يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

نموذج قبل السريرية لتقييم تعافي الدماغ بعد السكتة الدماغية الحاده في الفئران

8.2K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/60166

⸱

نوفمبر 6, 2019

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Beijing Yinfeng Dingcheng Biological Engineering Technology Ltd., 2Hulunbuir People's Hospital, 3Shandong Qilu Stem Cell Engineering Co. Ltd.

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

الغرض من هذه الدراسة هو إنشاء والتحقق من صحة نموذج الحيوانية للبحوث في مراحل الانتعاش والعواقب من نقص التروية في الدماغ عن طريق اختبار احتشاء الدماغ والوظيفة الحسية الحركية بعد انسداد الشريان الدماغي الأوسط/ضخ (MCAO/R) بعد 1-90 أيام في الفئران.

الملخص

وكان الغرض من هذه الدراسة لإنشاء والتحقق من صحة نموذج نقص ترويه الدماغ الحيوانية في مراحل الانتعاش والعواقب. تم اختيار نموذج انسداد الشريان الدماغي الأوسط/الضخ (MCAO/R) في الفئران الذكور سبرايج-داولي. عن طريق تغيير وزن الفئران (260 − 330 ز) ، ونوع الخيط الترباس (2636/2838/3040/3043) والدماغ احتشاء الوقت (2-3 ح) ، وارتفاع درجه لونغا ، وحجم احتشاء أكبر ونسبه نجاح أكبر نموذج تم فرزها باستخدام النتيجة لونغا وتلطيخ عقاري. تم الحصول علي حاله النموذج الأمثل (300 g ، 3040 الترباس الموضوع ، 3 ح الدماغ احتشاء الوقت) واستخدامها في فتره المراقبة اليوم 1-90 بعد ضخ عن طريق تقييم وظائف حسي وحجم احتشاء. وفي ظل هذه الظروف ، كان لاختبار عدم التماثل الثنائي فارق كبير من 1 إلى 90 يوما ، وكان لاختبار الشبكة والمشي فارق كبير من 1 إلى 60 يوما ؛ يمكن ان يكون كل من الاختلافات اختبار الوظيفية حسي مناسبه. وهكذا ، تم العثور علي الشرط الأكثر ملاءمة لنموذج الفئران رواية في مراحل الانتعاش والعواقب من نقص التروية في الدماغ: 300 g الفئران التي خضعت MCAO مع الترباس 3040 الموضوع ل 3 ح احتشاء الدماغ ومن ثم reperfused مستخدمه. وكانت الاختبارات الوظيفية الحسية المناسبة اختبارا ثنائيا لعدم التماثل واختبارا لشبكه المشي.

المقدمة

وينقسم نقص التروية الدماغية إلى ثلاث مراحل مع مؤشرات مختلفه بعد السكتة الدماغية: المرحلة الحاده (في غضون أسبوع واحد) ، ومرحله الانتعاش (1 أسبوع إلى 6 أشهر) ، ومرحله العواقب (أكثر من 6 أشهر). في الوقت الحاضر ، تركز معظم الدراسات علي المرحلة الحاده من نقص التروية الدماغية بسبب تاثيره الكبير والنماذج البحثية متعددة النسبية1،2،3. ومع ذلك ، لا يمكن تجاهل مراحل الانتعاش والعواقب من نقص التروية الدماغية بسبب مضاعفاتها طويلة الأجل من الإعاقات. ولذلك ، فان الغرض من هذه الدراسة هو استكشاف نموذج الحيوانية مستقره وموثوق بها وبسيطه نسبيا للبحث في الانتعاش ومراحل عواقب نقص التروية في الدماغ.

