لوحة ثقافة خلية جيدة على الجليد.
  2. استخدام الهضم انزيم الهضم بالحرارة لفصل البشرة من الأدمة.
    1. باستخدام ملقط التشتيت الدقيق، نقل عينة جلد واحدة في كل بئر من الديناميل الحراري المنشط. تأكد من عدم غمر الجلد في محلول اللحلول الحرارية.
    2. اضغط برفق على الجلد على جانب البئر للمساعدة في إطلاق عينة الجلد من ملقط لتعويم على محلول الزحلة الحرارية.
    3. تعويم الجلد في محلول الهراسين الحراري مع الطبقة كورنيوم (البشرة الخارجية) الجانب صعودا والأدمة التي تواجه أسفل. ومن الأهمية بمكان أن يواجه الأدمة إلى أسفل، أو الفصل الفعلي لن يحدث.
      ملاحظة: يجب تحديد مقدار الوقت لاحتضان thermolysin تجريبيا من قبل المستخدم النهائي. جلابروس، جلد مخلب الخلفي من الفئران داولي سبراغ (200-250 غرام؛ 8-9 أسابيع من العمر) غالبا ما يتطلب 2.0-2.5 ساعة للانفصال. ومن المتوقع أن يختلف وقت الحضانة باختلاف الأنواع والعمر.
    4. بعد وقت الحضانة المناسب في الليسين الحراري ، استخدم ملقط التشتت الدقيق لنقل عينة جلد واحدة إلى بئر من لوحة زراعة خلايا جيدة 6 مع 7-8 مل من DMEM البارد (4 درجة مئوية). وهذا يتيح مساحة أكبر لفصل البشرة عن الأدمة.
    5. تزج الجلد في DMEM.
    6. فرشاة بلطف البشرة مع ملقط حول محيط الجلد حتى لوحظ البشرة شبه شفافة على الحدود. إذا لم يتحقق ذلك، أعد عينة الجلد إلى محلول الهلازين الحراري لمدة 15-30 دقيقة أخرى.
    7. مرة واحدة البشرة ينفصل بشكل ملحوظ من الأدمة، ثم عقد بعناية كل من البشرة والأدمة مع ملقط microdissection وسحب ببطء شديد البشرة من الأدمة.
    8. تقييم مدى راحة البشرة المعزولة والتأكد من أنها متسقة بصريا. انظر الشكل 2 للحصول على مثال لعينة من 1 مم × 2 مم من البشرة الفئران. إذا كان هناك اختلاف في الشفافية ، ثم الفصل السليم لم يحدث.
  3. تعطيل الهريسين الحراري باستخدام حمض الإيثيلينديامينتتراستيك (EDTA) في القطع المنفصلة من البشرة والأدمة.
    تنبيه: لا يزال الهزليسين الحراري الذي يبقى في البشرة والأدمة نشطا ويمكن أن يضر الطبقات إن لم يكن معطلا.
    1. إعداد 0.5 M EDTA الأسهم الحل. للقيام بذلك، أضف ببطء 0.93 غرام EDTA إلى 5 مل من الماء المقطر المزدوج. أضف هيدروكسيد الصوديوم إلى المحلول حتى ينجلي. تأكد من أن رقم الحموضة للحل هو ~ 8.0.
    2. قم بإجراء حل EDTA 5 mM في DMEM. إضافة 0.25 مل من 0.5 M EDTA حل الأسهم إلى 25 مل من DMEM.
    3. ضع البشرة والأدمة المنفصلة في محلول EDTA/DMEM الذي 5 mM عند 4 درجات مئوية لمدة 30 دقيقة لتعطيل نشاط Thermolysin.
  4. تقييم البشرة مع الأنسجة التكفيرية8،9،10.
    1. إصلاح جزء من البشرة في 10٪ الفورمالين محايدة, 4٪ paraformaldehyde, أو 0.25٪ paraformaldehyde مع 0.8٪ محلول حمض بيكريك ل 1 ح في درجة حرارة الغرفة (RT) مع التحريض.
    2. وضع البشرة الثابتة في السكروز 10٪ في برنامج تلفزيوني لمدة 1 ساعة في RT مع التحريض.
    3. تجميد البشرة في مصفوفة تضمين الأنسجة للتقطير. قطع 14 ميكرومتر المقاطع العرضية باستخدام أقسام cryostat وذوبان جبل على شرائح المجهر الزجاجي المغلفة الجيلاتين.
    4. أقسام جافة على الشريحة أكثر دفئا وصمة عار مع حل العمل من الأزرق التولويدين (السل؛ 10٪ السل في 1٪ كلوريد الصوديوم) لمدة 90 ثانية. يغطي Appose مع وسط تصاعد مائي.
    5. مراقبة البشرة مع المجهر برايتفيلد في 50x-250x.
      ملاحظة: إذا حدث فصل مناسب، سيتم تقسيم البشرة بشكل نظيف من الأدمة وسيتم الكشف عن الطبقات الخمس: طبقة basale، طبقة سبينوسوم، طبقة غرانوبولوسوم، ستراتوم لوسيدوم، وطبقة كورنيوم. ويمكن رؤية مثال على البشرة الفئران فصل الجلد في الشكل 3.

