مقالة منهجية

اختبار وتحليل الغضاريف المفصلية ضد المعادن للزرع

3.7K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/61304

⸱

مايو 14, 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Faculty of Health and Medicine, Department for Health Sciences, Medicine and Research, Center for Regenerative Medicine, Danube University Krems, 2Department of Orthopedics and Traumatology, LK Baden-Mödling-Hainburg, 3AC2T research GmbH

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول إعداد واختبارات الكائنات الحيوية وتحليل اسطوانات الـ osteochondral التي تنزلق ضد مواد الزرع المعدنية. والتدابير الناتجة المدرجة في هذا البروتوكول هي النشاط الأيضي والتعبير الجيني وعلم الأنسجة.

الملخص

قد يتم علاج عيوب Osteochondral في المرضى في منتصف العمر مع زرع معدنية التركيز. وضعت لأول مرة لعيوب في مفصل الركبة، يزرع متاحة الآن للكتف والورك والكاحل وأول مفصل مشط القدم. في حين توفير الحد من الألم وتحسين السريرية, ويلاحظ التغيرات التنكسية التدريجي للغضروف معارضة في كثير من المرضى. والآليات المؤدية إلى هذا الضرر غير مفهومة تماما. يصف هذا البروتوكول تجربة مائية لمحاكاة الاقتران معدن على الغضاريف وتحليل شامل للغضاريف المفصلية. يتم اختبار مواد زرع المعادن ضد اسطوانات أوستيوكوندرال البقرية كنموذج للغضاريف المفصلية البشرية. من خلال تطبيق الأحمال المختلفة وسرعات الانزلاق ، يمكن تقليد ظروف التحميل الفسيولوجية. لتقديم تحليل شامل للآثار على الغضروف المفصلي ، علم الأنسجة ، والنشاط الأيضي وتحليل التعبير الجيني ويرد في هذا البروتوكول. الميزة الرئيسية للاختبار tribological هو أن المعلمات التحميل يمكن تعديلها بحرية لمحاكاة في ظروف الجسم الحي. وعلاوة على ذلك، قد تستخدم حلول اختبار مختلفة للتحقيق في تأثير تزييت أو العوامل الموالية للالتهابات. باستخدام تحليل التعبير الجيني للجينات الخاصة بالغضاريف والجينات تقويضية، قد يتم الكشف عن التغيرات المبكرة في عملية التمثيل الغذائي للتشندردروسيات المفصلية استجابة للتحميل الميكانيكي.

المقدمة

علاج عيوب العظام يتطلب يتطلب جراحة في كثير من الحالات. للآفات osteochondral البؤري في المرضى في منتصف العمر، يزرع المعدنية البؤري خيار قابل للتطبيق، وخاصة بعد فشل العلاج الأولي، مثل تحفيز نخاع العظام (BMS) أو زرع كثرومسيات ذاتية (ACI)1. يمكن اعتبار الاستبدال الجزئي للسطح إجراءات الإنقاذ التي يمكن أن تقلل من الألم وتحسين نطاق الحركة2. وعادة ما تتكون هذه يزرع من سبائك CoCrMo وتتوفر في مختلف الأحجام وتكوينات الإزاحة لتتناسب مع التشريح العادي3. في حين وضعت في البداية لعيوب على مُوسَّع الفخذ في الركبة، هذه الغرسات متاحة الآن وفي الاستخدام للورك والكاحل والكتف والمرفق4،5،6. للحصول على نتيجة مرضية، من المهم تقييم محاذاة المفاصل الميكانيكية وحالة الغضروف المنافس. وعلاوة على ذلك، وقد ثبت زرع الصحيح دون نتوء من الزرع لتكون أساسية7.

أظهرت الدراسات السريرية نتائج ممتازة على المدى القصير من حيث الحد من الألم وتحسين وظيفة في المرضى في منتصف العمر لمختلف المواقع5,6,8. مقارنة مع زرع allograft، زرع المعادن البؤري تسمح تحمل الوزن المبكر. ومع ذلك، أظهر الغضروف المفصلي المتقابل تآكل متسارع في عدد كبير من المرضى9،10. وبالتالي، حتى مع وضع السليم، في كثير من الحالات انحطاط الغضروف الأصلي يبدو لا مفر منه، في حين أن الآليات الأساسية لا تزال غير واضحة. وقد لوحظت تغيرات تنكسية مماثلة بعد رأب الهرمل ثنائي القطب من الورك11 ويتم زيادتها مع النشاط والتحميل12.

