يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تحريض تضيق مجرى البول متبوعا برأب الإحليل بطعم الغشاء المخاطي الشدقي في نموذج الفئران

2.2K مشاهدة

DOI:

10.3791/65094

أبريل 28, 2023

في هذه المقالة

ملخص

في البروتوكول الحالي ، تم تطوير تحريض تضيق مجرى البول في فئران Wistar ، تليها إعادة بناء مجرى البول مع طعم الغشاء المخاطي الشدقي. تم إجراء تصوير الإحليل الرجعي وتقييم دوبلر بالليزر ، للتحقق من صحة إعادة بناء مجرى البول (بعد تكوين التضيق) ووضع الكسب غير المشروع.

الملخص

إعادة بناء مجرى البول هو مجال مهم من الخبرة لأطباء المسالك البولية. يعتبر الغشاء المخاطي الشدقي الخيار الأفضل عندما يكون تطعيم مجرى البول ضروريا ، على الرغم من أنه في بعض الحالات ، يكون غير مناسب أو يحتاج إلى تحسين لإصلاح تضيق معين. لذلك ، فإن تطوير إجراءات مبتكرة وتقييم نجاحها المفترض في النماذج التجريبية أمر بالغ الأهمية لتناسب الحاجة السريرية. مع هذا الهدف ، تصف هذه الدراسة بروتوكولا تم فيه تحفيز تضيق مجرى البول بواسطة الكي الكهربائي في فئران Wistar. تم إجراء إعادة بناء مجرى البول بعد 1 أسبوع مع طعم الغشاء المخاطي الشدق ، الذي تم حصاده من الشفة السفلى ، ووضعه بطريقة بطانة بطنية. أظهر مخطط الإحليل الرجعي تحسنا ملحوظا في قطر مجرى البول بعد رأب الإحليل مقارنة بالقيمة ذات الصلة بعد تحريض التضيق. بالإضافة إلى ذلك ، تم تقييم موضع الكسب غير المشروع عن طريق تحليل نضح الدم باستخدام دوبلر بالليزر. كما هو متوقع ، تتوافق منطقة زرقاء داكنة مع طعم الغشاء المخاطي الشدقي غير الوعائي. يمكن لهذا الإجراء أن يحاكي بنجاح العملية الفيزيولوجية المرضية الطبيعية لإصابة مجرى البول وتعديل الأنسجة ، وكذلك إعادة بناء مجرى البول باستخدام طعم الغشاء المخاطي الشدقي بطريقة قابلة للتكرار ، ويكون بمثابة أساس للبحوث المستقبلية القائمة على هندسة الأنسجة أو ترقيع مجرى البول.

المقدمة

تمثل إعادة بناء مجرى البول تحديا كبيرا لجراحي المسالك البولية في إدارة إصابة مجرى البول في وضع التضيقات أو الصدمات أو العيوب الخلقية1. مع النية العلاجية ، رأب الإحليل هو العلاج المفضل لمعظم المرضى ، مع عيوب مجرى البول الطويلة (>2 سم) والأمامية التي تتطلب شكلا من أشكال رأب الإحليل البديل2. تم استخدام العديد من الأنسجة كبدائل لمجرى البول ، بما في ذلك ترقيع الجلد الكامل أو المقسم للمناطق التناسلية أو خارج الأعضاء التناسلية ، أو الغشاء المخاطي لجدار المثانة ، أو الغشاء المخاطي الشدقي2 الواسع الانتشار. تتميز الطعوم المخاطية الشدقية بالعديد من المزايا ، مثل القدوم من بيئة رطبة وخالية من الشعر ، وسهولة الحصاد ، ومقاومة العدوى ، وظهارة سميكة ، وتقليل احتمالية تكوين الرتج الزائف ، وصفيحة رقيقة ، مما يسمح بالتشرب المبكر والتلقيح3. على عكس اللوحات ، لا تحتوي الطعوم على إمدادات الدم ، اعتمادا على سرير الأوعية الدموية للمتلقي للبقاء على قيد الحياة4.

