تشريح الخصائص الميكانيكية الأنزيمية للميوسينات العملية باستخدام التحليل الطيفي فائق السرعة لقوة المشبك

L. Gardini; A. V. Kashchuk; F. S. Pavone; M. Capitanio

doi:10.3791/62388

مقالة منهجية

تشريح الخصائص الميكانيكية الأنزيمية للميوسينات العملية باستخدام التحليل الطيفي فائق السرعة لقوة المشبك

DOI:

10.3791/62388

⸱

يوليو 1, 2021

L. Gardini¹^,² , A. V. Kashchuk²^,³ , F. S. Pavone¹^,²^,³ , M. Capitanio²^,³

¹National Institute of Optics, National Research Council, ²LENS, European Laboratory for Non-Linear Spectroscopy, ³Physics Department, University of Florence

في هذه المقالة

إشعار تصحيح

Important: There has been an erratum issued for this article. View Erratum Notice

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يظهر هنا بروتوكول شامل لإجراء تجارب مشبك قوة فائقة السرعة على محركات الميوسين -5 المعالجة ، والتي يمكن تمديدها بسهولة لدراسة فئات أخرى من المحركات العملية. يفصل البروتوكول جميع الخطوات اللازمة ، من إعداد الجهاز التجريبي إلى إعداد العينات والحصول على البيانات وتحليلها.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

التحليل الطيفي فائق السرعة بمشبك القوة (UFFCS) هو تقنية جزيء واحد تعتمد على ملاقط الليزر التي تسمح بالتحقيق في الميكانيكا الكيميائية لكل من الميوسين التقليدي وغير التقليدي تحت الحمل بدقة زمنية غير مسبوقة. على وجه الخصوص ، أظهرت إمكانية فحص محركات الميوسين تحت قوة ثابتة مباشرة بعد تكوين رابطة الأكتين والميوسين ، جنبا إلى جنب مع المعدل المرتفع لردود الفعل للقوة (200 كيلو هرتز) ، أن UFFCS أداة قيمة لدراسة الاعتماد على الحمل للديناميكيات السريعة مثل شوط عمل الميوسين. علاوة على ذلك ، يتيح UFFCS دراسة كيفية تأثر تفاعلات الميوسين والأكتين الإجرائية وغير العملية بكثافة واتجاه القوة المطبقة.

باتباع هذا البروتوكول ، سيكون من الممكن إجراء تجارب فائقة السرعة على محركات الميوسين -5 المعالجة وعلى مجموعة متنوعة من الميوسينات غير التقليدية. من خلال بعض التعديلات ، يمكن أيضا توسيع البروتوكول بسهولة لدراسة فئات أخرى من المحركات المعالجة مثل kinesins و dyneins. يتضمن البروتوكول جميع الخطوات اللازمة ، من إعداد الجهاز التجريبي إلى إعداد العينات وإجراءات المعايرة والحصول على البيانات وتحليلها.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

في العقود الأخيرة ، كانت الملقط البصري أداة قيمة لتوضيح الكيمياء الميكانيكية لتفاعلات البروتين على مستوى الجزيء الواحد ، نظرا للإمكانية المذهلة للتلاعب المتزامن وقياس التغيرات التوافقية والحركية الأنزيمية ^1,2. على وجه الخصوص ، فإن القدرة على تطبيق وقياس القوى في نطاق تلك التي تمارسها المحركات الجزيئية في الخلية ، جنبا إلى جنب مع القدرة على قياس التغيرات التوافقية دون النانومتر ، جعلت الملقط البصري أداة فريدة من نوعها أحادية الجزيء لكشف الخواص الميكانيكية الكيميائية للبروتينات الحركية وتنظيمها الميكانيكي.

التحليل الطيفي فائق السرعة (UFFCS) هو تقنية التحليل الطيفي للقوة أحادية الجزيء تعتمد على ملاقط بصرية ، تم تطويرها لدراسة الحركية السريعة للمحركات الجزيئية تحت الحمل في هندسة ثلاثية الخرز (الشكل 1 أ) ^3,4. يقلل UFFCS من الفارق الزمني لتطبيق القوة على البروتين الحركي إلى الحد المادي للملاقط الضوئية ، أي وقت الاسترخاء الميكانيكي للنظام ، مما يسمح بتطبيق القوة بسرعة بعد بداية تشغيل الميوسين (بضع عشرات من الميكروثانية)³. تم استغلال هذه القدرة للتحقيق في الأحداث الميكانيكية المبكرة في الميوسين العضلي الهيكلي ^{السريع 3} والقلب⁵ للكشف عن الاعتماد على الحمل لضربة القوة ، وحالات الربط الضعيفة والقوية ، بالإضافة إلى ترتيب الأحداث البيوكيميائية (Pi) والميكانيكية (powerstroke).