التجارب تريبولوجي توفر إمكانية لدراسة مثل هذه الاقترانات في المختبر ومحاكاة حالات التحميل المختلفة التي تحدث في ظل الظروف الفسيولوجية13. استخدام دبابيس osteochondral يقدم نموذجا هندسيا بسيطة للتحقيق في tribology من الغضاريف المفصلية الانزلاق ضد الغضروف الأصلي أو أي مادة زرع14 ويمكن استخدامها كذلك في نماذج المحاكاة المشتركة15كله . الاقترانات معدنية على الغضاريف تظهر تآكل الغضاريف المتسارعة ، اضطراب المصفوفة خارج الخلية ، وانخفاض صلاحية الخلية في المنطقة السطحية مقارنة مع غضروف على الغضاريف الاقتران16. الأضرار التي لحقت الغضروف وقعت أساسا في شكل delamination بين المناطق السطحية والوسطى17. ومع ذلك، فإن الآليات المؤدية إلى انحطاط الغضروف غير مفهومة تماما. يوفر هذا البروتوكول تحليلا شاملا للنشاط البيولوجي للغضاريف المفصلية. من خلال تحديد النشاط الأيضي ومستويات التعبير الجيني للجينات تقويضي, يمكن تحديد المؤشرات المبكرة لتحلل الغضاريف. وميزة التجارب في المختبر tribological هو أن المعلمات التحميل يمكن تعديلها لتقليد مختلف ظروف التحميل.

ومن ثم، فإن البروتوكول التالي مناسب لمحاكاة الاقتران معدن على الغضاريف، وهو ما يمثل نموذجاً تجريبياً لرأب الهرة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. إعداد اسطوانات معدنية

  1. تحليل قضبان الكوبالت-الكروم-الموليبدينوم (CoCrMo) الأسطوانية التي تفي بالمواصفات القياسية للزرعات الجراحية لتركيبها الكيميائي باستخدام المجهر الإلكتروني المسح (SEM) مع التحليل الطيفي للأشعة السينية التشتت في بروتوكول الشركة المصنعة لتأكيد القيم المقدمة.
    ملاحظة: التركيبة الأساسية لسبائك CoCrMo المستخدمة في هذه التجربة هي 65٪ Co و 28٪ Cr و 5٪ Mo و 2٪ أخرى.
  2. الرطب طحن العينات مع كربيد السيليكون ورقة طحن بدءا من حجم الحبوب من 500. استخدام ورقة طحن في زيادة النظام تصل إلى حجم الحبوب من 4000.
  3. تلميع الأسطوانة مع 3 ميكرومتر و 1 ميكرومتر معجون لتحقيق خشونة السطح التي هي ضمن مستوى التسامح من متطلبات إنهاء السطح للزرعات الجراحية المعدنية (ISO 5832-12:2019) وزرع استبدال المفاصل الكلي والجزئي (ISO 21534:2007).
    ملاحظة: يتم تحديد متوسط خشونة السطح باستخدام مجهر confocal.
  4. قطع قضبان CoCrMo (Ø من 6 مم) إلى اسطوانات بطول 10 ملم.