تم استخدام النماذج الحيوانية للطعوم أو اللوحات على نطاق واسع لتطوير أو تحسين التقنيات الجراحية ، ودراسة وفهم فسيولوجيا الأنسجة ، والآليات الأساسية ، وأسباب الفشل ، وتقييم استراتيجيات العلاج المبتكرة5،6. على الرغم من أن الأكبر حجما تسهل التنفيذ الفني ، إلا أن القوارض ، وهي الجرذان والفئران ، أسهل في التعامل معها وصيانتها ، ومقاومة للأمراض ، وأكثر فعالية من حيث التكلفة ، والأهم من ذلك ، مع أدوات التحقيق في الآليات الجزيئية ، وهي ضرورية لاختبار العلاجات المبتكرة 5,6. تم وصف عدة نماذج من اللوحات والطعوم في الفئران باستخدام أنسجة مختلفة ، وهي الجلد والعظام والعضلات6 والأوعية5 وحتى الأعضاء الصلبة7. ومع ذلك ، هناك فحص نادر في نماذج الفئران في الطعوم لإعادة بناء مجرى البول أو هندسة الأنسجة.

ومع ذلك ، فإن التقدم في العلوم الانتقالية يعتمد على النماذج الحيوانية التي تحاكي المرض. حتى الآن ، لم تتم معالجة بيئة الفيزيولوجيا المرضية المحلية ، حيث يتم إجراء إعادة بناء مجرى البول مباشرة بعد تضيقه. هنا ، تهدف هذه الدراسة إلى إجراء إعادة بناء مجرى البول باستخدام طعم الغشاء المخاطي الشدقي في بيئة الفيزيولوجيا المرضية المحلية. مع هذا الهدف ، تم حث تضيق مجرى البول 1 أسبوع قبل إعادة بنائه. يسمح هذا النموذج التجريبي ، الذي يتم إجراؤه على الفئران ، باختبار العلاجات المبتكرة والتحقيق في آلياتها الجزيئية ومزاياها السريرية في المستقبل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تم تنفيذ جميع الإجراءات الحيوانية وفقا للتوجيه 2010/63 / EU. تمت الموافقة على الإجراءات من قبل هيئة رعاية المؤسسية ، المرخصة من قبل DGAV ، السلطة البرتغالية المختصة بحماية (ترخيص رقم 0421/000/000/2021). تم استخدام ذكور فئران Wistar Han IGS (Crl: WI (Han) (400-500 جم) في عمر 12-14 أسبوعا في الدراسة الحالية. تم الحصول على من مصدر تجاري (انظر جدول المواد).

1. إعداد الحلول

  1. محلول مخدر
    1. املأ حقنة سعة 3 مل ب 2.3 مل من ميديتوميدين (1 مجم / مل ؛ 0.715 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل.
    2. املأ حقنة سعة 3 مل ب 1.55 مل من الفنتانيل (0.05 مجم / مل ؛ 0.02 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى نفس أنبوب الطرد المركزي سعة 15 مل.
    3. املأ حقنة سعة 10 مل ب 6.15 مل من الميدازولام (5 مجم / مل ؛ 9.5 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى نفس أنبوب الطرد المركزي سعة 15 مل ، مما يجعل محلول مخدر سعة 10 مل.
    4. قم بتسمية الأنبوب وتخزينه في درجة حرارة 4 درجات مئوية في الظلام.
      ملاحظة: يوفر هذا المزيج المخدر (ميديتوميدين وفنتانيل وميدازولام) نافذة جراحية مخدرة تصل إلى 3 ساعات. إدارة أتيباميزول وفلومازينيل قد يعيد التأثير.
  2. محلول مضاد للمهدئات
    1. املأ حقنة سعة 1 مل ب 0.7 مل من أتيباميزول (5 مجم / مل ؛ 3.72 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل.
    2. املأ حقنة سعة 10 مل ب 9.3 مل من فلومازينيل (0.1 مجم / مل ؛ 1.56 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى نفس أنبوب الطرد المركزي سعة 15 مل ، مما يجعل محلول مضاد للمهدئات سعة 10 مل.
    3. قم بتسمية الأنبوب وتخزينه في درجة حرارة 4 درجات مئوية في الظلام.
  3. حلول تسكين ما بعد الجراحة
    1. املأ حقنة سعة 1 مل ب 0.5 مل من الكاربروفين (50 مجم / مل ؛ 5 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل.
    2. أضف 9.5 مل من محلول كلوريد الصوديوم (0.9٪) ، واحصل على محلول كاربروفين سعة 10 مل.
    3. املأ حقنة سعة 1 مل ب 1 مل من البوبرينورفين (0.3 مجم / مل ؛ 0.01-0.05 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل.
    4. أضف 9 مل من محلول كلوريد الصوديوم (0.9٪) ، واحصل على محلول البوبرينورفين 10 مل.
    5. قم بتسمية الأنابيب وتخزينها في درجة حرارة 4 درجات مئوية في الظلام.
  4. المضادات الحيوية المحيطة بالجراحة
    1. املأ حقنة سعة 2.5 مل ب 2.5 مل من إنروفلوكساسين (25 مجم / مل ؛ 10 مجم / كجم من وزن الجسم) وانقلها إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل.
    2. أضف 7.5 مل من محلول كلوريد الصوديوم (0.9٪) ، للحصول على محلول إنروفلوكساسين سعة 10 مل.
    3. قم بتسمية الأنبوب وتخزينه في درجة حرارة 4 درجات مئوية في الظلام.
      ملاحظة: يتم سرد تفاصيل جميع الكواشف لإعداد الحلول المذكورة أعلاه في جدول المواد.

