مقالة منهجية

توليد نموذج إزالة الترسيب الاصطناعي للفأر مع استئصال المبيض لأبحاث إزالة ترسبات بطانة الرحم

DOI:

10.3791/64278

⸱

يوليو 27, 2022

 ,  ,  , 
1Center for Reproductive Medicine and Obstetrics and Gynecology, The Affiliated Drum Tower Hospital of Nanjing University Medical School, 2State Key Laboratory of Reproductive Medicine, Nanjing Medical University, 3Center for Molecular Reproductive Medicine, Nanjing University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

هنا ، نصف طريقة توليد نموذج إزالة الترسبات الاصطناعي باستخدام الفأر المبيض ، وهي تجربة كلاسيكية لإزالة ترسبات بطانة الرحم في مجال أبحاث إزالة ترسبات بطانة الرحم.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

إزالة بطانة الرحم هي عملية تمايز فريدة من نوعها في بطانة الرحم ، ترتبط ارتباطا وثيقا بالحيض والحمل. يؤدي ضعف إزالة الترسبات إلى اضطرابات بطانة الرحم المختلفة ، مثل العقم والإجهاض المتكرر والولادة المبكرة. كان تطوير واستخدام نموذج إزالة بطانة الرحم في الدراسات الإنجابية من أبرز ما يميز الباحثين الإنجابيين لفترة طويلة. تم استخدام الفأر على نطاق واسع في دراسة التكاثر وإزالة الترسيبات. هناك ثلاثة نماذج راسخة للفأر فيما يتعلق بإزالة الترسبات ، وهي إزالة الترسبات الطبيعية للحمل (NPD) ، وإزالة الترسبات الاصطناعية (AD) ، وإزالة الترسبات في المختبر (IVD). من بينها ، يعتبر AD نموذجا موثوقا به لإزالة الفأر ، وهو سهل التنفيذ وقريب من NPD. يركز هذا البحث على طريقة معدلة لعملية توليد وتطبيق نموذج إزالة الترسيب الاصطناعي للفأر مع استئصال المبيض لتجنب تأثيرات المبيض ، والتي يمكن أن تحصل على نتائج قابلة للتكرار بدرجة كبيرة مع اختلافات صغيرة داخل المجموعة. توفر هذه الطريقة نموذجا حيوانيا جيدا وموثوقا به لدراسة إزالة بطانة الرحم.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

مع تطور التكنولوجيا الإنجابية بمساعدة الإنسان ، وصل معدل الحمل السريري الحالي لنقل الأجنة في المختبر (IVF-ET) إلى أو حتى تجاوز معدل الحمل الطبيعي. على الرغم من ذلك ، لا يزال العديد من المرضى في الممارسة السريرية للمساعدة على الإنجاب يخضعون لعمليات نقل أجنة متعددة لكنهم يفشلون في تحقيق الحمل على النحو المطلوب. ومع ذلك ، لا تزال آليته الجزيئية المحددة غير واضحة ، لذا فإن التدخل السريري غير فعال ، وهو أحد التحديات الكبيرة التي تواجه الطب التناسلي 1,2.

تمثل عوامل بطانة الرحم حوالي ثلثي أسباب فشل التلقيح الاصطناعي3. ينقسم زرع الجنين البشري إلى ثلاث مراحل: تحديد المواقع والالتصاق والغزو4،5،6. يخضع بطانة الرحم للأم لسلسلة من التغييرات لتلبية وصول الجنين. يوفر تشكيل "فترة نافذة" الزرع ظروفا مواتية لزرع الجنين 7,8.

في معظم الثدييات ، بعد التصاق الكيسة الأريمية بالظهارة اللمعية للرحم ، تبدأ الخلايا اللحمية المحيطة بالكيس الأريمي في التكاثر والتمايز بسرعة ، وتغير إعادة التشكيل السريعة للحمة المتوسطة شكلها ووظيفتها ، مما يؤدي إلى زرع الجنين5،9،10. تسمح الزيادة السريعة في حجم الموقع ووزنه للكيسة الأريمية بأن تصبح جزءا لا يتجزأ من سدى الرحم ، وهي عملية تعرف باسم إزالة الترسبات11. تتمايز سدى بطانة الرحم وتعيد تشكيلها استعدادا للحمل ، بينما يوفر انتقال الخلايا اللحمية مساحة ووصلات إشارات جديدة للخلايا النفضية لأداء وظائفها12,13. تتحول الخلايا اللحمية إلى خلايا نفضية وتفرز العديد من العوامل المميزة مثل البرولاكتين (PRL) والبروتين المرتبط بعامل النمو الشبيه بالأنسولين 1 (Igfbp1) وما إلى ذلك. أظهرت الدراسات أن إزالة الترسبات غير الطبيعية هي أحد الأسباب الرئيسية لفشل زرع الجنين ، لكن سبب إزالة الترسبات غير الطبيعية لا يزال غير واضح ويحتاج إلى مزيد من التوضيح1،14.