2. حصاد اسطوانات osteochondral

  1. استخدام البقر خنق المفاصل من الحيوانات الناضجة الهيكل العظمي (الذين تتراوح أعمارهم بين 18-24 شهرا في وقت التضحية) والحفاظ عليها الواردة وتبريد حتى تشريح داخل 24 ساعة بعد التضحية.
    ملاحظة: يتم شراء المفاصل من الجزار المحلي. يبقى المفصل مغلقاً حتى التشريح.
  2. لحصاد المقابس الاسطولية الأسطوانية في ظل ظروف اتعفن، وتطهير الركبة وإجراء مفصلية وفضح مفصلي مُتوسط.
    ملاحظة: يجب إجراء التشريح بحذر بعدم إتلاف السطح المفصلي.
  3. فحص السطح المفصلي للأضرار العيانية.
    ملاحظة: تجاهل العينة إذا كان الغضروف يفتقر إلى مظهره الأبيض والناعم واللمع أو إذا كان هناك تقرحات أو شقوق أو عيوب أكبر.
  4. محاذاة عمودي أنبوب القطع إلى السطح المفصلي لمنطقة تحمل الوزن ودفع الجهاز إلى الغضروف والعظام تحت البطن عن طريق السكتات الدماغية شركة مع مطرقة. في عمق الاختراق 15 مم، قم بتحريف الجهاز باتجاه عقارب الساعة بحركة مفاجئة.
  5. إزالة الجهاز، وإدراج مقبض الباب الأبيض والمسمار في حتى نهاية أسفل المكونات osteochondral مرئية.
  6. وضع علامة على الاتجاه الأمامي للعينات مع علامة معقمة لترتيب اسطوانة osteochondral وفقا لذلك أثناء الاختبار.
    ملاحظة: تسهل شبكة الكولاجين ثلاثية الأبعاد وهندستها المعمارية المعقدة الخصائص الميكانيكية الفريدة للغضاريف المفصلية وينبغي النظر فيها في اتجاه العينات.
  7. شطف العينة مع المالحة الفوسفات المخزنة (PBS) لغسل الدم والأنسجة الدهنية.
  8. كرر الخطوات المذكورة أعلاه لحصاد العدد المطلوب من المقابس osteochondral (قطرها 8 مم، 15 مم طول).
    ملاحظة: عادة، يمكن حصاد 9 إلى 12 اسطوانة أوستيوشوندال من منطقة تحمل الوزن على كوندل الفخذ المتوسط.
  9. ضع العينات في وسط النسر المعدل في دولبيككو الذي يحتوي على مصل الأبقار الجنيني بنسبة 10٪ ، والمكملة بالمضادات الحيوية (البنسلين 200 U/mL ؛ streptomycin 0.2 mg/mL) و amphotericin B 2.5 ميكروغرام / مل وتخزينها عند 4 درجات مئوية حتى الاختبار للحفاظ على الجدوى.
  10. تحليل التحكم في سدادات osteochondral مباشرة بعد الحصاد لتحديد قيم خط الأساس (انظر قسم التحليل).

3. اختبار تريبولوجي

  1. إجراء التجارب باستخدام tribometer الترددية المتاحة تجاريا مع تكوين اسطوانة على لوحة. متطلبات الجهاز هي تحميل عمودي والتحميل قابل للتعديل وسرعة انزلاق. وعلاوة على ذلك، تمكن الخلية السائلة من إجراء الاختبارات في محلول التشحيم.
  2. تحديد ضغط الاتصال في نظام CoCrMo-on-غضروف باستخدام فيلم قياس الضغط. ضع فيلم قياس الضغط على الواجهة وقم بتطبيق الحمل الثابت لمدة 30 s لتحديد ضغط الاتصال الأولي وحجم الاتصال والشكل. نظراً لعمّق الاسطوانة المعدنية والغضاريف المفصلية، فإن منطقة التلامس الأولية لها شكل بيضاوي الشكل في هذا التكوين.
    ملاحظة: يتفاعل فيلم قياس الضغط مع الضغط المطبق الذي يظهر تلونًا أحمر للمناطق التي يتم فيها الوصول إلى ضغط العتبة أو تجاوزه. بالنسبة لـ 1 N من الحمل، تم تحديد ضغط الاتصال حول 2 MPa بالمقارنة البصرية مع ضغوط الاتصال المحددة.
  3. إصلاح اسطوانات osteochondral على حامل عينة أسفل مع وضع علامة الانحياز مع اتجاه انزلاق, وجبل اسطوانات CoCrMo على خلية الحمل العلوي.
  4. إضافة حل الاختبار (برنامج تلفزيوني مع 3 غرام / ل حمض الهيالورونيك) في الخلية السائلة التي تؤدي إلى غمر اسطوانة osteochondral وتغطية المعادن الغضروف انزلاق واجهة.
  5. تعيين معلمات الاختبار (القوة العادية المقررة، السكتة الدماغية وسرعة الانزلاق)، والتي يتم تطبيقها ثم والحفاظ عليها طوال الاختبار.
    ملاحظة: يجب تعيين طول حد حركة تبادلية وفقاً لمنطقة التلامس لإنشاء منطقة اتصال ترحيل (MCA). بالنسبة للمقابس التي يبلغ قطرها 8 مم، تسمح السكتة الدماغية 2 مم بالإماهة الكافية للغضاريف.
  6. بدء الانزلاق المتبادل من اسطوانة CoCrMo ضد الغضروف المفصلي مغمورة في حل التشحيم مع معلمات التحميل مجموعة.
  7. مراقبة معامل الاحتكاك (COF) أثناء التجارب.
    ملاحظة: يتم تقييم COF تلقائياً ولكن يمكن حسابها باستخدام المعادلة μ = F/W (μ - معامل الاحتكاك؛ F - قوة الاحتكاك؛ W - الحمل العادي المطبق من قبل النظام).
  8. إنهاء التجربة بعد فترة الاختبار المطلوبة.
  9. إزالة المكونات osteochondral من حامل العينة، وشطفه مع برنامج تلفزيوني وتخزينها في المتوسط حتى مزيد من التحليل البيولوجي (انظر أدناه).
  10. غمر عينات التحكم في محلول الاختبار في درجة حرارة الغرفة طوال مدة الاختبار، وتحلل مع العينات التي تعرضت للتحميل الميكانيكي.

