مقالة منهجية

Sucrose تفضيل واختبارات نقص في بphagia الناجمة عن الجدة في الفئران باستخدام نظام رصد الغذائية الآلي

10.5K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/60953

⸱

مايو 8, 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Charité Center for Internal Medicine and Dermatology, Department for Psychosomatic Medicine, Charité-Universitätsmedizin, Corporate Member of Freie Universität Berlin, Humboldt-Universität zu Berlin and Berlin Institute of Health, 2Department of Internal Medicine, Helios Clinic, 3Department of Psychosomatic Medicine and Psychotherapy, University Hospital Tübingen, 4Department of Quantitative Health Sciences, University of Massachusetts Medical School

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

هنا هو بروتوكول لدراسة الاكتئاب مثل والسلوك anhedonic في الفئران. فهو يجمع بين طريقتين سلوكيتين راسختين، وهما تفضيل السكروز واختبارات نقص الفقار الناجمة عن الجدة، ونظام مراقبة تلقائي للطعام والمداواة السائلة، للتحقيق بشكل غير مباشر في سلوك القوارض باستخدام معلمات بديلة.

الملخص

ويتزايد انتشار الاضطرابات الاكتئابية وانتشارها في جميع أنحاء العالم، مما يؤثر على نحو 322 مليون شخص، مما يؤكد الحاجة إلى إجراء دراسات سلوكية في النماذج الحيوانية. في هذا البروتوكول ، لدراسة الاكتئاب مثل والسلوك anhedonic في الفئران ، وتتضافر تفضيل السكروز المنشأة واختبارات نقص الفاتجيا الناجمة عن الجدة مع نظام رصد الطعام والسيولة الآلي. قبل الاختبار، في نموذج تفضيل السكروز، يتم تدريب الفئران الذكور لمدة 2 أيام على الأقل على استهلاك محلول السكروز بالإضافة إلى مياه الصنبور. خلال الاختبار، تتعرض الفئران مرة أخرى إلى محلول السكروز والماء. يتم تسجيل الاستهلاك كل ثانية بواسطة النظام الآلي. نسبة السكروز إلى إجمالي كمية المياه (نسبة تفضيل السكروز) هي معلمة بديلة لـ anhedonia. في اختبار نقص الفاتولوجيا الناجم عن الجدة ، تخضع الفئران الذكور لفترة تدريب يتعرضون فيها لتناول وجبة خفيفة مستساغة. أثناء التدريب، تظهر القوارض وجبة خفيفة خط أساس مستقرة. في يوم الاختبار، يتم نقل الحيوانات من أقفاص المنزل إلى قفص جديد وفارغ يمثل بيئة غير معروفة جديدة مع إمكانية الوصول إلى وجبة خفيفة مقبولة معروفة. النظام الآلي يسجل إجمالي المداهمة وصغر البنية الأساسية (على سبيل المثال، الكمون إلى الاقتراب من وجبة خفيفة)، وتوفير نظرة ثاقبة في السلوكيات anhedonic والقلق. ويوفر الجمع بين هذه النماذج ونظام قياس آلي معلومات أكثر تفصيلاً، إلى جانب درجة أعلى من الدقة عن طريق الحد من أخطاء القياس. ومع ذلك، فإن الاختبارات استخدام المعلمات البديلة وتصور فقط الاكتئاب و anhedonia بطريقة غير مباشرة.

المقدمة

في المتوسط، 4.4٪ من سكان العالم يتأثرون بالاكتئاب. هذه تمثل 322 مليون شخص في جميع أنحاء العالم، بزيادة 18٪ مقارنة مع عشر سنوات مضت1. وفقا لتقديرات منظمة الصحة العالمية، والاكتئاب سوف يكون في المرتبة الثانية في ترتيب سنوات الحياة الإعاقة المعدلة في 20202. لمعالجة ارتفاع معدل انتشار الاضطرابات العاطفية ووضع استراتيجيات تدخلية جديدة، من الضروري مواصلة دراسة هذا السلوك. قبل وبالإضافة إلى الفحص في البشر، والدراسات الحيوانية ضرورية.