عادة ما يتم استخدام هندسة الخرز الثلاثة لدراسة المحركات غير المعالجة ، وقد تم استخدام هندسة حبة واحدة مع مشبك قوة بشكل شائع للتحقيق في الميوسين غير التقليدي مثل الميوسين Va⁶. ومع ذلك ، هناك عدة أسباب لتفضيل مقايسة UFFCS ثلاثية الخرزات أيضا للميوسينات العملية. أولا ، يسمح التطبيق السريع للحمل مباشرة بعد ربط الأكتين-الميوسين بقياس الأحداث المبكرة في تطور القوة كما هو الحال في المحركات غير المعالجة. بالإضافة إلى ذلك ، في حالة المحركات المعالجة ، فإنه يسمح أيضا بقياس دقيق لأطوال تشغيل المحرك وفترات التشغيل تحت قوة ثابتة طوال تقدمها (الشكل 1 ب). علاوة على ذلك ، نظرا لارتفاع معدل ردود الفعل للقوة ، يمكن للنظام الحفاظ على ثبات القوة أثناء التغييرات السريعة في الموضع ، مثل شوط عمل الميوسين ، وبالتالي ضمان حمل ثابت أثناء خطوة المحرك. تسمح الدقة الزمنية العالية للنظام باكتشاف التفاعلات الفرعية ، مما يفتح إمكانية التحقيق في الارتباط الضعيف للميوسين بالأكتين. أخيرا ، تضمن هندسة الفحص تطبيق القوة على طول خيوط الأكتين ، مع مكونات عرضية ورأسية لا تذكر للقوة. هذه النقطة ذات أهمية خاصة حيث ثبت أن مكون القوة الرأسية يؤثر بشكل كبير على اعتماد الحمل لحركية المحرك ^7,8. باستخدام هذه التقنية ، يمكننا تطبيق مجموعة من الأحمال المساعدة والمقاومة على الميوسين 5B المعالج وقياس اعتماد الحمل لعمليته مباشرة لمجموعة واسعة من القوى⁴.

كما هو موضح في الشكل 1 أ ، في هذا النظام ، يتم تعليق خيوط أكتين واحدة بين حبتين من البوليسترين محبوستين في بؤرة ملاقط بصرية مزدوجة ("الدمبل"). يتم فرض قوة صافية غير متوازنة F = F_1-F ₂ على الفتيل ، من خلال نظام تغذية مرتدة سريعة ، مما يجعل الفتيل يتحرك بسرعة ثابتة في اتجاه واحد حتى يصل إلى نقطة انعكاس يحددها المستخدم حيث يتم عكس القوة الكلية في الاتجاه المعاكس. عندما لا يتفاعل البروتين الحركي مع الفتيل ، يكون الدمبل حرا في التحرك ذهابا وإيابا في شكل موجة مثلثة (الشكل 1 ب ، اللوحة السفلية) تمتد على حبة القاعدة التي يرتبط بها بروتين محرك واحد. بمجرد إنشاء التفاعل ، يتم نقل القوة التي يحملها الدمبل بسرعة كبيرة إلى البروتين الحركي ويبدأ المحرك في إزاحة الفتيل عن طريق الدوس تحت شدة القوة والاتجاه الذي تم تطبيقه بواسطة نظام التغذية المرتدة في وقت التفاعل ، حتى ينفصل الميوسين عن الأكتين. نظرا لأن الإزاحة الناتجة عن خطوة المحرك تعتمد على قطبية خيوط الأكتين المحاصرة ، وفقا لاتجاه القوة المطبقة ، يمكن أن يكون الحمل إما مساعدا ، أي الدفع في نفس اتجاه إزاحة المحرك (الدفع في اللوحة العلوية الشكل 1 ب) ، أو مقاوما ، أي السحب في الاتجاه المعاكس فيما يتعلق بإزاحة المحرك (السحب في الشكل 1 ب اللوحة العلوية) مما يجعل من الممكن دراسة التنظيم الكيميائي الميكانيكي للعملية الحركية من خلال كل من شدة واتجاه الحمل المطبق.

في الأقسام التالية ، يتم وصف جميع الخطوات لقياس تفاعلات الأكتين-ميوسين-5B تحت أحمال مختلفة مع إعداد التحليل الطيفي فائق السرعة لمشبك القوة بشكل كامل ، بما في ذلك 1) إعداد الإعداد البصري ، ومحاذاة الفخاخ البصرية وإجراءات المعايرة ، 2) الاستعدادات لجميع المكونات وتجميعها في غرفة العينة ، 3) إجراء القياس ، 4) البيانات التمثيلية وتحليل البيانات لاستخراج المعلمات الفيزيائية الهامة ، مثل طول التشغيل وحجم الخطوة وسرعة البروتين الحركي.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

1. الإعداد البصري

ملاحظة: يتكون الإعداد التجريبي من ملاقط بصرية مزدوجة مع ثبات تأشير نانومتر وتقلبات شدة ليزر < 1٪. في ظل هذه الظروف ، يتم ضمان استقرار الدمبل على مستوى النانومتر تحت صلابة المصيدة النموذجية (0.1 pN / nm) والتوتر (1 pN - بضع عشرات من pN). يوضح الشكل 2 مخططا مفصلا للإعداد البصري.