4- التحليل

ملاحظة: يتم تحليل اسطوانة Osteochondral للنشاط الأيضي والتعبير الجيني للتحقيق في النشاط البيولوجي; يتم تنفيذ علم الأنسجة لدراسة سلامة سطح الغضاريف والمصفوفة الأساسية.

  1. علم الأنسجة
    1. للتحليل النسيجي، غمر المقابس osteochondral في 4% محلول الفورمالديهايد المخزنة في درجة حرارة الغرفة حتى مزيد من المعالجة.
    2. شطف العينات مع برنامج تلفزيوني ووضعها في وعاء من البلاستيك.
    3. إضافة فائض من decalcifier جاهزة للاستخدام-الحل بحيث يتم تغطية كافة العينات.
    4. تطبيق التحريض المستمر لمدة 4 أسابيع للتكديس الكامل.
    5. بعد إزالة التحلل، قم بتضمين العينات في الجليكولات والراتنجات القابلة للذوبان في الماء وتخزينها عند −80 درجة مئوية.
    6. الحصول على 6 ميكرومتر المقاطع عن طريق cryosectioning عرضية إلى منطقة التماس.
    7. في وقت لاحق، وإعداد العينات لSafranin O تلطيخ و Fastgreen مكافحة الالطياد باستخدام بروتوكول الشركة المصنعة.
    8. التقاط الصور النسيجية باستخدام المجهر وعملية باستخدام برامج معالجة التصوير.
  2. النشاط الأيضي
    ملاحظة: يتم التحقيق في النشاط الأيضي للتشندروسيات في الغضروف المفصلي مع مقايسة سمية الجسم الحية السابقة المستندة إلى XTT.
    1. شطف المكونات osteochondral باستخدام برنامج تلفزيوني ووضع العينة في طبق بيتري.
    2. ضع لوحة 24-well على مقياس وصفر المقياس.
    3. قطع الغضروف من الكسب غير المشروع osteochondral مع مشرط في قطعة واحدة.
    4. اقطع الغضروف في قطعتين متساويتين بحيث يتم توزيع منطقة التماس بالتساوي على كل من قطع الغضاريف والقطع المفرومة من نصف إلى 1 مم³. ويستخدم النصف الثاني لتحليل التعبير الجيني.
    5. نقل الغضروف المفروم إلى بئر واحد من لوحة 24-جيدا المعدة وتحديد وزن الأنسجة.
    6. كرر الخطوات المذكورة أعلاه لكل عينة وإضافة 1 مل من متوسطة النمو لكل بئر من لوحة.
    7. أضف حل XTT (490 ميكرولتر من كاشف XTT و10 ميكرولتر من كاشف التنشيط) وفقًا لتعليمات الشركة المصنعة وخلطها.
    8. احتضان لوحة في 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 ل4 ساعات.
    9. بعد الحضانة، وإزالة عظمى ونقله إلى أنبوب 5 مل.
    10. استخراج المنتج tetrazolium بإضافة 0.5 مل من ثنائي الفينيل السلفوكسي (DMSO) إلى أنسجة الغضروف في لوحة 24-جيدا وتطبيق الانفعالات المستمرة لمدة 1 ساعة في درجة حرارة الغرفة.
    11. إزالة حل DMSO وتجميعه مع الحل XTT التي تم جمعها مسبقاً.
    12. نقل 100 ميكرولتر من العينة في ثلاث ية في لوحة 96 جيدا على قارئ لوحة وقياس امتصاص في طول موجة من 492 نانومتر والطول الموجي المرجعي في 690 نانومتر.
    13. تطبيع قيم الامتصاص الناتجة إلى الوزن الرطب لكل عينة وإجراء التحليل باستخدام البرامج.
  3. تحليل التعبير الجيني
    1. عزل الحمض النووي الريبي
      ملاحظة: يتم عزل RNA باستخدام مجموعة تجارية(جدول المواد)وفقًا للتعليمات التي تقدمها الشركة المصنعة مع تعديلات صغيرة.