وقد تم إنشاء العديد من النماذج لدراسة مكونات السلوك الاكتئابي (أي، اختبار السباحة القسري، اختبار تعليق الذيل، اختبار تفضيل السكروز، ونابوخا ً الناجم عن الجدة)3،4. يمكن لاختبار تفضيل السكروز (SPT) ونقصف الدم الناجم عن الجدة (NIH) اكتشاف السلوك الشبيه بالاكتئاب في الحيوانات. هذه الاختبارات نفسها لا تحفز حالة من الاكتئاب في القوارض ولكن تصور التغيرات الحادة في السلوك. كل من اللجنة الفرعية و المعاهد القومية للصحة تقييم سمة مميزة للاكتئاب المعروفة باسم anhedonia، وهو فقدان الاهتمام في ما يلي: الأنشطة مكافأة، والأنشطة التي كانت تتمتع مرة واحدة من قبلالفرد 5،وجانب واحد من ظاهرة معقدة من تجهيز والاستجابة لمكافأة6. كلا الاختبارين دراسة الاستجابة لحافز مجزية في شكل الطعام المستساغ. مدى الاستهلاك بمثابة معلمة بديلة ل anhedonia7،8،9.

وتعتمد قيمة الاختبارات التي تحقق في أندونيا اعتماداً شديداً على التحديد الدقيق للاستهلاك الناتج عن القياس الدقيق لوزن المادة. تقليدياً، يتم إجراء هذا القياس يدوياً مرة واحدة قبل وبعد الاختبار. ومع ذلك، هذا عرضة لقياسات خاطئة لعدة أسباب. أولاً ، تميل القوارض إلى اكتناز الطعام ، مما يعني أنها تزيل الطعام دون استهلاكه على الفور ثم تخفيه في مكان آمن. وهكذا، يمكن إدراج هذا الفقدان في الأغذية في حساب الاستهلاك الكلي. ثانياً، سكب الجرذان الطعام والماء، مما يؤدي إلى فقدان الوزن دون استهلاك كل منها. ثالثاً، يحدث فقدان غير مقصود للسائل بسبب مناولة الزجاجات عن طريق إدخالها وإزالتها من الأقفاص.

في نهج للحد من هذه المصادر من الخطأ، ونحن الجمع بين اثنين من الاختبارات المشتركة تقييم anhedonia (SPT3،,4 و9المعاهد القومية للصحة) مع قياس كمية الطعام والماء باستخدام نظام رصد الغذاء والسائل الآلي. هذا الإجراء يسمح بإجراء فحص دقيق لاستهلاك المواد المستساغة، فضلا عن معلومات عن تجربة المتعة في الفئران كميزة من سمات الاكتئاب مثل السلوك. يتم تقليل الأخطاء المذكورة أعلاه المرتبطة بالقياس اليدوي باستخدام أساليب مختلفة، والتي يتم توضيحها لاحقًا بمزيد من التفصيل.

لتوفير معلومات حول البنية المجهرية، نظام رصد المداهم الآلي المستخدم في هذا البروتوكول10 يزن الغذاء (±0.01 غرام) في كل ثانية. وهكذا، يتم توثيق الوزن المستقر بأنه "لا يأكل"، والوزن غير المستقر كـ "الأكل". يتم تعريف "نوبة" على أنها تغيير في الوزن المستقر قبل وبعد الحدث. تتكون الوجبة من نوبة واحدة أو أكثر وتم تعريف الحد الأدنى لحجمها في الفئران على أنه 0.01 جرام. يتم فصل وجبة من وجبة أخرى في الفئران من قبل 15 دقيقة (قيمة موحدة). وهكذا، يعتبر تناول الطعام وجبة واحدة عندما وقعت نوبات في غضون 15 دقيقة وتغيير الوزن يساوي أو أكبر من 0.01 ز. تشمل معلمات الوجبة التي تم تقييمها في هذا البروتوكول مدة الوجبة، والوقت الذي يقضيه في الوجبات، وحجم النوبة، ومدة النوبة، والوقت الذي يقضيه في النوبات، والكمون إلى المباراة الأولى، وعدد النوبات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وقد اتبعت الرعاية الحيوانية والإجراءات التجريبية المبادئ التوجيهية المحددة للأخلاقيات المؤسسية، ووافقت عليها سلطة الدولة للبحوث الحيوانية.