2. الحث الجراحي لتضيق مجرى البول

ملاحظة: تم إجراء العمليات الجراحية باستخدام مجهر ستيريو (10x) (انظر جدول المواد).

  1. تعقيم جميع الأدوات الجراحية قبل الاستخدام: شفرة المشرط (رقم 11) ، ملقط مدبب ، مقص زنبركي ، ملقط جراحي ، حامل إبرة عيون ، مقص جراحي ، وحامل إبرة. استخدم كرات قطنية معقمة لتنظيف المجال الجراحي.
  2. قم بتحميل المحقنة بمحلول التخدير قبل إمساك الفئران.
  3. كبح جماح باستخدام أنبوب أو منشفة ورفع الذيل لفضح البطن.
  4. الحفاظ على ضبط النفس وإجراء حقن داخل الصفاق من محلول التخدير (أعدت في الخطوة 1.1).
  5. اختبر ردود فعل انسحاب دواسة الفئران لتقييم التخدير.
  6. تطبيق هلام العين واقية في كلتا العينين من. إجراء حقن تحت الجلد من محلول المضاد الحيوي (المحضر في الخطوة 1.1) ، عند 10 ملغم / كغم من وزن الجسم.
  7. ضع الجرذ في وضع الاستلقاء الظهري على وسادة ساخنة واستخدم مجهر تشريح بتكبير 10x أو 20x لإجراء العملية الجراحية.
  8. نظف القضيب وجلد البطن المحيط به باستخدام البوفيدون اليود (100 مجم / مل).
  9. اسحب القلفة يدويا وضع خياطة إقامة سطحية (7.0 خياطة ؛ انظر جدول المواد) في الجانب الظهري من حشفة القضيب لتطبيق الجر على القضيب ، وترك حامل الإبرة في مكانه للحفاظ على تراجع القضيب.
  10. ضع قسطرة وريدية 22 جيجا في مجرى البول للقسطرة باستخدام هلام مواد التشحيم.
  11. باستخدام شفرة مشرط جراحية (رقم 11) ، قم بإجراء شق بطني طولي 1 سم في جلد القضيب.
  12. باستخدام الملقط المدبب والمقص الربيعي ، قم بتشريح طبقات أنسجة القضيب حتى تعريض مجرى البول عند مستوى منتصف العمود.
  13. باستخدام جهاز الكي الكهربائي (انظر جدول المواد) ، قم بتطبيق تيار بقدرة 10 واط ، لمدة 1 ثانية ، في الجوانب الجانبية للإحليل (في مكان واحد على كل جانب) ، بطنيا على مستوى العمود الأوسط للقضيب.
  14. أغلق الشق بخياطة جري قابلة للامتصاص 6.0 (انظر جدول المواد).
  15. إزالة قسطرة مجرى البول. إزالة خياطة الجر القضيب.
  16. إجراء الحقن تحت الجلد من التسكين: كاربروفين في 5 ملغ / كغ من وزن الجسم ، والبوبرينورفين في 0.03 ملغ / كغ من وزن الجسم.
  17. قم بتحميل المحقنة بمحلول مضاد للمهدئات (تم إعداده في الخطوة 1.2) ، ومع وجود في الاستلقاء البطني ، قم بخيمة الجلد المترهل لإدارة حقنة تحت الجلد من المحلول المضاد للمهدئات.

3. الإجراء الجراحي لرأب الإحليل مع طعم الغشاء المخاطي الشدقي

ملاحظة: تم إجراء العمليات الجراحية باستخدام مجهر ستيريو (10x) (انظر جدول المواد).