      1. المفروم النصف الثاني من أنسجة الغضاريف التي تم الحصول عليها من المكونات osteochondral إلى قطع صغيرة.
      2. نقلها إلى أنبوب يحتوي على خرز السيراميك و 300 ميكرولتر من Lysis Buffer (التي تحتوي على 1٪ β-mercaptoethanol).
        ملاحظة: يمكن تجميد العينات في النيتروجين السائل حتى مزيد من المعالجة.
      3. ذوبان العينات لمدة 2 دقيقة واستخدام lyser التجارية لتجانس الأنسجة. تطبيق 6500 دورة في الدقيقة لمدة 20 s (خطوة التجانس) أربع مرات مع مرحلة تبريد 2 دقيقة بعد كل تشغيل (في 4 درجة مئوية باستخدام جهاز التبريد lyser التجارية) لتعطيل تماما الأنسجة.
      4. إضافة 20 ميكرولتر من البروتينات K و 580 ميكرولتر من المياه الخالية من RNase إلى كل أنبوب واحتضانها في 55 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
      5. الطرد المركزي العينات لمدة 3 دقائق في 10،000 س ز ونقل عظمى إلى أنبوب 1.5 مل.
      6. إضافة 0.5 وحدات تخزين من 90٪ الإيثانول إلى كل أنبوب ومزيج.
      7. نقل 700 ميكرولتر من العينة إلى عمود ملزم للرنا يوضع في أنبوب جمع 2 مل وطاردة مركزية عند 8000 x غم لمدة 15 s.
      8. تجاهل تدفق من خلال وتكرار خطوة الطرد المركزي لlysate كاملة.
      9. إضافة 350 ميكرولتر من العازلة RW1 إلى العمود، والطرد المركزي في 8000 س ز لمدة 15ثان، وتجاهل تدفق من خلال.
      10. مزيج 10 ميكرولتر من محلول الأسهم DNase و 70 ميكرولتر من العازلة RDD. إضافة الحل إلى غشاء تنقية RNA واحتضانه في درجة حرارة الغرفة لمدة 15 دقيقة.
      11. إضافة 350 ميكرولتر من العازلة RW1 إلى العمود والطرد المركزي في 8000 x ز لمدة 15 s. تجاهل التدفق من خلال.
      12. إضافة 500 ميكرولتر من RPE العازلة والطرد المركزي في 8000 س ز لمدة 15 s. تجاهل التدفق من خلال.
      13. إضافة 500 μL من RPE العازلة لعمود تنقية الجيش الملكي النيبالي والطرد المركزي في 8000 × ز لمدة 2 دقيقة.
      14. ضع العمود في أنبوب جمع 1.5 مل وأضف 30 ميكرولتر من المياه الخالية من RNase. جهاز طرد مركزي في 8000 × ز لمدة 1 دقيقة.
      15. تخزين الحمض النووي الريبي المعزول في -80 درجة مئوية حتى التوليف cDNA.
    2. cDNA التوليف
      ملاحظة: لتجميع الحمض النووي التكميلي (cDNA) من رسول RNA (مررنا) تم استخدام مجموعة تجارية (جدول المواد). تمت إضافة RNA من bacteriophage MS2 لتثبيت الحمض النووي الريبي المعزول أثناء توليف cDNA.
      1. ذوبان وخلط الكواشف. يظهر تكوين رد فعل واحد في الجدول 1.
      2. إضافة 16 ميكرولتر من عينة RNA إلى وحدة التخزين لتفاعل واحد (14 ميكرولتر).
      3. تنفيذ التوليف cDNA في دورة حرارية باستخدام المعلمات التالية: 10 دقيقة في 25 درجة مئوية (التمهيدي الصلب)، 60 دقيقة في 50 درجة مئوية (تركيب الحمض النووي)، 5 دقائق في 85 درجة مئوية (denaturation) و 5 دقائق في 20 درجة مئوية (مرحلة التبريد).
