مقالة منهجية

القياس الكمي للتروية الدماغية باستخدام تصوير البقع بالليزر وحجم الاحتشاء باستخدام التصوير بالرنين المغناطيسي في نموذج ما قبل السريري لسكتة الدموية الخلفية

DOI:

10.3791/61673

⸱

نوفمبر 17, 2020

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurological Surgery, The Ohio State University Medical Center, 2Department of Anatomy, The Ohio State University Medical Center, 3Department of Internal Medicine, The Ohio State University Medical Center, 4Department of Radiology, The Ohio State University Medical Center

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم استخدام نموذج لسكتة دماغية LVO لتطوير تصوير البقع بالليزر لمراقبة التروية الدماغية في الوقت الفعلي.  تم تحسين التصوير بالرنين المغناطيسي المرجح بالانتشار لتصوير حجم الاحتشاء باستخدام قيمة b عالية ، مما يتيح ADC و MRA ، مرتبطين ب DSA في وقت السكتة الدماغية.  أخيرا ، ارتبطت عمليات إعادة بناء ADC بالنتائج النسيجية.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

خلفية: انسداد الشريان القاعدي (BAO) هو مجموعة فرعية من السكتة الدماغية الخلفية التي تحمل معدل وفيات يصل إلى 90٪.  تشمل المعايير السريرية الحالية لتشخيص السكتة الدماغية التصوير المقطعي المحوسب (CT) وتصوير الأوعية المقطعية والتروية والتصوير بالرنين المغناطيسي (MRI). لا توجد نماذج حيوانية كبيرة قبل السريرية لتعكس المرض السريري بدقة بالإضافة إلى طرق تقييم عبء السكتة الدماغية وتقييم العلاجات.

أساليب: نصف نموذجا للكلاب لسكتة دماغية انسداد الأوعية الدموية الكبيرة (LVO) في الدورة الدموية الخلفية ، وطورنا بروتوكول تصوير البقع بالليزر (LSI) لمراقبة تغيرات التروية في الوقت الفعلي.  ثم استخدمنا التصوير بالرنين المغناطيسي DWI عالي القيمة (ب = 1800 ثانية / مم2) لزيادة حساسية الكشف. قمنا أيضا بتقييم قدرة تصوير الأوعية بالرنين المغناطيسي (MRA) على تقييم انسداد الشرايين والارتباط ب DSA. أخيرا ، تحققنا من حجم الاحتشاء من رسم خرائط معامل الانتشار الظاهري (ADC) باستخدام الأنسجة.

النتائج: أدى إعطاء الجلطات الدموية إلى انسداد الشريان القاعدي كما تم تتبعه بواسطة DSA (ن = 7).   يرتبط LSI ب DSA ، مما يدل على انخفاض في التروية بعد ظهور السكتة الدماغية التي استمرت طوال التجربة ، مما سمح لنا بمراقبة التروية في الوقت الفعلي.  يوضح DWI مع قيمة b محسنة للكلاب حجم السكتة الدماغية وسمح لنا باستقاق صور ADC وتصوير الأوعية بالرنين المغناطيسي (MRA). تم إجراء MRA في نهاية التجربة مرتبطا ب DSA الذي تم إجراؤه بعد الانسداد. أخيرا ، يرتبط عبء السكتة الدماغية على التصوير بالرنين المغناطيسي بالأنسجة.

الاستنتاجات: توضح دراساتنا تصوير التروية في الوقت الحقيقي باستخدام LSI لنموذج LVO الانصمام الخثاري للكلاب لسكتة الدموية الخلفية ، والتي تستخدم التصوير متعدد الوسائط المهم في تشخيص وعلاج السكتة الدماغية الإقفارية.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يبلغ معدل انتشار السكتة الدماغية في جميع أنحاء العالم حوالي 25.7 مليون ، معظمها إقفارية1.  تمثل السكتة الدماغية الخلفية الدورة الدموية 20٪ من جميع السكتات الدماغية التي يكون انسداد الشريان القاعدي هو الأكثر حدة ، حيث يقترب من 90٪ من الوفيات1،2.  في عام 1995 ، كان منشط البلازمينوجين المؤتلف للأنسجة (rtPA) أول علاج حاد تم تطويره للسكتة الدماغية الإقفارية في المرضى الذين قدموا في غضون 3 ساعات من بداية السكتةالدماغية 3. في الآونة الأخيرة ، أظهر استئصال الخثرة الميكانيكي فائدة في علاج السكتة الدماغية الإقفارية الحادة في المرضى الذين يعانون من انسداد الأوعية الدموية الكبيرة (LVO) ، والذي يشمل الجزء داخل الجمجمة من الشريان السباتي الداخلي أو الجزء الأول من الشرايين الدماغية الأمامية والوسطى4.  لم تتضمن أي من التجارب السريرية الحديثة السكتة الدماغية الخلفية وظلت نتائجها كئيبة على الرغم من استخدام استئصال الخثرة الميكانيكي لانسداد الشريان القاعدي5،6.