من بين العديد من نماذج نقص ترويه الدماغ التجريبية ، ونحن نستخدم انسداد الشريان الدماغي الأوسط (MCAO) عن طريق الادراج الترباس الموضوع في الشريان الدماغي الأوسط الأيمن (MCA). هذا النموذج يشبه السكتة الدماغية البشرية ، والتي يمكن ان تنتج كميات أكبر احتشاء ، والنتيجة في العديد من الاضطرابات السلوكية المتعلقة السكتة الدماغية ، ويمكن ان تسمح ضخ الدم (ص) عن طريق أزاله الترباس الموضوع4،5،6. ويعتبر MCAO/R أيضا نموذج الذهب معيار الحيوانية من نقص التروية الدماغ7. وعلاوة علي ذلك ، فان شده أصابه الدماغ يعتمد علي القطر وطول الادراج من الترباس الموضوع ، ومده نقص التروية في الدماغ ، ووزن الحيوانية (أكبر الفئران لديها أدمغه أكبر والاوعيه الدماغية أكثر سمكا)8. ولذلك ، عن طريق تغيير نوع الترباس الموضوع ، والوقت احتشاء ، ووزن الفئران ، ويمكن الاطلاع علي نموذج مناسب للانتعاش ومراحل عواقب نقص التروية الدماغية في الفئران MCAO/R. للتحقق من صحة نموذج الفئران ، قمنا باجراء دراسة لمده يوم واحد ، 35 يوم ، و 60 يوم ، و 90 يوما لنموذج MCAO/R باستخدام الاختبارات الخاصة بالوظائف الحسية والحركية (اختبار التباين الثنائي ، وفحص شبكه المشي ، واختبار الروتارود ، واختبار حبل الرفع).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وقد وافق المعهد الوطني للصحة علي إجراءات واستخدام المواد الحيوانية لرعاية واستخدام الماشية المختبرية. يتم تعديل هذا البروتوكول علي وجه التحديد لاختبارات انسداد الشريان الدماغي الأوسط/ضخ (MCAO/R) والوظيفة الحسية الحركية.

1-التصميم التجريبي والتجميع

  1. استخدام الفئران MCAO/R نموذج لشاشه الفئران الدماغ طريقه نموذج الدماغية مع إصابات الدماغ أكثر حده ونسبه نجاح أكبر نموذج باستخدام نقاط لونغا وتلطيخ عقاري.
    1. اجراء التجربة علي الذكور Sprague-Dawley الفئران وزنها 260 − 330 ز التي هي من 7 − 9 أسابيع من العمر. وزن الفئران الحقيقي هو 275 ± 15 ز ل275 ز ، 300 ± 10 ز ل300 ز ، و 320 ± 10 ز ل 320 ز.
    2. استخدام المجموعات السبع التالية (الوزن ، والخيط نوع الترباس ، احتشاء الوقت): المجموعة 1 مع 15 الفئران (275 غ ، 2636 ، 2 ح) ؛ المجموعة 2 مع 15 الفئران (275 غ ، 2636 ، 3 ح) ؛ مجموعه 3 مع 15 فيران (275 [غ], 2838, 2 [ه]); مجموعه 4 مع 15 فيران (275 [غ], 2838, 3 [ه]); مجموعه 5 مع 13 فيران (300 [غ], 3040, 3 [ه]); مجموعه 6 مع 10 فيران (320 [غ], 3040, 3 [ه]); مجموعه 7 مع 13 الفئران (300 غ ، 3043 ، 3 ح).
  2. دراسة حاله استرداد الدماغ من قبل التلطيخ العقاري ، واستخدام الاختبارات الوظيفية الحسية المناسبة للاشاره إلى العجز طويل الأمد في الوظائف من خلال اختبار عدم التماثل الثنائي ، اختبار الشبكة والمشي ، اختبار الروتارود ورفع اختبار الحبل بعد 1 ، 35 ، 60 ، 90 يوما من MCAO/R.
    1. استخدام الذكور Sprague-Dawley الفئران وزنها 300 ± 10 ز التي هي 8 − 9 أسابيع من العمر.
    2. استخدام المجموعات الخمسة التالية: عنصر تحكم (عادي) مع 20 الفئران; 1 يوم مجموعه مع 16 فيران; [ا] 35 يوم مجموعه مع 16 فيران; [ا] 60 يوم مجموعه مع 17 فيران; ومجموعه اليوم 90 مع 19 الفئران.
  3. بعد النتيجة لونغا في الخطوة 1.1 أو الاختبارات الوظيفية حسي في الخطوة 1.2 ، تخدير وقطع راس جميع الفئران لتلطيخ عقاري.