1- تشغيل نظام الرصد الآلي

ملاحظة: عند تشغيل نظام المراقبة الآلي، من المهم توثيق كل إجراء في مربع التعليقات المضمنة في البرنامج مباشرة قبل الإجراء. يجب كتابة الوصف في مربع التعليق، وعن طريق الضغط على حفظ، يتم حفظه مع نقطة زمنية محددة. تكون نقاط الوقت هامة عند تحليل البيانات، حيث أن النظام يسجل بشكل مستمر، ويجب الإشارة إلى فترة الاهتمام للتحليل.

  1. تركيب نظام الرصد الآلي واستخدامه وصيانته
    ملاحظة: يستخدم هذا البروتوكول الذكور البالغين الجرذان Doley Sprague وزنها 250-300 غرام (~ 10 أسابيع من العمر). فمن المستحسن لإيواء الفئران في مجموعات خلال فترة التأقلم. يجب التحكم في الظروف البيئية مع المعلمات التالية: 12 ساعة /12 ساعة دورة داكنة / خفيفة مع أضواء على الساعة 6:00 A.M.، والرطوبة من 45٪-65٪، ودرجة الحرارة من 21-23 درجة مئوية، والوصول إلى المياه والغذاء القوارض الإعلانية. التعامل اليومي تمكن الحيوانات من أن تعتاد على المحققين.
    1. فصل الفئران بحيث يكون لكل قفص الفردية. تأكد من أن كل فأر يبقى منفصلاً أثناء البروتوكول.
    2. املأ أقفاص السكن بأغطية منتظمة بسمك 1-2 سم. هذا المبلغ (المخفض) يقلل من إمكانية تلوث الزانة الدقيقة والنطاط بالانسكاب، وبالتالي تقليل أخطاء القياس. إضافة أنابيب بلاستيكية (على سبيل المثال، قطعة 20 سم طويلة من أنبوب الصرف البلاستيكي مع قطر 8 سم) والخشب القضم والإثراء، مع حذف الأنسجة الورقية للحد من أخطاء القياس.
    3. إعداد الأقفاص لقياس تناول الطعام الصلبة والسائلة الآلي من خلال إرفاق اثنين من يتصاعد قفص مغلق مع microbalances إلى الثقوب حسب الطلب في الجانب الأمامي من الأقفاص. ضع اثنين من النطاط فارغة على يتصاعد القفص، واحد لتناول الطعام واحد للزجاجة.
      ملاحظة: يتم توصيل الزوارق الدقيقة عبر الكابلات إلى نظام تسجيل موصولة إلى جهاز كمبيوتر ويتم تثبيت البرنامج المعني على الكمبيوتر.
    4. لبدء التسجيل، افتح"مراقبة"واضغط على "ابدأ"،ثم اختر مكانًا لحفظ البيانات.
    5. باستخدام المعايرة (اضغط على "معايرة") وظيفة نظام الرصد الآلي، ومعايرة كل توازن عن طريق إزالة النطاط ووضع اثنين من الأوزان قياس مختلفة على يتصاعد القفص مع الأرصدة. قم بذلك على فترات زمنية منتظمة (ينصحأسبوعياً).
    6. ملء واحد النطاط تماما مع تشاو (~ 100 ز) وإزالة قطع تشاو وينهار التي هي صغيرة جدا في الحجم. ملء الماء في زجاجة (~ 100 مل) ووضعها في النطاط الأخرى.
    7. وثيقة موقف الغذاء والماء (على سبيل المثال، التوازن 1: الحيوان الغذاء 1، التوازن 2: الماء 1).
    8. ضع الجرذ في القفص وافتح كل أبواب القفص حتى يأكل ويشرب اأشـاة الـ 100.
      ملاحظة: لقياس دقيق، فمن الضروري للحفاظ على الأرصدة ونطاط يوميا عن طريق تنظيف بلطف مع فرشاة من انسكاب وإزالة فتات الطعام الصغيرة من حاوية الطعام. وهذا سوف يقلل إلى حد كبير من القياس الخاطئ. أغلق جميع البوابات أثناء الصيانة اليومية.
  2. الوصول إلى البيانات بعد التجارب
    1. البحث في مربع التعليقات عن نقاط زمنية بداية ونهاية فترة (مثل التدريب والاختبار) التي تحتاج إلى تحليل.
    2. انقر على "عرض البيانات" على البرنامج لفتح عارض البيانات.
    3. إدراج نقاط زمنية في المربعات أدناه "وقت البدء" و "وقت الانتهاء". اضغط على المربع في الزاوية العليا اليسرى التي تشير إلى التوازن الذي سجل المعلومات.
    4. انقر على"PSC Totals"للوصول إلى بيانات البنية المجهرية. اضغط على الزر"تصدير PSC الجدول" لتصدير البيانات.
      ملاحظة: لمقارنة البنية المجهرية للحيوانات الفردية (على سبيل المثال، غير مجهدة مقابل الإجهاد) باستخدام المراقبة الآلية، يمكن اختيار الحيوانات الفردية في"عارض البيانات" عن طريق الضغط على المربع المناسب في الزاوية العليا اليسرى. المجاميع PSC يظهر فقط المجهرية للحيوان المحدد. لا يمكن إجراء التحليل الإحصائي مع النظام. البيانات تحتاج إلى استخراج في برنامج جدول البيانات / تحليل البرمجيات.