ملاقط بصرية تصميم وبناء ⁹،¹⁰^،¹¹.
1. ضع جميع مكونات الإعداد على طاولة بصرية وفقا للمخطط في الشكل 2. لاحظ أن الجدول البصري يتضمن عوازل نشطة لتقليل الاهتزازات الميكانيكية. بالإضافة إلى ذلك ، يتم تثبيت هيكل المجهر على عوازل مرنة لامتصاص الضوضاء الصوتية والرنين الميكانيكي.
2. أدخل عازلا بصريا بالقرب من مصدر الليزر ("OI" في الشكل 2) ، لتجنب تقلبات السعة العشوائية بسبب التغذية المرتدة البصرية.
3. أغلق المسار بالكامل في صندوق مغلق لتقليل تيار الهواء والاضطرابات التي يمكن أن تؤثر على استقرار التأشير بالليزر.
4. قم بإنشاء ملاقط بصرية مزدوجة عن طريق تقسيم مصدر الليزر الرئيسي (ليزر Nd: YAG ، الطول الموجي 1,064 نانومتر في الشكل 2) إلى فرعين مع استقطابات متعامدة باستخدام مقسمات الحزمة المستقطبة (PBS). يجب تجنب الفخاخ المشتركة مع الوقت لأنها تحفز تذبذب الدمبل تحت التوتر¹².
5. استخدم اثنين من العاكسات الصوتية البصرية (AODs في الشكل 2) مدفوعة بواسطة أجهزة المزج الرقمية المباشرة (DDSs) للسماح بحركات دقيقة وسريعة للمصيدتين والتنظيم الدقيق لتوتر الأكتين عن طريق قيادة DDSs مباشرة من خلال المخرجات الرقمية من لوحة FPGA لصفيف البوابة القابلة للبرمجة الميدانية (انظر الشكل 2).
  ملاحظة: يجب أن يكون وقت الاستجابة الإجمالي للتغذية المرتدة <10 μs لتصحيح القوة الثابتة والحفاظ عليها بسرعة على كلا الفخاخ أثناء القياسات ، بما في ذلك الحالة غير المنضمة وتفاعل الميوسين والحركة. وتحقيقا لهذه الغاية، يجب أن يكون لكاشفات الموضع عرض نطاق >= kHz 100 ويجب الحصول على البيانات بمعدل عينة >= kHz 200. لكل نقطة بيانات تم الحصول عليها (وقت اكتساب 5 μs) ، يتم حساب التصحيحات النسبية للفخين بواسطة FPGA وإرسالها إلى DDS اللذين يقودان AODs. يجب أن يكون وقت استجابة AOD أقل من 5 μs لتلبية وقت استجابة التعليقات المطلوب.
6. للكشف عن موضع الخرز المحاصر ، ضع كاشفين رباعيين للصمام الثنائي الضوئي (QPDs في الشكل 2) في المستوى البؤري الخلفي للمكثف. ستضمن المحاذاة الدقيقة ل QPDs في مستوى مترافق مع المستوى البؤري الخلفي للمكثف ، وكذلك AODs في مستوى مترافق مع المستوى البؤري الخلفي للهدف ، أن إشارات QPDs ستكون مستقلة عن تردد AODs.
7. قم بتركيب AOD على مترجم خطي بمحرك ميكرومتر وقم بإزاحته حتى تقترب الحافة البلورية من شعاع الليزر. بعد ذلك ، استبدل الهدف بقزحية ، تتمحور حول مبيت الهدف الملولب ، وقم بتنظيم فتحته لتناسب حجم الفتحة الخلفية للهدف.
8. حرك المترجم نحو شعاع الليزر حتى يصبح جزء الشعاع المسدود بواسطة بلورة بيزو مرئيا بعد القزحية ، أدر المترجم للخلف قليلا لجعل الشعاع يملأ فتحة القزحية بالكامل مرة أخرى.
9. كرر الخطوات 1.1.7-1.1.8 ل AOD الثاني. تحقق من وقت استجابة حلقة التغذية الراجعة عن طريق قياس الفارق الزمني من QPDs أثناء تحريك شعاع بسرعة على حبة عالقة على سطح غطاء^{الغطاء 13}.
  ملاحظة: تؤدي الخطوات الثلاث المذكورة أعلاه (1.1.7-1-1-9) إلى محاذاة دقيقة لبلورات AOD. هذه الخطوات مهمة لتحسين الاستجابة الزمنية لكل من انحراف الحزمة والتغذية المرتدة¹³.
عن طريق الصمام الثنائي الضوئي ، قم بقياس تقلبات شدة ليزر الاصطياد عند مدخل المجهر والتي يجب أن تكون أقل من 1٪. لاحظ أن عرض النطاق الترددي للثنائي الضوئي يجب أن يكون أكبر من معدل التصوير.
تحقق من استقرار التأشير لكلا الفخاخ.
1. تحضير حبات السيليكا في عازلة الفوسفات (PB) عن طريق تخفيف 20 ميكرولتر من حبات السيليكا (1.2 ميكرومتر ، 10٪ مواد صلبة) في 1 مل من الأسيتون ، سونيكات لمدة 30 ثانية ، دوامة لفترة وجيزة ، وأجهزة طرد مركزي لمدة دقيقتين عند 19000 × جم.
2. قم بإزالة المادة الطافية ، وأعد تعليقها في 1 مل من الأسيتون ، وكرر الغسيل. إعادة تعليق في 1 مل من 50 مللي متر PB ، وغسل 2 مرات. أخيرا ، أعد التعليق في 100 ميكرولتر من 50 مللي متر بيتابيتا.
3. قم بإجراء معايرة الملقط البصري باستخدام حبات السيليكا عن طريق لصق غطاء على شريحة مجهر بشريط على الوجهين (بسمك حوالي 60 ميكرومتر) لبناء غرفة تدفق. املأ الحجرة ب 1 مجم / مل BSA (بروتين ألبومين مصل الأبقار) وانتظر لمدة 3 دقائق.
4. تدفق 1: 1000 تخفيف من حبات السيليكا في PB في الغرفة. استخدم حقنة مملوءة بشحم السيليكون لإغلاق الغرفة بعناية. اصطحب حبة واحدة في كل مصيدة وقم بتطبيق طريقة طيف الطاقة¹⁴ لمعايرتها.