2-إنشاء نموذج أحادي الجانب من طراز MCAO/R في الجرذان9

ملاحظه: اثناء العملية ، استخدم الملقط المجهري برفق لمنع كسر الاوعيه الدموية. تجنب الاضرار التي لحقت الأعصاب والاوعيه الدموية الأخرى في عنق الجرذ عندما يتم عزل السفينة. يجب توخي الحذر لتقديم تقنيه العقيم المناسبة لجميع العمليات الجراحية البقاء علي قيد الحياة. التقنية الموضحة لاحقا في الفيديو يجب ان تمارس من خلال الاجراء بأكمله.

  1. في جميع انحاء الجراحة ، والحفاظ علي درجه حرارة الجسم من الفئران في 37.0 ± 0.5 درجه مئوية في ترموستات الحيوانية الصغيرة. اعداد أربعه 6 سم 5-0 الغرز.
  2. تعيين معدل تدفق الأكسجين من اله التخدير الحيوانية الصغيرة (مع جهاز معالجه الغاز النفايات) في 0.4 − 0.6 L/min وتركيز ايزوفلونان ليكون 5 ٪. ضع الجرذ في اله التخدير.
  3. بعد ان أغمي علي الحيوانية ، وضع الفئران علي طاوله الإصلاح الجراحية. قم بتوصيل فم الجرذ بقناع اله التخدير (يبقي معدل تدفق الأكسجين دون تغيير ؛ اضبط تركيز ايزوفلونان علي 3%). تاكد من ان الحيوانية قد دخلت التخدير العميق من خلال مراقبه عدم وجود توتر اقصي ، وردود الفعل القرنية ، والم.
  4. إصلاح أطرافه للكذب علي طاوله التشغيل مع ضمادات الورق (أو أدوات أخرى).
  5. أزاله معطف الرقبة مع اله حلاقه كهربائيه وتعقيم مع 75 ٪ الكحول (اليود هو أفضل). أصلح فم الجرذ بخطاف
  6. قطع 2 − 3 سم علي طول الشكل الطولي المركزي للرقبة مع مقص العيون.
  7. افصل الشريان السباتي المشترك. فصل العضلات تحت الجلد مع ملقط العيون. استخدام الجرارات محليه الصنع للكشف تماما عن مجال الرؤية. بعد فصل العضلة الاماميه للقصبة الهوائية مع ملقط العيون ، منفصلة علي طول الوتر الأيمن للانسداد الرئوي حتى يصبح الشريان السباتي الشائع مرئيا.
  8. عزل الشريان السباتي المشترك ، الشريان السباتي الخارجي والشريان السباتي الداخلي مع ملقط العيون. Ligate الشريان السباتي المشترك (عقده الصلبة) ، الشريان السباتي الخارجي بعيدا عن نهاية القلب (عقده الصلبة) ، والشريان السباتي الداخلي (عقده فضفاضة) مع الغرز 5-0. خط الشريان السباتي الخارجي بالقرب من نهاية القلب مع الغرز 5-0.
  9. ادراج الترباس مؤشر ترابط. قطع فتحه صغيره في الشريان السباتي الخارجي باستخدام مقص العيون وادراج بلطف الترباس الموضوع. Ligate خياطه الشريان السباتي الخارجي الذي كان في عقده فضفاضة وقطع الشريان السباتي الخارجي.
    1. فك عقده فضفاضة من الشريان السباتي الداخلي والاستمرار في إدخال الترباس الموضوع إلى بداية الشريان الدماغي الأوسط (خياطه ملحوظ). ثم قطع الترباس الموضوع المكشوفة.
  10. بعد الوصول إلى الوقت الدماغي (2-3 h) ، إصلاح كسر الشريان السباتي الخارجي مع ملقط واحد ، وسحب بلطف من الترباس الموضوع مع ميكروملقط آخر. عندما يتم سحب الطرف الامامي من الترباس الموضوع تماما من الشريان السباتي الداخلي ، نربط الشريان السباتي الخارجي الذي اصطف مع الغرز 5-0 ، ومن ثم سحب الترباس الموضوع تماما.
  11. تخفيف الشريان السباتي المشترك ، و جص ~ 50,000 U من مسحوق الصوديوم البنسلين علي سطح الجرح لمنع العدوى. خياطه العضلات تحت الجلد والبشرة مع 4 الغرز.
  12. إعطاء ~ 0.2 مل من المحلول الملحي المعقم إلى الفئران عن طريق الفم باستخدام حقنه 1 مل (SQ-القلم الحقن هو أفضل) لمنع نقص المياه بعد الجراحة بعد وضع الفئران مره أخرى إلى القفص.
  13. اختيار الحيوانية بعد 24 ساعة من ضخه وفقا لنقاط لونغا10. حدد الحيوانية مع درجه لونغا من 1 − 3 لتلطيخ عقاري المقبل في الخطوة 1.1 ، والحيوانية مع درجه لونغا من 2 − 3 نقاط لل 1 ، 35 ، 60 ، 90 أيام الدراسة في الخطوة 1.2.
    ملاحظه: النتيجة لونغا10: 0 النتيجة ، لا العجز العصبي ؛ 1 درجه ، وعدم تمديد المخلب الأيسر ؛ 2 درجه ، وتدور علي اليسار ؛ 3 نقاط ، والسقوط إلى اليسار ؛ 4 درجه ، لا يمكن ان يمشي تلقائيا ولديه وعي الاكتئاب.
  14. تحليل نقاط لونغا بواسطة ANOVA في اتجاه واحد. القيم المعروضة تمثل يعني ± ذاكره P < 0.05 تشير إلى الفرق.