يعد نموذج إزالة الترسيب الاصطناعي للفأر ضروريا لدراسة العملية الفسيولوجية والآليات الجزيئية الكامنة وراء إزالة الترسيب. يشير نزع الترسبات الاصطناعي (AD) بشكل أساسي إلى عملية إزالة بطانة الرحم التي أنشأتها طرق اصطناعية لمحاكاة الحمل أو الدورة الشهرية. من حيث التشكل ، هناك فرق عام بسيط بين إزالة الترسبات أثناء الحمل وإزالة الترسبات الاصطناعية15,16. توجد الغدد الرحمية في بطانة الرحم قبل شكل decidua وتختفي بعد إزالة الترسبات. فيما يتعلق بالتعبير الجيني ، يتم تحديد اختلاف طفيف فقط بين إزالة الحمل الطبيعي (NPD) و AD15. وبالتالي ، يمكن لنموذج إزالة الترسبات الاصطناعي في الفئران محاكاة إزالة الترسبات أثناء الحمل لاستكشاف التسبب غير المعروف والعلاج الجديد للأمراض التناسلية البشرية.

NPD و AD و decidualization في المختبر (IVD) هي ثلاث طرق لتحقيق إزالة الترسبات من الماوس. يعتمد نموذج NPD على الحمل الطبيعي وهو الأقرب إلى الحالة الفسيولوجية للأم ، بما في ذلك تأثيرات الأجنة. تعد مقارنة الاختلافات بين مواقع الزرع وغير المزروعة طريقة فسيولوجية ومريحة أكثر لدراسة إزالة الترسيب. تم تطوير نموذج مرض الزهايمر باستخدام حقن زيت السمسم داخل الرحم كمنشط للحث على إزالة الترسبات في أنثى فأر حامل كاذبة تتزاوج مع ذكور تم قطع القناة المنوية لتجنب تأثير الأجنة. يلعب كل من نماذج NPD و AD أدوارا أساسية في أغراض بحثية مختلفة ، لكنهما لا يستطيعان تجنب فشل التزاوج والاختلافات داخل المجموعة الناتجة عن الأنشطة المختلفة لعملية التمثيل الغذائي لهرمون الأم. IVD هي طريقة تعتمد على علاج هرمون الاستروجين والبروجستيرون مجتمعين على المستوى الخلوي ، الأمر الذي يتطلب ظروفا تجريبية أكثر صرامة وقدرة تشغيلية. ومع ذلك ، لا يمكن للنموذج في المختبر محاكاة الاستجابة العشرية بشكل كامل في ظل الظروف الفسيولوجية15. لذلك ، نقترح طريقة تحريض بسيطة ومحسنة معدلة من مرض الزهايمر التقليدي لتقليل تأثير الهرمونات الداخلية على إزالة الترسيب. بناء على ضمان نجاح تحريض إزالة الترسبات ، فهو أقرب إلى الحالة الفسيولوجية وأكثر ملاءمة للتجارب التي تحتاج إلى استبعاد عوامل الجنين.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تمت الموافقة على جميع التجارب على الحيوانات الموصوفة من قبل مستشفى برج الطبل التابع للجنة كلية الطب بجامعة نانجينغ حول استخدام ورعاية الحيوانات (رقم 20171202). تتبع جميع العمليات وكالة رعاية واستخدام الحيوانات المناسبة والمبادئ التوجيهية الوطنية.

ملاحظة: تمت تربية الفئران في بيئة محددة خالية من مسببات الأمراض (SPF) ، مع درجة حرارة 22 درجة مئوية ± 1 درجة مئوية ، ورطوبة نسبية تبلغ 50٪ ± 1٪ ، ودورة ضوء / مظلمة تبلغ 12 ساعة / 12 ساعة ، وحرية الوصول إلى الطعام والماء.

