مقالة منهجية

مجموعة أدوات مبتكرة للتحقيق في الآليات المعقدة لعدم انتظام ضربات القلب

1.7K مشاهدة

DOI:

10.3791/64932

فبراير 10, 2023

في هذه المقالة

الملخص

المقالات التي تمت مناقشتها: فئة

Tomsits ، P. ، Schuttler ، D. ، Kaab ، S. ، Clauss، S. ، Voigt ، N. عزل الخلايا العضلية الأذينية والبطينية عالية الجودة في الفئران للقياسات المتزامنة للعابرين Ca2 + وتيار الكالسيوم من النوع L. مجلة التجارب المتصورة. (165) ، 10.3791 / 61964 (2020). < p class = "jove_content" >Seibertz، F.، Reynolds، M.، Voigt، N. قياس إمكانات العمل البصري أحادي الخلية في خلايا عضلة القلب المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات التي يسببها الإنسان. مجلة التجارب المتصورة. (166) ، 10.3791 / 61890 (2020).

Xi، R. et al. عزل وثقافة البلاعم القلبية المقيمة من العقدة الجيبية الأذينية والأذينية البطينية. مجلة التجارب المتصورة. (171) ، 10.3791 / 62236 (2021).

Xi، R. et al. تلطيخ التألق المناعي بالكامل ، والتصوير متحد البؤر وإعادة بناء ثلاثية الأبعاد للعقدة الجيبية الأذينية والأذينية البطينية في الفأر. مجلة التجارب المتصورة. (166) ، 10.3791 / 62058 (2020). < p class = "jove_content" >Kumar ، P. ، Si ، M. ، Paulhus ، K. ، Glasscock ، E. تسجيل مجموعة الأقطاب الكهربائية الدقيقة لمعدل إطلاق العقدة الجيبية الأذينية لتحديد عيوب تنظيم ضربات القلب الجوهرية في الفئران. مجلة التجارب المتصورة. (173) ، 10.3791 / 62735 (2021). < p class = "jove_content" >Scherschel، K. et al. موقع وتشريح وتحليل عقدة الفئران النجمية. مجلة التجارب المتصورة. (166) ، 10.3791 / 62026 (2020).

Shimura، D.، Hunter، J.، Katsumata، M.، Shaw، R.M. إزالة موقع بدء انتقالي داخلي من mRNA مع الاحتفاظ بالتعبير عن البروتين كامل الطول. مجلة التجارب المتصورة. (181) ، 10.3791 / 63405 (2022).

Rotzer، R. D. et al. زرع أجهزة إرسال تخطيط القلب عن بعد وأجهزة إرسال ضغط الدم لتحديد حساسية الضغط الضغطي التلقائي في الفئران الواعية. مجلة التجارب المتصورة. (168) ، 10.3791 / 62101 (2021).

Tomsits، P. et al. تحليل تسجيلات تخطيط كهربية القلب طويلة المدى للكشف عن عدم انتظام ضربات القلب في الفئران. مجلة التجارب المتصورة. (171) ، 10.3791 / 62386 (2021). < p class = "jove_content" >Grab ، M. et al. تطوير وتقييم أشباح القلب والأوعية الدموية المطبوعة ثلاثية الأبعاد للتخطيط التدخلي والتدريب. مجلة التجارب المتصورة. (167) ، 10.3791 / 62063 (2021).

افتتاحية

عدم انتظام ضربات القلب شائع جدا ووثيق الصلة سريريا. ومع ذلك ، لا يزال العلاج الحالي غير كاف إلى حد كبير لأن معظم الاستراتيجيات العلاجية تركز فقط على الأعراض بدلا من استهداف الآليات السببية لعدم انتظام ضربات القلب. وبالتالي ، هناك حاجة ماسة إلى فهم أفضل لآليات المرض المعقدة لتطوير علاجات جديدة ومبتكرة وسببية.

الهدف من مجموعة طرق JoVE الحالية هو توفير مجموعة غير متحيزة ومتنوعة من البروتوكولات التي تسمح بالتحقيق الشامل في الجوانب المختلفة لعدم انتظام ضربات القلب.