3. الصبغ العقاري

ملاحظه: يجب ان يكون العفن شريحة الدماغ الفئران وشفره قبل تبريده في-20 درجه مئوية الثلاجة قبل استخدامها لمنع التصاق الناجمة عن اختلاف درجه الحرارة الكبيرة. اثناء تلطيخ ، ومنع التصاق بين شرائح الدماغ ولوحه الثقافة ، والتي يمكن ان تؤدي إلى تلطيخ غير كافيه.

  1. تخدير الفئران بواسطة حقن داخل الصفاق من 400 ملغم/كغ من هيدرات الكلورال بعد النتيجة لونغا في الخطوة 1.1 أو الاختبارات الوظيفية حسي في الخطوة 1.2.
  2. قطع راس الجرذ مع مقص الجراحية أو مع جهاز قطع راس الفئران. أزاله الدماغ مع مقص الجراحية وملقط الأرقاء.
  3. وضع الدماغ في الثلاجة في-20 درجه مئوية لمده 30 دقيقه لتسهيل تشريح.
  4. أزاله الدماغ من الثلاجة ووضعه في مرحله ما قبل تبريد الفئران شريحة الدماغ العفن. اقطع الدماغ إلى سته أجزاء متتالية بسماكة 2 مم مع شفره مبرده مسبقا.
  5. وصمه عار المقاطع مع 2 ٪ 5-تريف# ينيل-2H-تيتراازولييوم كلوريد (عقاري) في لوحه ثقافة 6-حسنا.
  6. ثقافة الأقسام ل 30 − 60 [مين] في 37 [ك] في يهز سرير. الوجه المقاطع كل 10 دقيقه حتى منطقه نقص التروية في الدماغ والمنطقة العادية من الواضح الأبيض والأحمر.
  7. خط شرائح الدماغ عموديا في النظام من الخلف إلى الامام من الدماغ. استخدم مسطره للتاكد من ان الطول الإجمالي لكل سطر هو نفسه. التقاط الصور مع الكاميرا الرقمية.
  8. حللت الحجم احتشاء.
    1. ما قبل المعالجة الصورة مع برنامج فوتوشوب
      1. استيراد الصورة باستخدام فوتوشوب CS6. 00:00-00:14
      2. انقر فوق تحديد لتحديد شرائح الدماغ ، انقر فوق تحديد | معكوس. 00:15-00:36
      3. انقر فوق المقدمة لتحديد اسود ثم انقر فوق موافق. 00:37-00:42
      4. اضغط علي Alt + Delete لتعبئة لون الخلفية و CTRL + D للغاء التحديد. 00:43-00:46
      5. انقر فوق ملف | حفظ إلى سطح المكتب. 00:47-01:08
    2. المعالجة المسبقة للصورة مع برنامج صوره Pro Plus.
      1. فتح صوره برو زائد 6.0 البرمجيات واستيراد الصورة. 01:09-01:24
      2. لتعديل العيب ، اضبط السطوع باستخدام أداه تحسين التباين ، بحيث تكون الخلفية سوداء. 01:25-01:37
      3. استخدم أداه الوسيط في عامل التصفية لأزاله التمييزات. 01:38-01:46
