يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

التنابيب Endotracheal الأعمى في الأرانب حديثي الولادة

5.2K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/61874

⸱

فبراير 26, 2021

 ,  ,  , 
1Department of Pediatric Critical Care, Hospital Sant Joan de Déu, Institut de Recerca Sant Joan de Déu, 2Vanderbilt University School of Medicine, 3Neonatology Department, Hospital Sant Joan de Déu, Institut de Recerca Sant Joan de Déu, Universidad de Barcelona, 4Department of Pediatric Cardiology, Hospital Sant Joan de Déu, Institut de Recerca Sant Joan de Déu, 5Department of Critical Care Medicine, University of Pittsburgh

في هذه المقالة

ملخص

نحن نصف تقنية النوبات البطانة في الأرانب حديثي الولادة بعد القسطرة المريء مع أنبوب المعدة.

الملخص

الأرنب حديث الولادة هو نموذج حيواني مفيد لمختلف الأمراض والإجراءات. إدارة مجرى الهواء من الأرنب معقدة بسبب خصائصها التشريحية، والتي هي أكثر تعقيدا في حالة الوليد. من الطرق المختلفة لإدارة مجرى الهواء المتقدمة، التنابيب البطانية هو أقل عدوانية من استئصال القصبة الهوائية، وأكثر جدوى من الإدارة فوق الغلوتيك نظرا لعدم وجود الأجهزة فوق الغلوتيك من هذا الحجم الصغير. كما التصور glottis المباشر من الصعب جدا في الحيوانات بهذا الحجم، يتم تقديم هذا النموذج الاحتضان الأعمى كبديل فعال، وخاصة بالنسبة للتجارب التي تتطلب تخديرا مطولا. باستخدام هذه الطريقة، قمنا بإجراء عمليات النوبات الأعمى مع نسبة نجاح 90٪.

المقدمة

التشريح الغريب للجهاز التنفسي الأرنب يجعل الاحتضان الرغوية معقدة. تجويف الفم عميق وضيق مع مجموعة محدودة من فتح الفم ولسان كبير نسبيا، مما يجعل التصور المباشر للحنجرة صعبة حتى مع استخدام منظارالحنجرة 1،2. وعلاوة على ذلك، فإن الاحتضان من الأرانب الوليدة، التي هي 10-20 مرات أصغر من الكبار، هو أكثر من إجراء الصعبة. بالإضافة إلى هذه الخصائص التشريحية، الأرانب عرضة للحنجرة الثانوية للتلاعب في مجرى الهواء.

وقد وصفت العديد من تقنيات الاحتضان في الأدب، مثل الإرهاق القصبي الحنجرة الحنجرة، الإرهاق الأعمى، الإرهاق منظار، الاحتضان الرجعي، الإرهاق المنظار، التشنج داخل المنظار، استئصال القصبة الهوائية والتهوية الجهاز فوق الجلوجة3،4،5،6،7،8،9. وقد نفذت جميع هذه التقنيات بنجاح في الأرانب الكبار; ومع ذلك، هناك عدد قليل من المنشورات المتعلقة إدارة مجرى الهواء المتقدمة في أرنب الوليد10. تصف إحدى الدراسات إجراء عمليات استئصال القصبة الهوائية في الحيوانات في هذا العصر لتقييم ميكانيكا التنفس وحجم الرئة ، على الرغم من أن هذه تقنية عدوانية ولا رجعة فيها11. وقد ثبت أن هذه الطريقة للانبيب البطاية لتكون وسيلة فعالة ومنخفضة التكلفة لإدارة مجرى الهواء في الأرانب حديثي الولادة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على إجراء التنبيب الموضح أدناه من قبل لجنة الرعاية والاستخدام الحيوانية المؤسسية لجامعة برشلونة (CEEA 180/19)

1- الإعداد التجريبي

  1. الحصول على المواد التالية: 2 مم قطر بولي فينيل كلوريد (PVC) أنبوب endotracheal، 6 الفرنسية (الأب) أنبوب التغذية البولي يوريثين، شقة واسعة وعريضة تشريح ملقط ومواد التشحيم العقيمة (الشكل 1).
  2. خلال عمليات النوباض والجراحة ، والحفاظ على الظروف العقيمة.