يعد توازن الكالسيوم المتغير أحد السمات المميزة لعدم انتظام ضربات القلب ولكن لا يزال من الصعب التحقيق فيه نظرا لأنه يجب مراعاة جوانب متعددة ، كل منها يتطلب تقنيات محددة لدراسة1،2. في مجموعة الطرق هذه ، Tomsits et al. يوفر بروتوكولا يسمح بعزل خلايا عضلة القلب الأذينية والبطينية من نفس الفأر ودراسة كل من تيار الكالسيوم من النوع L وعابرات الكالسيوم في وقت واحد3. وبالتالي ، يمكن هذا البروتوكول الباحثين من التحقيق في اضطرابات الكالسيوم على مستوى العالم وتقليل أعداد في نفس الوقت ، مما يمثل تحسنا علميا وأخلاقيا كبيرا.

ومع ذلك ، يظل ترقيع الخلايا المعزولة تجارب معقدة وكثيفة العمالة ومنخفضة الإنتاجية4. لمعالجة هذا ، Seibertz et al. يقدم بروتوكولا باستخدام صبغة حساسة للجهد لقياس إمكانات العمل في خلايا عضلة القلب المشتقة من الخلايا الجذعية متعددة القدرات المستحثةالبشرية 5. نظرا لأن التقنية لا تحتاج إلى تدريب مكثف (حسب الحاجة لتثبيت التصحيح) ويمكن تطبيقها باستخدام إعداد تجريبي منخفض التكلفة نسبيا ، فإن هذا البروتوكول له تطبيقات واسعة.

إلى جانب خلايا عضلة القلب ، تلعب أنواع الخلايا الأخرى (على سبيل المثال ، الخلايا الليفية أو الضامة) دورا مهما في الفيزيولوجيا الكهربية6،7،8. للتحقيق في التأثيرات المحددة لنوع الخلية في نظام التوصيل ، Xia et al. يقدم دليلا خطوة بخطوة لتحديد العقدة الجيبية (SAN) والعقدة الأذينية البطينية (AVN) في الفئران9،10 متبوعا بالتشريح الدقيق وفرز الخلايا المنشطة بالفلورسنت (FACS) لعزل ودراسة البلاعم9 أو عن طريق التصوير المناعي الكامل. يسمح ذلك بتحديد أنواع الخلايا المختلفة ، وتقييم البنية ثلاثية الأبعاد ، ودراسة تعبير البروتين المحدد من نوع الخلية داخل SAN / AVN10.

علاوة على ذلك ، يمكن إجراء تسجيلات مصفوفة الأقطاب الكهربائية المتعددة (MEA) على مثل هذه الاستعدادات الكاملة كما قدمها Kumar et al.11. تعد هذه الطريقة إضافة ممتازة للتقنيات المستخدمة حاليا لأنها سريعة وبسيطة نسبيا وتوفر أيضا دقة مكانية فائقة. يسمح بالتدخلات الدوائية ويمكن تطبيقه بسهولة على مناطق محددة أخرى من القلب (على سبيل المثال ، AVN).

يلعب الجهاز العصبي اللاإرادي دورا أساسيا في الفيزيولوجيا الكهربية12،13،14 وهناك استراتيجيات علاجية ، مثل استئصال الودي15،16،17،18 أو استئصال العقد القلبية19. ومع ذلك ، لا يزال الأساس الميكانيكي غير معروف إلى حد كبير ، خاصة وأن الهياكل التشريحية للجهاز العصبي اللاإرادي لا يمكن الوصول إليها بسهولة في الفئران. في هذه القضية ، Scherschel et al. يقدم بروتوكولا يسمح بتحديد وتشريح العقد النجمية في الفئران لدراسة التعبيرات الجينية والبروتينية في أنواع مختلفة من الخلايا20. سيسمح ذلك بدراسة الجوانب الجديدة لإعادة التصميم اللاإرادي.