1. استئصال المبيض الفأر

  1. تعقيم الأدوات الجراحية مع معقم درجة حرارة عالية وضغط عالي 1 قبل يوم من العملية.
  2. قم بوزن الفئران C57BL / 6 البالغة من العمر 8 أسابيع وحقن 1٪ بنتوباربيتال الصوديوم داخل الصفاق وفقا لتخدير الفئران. الجرعة المستخدمة هي 40 ملغ/كغ17. توفر هذه الجرعة 40-60 دقيقة من التخدير ، والتي تلبي متطلبات استئصال المبيض. للتسكين قبل الجراحة، يتم حقن الفئران بجرعة 5 ملغ/كغ من ميلوكسيكام.
    ملاحظة: يمكن الإشارة إلى التخدير الناجح في الفئران من خلال اختفاء ردود الفعل العضلية العميقة والتنفس الثابت. تشمل علامات التخدير الناجح عدم الرمش عند لمس العلبة الداخلية ، وعدم البلع عند سحب اللسان ، وعدم ثني الساق عند قرص الجلد بين أصابع القدم ، وعدم الارتداد عند وخز الذيل.
  3. ضع مرهم العين الواقي على مقل العيون لمنع الجفاف أثناء التخدير.
  4. ابدأ العملية عندما يتم تخدير الفئران تماما. ضع الفئران وثبتها في وضعية الانبطاح على سطح التشغيل ، واحلق الشعر على الظهر بعد ترطيبها بالماء والصابون. تطهير الجلد مع 70 ٪ من الإيثانول بعد الحلاقة.
  5. ابحث عن موقع شق العملية على بعد 0.5 سم (أو 1.0 سم أسفل الضلع) على الحافة العلوية لجذر الفخذ لكلا الطرفين الخلفيين الموازيين للعمود الفقري (الشكل 1 أ).
    ملاحظة: موقع الشق الصحيح ضروري لتحديد موقع المبيض بسرعة.
  6. خذ موقع الشق كمركز وقم بتطهير منطقة الشق باستخدام iodophor 3x ، ثم ضع ستارة جراحية حول منطقة الشق.
  7. قم بعمل شق طولي بحوالي 0.5-1.0 سم باستخدام المقص. قطع اللفافة وفصل العضلات بشكل سلبي مع ملاقط.
  8. ابحث عن قطعة من وسادة الدهون البيضاء في حقل الشق بالقرب من القطب السفلي للكلية من خلال طبقة العضلات الرقيقة (الشكل 1 ب).
    ملاحظة: وسادة الدهون البيضاء هي المؤشر الأكثر وضوحا لموقع المبيض.
  9. قم بتثبيت كتلة الدهون بمقاطع مرقئ ، واسحب المبيض الملفوف بواسطة وسادة الدهون من الشق.
  10. المشبك تقاطع المبيض وقناة فالوب مع ملاقط منحنية ، وإزالة المبيض على طول عنيق المبيض مع مقص. أوقف النزيف باستخدام قلم التخثير الكهربائي أو إبرة من حقنة سعة 1 مل يتم تسخينها على مصباح الكحول.
    ملاحظة: تأكد من الحفاظ على قناة فالوب ، وهي المعلم التشريحي للحقن اللاحق لزيت السمسم في قرون الرحم.
  11. شطف الشق الجراحي بمحلول ملحي طبيعي لمنع التصاق الأنسجة ، واستخدام خياطة 4-0 لخياطة العضلات والجلد على التوالي ، وتطهير الشق الجراحي باستخدام اليودوفور مرة أخرى.
  12. ضع الفئران في وضعية الانبطاح في القفص وأنعشها في حاضنة 25 درجة مئوية مجهزة بمصدر ضوء ونظام تهوية لمدة 2 ساعة تقريبا.
  13. انتبه للفئران بعد العملية، وأعدها إلى مكان التغذية الأصلي بمفردها حتى تتعافى تماما، وامنحها ما يكفي من الماء والطعام.