      4. تخزين cDNA في -20 درجة مئوية حتى في الوقت الحقيقي تفاعل البوليميراز الكمي سلسلة (RT-qPCR).
    3. RT-qPCR
      ملاحظة: بالنسبة لـ RT-qPCR لعينات الأبقار، تم تصميم ال التمهيديات والمسبارات باستخدام برنامج qPCR التجاري في الوقت الحقيقي (على سبيل المثال، IDT) للجينات GAPDH (الجليسرالدهيد 3-الفوسفات dehydrogenase)، COL2A1 (نوع الكولاجين 2)، ACAN (Aggrecan)، COL1A1 (نوع الكولاجين 1)، MMP-1 (ماتريكس ميتالوبروتينيز-1)، و MMP-13 (ماتريكس ميتالوبروتيناز-13). تم توفير الزواريع البقرية والمسبارات المزدوجة التي تم إخمادها من قبل IDT. يتم عرض الكواشف المستخدمة في رد فعل واحد لتقييم الكفاءة والتعبير الجيني في الجدول 2.
      1. الاستغناء عن المزيج الرئيسي من رد فعل واحد (9 ميكرولتر) إلى كل بئر من 96 جيدا PCR لوحة وإضافة 1 ميكرولتر من cDNA إلى كل رد فعل. إجراء اختبارات لكل عينة في ثلاث اُلَكَات.
      2. أغلق صفيحة PCR باستخدام زيت الختم والطرد المركزي عند 877 x g لمدة 10 دقائق عند 4 درجات مئوية.
      3. تنفيذ RT-qPCR باستخدام دورة حرارية دقيقة مع البروتوكول التالي: 95 درجة مئوية لمدة 10 دقائق، 45 دورة من التضخيم (95 درجة مئوية لمدة 10 ق، التول لمدة 30 s، cDNA التوليف)، و 37 درجة مئوية لمدة 30 s.
        ملاحظة: يلزم وجود درجات حرارة محددة للحنين لكل التمهيدي.
      4. استخدم GAPDH مع الجينات المستهدفة لتأكيد الكفاءة.
      5. استخدم البرنامج المقدم لحساب كفاءة كل جين.
      6. تطبيع قيم عتبة الدورة (CT) إلى التعبير عن الجينات المرجعية GAPDH واستخدام طريقة ΔCT لتحديد كمي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يجب تأكيد منطقة الاتصال وضغط الاتصال باستخدام فيلم قياس الضغط (الشكل 1). يمكن تأكيد حالة التحميل الفسيولوجية من خلال مقارنة مع بصمات مرجعية لضغطات الاتصال المحددة. أثناء الاختبار ، يتم مراقبة معامل الاحتكاك باستمرار. مع منطقة الاتصال المهاجرة، يمكن الحفاظ على معامل الاحتكاك المنخفض لمدة 1 ساعة على الأقل(الشكل 2). باستخدام Safranin O تلطيخ تكوين المصفوفة خارج الخلية وهيكل يمكن تحديدها (الشكل 3). كثافة تلطيخ Safranin O يتناسب مع محتوى...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تمثل الغرسات المعدنية البؤرية إجراء إنقاذ لعيوب العظام، خاصة في المرضى في منتصف العمر وبعد فشل العلاج الأولي. على الرغم من أن الدراسات السريرية أظهرت نتائج واعدة على المدى القصير، واحدة لاحظت مضاعفات هو الضرر الذي لحق بالغضروف، الأصليمعارضة 10. تشير الدراسات التشريحية والميكانيكية الحيوية إلى وجود أدلة واضحة على أن الزرع السليم مع وضعية مسطحة أو راحة طفيفة يحافظ على ضغوط الاتصال الطبيعية19. التجارب تريبولوجي توفر إمكانية لاختبار مختلف أزواج الغضاريف في المختبر. في مثل هذه ا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ويعلن أصحاب البلاغ أنهما لا يملكان مصالح متنافسة.