  1. تعقيم جميع الأدوات الجراحية اللازمة لهذا التدخل: ملقط مدبب ، مقص زنبركي ، حامل إبرة عينية ، مقص جراحي ، حامل إبرة ، ثلاثة ملقط للبعوض ، وشفرة مشرط (رقم 11). استخدم إسفنجات صغيرة لتنظيف المجال الجراحي.
  2. تطبيق المخدر والمضاد الحيوي وضبط النفس ووضع كما هو موضح سابقا (الخطوات 2.2-2.8).
  3. نظف الغشاء المخاطي الشدقي للشفة السفلى والقضيب وجلد البطن المحيط باستخدام البوفيدون اليود (100 مجم / مل).
  4. ضع ثلاث خيوط (7.0 غرز) في الشفة السفلى ، على كلا الجانبين وفي المنتصف ، واترك البعوضة في كل واحدة لسحب الشفة السفلية وكشف الغشاء المخاطي الداخلي.
  5. باستخدام مقص زنبركي وملقط مدبب ، احصد طعما قطره 4 مم من الغشاء المخاطي الشدقي الداخلي للشفة السفلية ، وضعه في مستقبل صغير بمحلول ملحي معقم (0.9٪ كلوريد الصوديوم).
  6. ضع ضغطا في المنطقة المانحة باستخدام اسفنجة للإرقاء.
  7. قم بإزالة خيوط البقاء الموضوعة مسبقا في الشفة السفلى.
  8. كشف القضيب كما هو موضح سابقا (الخطوة 2.9).
  9. ضع قسطرة وريدية 22 جيجا في مجرى البول للقسطرة باستخدام هلام مواد التشحيم.
  10. باستخدام مقص الربيع ، قم بإجراء شق محيطي شبه إكليلي وأزل قفاز القضيب إلى القاعدة.
  11. باستخدام الملقط المدبب ومقص الربيع ، قم بتشريح الطبقات المتبقية وفضح مجرى البول.
  12. باستخدام شفرة مشرط جراحي (رقم 11) ومقص زنبركي ، قم بإجراء شق بطني طولي ، يبدأ من 3 مم بعيدا إلى التلم الإكليلي في امتداد 4 مم ، مع تباعد مجرى البول على مستوى التضيق الذي تم تحريضه مسبقا (الخطوة 2).
  13. ضع خيطين من مادة 7.0 ، واحدة على كل جانب من الملعقة ، واترك البعوضة في كل واحدة لسحب مجرى البول.
  14. ضع غرزتين 7.0 غير قابلة للامتصاص ، واحدة في كل طرف من طرفي الملعقة.
  15. ضع طعم الغشاء المخاطي الشدقي بطريقة بطانة بطنية بحيث يواجه جانب الغشاء المخاطي تجويف مجرى البول.
  16. مرر إحدى الغرز من خلال نهاية الكسب غير المشروع وقم بإجراء نصف قطع ناقص مع خياطة جارية.
  17. كرر الخطوتين 3.15 و 3.16 مع الخيط الآخر على الجانب الآخر من الكسب غير المشروع.
  18. إزالة قسطرة مجرى البول. تغيير موضع جلد القضيب.
  19. أغلق الشق المحيطي شبه الإكليلي بخياطة متقطعة قابلة للامتصاص 6.0.
  20. إزالة خياطة الجر القضيب.
  21. تطبيق التسكين متبوعا بالمحلول المضاد للمهدئات، كما هو موضح في الخطوات 2.16-2.17.

4. مراقبة ما بعد الجراحة

  1. مراقبة الفئران ثلاث إلى أربع مرات كل ساعة ، مما يؤكد تعافيها من التخدير. مراقبة التنفس وتقييم ردود فعل الدواسة والعين.
  2. حقن التسكين تحت الجلد كل 12 ساعة لمدة 48 ساعة.
    ملاحظة: تم إعطاء كاربروفين عند 1 مل / 500 مجم من وزن الجسم ، وتم إعطاء البوبرينورفين عند 0.5 مل / 500 مجم من وزن الجسم (انظر جدول المواد).
  3. توفير الطعام اللين لمدة 48 ساعة بعد كل إجراء والماء الإعلاني.
  4. مراقبة الفئران يوميا بعد الجراحة وتسجيل حالتها الصحية ومظهر موقع الجراحة. تشمل العلامات التي تم تقييمها تعبيرات الوجه ، والنطق ، وحالة النشاط ، وأي علامة على الألم ، وتناول الطعام والشراب ، والإفراغ ، والنزيف.