تعد دراسة الفيزيولوجيا الكهربية على المستوى الخلوي أمرا بالغ الأهمية لدراسة الآليات الأساسية. ومع ذلك ، لا تزال هناك حاجة إلى دراسات في الجسم الحي في النماذج الحيوانية للتحقق من صحة النتائج الخلوية وتأكيد الأهمية الفسيولوجية (المرضية) للهياكل المستهدفةالمحددة 21. تستخدم الفئران على نطاق واسع ، ولكن بشكل خاص جيل الفئران المعدلة وراثيا معقد. في هذا العدد ، شيمورا وآخرون يقدم بروتوكولا باستخدام تحرير الجينات CRISPR-Cas9 لدراسة الأدوار التنظيمية المعقدة للبروتينات المقطوعة وآثارها في الجسم الحي على وجه التحديد. لهذا ، قاموا بإنشاء نموذج فأر معدل وراثيا يؤوي طفرة أحادية النقطة في جين GJA1 الذي يشفر connexin-43. ينتج عن هذا تعبير منتظم ل Cx43 كامل الطول ولكن تعبيرا مقللا عن Cx4322 المبتور.

أحد القيود الرئيسية للدراسات في الجسم الحي هو الحاجة إلى تخدير أثناء التجارب ، والتي قد تؤثر على معلمات الفيزيولوجيا الكهربية المختلفة وبالتالي قد لا تمثل الوضع "الحقيقي"23،24. من ناحية أخرى ، تسمح أجهزة القياس عن بعد بدراسة الفئران المستيقظة والتحرك بحرية على مدى فترات طويلة من عدة أسابيع إلى أشهر25،26. Rötzer et al. يصف كيفية زرع أجهزة القياس عن بعد لتسجيل معدل ضربات القلب وضغط الدم في وقت واحد في الفئران ، مما يسمح على وجه التحديد بفحص الجهاز العصبي المستقل وحساسية baroreflex27.

على الرغم من أن أجهزة القياس عن بعد هي أدوات قوية للغاية ، إلا أنه لا يزال هناك تحد كبير: كيفية تحليل مجموعات البيانات الكبيرة هذه. لمعالجة هذه المشكلة ، يقوم Tomsits et al. بتطوير بروتوكول لتحليل تسجيلات تخطيط القلب عن بعد بطريقة موحدة شبه أوتوماتيكية28. باتباع بروتوكولهم ، يمكن للباحثين الحصول على معلمات تخطيط القلب الأساسية (على سبيل المثال ، معدل ضربات القلب أو فاصل العلاقات العامة) وفحص عدم انتظام ضربات القلب المحدد بشكل فردي (على سبيل المثال ، فترات التوقف ، برادي / عدم انتظام دقات القلب). الأهم من ذلك ، أنهم يناقشون أيضا تحديات ومزالق تسجيل وتحليل تخطيط كهربية القلب عن بعد ، بما في ذلك بعض الإرشادات لتحسين جودة الإشارة.

يتم اختبار الأجهزة الطبية المطورة حديثا ، مثل الصمامات الاصطناعية ، بدقة في النماذج الحيوانية قبل تطبيقها على المرضى من البشر29. ومع ذلك ، قد لا تترجم الدراسات التي أجريت على السليمة بشكل مثالي إلى المرضى من البشر ، خاصة أولئك الذين خضعوا لعملية جراحية سابقا30،31. للتغلب على هذه القيود ، يوفر Grab et al. بروتوكولا للطباعة ثلاثية الأبعاد لنماذج القلب الفردية الخاصة بالمريض32. نماذجهم مرنة وتشبه الخصائص الميكانيكية الحيوية بالإضافة إلى خصائص ديناميكية الدم المشابهة للمرضى من البشر. تسمح هذه النماذج بتدريس الأطباء ، واختبار الإجراءات أو الأجهزة التدخلية الجديدة ، وتخطيط استراتيجيات العلاج الفردية ، خاصة في المرضى الذين يعانون من تشريح معقد.