3. استخراج البروتين وتحليل لطخة الغربية

  1. تنفيذ النشاف الغربية على عينات الأنسجة المنفصلة باستخدام بروتوكول نشرت سابقا21.
  2. تجانس البشرة في 50 ميكرولتر من العازلة تحلل (25mM تريس HCl، درجة الحموضة = 7.4، 150 mM NaCl، 1 M M EDTA، 5٪ الجلسرين، و 1٪ تريتون X-100) تحتوي على كوكتيل فوسفاتاز وبروتياز.
  3. عينات الطرد المركزي بسرعة قصوى لمدة 15 دقيقة في 4 درجة مئوية وتقييم supernatant لتركيز البروتين باستخدام مجموعة اختبار البروتين.
  4. تحميل تركيزات متساوية من البروتين (30 ميكروغرام) على المواد الهلامية SDS، وإجراء الكهربائي، ومن ثم نقل البروتينات إلى النيتروسليلوز أو أغشية PVDF.
  5. كتلة الأغشية مع 5٪ الحليب لمدة 2 ساعة واحتضان بين عشية وضحاها في الأجسام المضادة الأولية (الماوس المضادة NGF، E12، 1:1000).
  6. غسل 3x مع برنامج تلفزيوني مع 0.3٪ توين لمدة 10 دقيقة لكل واحتضان مع الأجسام المضادة الثانوية المسمى (على سبيل المثال، الفوسفاتاز القلوية المسمى أرنب المضادة للفأرة IgG).
  7. استخدم نظام المسح الضوئي لتقييم إشارة البقعة الغربية (على سبيل المثال، ركيزة ECF ومنصة تصوير).

4. الكيمياء المناعية

  1. ضع عينات الأنسجة في مثبت لالخمول المناعي الأمثل: 0.96٪ (ث / v) حمض بيريك و 0.2٪ (ث / v) الفورمالديهايد في 0.1 M صوديوم الفوسفات العازلة، درجة الحموضة = 7.321،22،23 لمدة 4 ساعات في RT. نقل إلى 10٪ السكروز في برنامج تلفزيوني بين عشية وضحاها في 4 درجة مئوية.
  2. إجراء الكيمياء المناعية القياسية على أقسام الأنسجة21،22،23.
  3. تضمين البشرة من الحيوانات في كتلة واحدة المجمدة في تضمين مصفوفة وقطع 10-30 ميكرومتر أقسام على cryostat. قم بتركيب المقاطع على شرائح المجهر الزجاجي المغلفة بالجيلاتين وجافة عند 37 درجة مئوية لمدة 2 ساعة.
  4. غسل أقسام لمدة ثلاثة، 10 دقيقة شطف في برنامج تلفزيوني واحتضان لمدة 24-96 ساعة في antisera الأولية، [على سبيل المثال، الماوس المضادة لNGF (E12، 1:2000)] والأرنب المضادة للبروتين المنتج الجيني 9.9 (PGP 9.5، 1:2000) المخفف في برنامج تلفزيوني يحتوي على 0.3 ٪ (ث / الخامس) تريتون X - 100 (PBS - T) PBS - T مع 0.5 ٪ ألبوم مصل البقر (جيش الصحابة) و 0.5 ٪ polyvinylpyrrolidone (PVP).
  5. بعد الحضانة الأولية المضادة للروم، شطف أقسام ثلاث مرات لمدة 10 دقيقة في برنامج تلفزيوني واحتضان 1 ساعة في RT في اليكسا فلور 488 حمار المضادة للأرنب IgG (1:1000) واليكسا فلور 555 حمار المضادة للفأرة IgG (1:1000) المخفف في PBS-T.
  6. شطف أقسام ثلاث مرات في برنامج تلفزيوني لمدة 10 دقيقة وأغطية اللصق مع المتوسطة تصاعد غير يتلاشى لتثبيط يتلاشى من immunofluorescence.