5. تحضير حبات السيليكا في أسيتات البنتيل (في درجة حرارة الغرفة) عن طريق إذابة 20 ميكرولتر من حبات السيليكا (قطر 1.2 ميكرومتر ، 10٪ صلب) في 1-1.5 مل من الأسيتون والدوامة والسونيكات لمدة 30 ثانية.
6. جهاز طرد مركزي بسرعة 18,500 × جم لمدة 2 دقيقة. تخلص من المادة الطافية وأعد تعليقها في 1 مل من الأسيتون ، ثم كرر الغسيل. إعادة تعليق في 1 مل من خلات بنتيل وتكرار غسل (أجهزة الطرد المركزي والتعليق) في خلات بنتيل 2 مرات. أعد تعليق الحبيبات في 100 ميكرولتر من النيتروسليلوز 1٪ و 900 ميكرولتر من أسيتات البنتيل. يحفظ في درجة حرارة 4 درجة مئوية لمدة 2 أشهر.
7. خذ غطاء زجاجي مقاس 24 × 24 مم وقم بتنظيفه بعناية باستخدام ورق مبلل بالإيثانول النقي. ثم ، أثناء الإمساك به بملاقط نظيفة ، اشطفه مرة ثانية عن طريق غسله مباشرة بالإيثانول النقي. اتركه يجف تحت تدفق لطيف من النيتروجين. إذا لزم الأمر ، كرر هذه العملية لإزالة جميع البقايا المرئية على سطح الزجاج.
8. خذ مخزون حبات السيليكا ، دوامة عليه وصوتيك لفترة وجيزة لمدة ~ 30 ثانية.
9. بعد تنظيف غطاء الغطاء الثاني (24 × 60 مم) ، استخدمه لتشويه 2 ميكرولتر من محلول خرز السيليكا على سطح واحد من غطاء الغطاء ، وانتظر حتى يجف.
10. نظف بعناية شريحة مجهرية (26 × 76 مم) سيتم استخدامها لإنشاء غرفة التدفق.
11. اقطع سطرين من الشريط اللاصق المزدوج (~ 3 مم كبير ، سمك 60-100 ميكرومتر) وأرفقهما على جانب واحد من شريحة المجهر ، كما هو موضح في الشكل 3.
12. باستخدام ملاقط نظيفة ، أغلق الغرفة (حوالي 20 ميكرولتر الحجم النهائي) عن طريق وضع غطاء الغطاء المطلي (1.3.9) على اتصال مع خطوط الشريط اللاصق ، مع طبقة النيتروسليلوز + الخرز التي تواجه داخل الغرفة ، كما هو موضح في الشكل 3 أ. املأ حجرة التدفق بمحلول فوسفات 50 مللي متر وأغلقها بشحم السيليكون.
13. تخيل حبة سيليكا واحدة في الفحص المجهري الساطع بتكبير >200x باستخدام جهاز مقترن بالشحن (CCD) أو كاميرا تكميلية لأشباه الموصلات المعدنية (CMOS) بدقة >1.4 ميجابكسل. استخدم برنامج التغذية المرتدة لتحريك مرحلة بيزو (بدقة نانومتر أو أفضل) للتعويض عن الانجرافات الحرارية¹⁰.
14. تداخل مركز المصيدة اليسرى مع مركز الخرزة (يجب أن تتطابق مستويات إشارة x-y من QPD مع تلك الموجودة في المعايرة). ثم قم بقياس ضوضاء الموضع والانحراف المعياري لإشارات الموضع لهذا المصيدة.
15. كرر الخطوة السابقة للمصيدة الصحيحة¹⁵.
معايرة موضع المصيدة: MHz إلى nm
1. قم بإعداد غرفة تدفق مع حبات السيليكا المرفقة على سطح الغطاء (1.3.5-1.3.12) وخرز البوليسترين العائم (استخدم حبات α-actinin المترافقة المعدة كما في القسم التالي 2.1).
2. ركز حبة السيليكا على سطح انزلاق الغطاء قليلا (~ 5 ميكرومتر) من مركز مجال الرؤية (FOV) واحصل على صورة ل FOV. حرك الخرزة بمقدار 10 ميكرومتر باتجاه مركز FOV باستخدام مرحلة بيزو واحصل على صورة ثانية. احسب مركز الخرزة في الصورتين باستخدام خوارزمية centroid أو ما شابه ذلك واحسب المسافة بالبكسل بين الخرزتين للحصول على معايرة نانومتر / بكسل لكاميرا برايتفيلد.
3. اصطياد جسيم عائم واحد في فخ واحد. بعد ذلك ، حرك المصيدة باستخدام AOD في خطوات صغيرة (0.2 ميجاهرتز) واحصل على صورة للجسيم والتردد المقابل ل AOD لكل خطوة. احسب موضع الجسيم في مجال الرؤية باستخدام خوارزمية النقطه الوسطى كما كان من قبل وقم بتحويله إلى نانومتر باستخدام معايرة نانومتر / بكسل التي تم الحصول عليها في الخطوة السابقة.
4. قم بإجراء ملاءمة خطية لبيانات موضع التردد واحسب ثابت المعايرة بالميل الرقمي / ميجاهرتز.
5. تكرار المعايرة للمصيدة الثانية
معايرة قوة المصيدة والصلابة (ميجاهرتز مقابل W) ، QPD (ميجاهرتز مقابل pN / نانومتر)
1. قم بإعداد غرفة تدفق مع حبات السيليكا المرفقة على سطح الغطاء (1.3.5-1.3.12) وخرز البوليسترين العائم (استخدم حبات α-actinin المترافقة المحضرة كما في القسم التالي 2.1) وحبس جسيما واحدا في مصيدة واحدة. ثم قم بإزاحة كلا المصيدتين من خلال AODs في خطوات صغيرة (0.2 ميجاهرتز) وسجل حركة براونية للجسيم في كلا الفخاخ باستخدام QPD والتردد المقابل ل AODs.
2. احسب متوسط الطاقة على أجهزة الكشف في كل موضع واحصل على صلابة المصيدة وبيتا ثابت معايرة QPD عن طريق تركيب دالة لورنتزيان على طيف طاقة للحركة البراونية المسجلة¹³.