    3. حساب اليسار (العادي) منطقه الدماغ مع برنامج صوره برو بلس
      1. حدد اللون باستخدام التجزئة وضبط قيمه H/S/I، بحيث يتم فصل شرائح الدماغ من الخلفية السوداء. 01:47-02:12
      2. العودة إلى العد | الحجم. 02:13-02:16
      3. انقر علي الكونت | تقسيم الكائنات في التحرير لفصل الدماغ عن الخط الأوسط. سوف يميز البرنامج تلقائيا مناطق الدماغ اليمني واليسرى. 02:17-02:49
    4. حساب منطقه الدماغ احتشاء الحق مع صوره برو بلس البرمجيات
      1. تنفيذ الخطوة 3.8.1-3.8.2. 02:50-03:14
      2. اختر العدد | الحجم. 03:15-03:21
      3. انقر علي رسم | دمج أداه الكائنات في تحرير. حدد منطقه نقص التروية يدويا وانقر فوق Count لحساب منطقه نقص التروية. 03:16-05:31
    5. حساب منطقه الدماغ الصحية مع برنامج صوره برو بلس
      1. تنفيذ الخطوة 3.8.1-3.8.2. 05:32-06:44
      2. حدد اللون باستخدام التجزئة وضبط قيمه H/S/I، بحيث يتم فصل الجزء العادي من شرائح الدماغ من الخلفية السوداء. 06:45-07:10
      3. العودة إلى العد | حجم وانقر علي العد لحساب هذه المنطقة. 07:11-07:21
      4. انقر علي تقسيم الكائنات في تحرير لفصل الدماغ من الخط الأوسط. سوف يميز البرنامج تلقائيا مناطق الدماغ اليمني واليسرى. 07:22-08:08
  9. حساب حجم الاحتشاء (٪) واحتشاء ويتقلص حجم (٪):

    احتشاء حجم (٪) = [الحق احتشاء المنطقة/(2 × منطقه الدماغ الأيسر)] x 100.
    احتشاء ويتقلص حجم (٪) = [(منطقه الدماغ اليسرى-حق منطقه الدماغ الصحة)/(2 × منطقه الدماغ الأيسر)] x 100.

    ملاحظه: الدماغ الأيمن هو الجزء المصاب. تم تحليل البيانات بواسطة ANOVA في اتجاه واحد. القيم المعروضة تمثل يعني ± ذاكره P < 0.05 تشير إلى الفرق.

4. تقييم الوظيفة الحسية الحركية

ملاحظه: تم اختيار الفئران (300 g ، 3040 الترباس الموضوع ، 3 ح الدماغ احتشاء الوقت) مع درجه لونغا من 2 − 3 لأداء التجارب الدالة حسي من 1-90 يوما. الحفاظ علي الهدوء وعدم إزعاج الماشية خلال هذه الفترة من الدراسة. تم تحليل البيانات بواسطة ANOVA ثنائيه الاتجاه. القيم المعروضة تمثل يعني ± ذاكره P < 0.05 تشير إلى الفرق.

  1. اختبار عدم التماثل الثنائي11
    1. التفاف الشريط الورق (5 سم طويلة ، 0.8 سم علي نطاق واسع) علي جزء الصافن من كل مخلب من الفئران ثلاث مرات مع الضغط علي قدم المساواة.
    2. بالنسبة لكل جرذ ، سجل عدد المرات التي يتم فيها الاتصال بكل مخلب وأزاله الشريط في 5 دقائق مع الكاميرا ، بما في ذلك مرات مخلب تتاثر وأوقات مخلب المتضررة.
    3. بعد 30 دقيقه ، كرر الخطوات 4-1-1 و 4.1.2 مره أخرى.
    4. حساب متوسط قيمه التحيز الحسي الحركي (٪):
      التحيز sensorimotor (٪) = (غير متاثر مخلب مرات-المتضررة مرات مخلب)/(لم تتاثر مخلب مرات + المتضررة مخلب مرات) × 100
  2. الشبكة--اختبار المشي
    1. وضع الفئران في وسط منصة سطح شبكه مرتفعه (المنطقة: 1 م2؛ الارتفاع: 90 سم) مع فتحات الشبكة من 2.5 سم2.
    2. دفع الوركين الفئران بخفه لتشجيع الفئران لاجتياز سطح الشبكة.
    3. تسجيل عدد من أخطاء القدم التي ادلي بها غير متاثر (اليمين) والمتضررة (اليسار) الأطراف وعدد الخطوة الإجمالي في 1 دقيقه مع الكاميرا.
    4. حساب أوقات الخطا:
      مرات الخطا (%) = [غير متاثر (يمين) أطراف الطرف المصابة (يسار)/العدد الإجمالي للخطوة x 100.
      ملاحظه: تمت أزاله إجمالي عدد الخطوات أدناه بيانات 20 خطوه.
  3. Rotarod اختبار12،13
    1. اعداد الفئران الدورية شريط جهاز التعب (قطر 90 مم) من الفئران باستخدام برنامج دعم لسرعه 13 دوره في الدقيقة علي مدي 5 دقيقه علي الكمبيوتر.
    2. بدء تشغيل برامج الكمبيوتر ووضع الفئران علي درجات rotarod في نفس الوقت.
    3. إنهاء المحاكمة إذا كان الجرذ يسقط قباله درجه أو يبقي المشي لمده 5 دقائق وتسجيل الوقت الدورية.
    4. وقد بقية الفئران لمده 30 دقيقه.
    5. كرر الخطوات 4.3.2 − 4.3.4 مرتين واختر الحد الأقصى للقيمة ليكون آخر وقت للدوران.
  4. رفع اختبار حبل14
    1. وضع أداه حبل رفع (70 سم ارتفاع; الحبل هو 0.2 سم في القطر و 40 سم طويلة) علي المكتب.
    2. يكون الجرذ قبضه الحبل مع الأطراف الاماميه وشنق الجرذ.
    3. تسجيل وقت شنقا وحساب الدرجات.
      ملاحظه: درجه من 3:0 − 2 ق علي الحبل; وهناك درجه من 2:3 − 4 ق علي الحبل. درجه من 1:5 − 6 ثانيه علي الحبل; وهناك نقاط من 0: أكثر من 7 ق علي الحبل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

باستخدام الاجراء المذكور أعلاه لنموذج MCAO/R مع نقاط لونغا وتلطيخ عقاري, علاجات مختلفه من متوسط الوزن (275/300/320 ز), أنواع الترباس (2636/2838/3040/3043; الجدول 1) والأوقات الدماغية (2-3 h) واستخدمت ضخ يوم 1 لشاشه لنموذج نقص التروية الدماغ الأمثل في الفئران. وكانت المعلمات نموذج من 300 g الوزن ، 3040 الموضوع الترباس ، و 3 ساعة الدماغ احتشاء الوقت الأكثر ملاءمة لأكبر احتشاء دماغي ، اعلي درجه لونغا ونسبه نجاح أكبر نموذج. وقد تحسن هذا بشكل ملحوظ علي العلاج التقليدي من 275 g...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

العديد من النماذج وضع الأساليب والمؤشرات السلوكية التي تستخدم بشكل جيد في نقص التروية الدماغية الحاده قد لا يكون لها تغييرات كبيره في مراحل الانتعاش والعواقب من نقص التروية الدماغية16,17. ومع ذلك ، فان عدد المرضي الذين يعانون من نقص ترويه الدماغ في مراحل الانتعاش والعواقب هو أعظم. من الضروري اختيار نموذج الحيوانية مناسبه للتعافي ومراحل السكتة الدماغية من نقص التروية.