5. عزل الحمض النووي الريبي وتوليف CDNA

  1. أداء معيار عكس تفاعل البوليميراز المتسلسل (RT-PCR) على عينات الجلد21. عزل مجموع الحمض النووي الريبي باستخدام الفينول، محلول ايزوثيوسياناتي guanidine.
  2. تنفيذ تخليق الحمض النووي التكميلية من قبل مولوني مورين فيروس سرطان الدم عكس transcriptase.
  3. استخدم التسلسلات التمهيدية التالية لتضخيم NGF و IL-6:
    NGF (إحساس) - GTGGACCCCAAACTGTAGAAACGG
    NGF (Antisense) – GTGAGTCCTGGغاغاغاغاتغاتكاتكاتكاتغ
    IL-6 (إحساس) - GCAATTCTTGTATGAACAGCغاغاتغاتغ؛
    IL-6 (مضاد للسينس) - GTAGAAACGGAACTCCAGAGAGAG
  4. قارن مستويات NGF و IL-6 مرنا إلى β-actin التدبير المنزلي الجينات:
    β-أكتين (إحساس) - TGCGTGACATTAAGAGCTGTGCTATG
    β-أكتين (Antisense) – GAACCGCTCATTGCCGATAGTGATGA
  5. تقييم مع نوعي RT-PCR باستخدام دورة الحرارية والكمية في الوقت الحقيقي PCR (qRT-PCR) باستخدام نظام QRT-PCR.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تسبب حقن كاراجينان في مخلب الفئران الخلفي الأعراض الكلاسيكية للالتهاب مثل احمرار وذمة16،17. تم قياس تورم مخلب الخلفي مع الفرجار الميكانيكية20. تم الحصول على قيمة خط الأساس لسمك مخلب لكل فأر قبل العلاج كاراجينان وقياسها مرة أخرى في 6 ساعة و 12 ساعة. زيادة سمك مخلب بشكل ملحوظ مقارنة مع قيم خط الأساس (الشكل 1).

أنتجت حضانة الهلوسين الحراري لجلد مخلب الجرذ الجليدي الخلفي ورقة من البشرة....

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

وقررت الدراسة أن البشرة من جلد مخلب الجرذ الخلفي glabrous تم فصلها بسهولة من الأدمة باستخدام الليسين الحراري (0.5 mG/mL) في PBS مع كلوريد الكالسيوم 1 mM في 4 درجة مئوية لمدة 2.5 ساعة. وأشار التقييم النسيجي إلى أن البشرة انفصلت عن الأدمة في غشاء الطابق السفلي وأن التلال الشبكية البشرة سليمة. Thermolysin هو metalloendopeptidase خارج الخلية التي تنتجها غرام إيجابية (جيو)عصيات thermoproteolyticus24. نشاطها مستقر عند 4 درجة مئوية ولكنه يعمل على مدى مجموعة واسعة من درجات الحرارة

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ولا يوجد لدى صاحبي البلاغ أي إفصاحات.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم توفير التمويل لهذا البحث من قبل المعاهد الوطنية للصحة NIH-AR047410 (KEM)

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
&lambda ؛ -carrageenanMillipore Sigma22049الحقن تحت الجلد للكاراجينان يسبب الالتهاب
7500 نظام تفاعل البوليميراز المتسلسل السريع في الوقت الحقيقي4351107 Thermo Fisher Scientificلتحليل RT-PCR
كلوريد الكالسيوم (CaCl2) ،Millipore Sigmaاللامائي 499609يمنع التحلل الذاتي
لوسطتركيب مائي مثبت كريستاليMillipore SigmaC0612وسط تركيب مائي بعد تلطيخ التولودين الأزرق
الحمار المضاد للفأر Alexa Fluor 555Thermo Fisher ScientificA-31570الجسم المضاد الثانوي للكيمياء المناعية
الحمار المضاد للأرانب IgG ، Alexa Fluor 488Thermo Fisher ScientificA-21206الجسم المضاد الثانوي للكيمياء المناعية
Dulbecco's Modified Eagle MediumThermo Fisher علمي11966-025للحفاظ على سلامة الأنسجة
حمض الإيثيلين ديامين تترا أسيتيكMillipore SigmaE6758يوقف تفاعل التحلي
فيروس سرطان الدم الفئران (M-MLV) النسخ العكسيPromegaM1701لتخليق الحمض النووي التكميلي
الجسم المضاد للفأر المضاد ل NGF (E-12)سانتا كروز التكنولوجيا الحيويةsc-365944للتغذية العصبية الكيمياء المناعية
ProLong Gold Antifade MountantThermo Fisher ScientificP36930لتأخير تبريد التألق
المناعي للأرانب المضادة ل PGP 9.5Cedarlane LabsCL7756APلتلوين العصب داخل البشرة
SAS Sprague Dawley RatCharlesRiver Strain Code 400يستخدم لدراسات الالتهابات
شاندون M-1 تضمين مصفوفةحرارية مصفوفة تضمين الأنسجة من فيشر Scientific1310TSللكيمياء النسيجية الحزمية والمناعية
SimpliAmp Thermal CyclerThermo Fisher ScientificA24811لتحليل RT-PCR
SYBR Select Master MixThermo Fisher Scientific4472908 لتحليل RT-PCR
ThermolysinMillipore SigmaT7902من Geobacillus stearothermophilus
تولويدين بلوميليبور سيجما89640للتلوين الtinctorial للفحص المجهري للحقل الساطع
كاشف TRIzolThermo Fisher Scientific15596026لاستخراج الحمض النووي الريبي الكلي ل RTPCR
الحراري مولوني