التقدم في تقنيات التقييم في مرضى السكتة الدماغية له تأثير على التنبؤ بفرصة الشفاء الوظيفي والبقاء على قيدالحياة 7. تم وصف النماذج قبل السريرية لسكتة الدماغية الخلفية سابقا8،9،10 ، ومع ذلك ، فإن تقييم عبء السكتة الدماغية وإعادة التوعي لا يزال دون المستوى الأمثل.  توفر الأنواع الأصغر مثل القوارض العديد من المزايا بما في ذلك سهولة التلاعب الجيني ، وشراء غير المكلفة ، وتكاليف السكن اليوميةالمنخفضة 11،12. ومع ذلك ، فإن التجارب على الصغيرة في بعض الأحيان لا تمثل بشكل كامل الأوعية الدموية الحيوانية والبشرية الكبيرة ، أو الظروف الفسيولوجية ، أو الاستجابات الالتهابية ذات الصلة7. تحاكي الكبيرة عن كثب السكتة الدماغية البشرية2،7،13،14.  علاوة على ذلك ، يمكن إجراء أخذ عينات الدم التسلسلية لتحليل الدم لعلامات التخثر والالتهابات.

في هذه الدراسة ، نصف نموذجا للكلاب لانسداد الشريان القاعدي تم التحقق منه عن طريق تصوير الأوعية بالطرح الرقمي (DSA) من بداية السكتة الدماغية.  نحن نستخدم تصوير نضح البقع بالليزر (LSI) لمراقبة التروية في الوقت الفعلي.  ثم نستخدم خوارزمية جديدة لتعزيز الأوعية الدموية الدقيقة تعتمد على اكتساب تصوير نضح البقع بالليزر (LSI) بالإضافة إلى تقنية التصوير بالرنين المغناطيسي عالية القيمة (MRI) لتحسين تصوير الاحتشاء15. تسمح لنا هذه التقنيات بمراقبة وقياس نقص التروية المحلي والعالمي. أخيرا ، نربط نتائج التصوير هذه بالأنسجة. يعد فهم التشخيص والحاجة إلى دراسة السكتة الدماغية الخلفية في النماذج قبل السريرية أمرا بالغ الأهمية من أجل تحسين العلاجات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تنفيذ جميع الإجراءات وفقا لقانون رعاية ودليل رعاية واستخدام المختبر (NRC 2011) ، على النحو المعتمد من قبل اللجنة المؤسسية لرعاية واستخدامه بجامعة ولاية أوهايو (IACUC).

1. الخطوة 1 إعداد والبروتوكول الجراحي تم استخدام نموذج لسكتة دماغية انسداد الشريان القاعدي (BAO) كما هو موضحسابقا 9،10.