شكر وتقدير

تم تمويل هذا البحث من قبل NÖ Forschungs- und Bildungsges.m.b.H. وحكومة مقاطعة النمسا السفلى من خلال استدعاءات علوم الحياة (معرف المشروع: LSC15-019) وبرنامج المذنب النمساوي (مشروع K2 XTribology، المنحة رقم 849109).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
الأمفوتريسين بسيجما؟ Aldrich Chemie GmbHA-2942-100ML
محلول الفورمالديهايد المخزن 4٪VWR97131000
مجموعة تكاثر الخلايا II (XTT) تشخيصRoche11465015001السموم خارج الجسم الحي القائم على XTT
CoCrMo المواد الخامقضبان Acnis InternationalCoCrMo بقطر 6 مم
CryoStar NX70 CryostatThermo Fischer Scientificجهاز التقطيع بالتبريد
ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO)Sidma-Aldrich ChemieD 2438-10ML
Dulbecco s النسر المعدل s سيجمامتوسطة؟ Aldrich Chemie GmbH
مصل الأبقار الجنينيالمتوسط جيبكو
حمض الهيالورونيكAnika Therapeutics Inc.مكون من محلول التشحيم
iCyclerBioRadالحرارية
Leica المجهر DM?1000مجهر Leicaلعلم الأنسجة
LightCycler 480 ختم احباطRoche Diagnostics
LightCycler 96Roche Diagnosticsالحرارية cycler ل PCR
MagNA Lyser Green BeadsRoche Diagnostics3358941001
نظام النقل الذاتي للطعم العظمي الغضروفي (OATS) شركةArthrex Inc.أنبوب القطع لحصاد اسطوانات العظم الغضروفي
osteosoftMerck1017279010محلول مزيل الكلس
البنسلين / StreptomycinSigma؟ Aldrich Chemie GmbHP4333-100ML
فوسفات ، مخزن محلول ملحيسيجما؟ Aldrich Chemie GmbHPBS
ضغطفوجيالضغط المسبق يشير إلى الفيلم
RNeasy Fibrous Tissue KitQIAGEN74404
Synergy 2BioTek Instrumentsقارئ لوحة
Tetra؟ Falex MUSTFalex Tribology
النسيج تريبولوجي؟ تيك أو سي تيSAKURA4583تضمين الصيغة
النسخ First Strand cDNA Synthesis KitRoche Diagnostics40897030001
& beta ؛ -mercaptoethanolSidma-Aldrich ChemieM3148
اختبار فيلم منخفض