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Choi, J. E., Di Nardo, A. Skin neurogenic inflammation. Seminars in Immunopathology. 40 (3), 249-259 (2018).
  2. Manti, S., Brown, P., Perez, M. K., Piedimonte, G. The role of neurotrophins in inflammation and allergy. Vitamins and Hormones. 104, 313-341 (2017).
  3. Schäkel, K., Schön, M. P., Ghoreschi, K. Pathogenesis of psoriasis. Zeitschrift für Dermatologie, Venerologie, und verwandte Gebiete. 67 (6), 422-431 (2016).
  4. Zou, Y., Maibach, H. I. Dermal-epidermal separation methods: research implications. Archives of Dermatological Research. 310 (1), 1-9 (2018).
  5. Baumberger, J. Methods for the separation of epidermis from dermis and some physiologic and chemical properties of isolated epidermis. Journal of the National Cancer Institute. 2, 413-423 (1942).
  6. Felsher, Z. Studies on the adherence of the epidermis to the corium. Journal of Investigative Dermatology. 8, 35-47 (1947).
  7. Einbinder, J. M., Walzer, R. A., Mandl, I. Epidermal-dermal separation with proteolytic enzymes. Journal of Investigative Dermatology. 46, 492-504 (1966).
  8. Rakhorst, H. A., et al. Mucosal keratinocyte isolation: a short comparative study on thermolysin and dispase. International Association of Oral and Maxillofacial Surgeons. 35 (10), 935-940 (2006).
  9. Tschachler, E., et al. Sheet preparations expose the dermal nerve plexus of human skin and render the dermal nerve end organ accessible to extensive analysis. Journal of Investigative Dermatology. 122 (1), 177-182 (2004).
  10. Walzer, C., Benathan, M., Frenk, E. Thermolysin treatment-a new method for dermo-epidermal separation. Journal of Investigative Dermatology. 92, 78-81 (1989).
  11. Anderson, M. B., Miller, K. E., Schechter, R. Evaluation of rat epidermis and dermis following thermolysin separation: PGP 9.5 and Nav 1.8 localization. Society for Neuroscience Abstract. 584 (9), (2010).
  12. Ibitokun, B. O., Anderson, M. B., Miller, K. E. Separation of corneal epithelium from the stroma using thermolysin: evaluation of corneal afferents. Society for Neuroscience Abstract. , 584(2010).
  13. Nawani, P., Anderson, M., Miller, K. E. Structure-property relationship of skin. Oklahoma Center for Neuroscience Symposium Abstract. , # 17 (2011).
  14. Anderson, M. B., Miller, K. E. Intra-epidermal nerve fiber reconstruction and quantification in three-dimensions. Society for Neuroscience Abstract. 220, 23(2017).
  15. Gujar, V. K. E., Miller, K. E. Expression of nerve growth factor in adjuvant-induced arthritis (AIA): A temporal study. Society for Neuroscience Abstract. 220, 23(2017).
  16. Vinegar, R., et al. to carrageenan-induced inflammation in the hind limb of the rat. Federation Proceedings. 46 (1), 118-126 (1987).
  17. Fehrenbacher, J. C., Vasko, M. R., Duarte, D. B. Models of inflammation: Carrageenan- or complete Freund's Adjuvant (CFA)-induced edema and hypersensitivity in the rat. Current Protocols in Pharmacology. , Chapter 5, Unit 5.4 (2012).
  18. Li, K. K., et al. exerts its anti-inflammatory effects associated with suppressing ERK/p38 MAPK and Heme Oxygenase-1 activation in lipopolysaccharide-stimulated RAW 264.7 macrophages and carrageenan-induced mice paw edema. International Immunopharmacology. 54, 366-374 (2018).
  19. Sammons, M. J., et al. Carrageenan-induced thermal hyperalgesia in the mouse: role of nerve growth factor and the mitogen-activated protein kinase pathway. Brain Research. 876 (1-2), 48-54 (2000).
  20. Hoffman, E. M., Miller, K. E. Peripheral inhibition of glutaminase reduces carrageenan induced Fos expression in the superficial dorsal horn of the rat. Neuroscience Letters. 472 (3), 157-160 (2010).