ستدعم البروتوكولات المقدمة في مجموعة طرق JoVE هذه العديد من الباحثين في دراسة الفيزيولوجيا الكهربية وعدم انتظام ضربات القلب. تكمن القوة الرئيسية لهذه المجموعة في أنها توفر تحسينات وابتكارات للتقنيات التقليدية ولكنها توضح أيضا مناهج جديدة لدراسة الجوانب المختلفة لاضطراب النظم القلبي. وبالتالي ستساعد هذه المجموعة على توسيع فهمنا لهذه الأمراض المعقدة وفي النهاية تطوير علاجات مبتكرة للمرضى الذين يعانون من عدم انتظام ضربات القلب.

الإفصاحات

المؤلف ليس لديه ما يفصح عنه.

شكر وتقدير

< p class = "jove_content">تم دعم المؤلف من قبل المركز الألماني لأبحاث القلب والأوعية الدموية (DZHK ؛ 81X2600255 ، 81X2600270 ، 81X2600266) ، ومؤسسة كورونا (S199 / 10079 / 2019) ، و ERA-NET لأمراض القلب والأوعية الدموية (ERA-CVD ؛ 01KL1910) ومؤسسة هاينريش آند لوت مولفنزل. لم يكن للممولين أي دور في إعداد المخطوطة.