5. تقييم نضح الدم

ملاحظة: يتم قياس تدفق الدم مباشرة قبل تحريض التضيق ، وقبل رأب الإحليل مباشرة ، وبعد رأب الإحليل مباشرة.

  1. إجراء تصوير التروية دوبلر بالليزر.
    1. تخدير الفئران باستخدام محلول التخدير (الخطوة 1.1).
    2. ضع مستلق الفئران على وسادة تسخين 37 درجة مئوية مع جر القضيب ، كما هو موضح في الخطوة 2.9.
    3. ابدأ تشغيل جهاز تصوير التروية دوبلر بالليزر (انظر جدول المواد) للحصول على البيانات. اضبط مسبقا منطقة الاهتمام المراد قراءتها بواسطة شعاع الليزر.
    4. ضع المحلول المضاد للمهدئات (الخطوة 1.2) لإعادة التخدير.
    5. باستخدام برنامج تحليل الصور ، ارسم منطقة الاهتمام (ROI) حول منطقة القضيب وسجل قيم التدفق بمرور الوقت.

6. التقييم الشعاعي

ملاحظة: يتم تأكيد تأكيد تحريض التضيق وحل التضيق بعد رأب الإحليل باستخدام مخطط الإحليل الرجعي. يتم إجراء هذا التقييم 1 أسبوع بعد تحريض تضيق (قبل رأب الإحليل) و 2 أسابيع بعد رأب الإحليل.

  1. قم بإجراء تصوير مجرى البول الرجعي باستخدام نظام تصوير الأوعية أحادي المخطط (انظر جدول المواد).
    1. تخدير الفئران باستخدام محلول التخدير.
    2. ضع على فراش تصوير الأوعية في استلقاء مائل يمين ، مع جر القضيب ، كما هو موضح في الخطوة 2.9.
    3. ركز الحزمة المخروطية على منطقة حوض الحيوان ، بما في ذلك القضيب.
    4. ضع قسطرة وريدية 22 جم متقدمة 2 مم في مجرى البول البعيد.
    5. ابدأ بغرس 1 مل من مادة التباين الشعاعي لليود (نسبة 1: 1 من محلول يوبروميد 623 مجم / مل و 0.9٪ كلوريد الصوديوم) في مجرى البول.
    6. في الوقت نفسه ، قم بإجراء التصوير الشعاعي العادي لتحديد التباين الشعاعي الذي يحقق تجويف مجرى البول وتقييم قطر مجرى البول.
    7. عند الانتهاء من التصوير ، أعد التخدير بمحلول مضاد للمهدئات.

7. القتل الرحيم

ملاحظة: يتم إجراء القتل الرحيم بعد 3 أسابيع من رأب الإحليل (4 أسابيع بعد تحريض التضيق) ، مباشرة بعد تقييم التروية الأخير.

  1. املأ حقنة سعة 2.5 مل ب 2 مل/كغ من صوديوم بنتوباربيتال (400 ملغ/مل).
  2. إجراء حقن داخل الصفاق من الحل للقتل الرحيم للحيوان.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم استخدام ما مجموعه 12 من ذكور فأر Wistar ، التي يتراوح وزنها بين 400-500 جم وعمر 12-14 أسبوعا ، لتحريض تضيق مجرى البول. تم إجراء تصوير مجرى البول الرجعي (RUG1) بعد أسبوعواحد 8 ، مما يؤكد نجاح هذه التقنية. تم قياس قطر مجرى البول بالمليمترات على مستوى تحريض التضيق. بعد ذلك ، تم إجراء رأب الإحليل مع طعم الغشاء المخاطي الشدقي في الوجه البطني لمجرى البول الفئران. تم تقديم نفس الفئران إلى مخطط الإحليل الثاني إلى الوراء (RUG2) بعد 14 يوما من رأب الإحليل ، وتم قياس قطر مجرى البول بالمليمترات على مستوى و...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