  21. Crosby, H. A., Ihnat, M., Spencer, D., Miller, K. E. Expression of glutaminase and vesicular glutamate transporter type 2 immunoreactivity in rat sacral dorsal root ganglia following a surgical tail incision. Pharmacy and Pharmacology International Journal. 2 (3), 00023(2015).
  22. Hoffman, E. M., Schechter, R., Miller, K. E. Fixative composition alters distributions of immunoreactivity for glutaminase and two markers of nociceptive neurons Nav1.8 and TRPV1, in the rat dorsal ganglion. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 58 (4), 329-344 (2010).
  23. Hoffman, E. M., Zhang, Z., Schechter, R., Miller, K. E. Glutaminase increases in rat dorsal root ganglion neurons after unilateral adjuvant-induced hind paw inflammation. Biomolecules. 6 (1), 10(2016).
  24. van den Burg, B., Eijsink, V. Thermolysin and related Bacillus metallopeptidases. Handbook of Proteolytic Enzymes. , Volume 1, Chapter 111 540-553 (2013).
  25. Matthews, B. W. Thermolysin. Encyclopedia of Inorganic and Bioinorganic Chemistry. , (2011).
  26. Hybbinette, S., Boström, M., Lindberg, K. Enzymatic dissociation of keratinocytes from human skin biopsies for in vitro cell propagation. Experimental Dermatology. 8 (1), 30-38 (1999).
  27. Glade, C. P., et al. Multiparameter flow cytometric characterization of epidermal cell suspensions prepared from normal and hyperproliferative human skin using an optimized thermolysin-trypsin protocol. Archives of Dermatological Research. 288 (4), 203-210 (1996).
  28. Sato, J. D., Kan, M. Media for culture of mammalian cells. Current Protocols in Cell Biology. , Chapter 1: Unit 1.2 (2001).
  29. Gragnani, A., Sobral, C. S., Ferreira, L. M. Thermolysin in human cultured keratinocyte isolation. Brazilian Journal of Biology. 67 (1), 105-109 (2007).
  30. Germain, L., et al. Improvement of human keratinocyte isolation and culture using thermolysin. Burns. 19 (2), 99-104 (1993).
  31. Michel, M., et al. Characterization of a new tissue-engineered human skin equivalent with hair. In Vitro Cellular & Developmental Biology. Animal. 35 (6), 318-326 (1999).
  32. Fassina, G., et al. Autolysis of thermolysin. Isolation and characterization of a folded three-fragment complex. European Journal of Biochemistry. 156 (2), 221-228 (1986).
  33. Petho, G., Reeh, P. W. Sensory and signaling mechanisms of bradykinin, eicosanoids, platelet-activating factor, and nitric oxide in peripheral nociceptors. Physiological Reviews. 92 (4), 1699-1775 (2012).
  34. Djouhri, L., et al. Time course and nerve growth factor dependence of inflammation-induced alterations in electrophysiological membrane properties in nociceptive primary afferent neurons. Journal of Neuroscience. 21 (22), 8722-8733 (2001).
  35. Denk, F., Bennett, D. L., McMahon, S. B. Nerve growth factor and pain mechanisms. Annual Review of Neuroscience. 40, 307-325 (2017).
  36. Flint, M. S., Dearman, R. J., Kimber, I., Hotchkiss, S. A. Production and in situ localization of cutaneous tumour necrosis factor alpha (TNF-alpha) and interleukin 6 (IL-6) following skin sensitization. Cytokine. 10 (3), 213-219 (1998).
  37. Crosby, H. A., Ihnat, M., Miller, K. E. Evaluating the toxicity of the analgesic glutaminase inhibitor 6-diazo-5-oxo-L-norleucine in vitro and on rat dermal skin fibroblasts. MOJ Toxicology. 1 (1), 00005(2015).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Epidermal Dermal SeparationThermolysin DigestionSkin Inflammation ModelNerve Growth FactorInterleukin 6 ExpressionWestern BlottingImmunohistochemistryToluidine Blue StainingCarrageenan Induced InflammationSprague Dawley Rats

مقالات ذات صلة