2. إعداد عينة

تحضير حبات الفلورسنت المترافقة α الأكتينين
1. قم بإجراء الاقتران¹⁶: خذ حبات البوليسترين ذات الوظائف الأمينية (قطرها 1 ميكرومتر ، 2.5٪ مواد صلبة) ، واغسلها مرتين في 500 ميكرولتر من الماء المقطر وأعيد تعليقها في 500 ميكرولتر من PBS (درجة الحموضة 7.0). أضف 1 مليمتر HaloTag succinimidyl ester O₂ ligand واحتضانه في درجة حرارة الغرفة لمدة 1 ساعة. اغسل ثلاث مرات مع 500 ميكرولتر من PBS وأعيد تعليقه باستخدام 100-200 ميكرومتر HaloTag α-actinin. احتضان لمدة 1 ساعة عند 37 درجة مئوية وغسل ثلاث مرات في 500 ميكرولتر من PBS (استخدم الخرز في غضون 1.5 أسبوع أو المجمد في النيتروجين السائل وخزن في -80 درجة مئوية).
2. وضع العلامات: احتضان 200 ميكرولتر من محلول الخرز باستخدام Rhodamine-BSA بتركيز نهائي 5 ميكروغرام / مل لمدة 10 دقائق. اغسل ب 50 مللي متر بيتابايت ثلاث مرات وأعد تعليقه في 500 ميكرولتر من PB 50 مللي متر. يمكن تخزين هذا في القسمة عند - 80 درجة مئوية لعدة أشهر).
التعبير عن وتنقية البيوتينيل Myosin-5B كما هو موضح سابقا⁴^،¹⁷.
بلمرة وتسمية F-actin¹³:
1. بلمرة F-actin: امزج 69 ميكرولتر من الماء عالي النقاء ، و 10 ميكرولتر من محلول بلمرة الأكتين 10x (100 mM Tris HCl ، 20 mM MgCl₂ ، 500 mM KCl ، 10 mM ATP ، 50 mM كربونات guanidine pH 7.5) ، 20 ميكرولتر من G-actin 10 mg / mL ، و 1 μL من DL -Dithiothreitol (DTT) 1 M. اتركه على الثلج لأكثر من 1 ساعة.
2. وضع العلامات على F-actin مع الرودامين (Ex / Em: 546/575 نانومتر): خذ 25 ميكرولتر من F-actin المبلمر وأضف 19.5 ميكرولتر من الماء عالي النقاء ، و 2.5 ميكرولتر من محلول بلمرة الأكتين 10x (100 mM Tris HCl ، 20 mM MgCl 2 ، 500 mM KCl ، 10 mM ATP ، 50 mM كربونات الجوانيدين pH 7.5) ، 1 ميكرولتر من 1 M DTT ، و₂ ميكرولتر من 250 ميكرومتر من رودامين فالويدين. اتركه على الثلج طوال الليل. لتجارب الاصطياد ، يمكن تخزين رودامين F-actin على الجليد واستخدامه في غضون أسبوع.
تجميع العينة
1. خذ غرفة التدفق (1.3.5-1.3.12) واحتضان 1 ملغ / مل من BSA البيوتينيل لمدة 5 دقائق. بعد الغسيل باستخدام محلول AB (25 ملي مل ممسحة ، 25 مللي مول KCl ، 4 مللي متر MgCl 2 ، 1 مللي متر EGTA ، 1 مللي متر DTT ، درجة حموضة_7.2) احتضان 1 ملغ / مل ستربتافيدين لمدة 5 دقائق واغسله مرة أخرى باستخدام AB Buffer. احتضان الميوسين-5B الميروميوسين الثقيل بيوتينيل بتركيز 3 نانومتر في المخزن المؤقت M5B (10 mM MOPS pH 7.3 ، 0.5 M NaCl ، 0.1 mM EGTA ، 3 mM NaN₃) مع 2 ميكرومتر كالمودولين (CaM) لمدة 5 دقائق. يغسل بثلاثة كميات من 1 ملغ/مل من البيوتينيل BSA المكمل ب 2 ميكرومتر من الكامي في AB ويحتضن لمدة 3 دقائق.
2. أثناء الحضانة ، قم بإعداد مزيج التفاعل (RM): 0.005٪ حبات وظيفية α-أكتينين (القسم 2.1) ، 1 نانومتر رودامين F-Actin (القسم 2.3) في مخزن التصوير (IB: AB عازلة مع 1.2 ميكرومتر جلوكوز أوكسيديز ، 0.2 ميكرومتر كاتلاز ، 17 مللي مول جلوكوز ، 20 مللي مول DTT ، 2 ميكرومتر كام و ATP بالتركيز اللازم للتجربة).
3. تغسل مع RM وختم الغرفة مع الشحوم السيليكون. العينة جاهزة الآن للمراقبة تحت المجهر.

3. القياس

تجميع الدمبل.
1. ابحث عن حبات α الأكتينين العائمة عن طريق تحريك العينة باستخدام مترجمين بعيدي المدى ، وقم بتشغيل مصيدة واحدة واصطياد حبة واحدة.
2. بمجرد شغل المصيدة الأولى ، حرك المترجم لوضع الخرزة المحاصرة بالقرب من سطح الغطاء لتجنب محاصرة حبات متعددة ، وحبس حبة أخرى في المصيدة الثانية.
3. اضبط المصيدتين على صلابة متساوية عن طريق ضبط قوة الموجات الصوتية AODs. عادة ما يتم ضبط الصلابة بين 0.03 و 0.14 pN / nm. كلما كانت الصلابة أصغر ، قل ضجيج القوة ، خاصة عند القوى المنخفضة.
4. ثم اقلب المرآة الآلية M (الشكل 2) للتبديل إلى الفحص المجهري الفلوري ، وابحث عن خيوط الأكتين العائمة في المحلول عن طريق إزاحة العينة من خلال مترجمين بعيدي المدى¹³. تفضل خيوط طويلة (>5 ميكرومتر) لأن الميوسين المعالج سوف يزيحها وينقلها لبضعة ميكرونات قبل الانفصال.
5. حرك العينة للسماح لإحدى الخرزات العالقة بالاقتراب من أحد طرفي الفتيل حتى تلتصق بعضها ببعض. بعد ذلك ، اضبط مسافة الخرز على طول الفتيل التقريبي وقم بإنشاء تدفق في اتجاه الخرزة الثانية غير المنضمة عن طريق تحريك المرحلة في اتجاهها. سيتم شد الفتيل بواسطة التدفق وسوف يرتبط به في النهاية¹³. يسمى مجمع حبة الأكتين "الدمبل".
إنشاء اتصال الأكتين والميوسين.
1. افصل المصيدتين برفق عن بعضهما البعض لشد الفتيل مسبقا حتى حوالي 3 pN وتحقق من صلابة الدمبل عن طريق جعل مصيدة واحدة تتأرجح في موجة مثلثة عن طريق تغيير تردد أحد AODs والتحقق من انتقال الحركة إلى الخرزة الخلفية من خلال إشارة موضعها.
2. حرك المسرح لوضع الدمبل بالقرب من حبة السيليكا ذات القاعدة والسماح بالتلامس بين الفتيل والبروتين المتصل بسطح الخرزة عن طريق ضبط ارتفاع مراكز الخرزة المحاصرة أسفل قطر حبة السيليكا بقليل. ثم ضع مركز حبة السيليكا بين الخرز المحاصر.
قوة المشبك وردود فعل تثبيت نانومتر:
1. قم بتشغيل مشبك القوة فائق السرعة بقوة 2-3 pN وتذبذب 200 نانومتر ومسح حبة القاعدة في خطوات منفصلة تبلغ حوالي 20-30 نانومتر في الاتجاه العمودي على خيوط الأكتين. انتظر حتى تحدث التفاعلات في كل موضع (بضع ثوان) ، ثم تقدم للأمام إذا لم يلاحظ أي تفاعل. عند إنشاء تفاعل خيوط البروتين ، ابحث عن الموضع الذي تكون فيه التفاعلات أكثر تكرارا.
2. تأكد من أنه عندما يتحرك الميوسين المعالج نحو أحد طرفي خيوط الأكتين (عادة ما يكون الطرف +) ، تتحرك الخرزة المحبوسة المرتبطة بالطرف + نحو حبة السيليكا. حرك المرحلة نحو نهاية الفتيل بحيث تقع حبة السيليكا في أقرب مكان ممكن من الخرزة المحبوسة المرتبطة بنهاية الفتيل عندما لا يكون الميوسين مرتبطا وابدأ التغذية المرتدة لتثبيت النانومتر. عند القيام بذلك ، يتم تقليل احتمال اصطدام الخرزة المحاصرة المرتبطة بنهاية + من الفتيل في حبة السيليكا.
تسجيل البيانات.

4. تحليل البيانات⁴

ملاحظة: تسمح طريقة التحليل الموصوفة باكتشاف وقياس عمليات التشغيل العملية وأحداث الخطوات السريعة بناء على التغيرات في سرعة الدمبل ، كما هو ناتج عن خطوة الميوسين. يتم إجراء تحليل عمليات التشغيل التصنيعية بناء على طريقة تحليل البيانات للمحركات غير المعالجة الموضحة في المراجع³،⁴^،¹³.