2- تنفيذ اختبار التفضيل من السكروز

  1. إجراء فترة التدريب
    ملاحظة: قبل الاختبار، يجب أن تكون الحيوانات معتادة على توافر زجاجتين للسوائل على النطاط من خلال البوابات، في حين ينبغي توفير الطعام من قمم الأقفاص (يتم عرض الإعداد في الشكل 1). وينبغي أن تستمر هذه الفترة التدريبية لمدة يومين على الأقل. يتم تنفيذها في الأقفاص المنزلية في الغرفة التي تعقد فيها الحيوانات.
    1. أغلق جميع البوابات إزالة زجاجة المياه والغذاء حاوية من الزبالة الدقيقة.
    2. ضع الطعام الذي يزن مسبقًا (~ 50 جرامًا) على الجزء العلوي من القفص ووثق وزنه يوميًا باستخدام توازن منتظم لتقييم الاستهلاك اليومي للغذاء. إعادة التعبئة، إذا لزم الأمر.
    3. تنظيف زجاجة مع المياه واضحة وإعادة ملء مع حوالي 100 مل من الماء. ضعه مرة أخرى على النطاط.
    4. ملء زجاجة نظيفة الثانية مع 100 مل من الطازجة 1% محلول السكروز. ضعه على النطاط
      ملاحظة: ضع علامة على الزجاجات بعناية ووثق مواقعها (على سبيل المثال، التوازن 1: الماء 1، التوازن 2: حل السكروز 1).
    5. افتحوا جميع البوابات توثيق بدء التدريب في نظام الرصد. اترك البوابات مفتوحة لمدة 24 ساعة ، مما يؤدي إلى وصول libitum الإعلاني إلى كلا الزجاجتين. بعد 24 ساعة، أغلق البوابات ووثق نهاية التدريب. ويمكن تقييم البيانات من الفاصل 24 ح باستخدام نظام الرصد الآلي عن طريق إدراج "وقت البدء" و "وقت الانتهاء". الإجراءات هي نفسها عند تقييم فاصل اختبار 1 ساعة.
    6. تنظيف وإعادة ملء زجاجات كل 24 ساعة. إعداد حل السكروز الطازج 1٪ يوميا. تبديل موقف المياه وقنينة محلول السكروز يوميا لتجنب آثار التعود.
      ملاحظة: إجراء التدريب في جميع الحيوانات على الأقل 48 ساعة حتى تصل نسب التفضيل إلى ~1. يتم تقييم نسبة تفضيل السكروز مباشرة بعد التدريب باستخدام "عارض البيانات". وتحسب كنسبة من السكروز المداهمة إلى إجمالي (الماء بالإضافة إلى تناول السكروز).
    7. 24 ساعة قبل الاختبار، وإزالة زجاجة مع محلول السكروز حتى الفئران لديها إمكانية الوصول إلى الطعام القياسية والماء فقط.
    8. إعداد زجاجة واحدة طازجة مليئة مياه الصنبور واحدة مليئة حل السكروز 1٪ ، وكلاهما مع ~ 100 مل.
    9. قبل الاختبار، أغلق جميع البوابات.
    10. إزالة زجاجة مليئة مياه الصنبور من النطاط ووضع زجاجتين طازجة، واحدة مليئة مياه الصنبور واحدة مليئة حل السكروز 1٪، على النطاط.
    11. افتح جميع البوابات، وثق بداية الاختبار في نظام المراقبة. اترك البوابات مفتوحة لمدة 60 دقيقة. أغلق البوابات بعد 60 دقيقة ووثق نهاية الاختبار.
    12. تقييم البيانات (على سبيل المثال، نسبة السكروز/إجمالي كمية السوائل).
      ملاحظة: يمكن تكرار الاختبار عدة مرات مع فترات من التدريب (على الأقل 2 أيام) بينهما.