المراجع

  1. Zengerink, M., Struijs, P. A. A. A., Tol, J. L., van Dijk, C. N. Treatment of osteochondral lesions of the talus: a systematic review. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 18 (2), 238-246 (2009).
  2. Aurich, M., et al. Behandlung osteochondraler Läsionen des Sprunggelenks: Empfehlungen der Arbeitsgemeinschaft Klinische Geweberegeneration der DGOU. Zeitschrift fur Orthopadie und Unfallchirurgie. 155 (1), 92-99 (2017).
  3. Van Bergen, C. J. A., Zengerink, M., Blankevoort, L., Van Sterkenburg, M. N., Van Oldenrijk, J., Van Dijk, C. N. Novel metallic implantation technique for osteochondral defects of the medial talar dome. Acta Orthopaedica. 81 (4), 495-502 (2010).
  4. Sweet, S. J., Takara, T., Ho, L., Tibone, J. E. Primary Partial Humeral Head Resurfacing. The American Journal of Sports Medicine. 43 (3), 579-587 (2015).
  5. Becher, C., et al. Minimum 5-year results of focal articular prosthetic resurfacing for the treatment of full-thickness articular cartilage defects in the knee. Archives of Orthopaedic and Trauma Surgery. 131 (8), 1135-1143 (2011).
  6. Lea, M. A., Barkatali, B., Porter, M. L., Board, T. N. Osteochondral Lesion of the Hip Treated with Partial Femoral Head Resurfacing. Case Report and Six-Year Follow-up. HIP International. 24 (4), 417-420 (2018).
  7. Becher, C., Huber, R., Thermann, H., Paessler, H. H., Skrbensky, G. Effects of a contoured articular prosthetic device on tibiofemoral peak contact pressure: a biomechanical study. Knee Surgery, Sports Traumatology, Arthroscopy. 16 (1), 56-63 (2007).
  8. Malahias, M. -A., Chytas, D., Thorey, F. The clinical outcome of the different HemiCAP and UniCAP knee implants: A systematic and comprehensive review. Orthopedic Reviews. 10 (2), (2018).
  9. Dhollander, A. A. M., et al. The use of a prosthetic inlay resurfacing as a salvage procedure for a failed cartilage repair. Knee Surgery, Sports Traumatology. 23 (8), 2208-2212 (2014).
  10. Van Bergen, C. J. A. A., van Eekeren, I. C. M. M., Reilingh, M. L., Sierevelt, I. N., van Dijk, C. N. Treatment of osteochondral defects of the talus with a metal resurfacing inlay implant after failed previous surgery. Bone and Joint Journal. 95 (12), 1650-1655 (2013).
  11. Kim, Y. S. Y. -H. H. Y. -S., Kim, Y. S. Y. -H. H. Y. -S., Hwang, K. -T. T., Choi, I. -Y. Y. The cartilage degeneration and joint motion of bipolar hemiarthroplasty. International Orthopaedics. 36 (10), 2015-2020 (2012).
  12. Moon, K. H., et al. Degeneration of Acetabular Articular Cartilage to Bipolar Hemiarthroplasty. Yonsei Medical Journal. 49 (5), 716-719 (2008).
  13. Wimmer, M. A., Pacione, C., Laurent, M. P., Chubinskaya, S. In vitro wear testing of living cartilage articulating against alumina. Journal of Orthopaedic Research. , (2016).
  14. Bowland, P., Ingham, E., Fisher, J., Jennings, L. M. Simple geometry tribological study of osteochondral graft implantation in the knee. Proceedings of the Institution of Mechanical Engineers, Part H: Journal of Engineering in Medicine. 232 (3), 249-256 (2018).
  15. Bowland, P., Ingham, E., Fisher, J., Jennings, L. M. Development of a preclinical natural porcine knee simulation model for the tribological assessment of osteochondral grafts in vitro. Journal of Biomechanics. 77, 91-98 (2018).
  16. Trevino, R. L., et al. Establishing a live cartilage-on-cartilage interface for tribological testing. Biotribology. 9, 1-11 (2017).
  17. Oungoulian, S. R., et al. Wear and damage of articular cartilage with friction against orthopedic implant materials. Journal of Biomechanics. 48 (10), 1957-1964 (2015).
  18. Stotter, C., et al. Effects of Loading Conditions on Articular Cartilage in a Metal-on-Cartilage Pairing. Journal of Orthopaedic Research. 37 (12), 2531-2539 (2019).
  19. Becher, C., Huber, R., Thermann, H., Tibesku, C. O., von Skrbensky, G. Tibiofemoral contact mechanics with a femoral resurfacing prosthesis and a non-functional meniscus. Clinical biomechanics. 24 (8), Bristol, Avon. 648-654 (2009).
  20. Temple, D. K., Cederlund, A. A., Lawless, B. M., Aspden, R. M., Espino, D. M. Viscoelastic properties of human and bovine articular cartilage: a comparison of frequency-dependent trends. BMC Musculoskeletal Disorders. , 1-8 (2016).
  21. Caligaris, M., Ateshian, G. A. Effects of sustained interstitial fluid pressurization under migrating contact area, and boundary lubrication by synovial fluid, on cartilage friction. Osteoarthritis and Cartilage. 16 (10), 1220-1227 (2008).
  22. Burris, D. L., Ramsey, L., Graham, B. T., Price, C., Moore, A. C. How Sliding and Hydrodynamics Contribute to Articular Cartilage Fluid and Lubrication Recovery. Tribology Letters. 67 (2), 1-10 (2019).
  23. Mamat, N., Nor, M. Numerical measurement of contact pressure in the tibiofemoral joint during gait. International Conference on Biomedical Engineering (ICoBE). , 27-28 (2012).
  24. Manda, K., Ryd, L., Eriksson, A. Finite element simulations of a focal knee resurfacing implant applied to localized cartilage defects in a sheep model. Journal of Biomechanics. 44 (5), 794-801 (2011).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

XTT

مقالات ذات صلة