المراجع

  1. Denham, N. C., et al. Calcium in the pathophysiology of atrial fibrillation and heart failure. Frontiers in Physiology. 9, 1380(2018).
  2. Grandi, E., et al. Human atrial action potential and Ca2+ model: sinus rhythm and chronic atrial fibrillation. Circulation Research. 109 (9), 1055-1066 (2011).
  3. Tomsits, P., Schuttler, D., Kaab, S., Clauss, S., Voigt, N. Isolation of high quality murine atrial and ventricular myocytes for simultaneous measurements of Ca2+ transients and L-Type calcium current. Journal of Visualized Experiments. (165), e61964(2020).
  4. Kohncke, C., et al. Isolation and Kv channel recordings in murine atrial and ventricular cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments. (73), e50145(2013).
  5. Seibertz, F., Reynolds, M., Voigt, N. Single-Cell optical action potential measurement in human induced pluripotent stem cell-derived cardiomyocytes. Journal of Visualized Experiments. (166), e61890(2020).
  6. Grune, J., et al. Neutrophils incite and macrophages avert electrical storm after myocardial infarction. Nature Cardiovascular Research. 1 (7), 649-664 (2022).
  7. Hulsmans, M., et al. Macrophages facilitate electrical conduction in the heart. Cell. 169 (3), 510-522 (2017).
  8. Xia, R., et al. Cardiac macrophages and their effects on arrhythmogenesis. Frontiers in Physiology. 13, 900094(2022).
  9. Xia, R., et al. Isolation and culture of resident cardiac macrophages from the murine sinoatrial and atrioventricular node. Journal of Visualized Experiments. (171), e62236(2021).
  10. Xia, R., et al. Whole-Mount immunofluorescence staining, confocal imaging and 3D reconstruction of the sinoatrial and atrioventricular node in the mouse. Journal of Visualized Experiments. (166), e62058(2020).
  11. Kumar, P., Si, M., Paulhus, K., Glasscock, E. Microelectrode array recording of sinoatrial node firing rate to identify intrinsic cardiac pacemaking defects in mice. Journal of Visualized Experiments. (173), e62735(2021).
  12. Chen, P. S., Choi, E. K., Zhou, S., Lin, S. F., Chen, L. S. Cardiac neural remodeling and its role in arrhythmogenesis. Heart Rhythm. 7 (10), 1512-1513 (2010).
  13. Fukuda, K., Kanazawa, H., Aizawa, Y., Ardell, J. L., Shivkumar, K. Cardiac innervation and sudden cardiac death. Circulation Research. 116 (12), 2005-2019 (2015).
  14. Gardner, R. T., Ripplinger, C. M., Myles, R. C., Habecker, B. A. Molecular mechanisms of sympathetic remodeling and arrhythmias. Circulation. Arrhythmia and Electrophysiology. 9 (2), 001359(2016).
  15. Dusi, V., De Ferrari, G. M., Pugliese, L., Schwartz, P. J. Cardiac sympathetic denervation in channelopathies. Frontiers in Cardiovascular Medicine. 6, 27(2019).
  16. Dusi, V., et al. Left cardiac sympathetic denervation for long QT syndrome: 50 years' experience provides guidance for management. JACC Clinical Electrophysiology. 8 (3), 281-294 (2022).
  17. De Ferrari, G. M., et al. Clinical management of catecholaminergic polymorphic ventricular tachycardia: The role of left cardiac sympathetic denervation. Circulation. 131 (25), 2185-2193 (2015).
  18. Schwartz, P. J., Ackerman, M. J. Cardiac sympathetic denervation in the prevention of genetically mediated life-threatening ventricular arrhythmias. European Heart Journal. 43 (22), 2096-2102 (2022).
  19. Qin, M., Zeng, C., Liu, X. The cardiac autonomic nervous system: A target for modulation of atrial fibrillation. Clinical Cardiology. 42 (6), 644-652 (2019).
  20. Scherschel, K., et al. dissection, and analysis of the murine stellate ganglion. Journal of Visualized Experiments. (166), e62026(2020).
  21. Clauss, S., et al. Animal models of arrhythmia: classic electrophysiology to genetically modified large animals. Nat Reviews. Cardiology. 16 (8), 457-475 (2019).
  22. Shimura, D., Hunter, J., Katsumata, M., Shaw, R. M. Removal of an internal translational start site from mRNA while retaining expression of the full-length protein. Journal of Visualized Experiments. (181), e63405(2022).
  23. Bennett, K., Lewis, K. Sedation and anesthesia in rodents. The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 25 (1), 211-255 (2022).
  24. Poon, Y. Y., et al. Disproportional cardiovascular depressive effects of isoflurane: Serendipitous findings from a comprehensive re-visit in mice. Lab Animal (NY). 50 (1), 26-31 (2021).
  25. Cesarovic, N., Jirkof, P., Rettich, A., Arras, M. Implantation of radiotelemetry transmitters yielding data on ECG, heart rate, core body temperature and activity in free-moving laboratory mice. Journal of Visualized Experiments. (57), e3260(2011).
  26. McCauley, M. D., Wehrens, X. H. Ambulatory ECG recording in mice. Journal of Visualized Experiments. (39), 10(2010).
  27. Rotzer, R. D., et al. Implantation of combined telemetric ECG and blood pressure transmitters to determine spontaneous baroreflex sensitivity in conscious mice. Journal of Visualized Experiments. (168), e62101(2021).
  28. Tomsits, P., et al. Analyzing long-term electrocardiography recordings to detect arrhythmias in mice. Journal of Visualized Experiments. (171), e62386(2021).
  29. Hytonen, J. P., Yla-Herttuala, S. Preclinical evaluation of coronary artery stents. Journal of Visualized Experiments. (186), e64038(2022).
  30. Gruzdeva, O. V., et al. Comparative analysis of the hemostasiological profile in sheep and patients with cardiovascular pathology as the basis for predicting thrombotic risks during preclinical tests of vascular prostheses. Sovremennye Tekhnologii v Meditsine. 13 (1), 52-56 (2021).
  31. Weisskopf, M., Kron, M., Giering, T., Walker, T., Cesarovic, N. The sheep as a pre-clinical model for testing intra-aortic percutaneous mechanical circulatory support devices. The International Journal of Artificial Organs. 44 (10), 703-710 (2021).
  32. Grab, M., et al. Development and evaluation of 3D-printed cardiovascular phantoms for interventional planning and training. Journal of Visualized Experiments. (167), e62063(2021).

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

Cardiac MyocytesElectrocardiographyPacemaking DefectsCalcium CurrentOptical Action PotentialCardiac MacrophagesImmunofluorescence StainingMicroelectrode ArrayBaroreflex Sensitivity3D printed Cardiovascular PhantomsSinoatrial NodeAtrioventricular Node