3- تنفيذ اختبار نقص في بفا الناجم عن الجدة

  1. إجراء فترة التدريب
    ملاحظة: قبل الاختبار، ينصح بفترة تدريب يومية مدتها 30 دقيقة لمدة 5 أيام (يظهر الإعداد في الشكل 2). والهدف من ذلك هو تحقيق خط أساس مستقر من تناول وجبة خفيفة مستساغة قبل التجربة. يتم تنفيذها في الأقفاص المنزلية في الغرفة التي تعقد فيها الحيوانات.
    1. إغلاق جميع البوابات وإزالة النطاط مع تشاو القياسية.
    2. املأ النطاط الطازج مع الوجبة الخفيفة (~ 50 غ). إدراج المفرقعات بعناية في النطاط لمنع الانهيار. وضع النطاط على جبل قفص على رأس الزبالة الدقيقة.
    3. فتح البوابات لمدة 30 دقيقة بحيث الفئران قد الإعلانية libitum الوصول إلى وجبة خفيفة والماء. توثيق بداية التدريب على نظام الرصد.
      ملاحظة: يجب أن يكون الفئران لا الوصول إلى الطعام القياسية خلال فترة التدريب.
    4. إغلاق البوابات بعد 30 دقيقة وتوثيق نهاية التدريب في نظام الرصد. استبدال وجبة خفيفة مع الطعام القياسية.
    5. كرر هذا يوميا حتى 1) ثابت خط الأساس تناول وجبة خفيفة مستساغة يتحقق (على سبيل المثال، 1.5-2.0 ز/30 دقيقة) و 2) المدابل لا تختلف إحصائيا بين أيام التدريب.
  2. إجراء اختبار نقص بphagia الناجم عن الجدة
    1. إعداد فارغة، وتنظيف قفص حديثا دون الفراش أو إثراء تعلق على نظام رصد كمية الغذاء الآلي. وضع النطاط مع زجاجة من مياه الصنبور ونطاط مع وجبة خفيفة مستساغة على يتصاعد القفص.
      ملاحظة: يجب وضع القفص الجديد في نفس الغرفة التي تعقد فيها الفئران ويتم التدريب. أبق البوابات مغلقة
    2. إزالة الفئران من القفص المنزل ومكان في قفص الرواية.
    3. افتح جميع البوابات لمدة 30 دقيقة. توثيق بداية الاختبار في نظام المراقبة.
      ملاحظة: خلال 30 دقيقة من الوصول إلى وجبة خفيفة، يتم تسجيل حجم تناول وجبة خفيفة ومعلمات البنية المجهرية الكامنة (مثل، الكمون إلى وجبة أولى) باستخدام نظام رصد تناول الطعام الآلي.
    4. أغلق البوابات بعد 30 دقيقة ووثق نهاية الاختبار. ضع الفأر مرة أخرى في القفص المنزلي.
      ملاحظة: يمكن تكرار الاختبار عدة مرات مع فترات من التدريب (على الأقل 5 أيام) بينهما.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

21- وجرى استخدام اختبار كولموغوروف - سميرنوف لاختبار توزيع البيانات. واستخدمت اختبارات T عندما توزع البيانات عادة، واستخدم اختبار مان - ويتني - يو، إن لم يكن كذلك. ANOVA في اتجاه واحد تليها اختبار بعد مخصص Tukey تم استخدامه للمقارنة مجموعة متعددة موزعة عادة. تم استخدام ANOVA في اتجاه واحد متبوعاً باختبار المقارنة المتعددة الذي أجراه دان في حالات التوزيع غير العادي. واعتبرت الاختلافات بين المجموعات كبيرة عندما p < 0.05.