نحن نستخدم نموذج MCAO/R في الفئران لفحص الوزن المناسب من الفئران (260...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

وليس لدي المؤلفين ما يفصحون عنه.

شكر وتقدير

وقد حظي هذا العمل بدعم المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (81603315 ، 81603316) ، وخطه مفتاح R & D لمقاطعه جيانغشي في الصين (20171ACH80001) ، ومشاريع التعاون الصناعي والأكاديمي في كليات وجامعات مقاطعه فوجيان في الصين (2018Y41010011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
المجهر التشريحيLeica (ألمانيا)S8أداة التشغيل المجهرية
BladeGellette/قطع أقسام الدماغ
درجة حرارة ثابتة سرير اهتزازTaicang مصنع المعدات التجريبيةTHZ-Cللحفاظ على أقسام الدماغ ملطخة بالتساوي وعند درجة حرارة ثابتة
كاميرا رقميةCanon700Dلأخذ صور TTC تلطيخ
ماكينة حلاقة كهربائيةشنغهاي Yuyan Scientific Instruments Co.، Ltd.3000 #إزالة الشعر من عنق الفئران
ملقط المنبعشنغهاي للأجهزة الطبية المحدودة14 سماستخدام لإزالة الدماغ
Image Pro Plus SoftwareMedia Cybernetics Inc.6.0تحليل حجم الاحتشاء
IsofluraneRWD Life Science217170702غاز التخدير
MicrolegpsShanghai Jinzhong Medical Devices Co.، Ltd.10 سمالتلاعب الدقيق بالأوعية
MicroshearShanghai Jinzhong Medical Devices Co.، Ltd.10 سمالتلاعب الدقيق للأوعية
الدموية ملقطالعيون شنغهاي Jinzhong الأجهزة الطبية المحدودة10 سمالجلد والعضلات المساعد
مقص PphthalmicShanghai Jinzhong Medical Devices Co.، Ltd.10 سماستخدام لقطع جلد العنق
الفئران شريحة الدماغ العفنشنغهاي Yuyan Scientific Instruments Co.، Ltd.400 غرامللقطع القياسي الموحد لأنسجة المخ
جهاز التعب الدوري للفئرانAnhui Zhenghua Biological Instrument and Equipment Co.، Ltd.ZH-300Bلاختبار الوظيفة الحسية الحركية
آلة تخدير الصغيرةشنغهاي Yuyan Scientific Instruments Co.، Ltd.ABM3000آلة تخدير الغاز
ترموستات الصغيرةبكين داميدا التكنولوجيا المحدودة.DM.7-YLS-20Aللحفاظ على درجة حرارة جسم ثابتة أثناء العملية
مقص جراحيشنغهاي للأجهزة الطبية المحدودة16 سماستخدام لقطع الرأس وإزالة الدماغ
خياطةشنغهاي Jinhuan Medical Devices Co.، Ltd.4-0 / 5-0استخدام خيوط الجلد والعضلات / استخدام لربط الأوعية
الدموية ، Thread BoltBeijing Cinontech Co.، Ltd.2636/2838/3040/3043-A4انسداد الشريان الدماغي الأوسط في الفئران
5-ثلاثي فينيل-2H-كلوريد تيترازوليوم (TTC)SigmaLOT #BCBP3272Vكاشف تلطيخ قسم الدماغ
الدموية تشريح