قم بتعيين حد لتغييرات السرعة للسماح باكتشاف الحدث المتدرج. نظرا لأنه في هذه الحالة من المتوقع أن تكون الخطوات الأمامية والخلفية متوقعة ، يتم قبول عبور العتبة في كلا الاتجاهين.
قم بتعيين كل خطوة إلى التشغيل المقابل: إذا كان الفاصل الزمني بين خطوتين متتاليتين أقصر من 3 مللي ثانية وكانت سعة الخطوات < 90 نانومتر ، يتم تعيين الخطوات لنفس التشغيل ، وإلا يتم تعيين الخطوات إلى عمليات تشغيل مختلفة⁴.
طول التشغيل الصحيح للقوات المساعدة⁴.
1. تصحيح أطوال التشغيل تحت القوى المساعدة عن طريق حساب قيمة طول التشغيل الحقيقية RL من متوسط قيمة طول التشغيل المقاسة <RL_m> من المعادلة التالية ، حيث D هو نطاق التذبذب:
  
  ملاحظة: يمكن العثور على تفاصيل اشتقاق هذه المعادلة في المرجع⁴.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تتكون البيانات التمثيلية في سجلات الموقف بمرور الوقت كما هو موضح في الشكل 4. في سجل الموقف ، يمكن رؤية نوعين من الإزاحة. أولا ، عندما لا يتفاعل محرك الميوسين مع خيوط الأكتين ، تتحرك الحبيبات المحبوسة بسرعة ثابتة مقابل قوة السحب اللزجة للمحلول مما يدل على إزاحة خطية تتأرجح داخل نطاق التذبذب الذي حدده المشغل في موجة مثلثة³ (غير مرئية في الشكل 4 بسبب المقياس الزمني الطويل). ثانيا، بمجرد تفاعل محرك الميوسين مع الفتيلة، تنتقل ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

على الرغم من أن تقنيات الجزيء الواحد ، مثل الفحص ثلاثي الخرز ، تمثل تحديا تقنيا وإنتاجية منخفضة ، إلا أن UFFCS يحسن اكتشاف التفاعلات الجزيئية بفضل نسبة الإشارة إلى الضوضاء العالية للبيانات. يسمح UFFCS بدراسة الاعتماد على الحمل للبروتينات الحركية ، مع المزايا الرئيسية لتطبيق القوة بسرعة كبيرة عند ربط المحرك بالخيوط لاستكشاف الأحداث المبكرة والسريعة جدا في إنتاج القوة وحالات الربط الضعيفة تحت القوة الخاضعة للرقابة ؛ الحفاظ على ثبات القوة طوال فترة التشغيل والتحقق من الاعتماد الحركي مع التحكم الكامل في اتجاه القوة. فيما يتع...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن المؤلفون عدم وجود مصالح متنافسة.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم دعم هذا العمل من قبل برنامج البحث والابتكار Horizon 2020 التابع للاتحاد الأوروبي بموجب اتفاقية المنحة رقم 871124 Laserlab-Europe ، من قبل وزارة الجامعات والبحوث الإيطالية (FIRB "Futuro in Ricerca" 2013 Grant No. RBFR13V4M2) ، ومن قبل Ente Cassa di Risparmio di Firenze. تم دعم A.V. Kashchuk من قبل زمالة متعددة التخصصات لبرنامج علوم الحدود البشرية LT008 / 2020-C.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسم	الشركة	رقم فهرسي	التعليقات
حبات اللاتكس الأليفاتية	ThermoFisher	A37362	1.0-& قطر م ، 2٪ (وزن / حجم)
أسيتون	سيجما	32201
عازلة بلمرة الأكتين	الهيكل الخلوي	BSA02	10X
AODs (عاكسات صوتية بصرية)	AA Opto Electronic	DTS-XY 250	عاكسات شعاع
الليزر ATP	Sigma	A7699
Biotinylated-BSA	ThermoFisher	29130
BSA	سيجما	B4287
كالمودولين من دماغ الخنازير (CaM)	ميرك ميليبور	208783
كاتالاز من كبد البقر	سيجما	C40
مكثف	أوليمبوس	أوليمبوس U-AAC ، أبلانات ، أكرومات	NA 1.4 ، غمر الزيت
الكرياتين فوسفات ملح رباعي هيدرات	سيجما	27920
الكرياتين فوسفوكيناز من عضلات الأرنب	Sigma	C3755
DDs	AA Opto Electronic	AA. دس. XX	مركب رقمي ثنائي القناة
DL-Dithiothreitol (DTT) / td>	Sigma	43819
EGTA	Sigma	E4378
G-actin بروتين	الهيكل الخلوي	AKL99
Glucose	Sigma	G7528
Glucose Oxidase من Aspergillus niger	Sigma	G7141
HaloTag succinimidyl ester O2 ligand	Promega	P1691
شحم سيليكون عالي الفراغ الثقيل	Merck Millipore	107921
KCl	Sigma	P9541
KH2PO4 / K2HPO4	Sigma	P5379 / P8281
Labview	National Instruments	الإصدار 8.1	الحصول على البيانات
Labview وحدة FPGA	الصكوك	الوطنية الإصدار 8.1	Fast Force-Clamp
Matlab	MathWorks	2016	تحليل البيانات
MgCl2	Fluka	63020
المجهر الهدف	نيكون	Plan-Apo 60X	NA 1.2 ، WD 0.2 مم ، الماء imm.
MOPS	Sigma	M1254
Nitrocellulose	Sigma	N8267	0.45 حجم المسام
محلول أسيتات البنتيل	Sigma	46022
الإيثانول النقي	سيجما	2860
QPDs UDT		DLS-20	D موقف كاشف
الرودامين BSA	المجسات الجزيئية	A23016
الرودامين فالويدين	& nbsp ؛ Sigma	P1951
حبات السيليكا	Bangslabs	SS04N	1.21 مم ، 10٪ مواد صلبة
أزيد الصوديوم	؛ سيجما	S2002
بروتين ستربتافيدين	سيجما	189730