2. التخدير

  1. تخدير الحيوان مع 5 ملغ / كغ xylazine و 25 ملغ / كغ الكيتامين تطبيقها معا في العضل في اطالي vastus من رباعيات الفخذ. ويمكن أيضاً استخدام ناهضات ألفا-2 مثل dexmedetomidine بدلاً من الزيلازين.
  2. السماح 3-5 دقائق للأدوية للوصول إلى تأثير.
  3. Readminister الجرعة نفسها حتى يتحقق التخدير العميق (دواسة سلبية، ردود الفعل بالببرال والقرنية). من الناحية المثالية، فإن الأرنب الحفاظ على التنفس التلقائي حتى النوب.

3. النوبات التناسخية الرغوية

  1. وضع الأرنب على بطانية حرارية في 37 درجة مئوية. وضع الحيوان في إعادة شغل الظهر مع الرأس في فرط التمليس. محاذاة الرأس على التوالي وخط الوسط ممكن. قد يكون من المفيد أن تحقق 45 درجة على الأقل من التمديد(الشكل 2)لفة طولها أربعة سنتيمترات مصنوعة من شاش معقمة وضعت في منطقة الظهر من الرقبة.
  2. استخدام ملقط تشريح تلميح شقة وواسعة لفتح تجويف الفم ما يقرب من سنتيمتر واحد واسعة. استخدام ملقط مع نهاية حادة وواسعة لتجنب صدمة الفم.
  3. قياس المسافة بين الفم ومنطقة المعدة (الضلع الأول). إدخال مشحم 6 الفرنسية (الأب) البولي يوريثين أنبوب المعدة إلى علامة قبل قياس ( الشكل3-4).
  4. نقل أنبوب التغذية إلى اليسار وإصلاح مع شريط لاصق إلى المجال الجراحي.
  5. إدخال 2 مم قطر أنبوب ENDOTRACHEal PVC، مغطاة زيوت التشحيم المعقمة إلى علامة 3 سم.
    1. إذا كانت هناك أي صعوبات في تقدم الأنبوب، نقله تماما و reattempt حتى يتم تحقيق انزلاق سلس. خطر الصدمة على الحنجرة وeglottis كبيرة مع محاولات النوبه المتعددة. إصلاح أنبوب مع شريط لاصق إلى المجال الجراحي ( الشكل5-6).
  6. توصيل أنبوب الإنتروتراشال إلى جهاز التنفس الصناعي مع الإعدادات التالية: حجم المد والجزر - 10 مل / كجم؛ معدل التنفس: 40 نفسا / دقيقة؛ فيو2 100٪، ا. ا.
  7. تأكيد الموضع الصحيح للأنبوب عن طريق الكشف عن CO2 في الهواء الزفير (ETCO2)، التصور المباشر للتوسع الصدري والضبابية للأنبوب. رصد الحيوان بواسطة أكسدة النبض والرئتين يمكن أن يكون مفيدا أيضا (الشكل 7).
  8. في ختام التجربة، استخدم بروتوكول القتل الرحيم الموحد الذي يتكون من إعطاء الوريد من pentobarbital 120-240 ملغ/كغ. جرعات تكرار حتى يتم تحقيق توقف التنفس, الغياب منعكس وsystole.
    ملاحظة: في التجارب الجراحية، الحيوان على قيد الحياة أثناء عملية التهوية وأخيرا هو القتل الرحيم.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

في المختبر، يتم تنفيذ هذه التقنية من قبل الموظفين الطبيين ذوي الخبرة في التجارب مع الأرانب نيوزيلندا والخبرة في إدارة مجرى الهواء للأطفال. وقد تم إجراء هذا الإجراء من قبل محقق واحد في 10 مع معدل نجاح عالمي قدره 90٪. في السابق، كان باحث آخر قد مارس تحسين كل من موقف الحيوان وطول التثبيت الأنبوب الصحيح. لم يتم تنبيب أي من الحيوانات في المريء. محاولة واحدة فقط (10٪) فشل بسبب حجم صغير للغاية من الحيوان (الجدول 1). بمجرد ممارسة النوب الأعمى ، يتم تحقيق النجاح في المحاولة الأولى...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

وتستخدم على نطاق واسع الأرانب في التجارب على الحيوانات نظرا لتوافرها، وارتفاع معدل الإنجاب مع أوقات قصيرة بين الأجيال، وسهولة التعاملمع 2. في مركزنا، نستخدم 5-7 أيام الأرانب نيوزيلندا القديمة(Oryctolagus cuniculus)كنموذج حديثي الولادة لدراسة التداعيات العصبية للجراحة خارجcorporeal على الدماغ النامية. ونتيجة لذلك، نستخدم الإجراءات التي تتطلب تخديرًا عميقًا ويجب أن نستخدم النوبات الدوتروراخية لفترات من الوقت تصل إلى ساعة.