المراجع

  1. Kong, L. L., et al. Neutralization of chemokine-like factor 1, a novel C-C chemokine, protects against focal cerebral ischemia by inhibiting neutrophil infiltration via MAPK pathways in rats. Journal of Neuroinflammation. 11, 112(2014).
  2. Jiang, M., et al. Neuroprotective effects of bilobalide on cerebral ischemia and reperfusion injury are associated with inhibition of pro-inflammatory mediator production and down-regulation of JNK1/2 and p38 MAPK activation. Journal of Neuroinflammation. 11, 167(2014).
  3. Thomas, A., Detilleux, J., Flecknell, P., Sandersen, C. Impact of Stroke Therapy Academic Industry Roundtable (STAIR) Guidelines on Peri-Anesthesia Care for Rat Models of Stroke: A Meta-Analysis Comparing the Years 2005 and 2015. PLoS One. 12, e0170243(2017).
  4. Kumar, A., Aakriti,, Gupta, V. A review on animal models of stroke: An update. Brain Research Bulletin. 122, 35-44 (2016).
  5. Tong, F. C., et al. An enhanced model of middle cerebral artery occlusion in nonhuman primates using an endovascular trapping technique. AJNR Am. Journal of Neuroradiology. 36, 2354-2359 (2015).
  6. Li, F., Omae, T., Fisher, M. Spontaneous hyperthermia and its mechanism in the intraluminal suture middle cerebral artery occlusion model of rats. Stroke. 30, 2464-2470 (1999).
  7. Herson, P. S., Traystman, R. J. Animal models of stroke: translational potential at present and in 2050. Future Neurology. 9, 541-551 (2014).
  8. Abrahám, H., Somogyvári-Vigh, A., Maderdrut, J. L., Vigh, S., Arimura, A. Filament size influences temperature changes and brain damage following middle cerebral artery occlusion in rats. Exp. Brain Res. 142, 131-138 (2002).
  9. Sun, M. N., et al. Coumarin derivatives protect against ischemic brain injury in rats. European Journal of Medicinal Chemistry. 67, 39-53 (2013).
  10. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20, 84-91 (1989).
  11. Smith, E. J., et al. Implantation site and lesion topology determine efficacy of a human neural stem cell line in a rat model of chronic stroke. Stem Cell. 30, 785-796 (2012).
  12. Zhang, S., et al. Protective effects of Forsythia suspense extract with antioxidant and anti-inflammatory properties in a model of rotenone induced neurotoxicity. Neurotoxicology. 52, 72-83 (2016).
  13. Milani, D., et al. Poly-arginine peptides reduce infarct volume in a permanent middle cerebral artery rat stroke model. BMC Neuroscience. 17, 19(2016).
  14. DeGraba, T. J., Ostrow, P., Hanson, S., Grotta, J. C. Motor performance, histologic damage, and calcium influx in rats treated with NBQX after focal ischemia. Journal of Cerebral Blood Flow and Metabolism. 14, 262-268 (1994).
  15. Liu, P., et al. Validation of a preclinical animal model to assess brain recovery after acute stroke. European Journal of Pharmacology. 835, 75-81 (2018).
  16. Zuo, W., et al. IMM-H004 prevents toxicity induced by delayed treatment of tPA in a rat model of focal cerebral ischemia involving PKA-and PI3K-dependent Akt activation. European Journal of Neuroscience. 39, 2107-2118 (2014).
  17. Yang, L., et al. L-3-n-butylphthalide Promotes Neurogenesis and Neuroplasticity in Cerebral Ischemic Rats. CNS Neuroscience & Therapeutics. 21, 733-741 (2015).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

انسداد الشريان الدماغي الأوسطنموذج نقص تروية الدماغ في الجرذاناختبارات الوظائف الحسية الحركيةتحليل تلوين TTCاختبار عدم التماثل الثنائياختبار المشي على الشبكةإدخال مسمار الخيطحجم احتشاء الدماغالوقاية من الجفاف بعد الجراحةتقنية التعقيم الجراحي
نموذج قبل السريرية لتقييم تعافي الدماغ بعد السكتة الدماغية الحاده في الفئران
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.