رأب الإحليل مع ترقيع الغشاء المخاطي الشدقي هو حجر الزاوية الرئيسي في إعادة بناء مجرى البول. ومع ذلك ، ينبغي تطوير إجراءات مبتكرة لتحسين تلك الموصوفة بالفعل وإنشاء إجراءات جديدة ، مثل المواد المهندسة بالأنسجة والطعوم البيولوجية ، للحد من المضاعفات والأمراض. تم نشر العديد من الإجراءات لإنشاء نماذج ما قبل السريرية وتحديد التقنيات الجراحية. أجرى Souza et al.1 دراسة شملت 12 أرنبا نيوزيلنديا. تم إجراء شق جلدي طولي بطني ، وتم تحريك مجرى البول من الغلالة البيضاء ، يليه استئصال الجزء الظهري من مجرى البول ،...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

نشكر جواو ليتاو ، رئيس قسم الأشعة في Centro Hospitalar Universitário Lisboa Norte ، وكاتيا فرنانديز ، فني قسم الأشعة في Centro Hospitalar Universitário Lisboa Norte ، على تعاونهم في تحقيق صور الإحليل.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
أتيباميزولأوريون فارمايستخدم مضاد السيدان (أتيباميزول) لعكس تأثيرات المهدئ والمسكن.
بوبرينورفينريختر فارماالبوبرينورفين هو مشتق من قلويد الأفيون ثيبين، وهو مسكن أقوى (25-40 مرة) وأطول مدامة من المورفين.
المجهر الستيريو الجراحي Carl Zeiss Opmi-1 FCالمجهر كارل زايس، ألمانيايرمز OPMI 1 FC من ZEISS إلى الجودة والدقة والموثوقية. النظام اليدوي سهل الاستخدام ويقدم صورا عالية الدقة مع عدسات ZEISS الأسطورية.
الكاربروفينزويتيسالكاربروفين هو دواء مضاد للالتهابات غير ستيرويدي (NSAID) من فئة حمض البروبيونيك.
القسطرة 22 G. × 1''بي براونإنتروكان سيفتيقسطرة وريدية من الإيثيلين المفلور (FEP) مع بنية أكثر صلابة ل
الوصول إلى الشرايين.
إنروفلوكساسينبايرالإنروفلوكساسين هو مضاد حيوي من فلوروكينولون.
الفنتانيلبراون3644960الفنتانيل هو مسكن أفيوني صناعي قوي.
فلومازينيلفريسينيوس كابييستخدم مضاد البنزوديازيبين للعكس الكامل أو الجزئي للتأثيرات المهدئة الناتجة عن البنزوديازيبينات.
الكي بدرجة حرارة عاليةفيابF7244الكي القابل للاستخدام، معقم، درجة حرارة عالية (1200 & درجة؛ C)، طرف دقيق 28 مم.
جل إنستيلاجيلفاركو-فارمامزلق قائم على السليلوز بخصائص تخدير وتعقيم موضعية.
إيوبرومايدبايروسط تباين قابل للحقن غير أيوني، مع اليود.
نظام تصوير دوبلر بالليزر (جهاز تصوير تروية، مربوط، مربي، LDI2-HIR، وبرمجيات مخصصة)مور LDI-V6.0، مور إنسترومنتس المحدودة، أكسمينستر، المملكة المتحدة5710تستخدم نماذج تكوين الأوعية الدموية تصوير دوبلر بالليزر لتقييم تدفق الدم في الأطراف الخلفية، حيث يتم ربط أحدها جراحيا. تسمح برامج القياس والمقارنة المخصصة بتعريف المناطق المهمة لتقييم تدفق الدم في الطرف الإقفاري مقابل غير الإقفاري لتحديد "نسبة إعادة التروية" التي يمكن تقييمها حسب الحاجة وعلى مدى عدة أيام على نفس الموضوع.
جل العين المزلقديشراجل العين المستخدم في لمنع جفاف العين أثناء التخدير. عمل التشحيم والترطيب على القرنية والملتحمة.
ذكر ويستار هان IGS (Crl:WI(Han) فئرانمختبرات نهر تشارلز، إسبانياطفل من عمر اثني عشر إلى أربعة عشر أسبوعا
متيدوميدينفيرباك037/01/07RFVPTالميديتوميدين هو دواء صناعي يستخدم كمخدر جراحي.
ميدازولاملابسفاليستخدم دواء البنزوديازيبين للتخدير والتخدير الإجرائي.
نظام التصوير المغناطيسي الأحادي المخططأنظمة فيليبس الطبيةAzurion 7 M20نظام أشعة سينية تشخيصي ثابت بالتنظير مصمم خصيصا لتحسين قدرة المستخدمين على تقييم تشريح ووظيفة الأوعية الدموية للقلب والدماغ وأعضاء أخرى بصريا وكمي، بالإضافة إلى الجهاز اللمفاوي.
ملقط البعوضهنري شاين102-4346ملقط هارتمان-موسكيتو الهيموستاتيك المنحني من الفولاذ المقاوم للصدأ 3-1/2"
حامل الإبرهنري شاين100-2570حامل الإبر مايو-هيجار، من الفولاذ المقاوم للصدأ، 14 سم
حامل إبرة العيونأسيكوAE-6143حامل الإبر البارانكر الأكثر حساسية بدون قفل
الصوديوم البنتوباربيتالإكوفارالصوديوم البنتوباربيتال هو ملح الصوديوم المستخدم في البنتوباربيتال المستخدم في القتل الرحيم.
الملقط المدببإيسكولابBD335Rملقط دقيق، طرف 0.30 مم
بوليسورب 6.0ميدترونيك (كوفيديان)UL-101الغرز الصناعي الممتص المغطى كان يهدف إلى تقليل التفاعل الالتهابي في الأنسجة، يليه تغليف تدريجي للغرزة بواسطة الأنسجة الضامة الليفية.
بروفيدون-يودميلانبوفيدون-يودين 10٪ هو دواء مطهر يستخدم كمطهر قبل وبعد الجراحة.
شفرة المشرط nº؛ 11بي براونBB511فولاذ كربوني، معقم
مقص الربيعهنري شاين600-4826مقص جراحي 31 كاستروفييخو
الملقط الجراحيإيسكولابBD33Rالمضاق الدقيق، طرف 0.20 مم
المقص الجراحيإيسكولابMA873Rمقص السوسن الدقيق، أطراف شراب منحنية
سيرجي برو 7.0ميدترونيك (كوفيدين)VP-702-Xخياطة البولي بروبيلين الأحادية غير الماصة المصحى بها للاستخدام في ربط الأنسجة الرخوة بشكل عام.