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Ashkin, A., Dziedzic, J. M., Bjorkholm, J. E., Chu, S. Observation of a single-beam gradient force optical trap for dielectric particles. Optical Angular Momentum. 11 (5), 196-198 (2016).
Capitanio, M., Pavone, F. S. Interrogating biology with force: Single molecule high-resolution measurements with optical tweezers. Biophysical Journal. 105 (6), 1293-1303 (2013).
Capitanio, M., et al. Ultrafast force-clamp spectroscopy of single molecules reveals load dependence of myosin working stroke. Nature Methods. 9 (10), 1013-1019 (2012).
Gardini, L., et al. Dissecting myosin-5B mechanosensitivity and calcium regulation at the single molecule level. Nature Communications. 9 (1), (2018).
Woody, M. S., Winkelmann, D. A., Capitanio, M., Ostap, E. M., Goldman, Y. E. Single molecule mechanics resolves the earliest events in force generation by cardiac myosin. eLife. 8, 49266(2019).
Clemen, A. E. -M., Vilfan, M., Jaud, J., Zhang, J., Bä, M., Rief, M. Force-dependent stepping kinetics of myosin-V. Biophysical Journal. 88, 4402-4410 (2005).
Howard, J., Hancock, W. O. Three beads are better than one. Biophysical Journal. 118 (1), 1-3 (2020).
Pyrpassopoulos, S., Shuman, H., Ostap, E. M. Modulation of kinesin's load-bearing capacity by force geometry and the microtubule track. Biophysical Journal. 118 (1), 243-253 (2020).
Capitanio, M., Maggi, D., Vanzi, F., Pavone, F. S. FIONA in the trap: The advantages of combining optical tweezers and fluorescence. Journal of Optics A: Pure and Applied Optics. 9 (8), 157(2007).
Capitanio, M., Cicchi, R., Pavone, F. S. Position control and optical manipulation for nanotechnology applications. European Physical Journal B. 46 (1), 1-8 (2005).
Capitanio, M. Optical Tweezers. An introduction to Single Molecule Biophysics. , CRC Press. (2017).
Capitanio, M., Cicchi, R., Saverio Pavone, F. Continuous and time-shared multiple optical tweezers for the study of single motor proteins. Optics and Lasers in Engineering. 45 (4), 450-457 (2007).
Gardini, L., Tempestini, A., Pavone, F. S., Capitanio, M. High-speed optical tweezers for the study of single molecular motors. Methods in Molecular Biology. 1805, (2018).
Capitanio, M., et al. Calibration of optical tweezers with differential interference contrast signals. Review of Scientific Instruments. 73 (4), 1687(2002).
Monico, C., Belcastro, G., Vanzi, F., Pavone, F. S., Capitanio, M. Combining single-molecule manipulation and imaging for the study of protein-DNA interactions. Journal of Visualized Experiments. (90), e51446(2014).
Greenberg, M. J., Lin, T., Goldman, Y. E., Shuman, H., Ostap, E. M. Myosin IC generates power over a range of loads via a new tension-sensing mechanism. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 109 (37), 2433-2440 (2012).
Gardini, L., Arbore, C., Capitanio, M., Pavone, F. S. A protocol for single molecule imaging and tracking of processive myosin motors. MethodsX. 6, 1854-1862 (2019).
Ramaiya, A., Roy, B., Bugiel, M., Schäffer, E. Kinesin rotates unidirectionally and generates torque while walking on microtubules. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 114 (41), 10894-10899 (2017).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

تصحيح

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

Formal Correction: Erratum: Dissecting Mechanoenzymatic Properties of Processive Myosins with Ultra Force-Clamp Spectroscopy
Posted by JoVE Editors on 8/25/2021. Citeable Link.

An erratum was issued for: Dissecting Mechanoenzymatic Properties of Processive Myosins with Ultra Force-Clamp Spectroscopy. The title was updated.

The title was updated from:

Dissecting Mechanoenzymatic Properties of Processive Myosins with Ultra Force-Clamp Spectroscopy

to:

Dissecting Mechanoenzymatic Properties of Processive Myosins with Ultrafast Force-Clamp Spectroscopy

تشريح الخصائص الميكانيكية الأنزيمية للميوسينات العملية باستخدام التحليل الطيفي فائق السرعة لقوة المشبك

في هذه المقالة

إشعار تصحيح

ملخص

الملخص

المقدمة

البروتوكول

النتائج

المناقشة

الإفصاحات

شكر وتقدير

المواد

المراجع

إعادة الطباعة والأذونات

تصحيح

الوسوم

مقالات ذات صلة