  1. بيجل البالغ السريع (8-13 كجم ، 14-21 شهرا) بين عشية وضحاها مع حرية الوصول إلى الماء.
  2. حقن ، قبل التخدير ، إعطاء الأسيبرومازين العضلي (0.2 مجم / كغ)
  3. أدخل قسطرة قياس 20 في الوريد الرأسي.
  4. تحفيز التخدير مع إعطاء الكيتامين عن طريق الوريد (10 مجم / كغ) وميدازولام (0.025 مجم / كغ).
  5. بعد تحريض التخدير ، قم بتنبيب والتهوية ميكانيكيا باستخدام التخدير المستنشق المستمر (2-3٪ إيزوفلوران).
  6. قم بإنشاء نافذة حج القحف مقاس 1 سم2 لتصوير البقع بالليزر.
  7. أدخل غمدا شريانيا 7F في الشريان الفخذي الأيمن للوصول إليه وقياس ضغط الدم.
  8. أدخل قسطرة وعائية قياس 16 في الوريد الفخذي الأيمن لسحب الدم.
  9. تحضير الجلطات الدموية (جلطة دموية) كما هو موضحسابقا 16. باختصار ، ارسم واخلط 5 مل من دم الكامل مع 0.5 غرام من كبريتات الباريوم (Ba2SO4) في أنبوب بلاستيكي لجمع الدم في الدم أثناء التدحرج لمدة 30 ثانية. ضع الخليط دون إزعاج لمدة 60 دقيقة في درجة حرارة الغرفة قبل إعطاء القسطرة.
  10. ابدأ في تسجيل تصوير الأوعية الدموية بالطرح الرقمي الأساسي (DSA) قبل الوصول إلى الشريان القاعدي الأوسط. تقدم قسطرة توجيه 4F تحت التوجيه بالمنظار الفلوري ، باستخدام نهج عبر الأبهر الرجعي ، إلى غمد الشريان 7F الذي تم وضعه مسبقا في الشريان الفخذي الأيمن من خلال الشريان الفقري إلى قاعدة الشريان القاعدي. حقن ملليلترين من عامل التباين مع محلول ملحي عادي لتحديد الشريان القاعدي.
  11. باستخدام مشرط جراحي ، قم بإزالة الجلطة إلى قطع صغيرة مع طبقات غنية بالفيبرين وغنية بكريات الدمالحمراء 16 لتحميلها في حقنة 3 مل وحقنها من خلال القسطرة الدقيقة في منتصف الشريان القاعدي. اترك الجلطة تستقر لمدة 10 دقائق. قم بإجراء تصوير الأوعية الدموية للتحقق من موقع الجلطة المطلوب. يمكن التحقق من انسداد الشرايين عن طريق DSA وتقليل التروية الدماغية عن طريق التصوير بالبقع بالليزر (LSI).

2. الخطوة 2 تصوير البقع بالليزر

  1. ركز كاميرا تصوير نتروية البقع بالليزر (LSI) على نافذة الجمجمة. قم بتكوين نظام كاميرا التصوير عالي الدقة بالليزر (LSI) كما هو موضحسابقا 15.
  2. تسجيل التروية مع الانقطاعات أثناء أداء تصوير الأوعية الدموية في النقاط الزمنية المطلوبة. احصل على بيانات من مجال رؤية 1.5 سم × 1.5 سم باستخدام طول موجي 785 نانومتر وليزر 80 ميجاوات بمعدل أخذ عينات 60 هرتز على مسافة عمل 10 سم في نموذج هذا.
  3. من الرسوم البيانية للتروية في الوقت الفعلي ، اختر وقت الاهتمام (TOI) لتضمين القمم المنخفضة فقط لاستبعاد القطع الأثرية المتعلقة بحركة الجهاز التنفسي. متوسط وحدات التروية النسبية خلال فترة أخذ العينات 10 ثوان باستخدام برنامج PimSoft v1.4. قم بإجراء تحليل تباين البقع بالليزر (LASCA) كما هو موضحسابقا 15.
  4. لتحسين القياس الكمي للأوعية الدموية الدقيقة في الدماغ في نموذج هذا ، سجل الصور بمعدل 15 إطارا في الثانية وقم بإجراء حسابات الشدة والتباين بمتوسط زماني مكاني على مساحة 5 × 5 بكسل مع 5 إطارات. كان معدل الإطارات الإجمالي لبيانات الشدة والتباين 3 إطارات في الثانية. اختر القيمة المتوسطة للتروية لكل بكسل لتقليل التأثيرات على متوسط التغيرات المفاجئة الكبيرة في قراءات التروية بسبب الحركة من تنفس. قم بتحويل البيانات الأولية إلى ملفات ثنائية ومعالجة البيانات إلى تصوير ذي مغزى للأوعية. استخدم خوارزمية LASCA المعاد تجهيزها من البرنامج (rt-LASCA) لاستخدام تباين بيانات التباين بمرور الوقت لتحديد مواقع الأوعية الدموية كما هو موضحسابقا 15.