2. الراحة بعد العملية الجراحية وصياغة هرمون الاستروجين والبروجستيرون

  1. تأكد من راحة الفئران لمدة 2 أسابيع بعد استئصال المبيض.
  2. في خزانة فائقة النظافة ، أضف الإستروجين (2 نانوغرام / ميكرولتر) والبروجسترون (0.2 نانوغرام / ميكرولتر) إلى زيت السمسم في أنابيب الطرد المركزي الخالية من إنزيمات الحمض النووي الريبي.
  3. ضع أنابيب الطرد المركزي في حمام مائي ثرموستاتي عند 37 درجة مئوية وهز الأنابيب باستمرار لتسريع الذوبان.
  4. بعد الذوبان الكامل ، قسم محلول زيت السمسم إلى 100 ميكرولتر من الإقوتات للاستخدام المريح. قم بتخزين محاليل الإستروجين والبروجسترون المحضرة في الثلاجة على حرارة 4 درجات مئوية.

3. نموذج إزالة الترسيب الاصطناعي المستحث

  1. تحت الجلد (s.c) حقن 100 نانوغرام من هرمون الاستروجين في 50 ميكرولتر من زيت السمسم في كل فأر لمدة 3 أيام ، تليها 2 أيام من الراحة15.
    ملاحظة: تأكد من أن هرمون الاستروجين والبروجسترون قد تمت صياغتهما ووضعهما في أماكن مختلفة. أي تلوث للإستروجين بالبروجسترون قد يؤدي إلى الفشل.
  2. حقن (s.c.) 1 ملغ من هرمون البروجسترون و 10 نانوغرام من هرمون الاستروجين في 50 ميكرولتر من زيت السمسم في كل فأر لمدة 3 أيام أخرى15.
  3. تشغيل الفئران للحث على نموذج decidualization الاصطناعي15 6 h بعد الحقن الثالث الاستروجين والبروجستيرون مجتمعة.
  4. ابحث عن قرن الرحم في الطرف السفلي من قناة فالوب وحقن 20 ميكرولتر من زيت السمسم ببطء مع قرن الرحم ، وادفع الأنسجة للخلف ، وخيط الشق ، واسمح للفأر بالتعافي. نهج العملية هو نفس استئصال المبيض الفأر15.
    ملاحظة: تابع الجراحة الثانية فقط في حالة استئصال المبيض الناجح (يتم التئام شق الجلد جيدا ، ويتم استئصال المبيض بالكامل ، ولا يتم التصاق الطرف المتبقي من قناة فالوب بالأنسجة المحيطة).
    ملاحظة: لتحفيز نموذج AD ، 20 ميكرولتر من زيت السمسم مناسب ؛ أكثر من 20 ميكرولتر من زيت السمسم سوف تخترق الجانب الآخر بسهولة.
  5. حقن (s.c.) 50 ميكرولتر من زيت السمسم يحتوي على 1 ملغ من هرمون البروجسترون و 10 نانوغرام من هرمون الاستروجين (H.) لمدة 4 أيام أخرى. انظر التفاصيل في الشكل 215,18.