وقد أجريت اللجنة الفرعية لمنع التعذيب على الجرذان الساذجة في هذ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وتُعَدّ الأفضلية من السكروز واختبارات نقص في البلعوص التي تُستحث الجدة من التقنيات الراسخة لتقييم أنهدونيا في الفئران. ويسمح الجمع بين هذه المكونات ونظام رصد المداومة الغذائية الآلي بتحليل أكثر تفصيلاً في الجرذان غير المُجَرَّضة ويقلل من القياس الخاطئ.

يتم تقليل حدوث الأخطاء من خلال نهج مختلفة. أولاً، لمعالجة الخطأ الذي يحدث بسبب الانسكاب، فإن الفجوة بين النطاط الغذائي والبوابة تسمح للفتات المتولدة أثناء القضم بالسقوط على الصينية المتكاملة. من خلال جمع هذا الانسكاب على الأقفاص يتصاعد، يتم تضمي...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

أ. س. هو مستشار لـ برلين و R، بوهرنجر إنغلهايم، تاكيدا وشوابي. ولا يوجد أي تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

وقد تم دعم هذا العمل من خلال تمويل من مؤسسة البحوث الألمانية (STE 1765/3-2) وتمويل جامعة شاريتيه (UFF 89/441-176، A.S.).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
التجميع LH قفص جبل - RAT-FOOD - يشمل حامل قفص غير قابل للصدأ ، قادوس ، مانع ، اقترانResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، نيو برونزويك ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةBCMPRF01
الجمعية LH Cage Mount unplugged - RAT - FOOD يشتمل على حامل قفص من الفولاذ المقاوم للصدأ ، قادوس ، مانع ، محول غير متصل ، اقترانResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، نيو برونزويك ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةBCMUPRF01
قفص ث / 2 فتحات - RAT - قفص معدل costum - يشمل قفص أعلى وزجاجة ماء قياسيةResearch Diets، Inc.، Jules Lane، نيو برونزويك، نيوجيرسي، الولايات المتحدة الأمريكيةBCR02سكن واحد
جمع البيانات كمبيوتر محمول ويندوز - تم تكوينه مع BioDAQ SoftwareResearch Diets، Inc.، Jules Lane، نيو برونزويك، نيوجيرسي، الولايات المتحدة الأمريكيةBLT003
تخصيب (أنابيب بلاستيكية، قضم الخشب)موزعة من قبل منشأة
HoneyMaid Graham Cracker CrumbsNabisco ، East Hanover ، NJ ، الولايات المتحدة الأمريكيةASIN:وجبة خفيفة مستساغة لاختبار المعاهد الوطنية للصحة
منخفضة الاهتزاز رف بوليمرResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، نيو برونزويك ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةBRACKR
ذكر فئران Sprague DawleyEnvigoرمز الطلب: 002
موديل # 2210 32x منفذ وحدة تحكم مركزية BioDAQ - تتضمن الكابلات ومجموعة المعايرةResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، نيو برونزويك ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةBCC32_03
وحدة التحكم في الاستشعار المحيطي - تشمل CableResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، New Brunswick ، NJ ، الولايات المتحدة الأمريكيةBPSC01
SigmaStat 3.1Systat Software ، سان خوسيه ، كاليفورنيا ، الولايات المتحدة الأمريكيةالتحليل الإحصائي
مانع الفولاذ المقاوم للصدأResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، نيو برونزويك ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةBBLKR
النظام الغذائي القياسي للقوارض مع 10 كيلو كالوري ٪ من الدهونResearch Diets، Inc. ، Jules Lane ، نيو برونزويك ، نيوجيرسي ، الولايات المتحدة الأمريكيةD12450B
مسحوق السكروزRoth4621.1ل SPT
B01COWTA98