3. الخطوة 3: التصوير بالرنين المغناطيسي (MRI) وتصوير الأوعية بالرنين المغناطيسي

  1. قم بإجراء التصوير بالرنين المغناطيسي في اليوم السابق للجراحة للمقارنة إذا رغبت في ذلك ، ثم كرر ذلك لتأكيد BAO ومرة أخرى قبل التضحية إذا كان سيتم تقييم العلاج.
  2. ضع الأنياب المخدرة باستمرار رأسا على عقب أولا في وضع ضعيف كما هو موضح سابقا في قوة مجال Siemens Prisma 3 Tesla وماسح التصوير بالرنين المغناطيسي بقطر 60 سم بما في ذلك ملف رأس 32 قناة كجهاز استقبال مع أداء تصوير متوازي محسن للحصول على صوردماغية 17.
  3. قم بإجراء عمليات مسح مترجم للحصول على صور تجريبية لكل دماغ قبل بدء التصوير التشريحي.  يحتوي النظام المستخدم للحصول على البيانات المقدمة على نظام تصوير متكامل يسمح بمسح أسرع في الدقة المكانية والزمانية المثلى. تولد التدرجات 80 طن متري / م صورا عالية الجودة مرجحة ب T2 ومرجحة بالانتشار وتصوير الأوعية بالرنين المغناطيسي. التصوير المرجح بالانتشار (DWI) حساس بدرجة كافية ويمكن أن يظهر بنية فرعية تشريحية أكثر من طرق التصوير بالرنين المغناطيسي الهيكلية التقليدية مثل الصور المرجحة T2. في هذه الدراسة ، تم إجراء التصوير بالرنين المغناطيسي بعد 4 ساعات من BAO.
  4. بعد التوطين المناسب ، قم بإجراء تصوير صدى التدرج المرجح T2 (المعلمات: مجال الرؤية = 130 مم ، حجم المصفوفة = 320 × 320 ، حجم البكسل = 0.3 × 0.3 مم ، سمك الشريحة = 3 مم ، TR = 4 ثوان ، FA = 180 درجة ، BW = 255 هرتز / بكسل ، NEX = 2 ، TE= 75 مللي ثانية ، الدقة = 2.4615 بكسل لكل مم) متبوعا بتصوير استعادة الانعكاس المخفف للتدفق (FLAIR) لتصور بنية تشريح الدماغ.
  5. إجراء تصوير الأوعية بالرنين المغناطيسي (MRA) لتصور تشريح الأوعية الدموية وقياس الدورة الدموية. الحصول على MRA للدماغ الذي يغطي الرأس والرقبة بتسلسل وقت الرحلة ثلاثي الأبعاد (TOF) في عرض عرضي (المعلمات: مجال الرؤية = 129 × 129 مم ، حجم المصفوفة = 768 × 768 ، حجم البكسل = 0.3 × 0.3 مم ، سمك الشريحة = 81.59 مم ، TR = 25 مللي ثانية ، FA = 18 درجة ، أبيض وأسود = 185 هرتز / بكسل ، NEX = 1 ، TE= 4.22 مللي ثانية ، الدقة = 5.91 بكسل لكل مم). قم بإجراء الإسقاط الأقصى للكثافة (MIP) مع تصور ثلاثي الأبعاد مرمز بالألوان لزيادة شدة الإشارة في الأوعية الدموية.  صور DICOM المكتسبة بعد العملية لتصور الأوعية الدموية وتأكيد انسداد الشريان القاعدي.