4. جمع العينات

  1. القتل الرحيم للفئران (ن = 6) عن طريق الاختناق بثاني أكسيد الكربون وجمع الرحم. راقب شكل الرحم الثنائي ، والتقط صورا ، وقم بوزن قرون الرحم (الشكل 3 أ ، ب).
  2. إصلاح 3-5 مم من أنسجة الرحم مع 10 ٪ من الفورمالين ، وتضمينها في البارافين ، وتقسيمها. تلطيخ المقاطع مع الهيماتوكسيلين ويوزين لمراقبة التغيرات المورفولوجية19 (الشكل 4 أ).
  3. قم بتضمين 3-5 مم أخرى من أنسجة الرحم في مركب درجة حرارة القطع المثلى (OCT) ، وقم بتجميدها في النيتروجين السائل ، وتخزينها في ثلاجة -80 درجة مئوية. قسم الأنسجة المجمدة إلى 10 ميكرومتر والكشف عن نشاط الفوسفاتيز القلوي في أنسجة الرحم عن طريق طريقة اقتران الآزو20 (الشكل 4 ب).
    ملاحظة: يمكن الحصول على نتائج مرضية باستخدام الأقسام المجمدة للكشف عن محتوى ALP ، وليس أقسام البارافين.
  4. استخرج إجمالي الحمض النووي الريبي للرحم باستخدام كاشف Trizol وقم بإجراء تفاعل البوليميراز المتسلسل الكمي في الوقت الفعلي (qPCR) على نظام تفاعل البوليميراز المتسلسل في الوقت الفعلي (جدول المواد) باستخدام مزيج qPCR الرئيسي (جدول المواد) للكشف عن تعبير mRNA النسبي لعائلة البرولاكتين 8 أفراد الفصيلة الفرعية 2 (Prl8a2) ، كبد / عظم / كلية الفوسفاتيز القلوي (Alpl) ، وبروتين ربط عامل النمو الشبيه بالأنسولين 1 (Igfbp1) 15 عن طريق التطبيع إلى مستويات 18S mRNA (الشكل 4C-E ). اتبع شروط PCR: المرحلة 1 ، 95 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ؛ المرحلة 2 ، 95 درجة مئوية لمدة 10 ثوان و 60 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ؛ كرر الدورة 40x. يتم توفير قائمة كاملة من تسلسلات التمهيدي في الجدول 1.
  5. تحليل بيانات qPCR باستخدام طريقة 2-ΔΔCT وطريقة اختبار t للتحليل الإحصائي في البرنامج المناسب. في هذه الدراسة ، تم اعتبار p < 0.05 ذات دلالة إحصائية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تتضمن مؤشرات نموذج إزالة الترسبات من الفأر التشكل العام للرحم ، ونسبة كتلة الرحم المنزوع الترسبي وغير المنزوع الترسبي ، والتشكل النسيجي لبطانة الرحم ، ومستوى التعبير عن جزيئات علامة إزالة الترسب. التشكل العام للرحم الاصطناعي المنزوع الرواسب للفئران التي يسببها الزيت أقرب إلى الرحم أثناء الحمل. يصبح جسم الرحم سميكا ، ويصبح تجويف الرحم أصغر من الجانب غير المستحث. حجم ووزن قرن الرحم المستحث أعلى بكثير من الجانب غير المستحث (الشكل 3 أ ، ب). أظهر تلطيخ أنسجة الرحم أن الغدد تختفي ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

إزالة الترسبات في الفئران هي عملية عفوية تعتمد على وجود الأجنة ، والتي تختلف عن البشر. ومع ذلك ، فقد وجد أن التحفيز الاصطناعي مثل حقن الرحم من الخرز الزجاجي وتمزق الرحم يمكن أن يؤدي إلى إزالة بطانة الرحم بدلا من الأجنة. بالإضافة إلى ذلك ، وجد الباحثون أن العديد من العوامل يمكن أن تحفز العشرية أو المشاركة في إزالة الترسبات ، مثل حقن هرمونات الستيرويد والبروستاجلاندين والعوامل المثبطة للنمو في تجويف الرحم21. بالمقارنة مع طرق النمذجة المذكورة أعلاه ، فإن نموذج الماوس المفصل هنا مع استئصال المبيض ، با...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يرغب المؤلفون في الاعتراف بالدعم المقدم من المؤسسة الوطنية لعلوم الطبيعة في الصين (82001629 ، XQS) ، وبرنامج الشباب لمؤسسة العلوم الطبيعية في مقاطعة جيانغسو (BK20200116 ، XQS) ، وتمويل أبحاث ما بعد الدكتوراه في مقاطعة جيانغسو (2021K277B ، XQS).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
هرمون الاستروجينسيجماE2758مكمل هرموني
البروجسترونسيجماP0130مكمل هرموني
زيت السمسم  مكمل هرموني SigmaS3547
الصوديوم بنتوباربيتال Dainippon سوميتومو فارما المحدودةحقن التخدير
MeloxicamQilu منتجات صحة المحدودةتسكين
القلوية فوفاتاز طقم وصمة عار (طريقة اقتران kaplou's / azo)SolarbioG1480صبغة phophatase القلوية
EosinServicebioG1005-2HE وصمة عار
HematoxylinServicebioG1005-1HE وصمة عار
ChamQ عالمي SYBR qPCR ماستر ميكسVazymeQ711-02qPCR
70٪ إيثانولليركونZH1120090تطهير
اليودوفورRunzekangRZK-DFتطهير
مرهم العين الإريثروميسينقوانغتشو Baiyunshanمقلة العين حماية
4-0 خياطةEthiconW329شق
خياطة 10٪ فورمالينYuluL25010118Tissue Fix
مركب درجة حرارة القطع الأمثلSakura4583Ssection
Trizol ReagentAmbion15596018qPCR