المراجع

  1. Souza, G. F., Calado, A. A., Delcelo, R., Ortiz, V., Macedo, A. Histopathological evaluation of urethroplasty with dorsal buccal mucosa: an experimental study in rabbits. International Brazilian Journal of Urology. 34 (3), 345-354 (2008).
  2. Andrich, D. E., Mundy, A. R. Urethral strictures and their surgical treatment. BJU International. 86 (5), 571-580 (2000).
  3. Bhargava, S., Chapple, C. R., Bullock, A. J., Layton, C., MacNeil, S. Tissue-engineered buccal mucosa for substitution urethroplasty. BJU International. 93 (6), 807-811 (2004).
  4. Fu, Q., et al. Substitution urethroplasty for anterior urethral stricture repair: comparison between lingual mucosa graft and pedicled skin flap. Scandinavian Journal of Urology. 51 (6), 479-483 (2017).
  5. Blain, B., et al. Vascular grafts in the rat model: an anatomic study. Microsurgery. 21 (3), 80-83 (2001).
  6. Schmauss, D., Weinzierl, A., Schmauss, V., Harder, Y. Common rodent flap models in experimental surgery. European Surgical Research. 59 (3-4), 255-264 (2018).
  7. You, H., et al. A rat orthotopic renal transplantation model for renal allograft rejection. Journal of Visualized Experiments. (180), e63464(2022).
  8. Park, J. H., et al. Balloon-expandable biodegradable stents versus self-expandable metallic stents: a comparison study of stent-induced tissue hyperplasia in the rat urethra. Cardiovascular and Interventional Radiology. 42 (9), 1343-1351 (2019).
  9. Martín-Cano, F., et al. Histological and immunohistochemical changes in the rat oral mucosa used as an autologous urethral graft. Journal of Pediatric Surgery. 48 (7), 1557-1564 (2013).
  10. Hofer, M. D., et al. Analysis of primary urethral wound healing in the rat. Urology. 84 (1), e1-7 (2014).
  11. Tavukcu, H. H., et al. Protective effect of platelet-rich plasma on urethral injury model of male rats. Neurourology and Urodynamics. 37 (4), 1286-1293 (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

نموذج الجرذ لرأب الإحليلإعادة بناء الإحليلتحريض التضيق بالكي الكهربائيطُعم رقعي بطنيتصوير الإحليل الراجعتحليل تروية الدمهندسة الأنسجةوضع الطُعم