4. الخطوة 4 التصوير المرجح بالانتشار وحساب حجم السكتة الدماغية

  1. قم بإجراء تسلسل تصوير مرجح للانتشار للكشف عن السكتات الدماغية الإقفارية الحادة (المعلمات: مجال الرؤية = 149 مم × 149 مم ، حجم المصفوفة = 132 × 0 × 100 ، حجم البكسل = 0.30 مم × 0.30 مم ، سمك الشريحة = 4 مم ، TR = 4.6 ثانية ، FA = 90 درجة ، أبيض وأسود = 255 هرتز / بكسل ، NEX = 1 ، TE = 86 مللي ثانية ، الدقة = 0.93 بكسل لكل مم). نقل صور DICOM للمعالجة اللاحقة.
  2. قم بإنشاء خرائط انتشار ظاهرية (ADC) من صور DWI وحساب أحجام الاحتشاء باستخدام برنامج OsiriX MD v.5.0.
  3. تتبع كل من نصفي الكرة المخية ومناطق الاحتشاء لكل شريحة واضربها بسماكة الشريحة للحصول على أحجام الاحتشاء.
  4. قم بتحويل الحجم الكامل المطلق إلى 100 وحدة لحساب النسبة المئوية لحجم السكتة الدماغية لكل.

5. الخطوة 5: هيماتوكسيلين والإيوزين تلطيخ أنسجة الدماغ

  1. في وقت التضحية في المخدرة ، حصاد الدماغ وقطع قسمين وسطيين بسمك 4 مم بمشرط حاد ، سيتم استخدام قسم واحد لتلوين TTC أدناه.
  2. قم بإصلاح القسم 4 مم في 10٪ فورمالين لمدة 7 أيام على الأقل للسماح بالتسلل في جميع أنحاء القسم بأكمله.
  3. قم بتضمين قسم الدماغ الثابت في البارافين باتباع البروتوكول17 الخاص بنا.
  4. قم بقص وتسوية كل كتلة بارافين (يمكن تخزين كتل متعددة ومعالجتها في نفس الوقت).
  5. قسم كل كتلة بارافين عند 4 ميكرومتر وضع الأنسجة المقطوعة على شريحة 2 × 3 بوصة.
  6. قم بمعالجة كل شريحة في Hematoxylin 560 لمدة 8 دقائق ، وقم بتمييز الكحول الحمضي بنسبة 1٪ لمدة 1 ثانية ثلاث مرات مع الشطف في ماء الصنبور.
  7. أزرق كل شريحة مع 1٪ هيدروكسيد الأمونيوم لمدة 1 ثانية واشطفها لمدة 2 ثانية بماء الصنبور.
  8. يجفف في 70٪ من الإيثانول لمدة 1 ثانية اثنتي عشرة مرة ، مع تلطيخ في اليوزين لمدة 1 دقيقة.
  9. يجفف في 95٪ لمدة 1 ثانية اثنتي عشرة مرة متبوعا ب 100٪ إيثانول.
  10. قم بمسح الزيلين وقم بتطبيق غطاء مقاس 2 × 3 بوصة مع وسائط التثبيت ، وإزالة فقاعات الهواء.

6. الخطوة 6 2٪ 2،3،5-ثلاثي فينيلترازوليوم كلوريد تلطيخ الدماغ

  1. ضع القسم الثاني مقاس 4 مم الذي تم حصاده بجانب قسم H & E في محلول معد مسبقا يحتوي على 100 مل 2٪ 2،3،5-ثلاثي فينيل-2H-tetrazolium كلوريد (TTC) في درجة الحموضة 7.4 PBS دافئة إلى 37 درجة مئوية في الظلام.
  2. احتضن في الظلام عند 37 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة على الأقل ، مع قلب قسم الدماغ برفق كل 5 دقائق.
  3. عندما يتحول القسم إلى اللون الأحمر الكرز على كلا الجانبين ، قم بإزالة محلول TTC واستبدله بنسبة 4٪ بارافورمالدهيد في PBS ، درجة الحموضة 7.4 ، لتحسين التباين بين عشية وضحاها.
  4. عندما يكون التباين مثاليا بين البقع البيضاء والحمراء في الدماغ (1-3 أيام) ، ضعه بين الأغطية البلاستيكية الشفافة ، وجفف السوائل الزائدة ، وامسح بدقة عالية.
  5. تتبع المناطق الإقفارية وانزلاق الدماغ بالكامل للحصول على النسبة المئوية للاحتشاء في كل قسم كما هو موضحسابقا 17.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تسجيل وتصوير نضح البقع بالليزر: تم إجراء تسجيل التروية بشكل مستمر حتى تم نقل إلى التصوير بالرنين المغناطيسي ، ومرة أخرى عند التضحية (الشكل 1 أ). أظهرت البيانات أن التروية الدماغية انخفضت بنسبة ~ 15٪ إلى 83 ± 10٪ في النقطة الزمنية التي تسبق انسداد الشريان القاعدي (قبل BAO). من المحتمل أن يكون هذا الانخفاض الاسمي نتيجة لإدخال قسطرة دقيقة في الشريان الفقري البعيد. بعد حقن الجلطات الدموية الجاهزة ، انخفض نضح ما بعد BAO إلى متوسط 33 ± 2.6٪ ، وهو ما يمثل انخفاضا ~ 67٪ عن خط الأساس...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تشمل الأسباب الأكثر شيوعا لسكتة الدماغة الخلفية الانسداد وتصلب الشرايين الكبيرة ومرض الشريان الصغير5. يمثل انسداد الشرايين القاعدية (BAO) مجموعة فرعية من السكتات الدماغية الخلفية ، والتي تحمل مراضة ووفيات كبيرة13. في هذا السياق ، تم استخدام نموذج للسكتة الدماغية الخلفية الحادة وقمنا بتطوير بروتوكول LSI لمراقبة نضح المنطقة المسدودة في الوقت الفعلي. تم إجراء تصوير نضح البقع بالليزر من خلال نافذة صغيرة في الجمجمة ، مما يوفر معلومات في الوقت ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا العمل جزئيا من #GRT00049047 منحة مؤسسة مايفيلد للتعليم والبحوث وجائزة تسريع وكالة إدارة الخدمات في أوهايو #TECG20180269 إلى SMN.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
2٪ 2،3،5-ثلاثي فينيلترازوليوم كلوريد (TTC في PBS ، الرقم الهيدروجيني 7.4)Sigma AldrichT8877
EDTA K3Becton DickinsonBD455036
EosinSurgipath3801602
Formalin ، محايد مخزن مؤقت ، 10٪ريتشارد آلان Scientific5701
Hematoxylin 560Surgipath3801570
نظام تحديد المواقع HUG-U-VAC &NBSP ؛DRE Veterinary1320
LabChart SoftwareADInstruments Inc.
كاميرا التصوير بالليزرPerimed Inc. ، Jarfalla ، السويدPeriCam PSI HR System
Vacutainer الهيبارين الليثيوم ، 4.5٪Becton DickinsonBD 368056
MatlabThe MathWorks، Inc. ، Natick ، MA
OsiriX MD v.5.0 softwarePixmeo Inc ، جنيف
Paraformaldehyde 4٪ في PBSAlfa AesarAAJ61899AP
PimSoft v1.4Perimed Inc.البرنامج المصاحب لمعدات
Prisma Fit 3 tesla (3T) مغناطيسسيمن
هيبارين الصوديوم للحقن (لتغطية حقنة غاز الدم)NovaPlus402525D
مكانس برنامج LSI تشخيص

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Donkor, E. S. Stroke in the 21(st) Century: A Snapshot of the Burden, Epidemiology, and Quality of Life. Stroke Research and Treatment. 2018, 3238165(2018).
  2. Kaiser, E. E., West, F. D. Large animal ischemic stroke models: replicating human stroke pathophysiology. Neural Regeneration Research. 15 (8), 1377-1387 (2020).
  3. National Institute of Neurological Disorders and Stroke rt-PA Stroke Study Group. Tissue plasminogen activator for acute ischemic stroke. New England Journal of Medicine. 333 (24), 1581-1587 (1995).
  4. Mokin, M., Rojas, H., Levy, E. I. Randomized trials of endovascular therapy for stroke--impact on stroke care. Nature Reviews Neurology. 12 (2), 86-94 (2016).
  5. Sparaco, M., Ciolli, L., Zini, A. Posterior circulation ischaemic stroke-a review part I: anatomy, aetiology and clinical presentations. Neurological Sciences. , (2019).
  6. Lekic, T., Ani, C. Posterior circulation stroke: animal models and mechanism of disease. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 587590(2012).
  7. Vilahur, G., Padro, T., Badimon, L. Atherosclerosis and thrombosis: insights from large animal models. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2011, 907575(2011).
  8. Atchaneeyasakul, K., et al. Large animal canine endovascular ischemic stroke models: A review. Brain Research Bulletin. 127, 134-140 (2016).
  9. Qureshi, A. I., et al. Randomized comparison of intra-arterial and intravenous thrombolysis in a canine model of acute basilar artery thrombosis. Neuroradiology. 46 (12), 988-995 (2004).
  10. Boulos, A. S., et al. Tamoxifen as an effective neuroprotectant in an endovascular canine model of stroke. Journal of Neurosurgery. 114 (4), 1117-1126 (2011).
  11. Doyle, K. P., Buckwalter, M. S. A mouse model of permanent focal ischemia: distal middle cerebral artery occlusion. Methods in Molecular Biology. 1135, 103-110 (2014).
  12. Wen, Z., et al. The effect of anterior communicating artery flow on neurovascular injury and neurobehavioral outcomes in mice with recurrent stroke. Brain Research. , (2019).
  13. Demel, S. L., Broderick, J. P. Basilar Occlusion Syndromes: An Update. Neurohospitalist. 5 (3), 142-150 (2015).
  14. Cai, B., Wang, N. Large Animal Stroke Models vs. Rodent Stroke Models, Pros and Cons, and Combination. Acta Neurochirurgica Supplement. 121, 77-81 (2016).
  15. Gnyawali, S. C., et al. Retooling Laser Speckle Contrast Analysis Algorithm to Enhance Non-Invasive High Resolution Laser Speckle Functional Imaging of Cutaneous Microcirculation. Scientific Reports. 7, 41048(2017).
  16. Kan, I., et al. A novel method of thrombus preparation for use in a swine model for evaluation of thrombectomy devices. American Journal of Neuroradiology. 31 (9), 1741-1743 (2010).
  17. Huttinger, A. L., et al. Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury. Journal of Visualized Experiments. (139), (2018).
  18. Siemonsen, S., et al. Elevated T2-values in MRI of stroke patients shortly after symptom onset do not predict irreversible tissue infarction. Brain. 135, Pt 6 1981-1989 (2012).
  19. Leiva-Salinas, C., Wintermark, M. Imaging of acute ischemic stroke. Neuroimaging Clinics of North America. 20 (4), 455-468 (2010).
  20. Ishikawa, C., Ito, D., Tanaka, N., Kitagawa, M. Use of three-dimensional time-of-flight magnetic resonance angiography at 1.5 Tesla to evaluate the intracranial arteries of 39 dogs with idiopathic epilepsy. American Journal of Veterinary Research. 80 (5), 480-489 (2019).
  21. Mohr, J. P., et al. Magnetic resonance versus computed tomographic imaging in acute stroke. Stroke. 26 (5), 807-812 (1995).
  22. Rosso, C., et al. Diffusion-weighted MRI in acute stroke within the first 6 hours: 1.5 or 3.0 Tesla. Neurology. 74 (24), 1946-1953 (2010).
  23. Cheng, Q., et al. High b value DWI in evaluation of the hyperacute cerebral ischemia at 3T: A comparative study in an embolic canine stroke model. Experimental and Therapeutic. 12 (2), 951-956 (2016).
  24. Xu, X. Q., et al. Use of FLAIR imaging to identify onset time of cerebral ischemia in a canine model. American Journal of Neuroradiology. 35 (2), 311-316 (2014).
  25. Rodriguez, D., Rylander, H., Vigen, K. K., Adams, W. M. Influence of field strength on intracranial vessel conspicuity in canine magnetic resonance angiography. Veterinary Radiology & Ultrasound. 50 (5), 477-482 (2009).
  26. Bosmans, H., Wilms, G., Dymarkowski, S., Marchal, G. Basic principles of MRA. European Journal of Radiology. 38 (1), 2-9 (2001).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Cerebral PerfusionLaser Speckle ImagingInfarct VolumeMagnetic Resonance ImagingPosterior Circulation StrokeBasilar Artery OcclusionLarge Vessel OcclusionDiffusion Weighted ImagingMagnetic Resonance AngiographyCanine Stroke Model
الفيديو قريباً

مقالات ذات صلة