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Carson, S. A., Kallen, A. N. Diagnosis and management of infertility: A review. JAMA. 326 (1), 65-76 (2021).
  2. Yatsenko, S. A., Rajkovic, A. Genetics of human female infertility dagger. Biology of Reproduction. 101 (3), 549-566 (2019).
  3. Sang, Y., Li, Y., Xu, L., Li, D., Du, M. Regulatory mechanisms of endometrial decidualization and pregnancy-related diseases. Acta Biochimica et Biophysica Sinica. 52 (2), 105-115 (2020).
  4. Ng, S. W., et al. Endometrial decidualization: The primary driver of pregnancy health. International Journal of Molecular Sciences. 21 (11), 4092(2020).
  5. Birgit, G., Brosens, J. J. Cyclic decidualization of the human endometrium in reproductive health and failure. Endocrine Reviews. 35 (6), 851-905 (2014).
  6. Owusu-Akyaw, A., Krishnamoorthy, K., Goldsmith, L. T., Morelli, S. S. The role of mesenchymal-epithelial transition in endometrial function. Human Reproduction Update. 25 (1), 114-133 (2019).
  7. Paulson, E. E., Comizzoli, P. Endometrial receptivity and embryo implantation in carnivores-commonalities and differences with other mammalian species. Biology of Reproduction. 104 (4), 771-783 (2021).
  8. Kelleher, A. M., Milano-Foster, J., Behura, S. K., Spencer, T. E. Uterine glands coordinate on-time embryo implantation and impact endometrial decidualization for pregnancy success. Nature Communications. 9 (1), 2435(2018).
  9. Tian, J., et al. Attenuated monoamine oxidase a impairs endometrial receptivity in women with adenomyosis via downregulation of FOXO1dagger. Biology of Reproduction. 105 (6), 1443-1457 (2021).
  10. Large, M. J., DeMayo, F. J. The regulation of embryo implantation and endometrial decidualization by progesterone receptor signaling. Molecular and Cellular Endocrinology. 358 (2), 155-165 (2012).
  11. Dunn, C. L., Kelly, R. W., Critchley, H. O. Decidualization of the human endometrial stromal cell: an enigmatic transformation. Reproductive BioMedicine Online. 7 (2), 151-161 (2003).
  12. Zhu, H., Hou, C. C., Luo, L. F., Hu, Y. J., Yang, W. X. Endometrial stromal cells and decidualized stromal cells: Origins, transformation and functions. Gene. 551 (1), 1-14 (2014).
  13. Jose, R. M., et al. Endometrial and decidual stromal precursors show a different decidualization capacity. Reproduction. 160 (1), 83-91 (2020).
  14. Pan-Castillo, B., et al. Morphophysical dynamics of human endometrial cells during decidualization. Nanomedicine. 14 (7), 2235-2245 (2018).
  15. Wang, C., et al. Comparative analysis of mouse decidualization models at the molecular level. Genes. 11 (8), 935(2020).
  16. De Clercq, K., Hennes, A., Vriens, J. Isolation of mouse endometrial epithelial and stromal cells for in vitro decidualization. Journal of Visualized Experiments. (121), e55168(2017).
  17. Kerger, H., et al. Microvascular oxygen delivery and interstitial oxygenation during sodium pentobarbital anesthesia. Anesthesiology. 86 (2), 372-386 (1997).
  18. Filant, J., Spencer, T. E. Endometrial glands are essential for blastocyst implantation and decidualization in the mouse uterus. Biology of Reproduction. 88 (4), 93(2013).
  19. Sheng, X., et al. The mitochondrial protease LONP1 maintains oocyte development and survival by suppressing nuclear translocation of AIFM1 in mammals. EBioMedicine. 75, 103790(2022).
  20. Grogg, E., Pearse, A. G. Coupling azo dye methods for histochemical demonstration of alkaline phosphatase. Nature. 170 (4327), 578-579 (1952).
  21. Labarta, E., et al. Analysis of serum and endometrial progesterone in determining endometrial receptivity. Human Reproduction. 36 (11), 2861-2870 (2021).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

Artificial DecidualizationMouse ModelOvariectomy SurgeryEndometrial DecidualizationUterine Horn InjectionHormone SupplementationHematoxylin Eosin StainingAlkaline Phosphatase ActivityEndometrial DisordersAdenovirus Injection

مقالات ذات صلة