في الأرنب البالغ، تم وصف العديد من تقنيات...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى أصحاب البلاغ ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

وقد تم دعم هذا العمل من خلال منح من معهد سالود كارلوس الثالث [PFIS2017-0224]، و"بيكا روزا" من إسباوسيداد دي كويدادوس إنتينسيفوس بيدياتريكوس وبرنامج فاندربيلت للعلماء الطبيين.

ولم يشارك مقدمو مشروع القرار في جمع البيانات أو تحليلها أو تفسيرها.

نود أن نشكر إيزابيل سالاس على المساعدة التي قدمتها في المختبر الحيواني والسيد كارليس فابريغا والسيدة جيما فرنانديز أسينسيو من فريق التقنية السمعية والبصرية من مستشفى سانت جوان دي ديو على الدعم التقني الذي قدماه في تسجيل الفيديو وإنتاجه.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

أنبوب
قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
القصبة الهوائية من البولي فينيل كلوريد (PVC) بقطر 2مم Vygon520.20
6 أنبوب تغذية من البولي يوريثين الفرنسيVygon310.06
التخدير (الكيتامين والزيلازين) شاشة
متعددة المعلمات Intellivue MP5Phillips
ملقط تشريح عادي وعريضالطرف LensforVisionAK005
زيوت التشحيم المعقمة (Silkospray)جهاز التنفس الصناعي Rush
Servo 900cMaquet

المراجع

  1. Gilroy, B. A. Endotracheal intubation of rabbits and rodents. Journal of the American Veterinary Medical Association. 179 (11), 1295(1981).
  2. Graham, J. Common procedures in rabbits. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 9 (2), 367-388 (2006).
  3. Fick, T. E., Schalm, S. W. A simple technique for endotracheal intubation in rabbits. Laboratory Animals. 21 (3), 265-266 (1987).
  4. Conlon, K. C., et al. Atraumatic endotracheal intubation in small rabbits. Laboratory Animal Science. 40 (2), 221-222 (1990).
  5. Johnson, D. H. Endoscopic intubation of exotic companion mammals. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 13 (2), 273-289 (2010).
  6. Falcão, S. C., et al. Technique of blind tracheal intubation in rabbits (Oryctolagus cuniculi) supported by previous maneuver of esophageal cannulization. Acta Cirurgica Brasileira. 26 (5), 352-356 (2011).
  7. Miura, H., et al. Endotracheal intubation in rabbits. The Japanese Journal of Veterinary Anesthesiology. 19 (1), 25-29 (2012).
  8. Thompson, K. L., et al. Endotracheal Intubation of Rabbits Using a Polypropylene Guide Catheter. Journal of Visualized Experiments. (129), (2017).
  9. Comolli, J., et al. Comparison of endoscopic endotracheal intubation and the v-gel supraglottic airway device for spontaneously ventilating New Zealand white rabbits undergoing ovariohysterectomy. Veterinary Record. , 1-8 (2020).
  10. Hua, S., et al. Effects of different ventilation strategies on lung injury in newborn rabbits. Pediatric Pulmonology. 47 (11), 1103-1112 (2012).
  11. Kitchen, M. J., et al. The role of lung inflation and sodium transport in airway liquid clearance during lung aeration in newborn rabbits. Pediatric Research. 73 (4-1), 443-449 (2012).
  12. Boon, M. S., et al. Tubeless tracheotomy for survival airway surgery in the leporine model. The Laryngoscope. 125 (3), 680-684 (2015).
  13. Dion, G. R., et al. Morbidity and mortality associated with preclinical tracheostomy models. The Laryngoscope. 128 (2), 68-71 (2018).
  14. Phaneuf, L. R., et al. Tracheal injury after endotracheal intubation and anesthesia in rabbits. Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. 45 (6), 67-72 (2006).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

التنبيب الأعمىأرنب حديث الولادةإدارة المجرى التنفسيأنبوب رغامي من كلوريد متعدد الفينيل (PVC)أنبوب معديملقط تشريحزايلازين كيتامينوضعية الاستلقاء الظهريمعدل النجاح
التنابيب Endotracheal الأعمى في الأرانب حديثي الولادة
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.