المراجع

  1. World Health Organization. Depression. , Available from: https://www.who.int/health-topics/depression (2018).
  2. Reddy, M. S. Depression: the disorder and the burden. Indian Journal of Psychological Medicine. 32 (1), 1-2 (2010).
  3. Cryan, J. F., Mombereau, C. In search of a depressed mouse: utility of models for studying depression-related behavior in genetically modified mice. Molecular Psychiatry. 9 (4), 326-357 (2004).
  4. Overstreet, D. H. Modeling depression in animal models. Methods in Molecular Biology. 829, 125-144 (2012).
  5. Moreau, J. -L. Simulating the anhedonia symptom of depression in animals. Dialogues in Clinical Neuroscience. 4 (4), 351-360 (2002).
  6. Scheggi, S., De Montis, M. G., Gambarana, C. Making Sense of Rodent Models of Anhedonia. The International Journal of Neuropsychopharmacology. 21 (11), 1049-1065 (2018).
  7. Liu, M. Y., et al. Sucrose preference test for measurement of stress-induced anhedonia in mice. Nature Protocol. 13 (7), 1686-1698 (2018).
  8. Serchov, T., van Calker, D., Biber, K. Sucrose Preference Test to Measure Anhedonic Behaviour in Mice. Bio-Protocol. 6 (19), 1958(2016).
  9. Dulawa, S. C., Hen, R. Recent advances in animal models of chronic antidepressant effects: the novelty-induced hypophagia test. Neuroscience and Biobehavioral Reviews. 29 (4-5), 771-783 (2005).
  10. Teuffel, P., et al. Treatment with the ghrelin-O-acyltransferase (GOAT) inhibitor GO-CoA-Tat reduces food intake by reducing meal frequency in rats. Journal of Physiology and Pharmacology. 66 (4), 493-503 (2015).
  11. Binder, E. B., Nemeroff, C. B. The CRF system, stress, depression and anxiety-insights from human genetic studies. Molecular Psychiatry. 15 (6), 574-588 (2010).
  12. Marques, M. D., Waterhouse, J. M. Masking and the evolution of circadian rhythmicity. Chronobiology International. 11 (3), 146-155 (1994).
  13. Valentinuzzi, V. S., et al. Locomotor response to an open field during C57BL/6J active and inactive phases: differences dependent on conditions of illumination. Physiology and Behavior. 69 (3), 269-275 (2000).
  14. Madiha, S., Haider, S. Curcumin restores rotenone induced depressive-like symptoms in animal model of neurotoxicity: assessment by social interaction test and sucrose preference test. Metabolic Brain Disorder. 34 (1), 297-308 (2019).
  15. Strouthes, A. Thirst and saccharin preference in rats. Physiology and Behavior. 6 (4), 287-292 (1971).
  16. Inui-Yamamoto, C., et al. Taste preference changes throughout different life stages in male rats. PloS One. 12 (7), 0181650(2017).
  17. Commons, K. G., Cholanians, A. B., Babb, J. A., Ehlinger, D. G. The Rodent Forced Swim Test Measures Stress-Coping Strategy, Not Depression-like Behavior. ACS Chemical Neuroscience. 8 (5), 955-960 (2017).
  18. Slattery, D. A., Cryan, J. F. Using the rat forced swim test to assess antidepressant-like activity in rodents. Nature Protocols. 7 (6), 1009-1014 (2012).
  19. Cryan, J. F., Mombereau, C., Vassout, A. The tail suspension test as a model for assessing antidepressant activity: review of pharmacological and genetic studies in mice. Neuroscience and Biobehavioral Review. 29 (4-5), 571-625 (2005).
  20. Can, A., et al. The tail suspension test. Journal of Visualized Experiments. (59), e3769(2012).
  21. Chadman, K. K., Yang, M., Crawley, J. N. Criteria for validating mouse models of psychiatric diseases. American Journal of Medical Genetics B Neuropsychiatric Genetics. 150 (1), 1-11 (2009).
  22. Powell, T. R., Fernandes, C., Schalkwyk, L. C. Depression-Related Behavioral Tests. Current Protocols in Mouse Biology. 2 (2), 119-127 (2012).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة