يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تمديد عمر العدلات مع CLON-G ومقايسة الموت التلقائي في المختبر

2.6K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/65132

⸱

مايو 12, 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Experimental Hematology, National Clinical Research Center for Blood Diseases, Haihe Laboratory of Cell Ecosystem, Institute of Hematology & Blood Diseases Hospital, Chinese Academy of Medical Sciences & Peking Union Medical College, 2Tianjin Institutes of Health Science, 3Sichuan Provincial People's Hospital, University of Electronic Science and Technology of China, 4Haihe Laboratory of Cell Ecosystem, Tianjin Medical University, 5Joint Program in Transfusion Medicine, Department of Pathology, Harvard Medical School; Division of Blood Bank, Department of Laboratory Medicine, The Stem Cell Program, Boston Children's Hospital, Dana-Farber /Harvard Cancer Center

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

يفصل هذا البروتوكول إعداد CLON-G لإطالة عمر العدلات إلى أكثر من 5 أيام ويوفر إجراء موثوقا به لتقييم موت العدلات باستخدام قياس التدفق الخلوي والفحص المجهري الفلوري متحد البؤر.

الملخص

متوسط عمر العدلات أقل من 24 ساعة ، مما يحد من الأبحاث الأساسية حول العدلات وتطبيق دراسات العدلات. أشار بحثنا السابق إلى أن المسارات المتعددة يمكن أن تتوسط في الموت التلقائي للعدلات. تم تطوير كوكتيل من خلال استهداف هذه المسارات في وقت واحد ، وتثبيط نفاذية غشاء الكاسباس - الليزوزومي - المؤكسد - التنخر بالإضافة إلى عامل تحفيز مستعمرة المحببات (CLON-G) ، والذي يطيل عمر العدلات إلى أكثر من 5 أيام دون المساس بشكل كبير بوظيفة العدلات. في الوقت نفسه ، تم تطوير بروتوكول موثوق ومستقر لتقييم وتقييم موت العدلات. في هذا العمل ، نظهر أن CLON-G يمكن أن يطيل عمر العدلات في المختبر إلى أكثر من 5 أيام ، ونعرض إطالة عمر العدلات باستخدام FACS والفحص المجهري الفلوري متحد البؤر. يقدم هذا التقرير إجراءات لإعداد CLON-G ويعرض مقايسة الموت التلقائي في المختبر للعدلات ، والتي يمكن استخدامها لدراسة العدلات ولاستجواب موت العدلات لاحقا ، وبالتالي توفير مورد موثوق لمجتمع العدلات.

المقدمة

من المعروف أن العدلات تتكون من ترسانة من حبيبات السيتوبلازم الوفيرة ، نيكوتيناميد الأدينين ثنائي النوكليوتيد فوسفات (NADPH) أوكسيديز ، الإنزيمات المضادة للميكروبات ، والعضيات المختلفة التي تدافع ضد الميكروبات الغازية. بالإضافة إلى ذلك ، فهي شديدة الحركة وهي الخلايا الأولى التي يتم تجنيدها إلى موقع الالتهاب ، مما يعني أن العدلات هي خط الدفاع الأول لجهاز المناعة الفطري 1,2. وبالتالي أصبح العلاج بنقل الخلايا المحببة علاجا سريريا واعدا للعدوى المرتبطة بقلة العدلات لتعزيز مناعة العدلات بشكل عابر3،4،5. أظهرت الاكتشافات الحديثة بوضوح أن العدلات تعمل أيضا كمستجيبات متعددة الأوجه في العديد من السيناريوهات الفسيولوجيةالمرضية 6. متوسط عمر العدلات أقل من 24 ساعة ، وبالتالي ، فإن الأبحاث الأساسية حول العدلات وتطبيق دراسات العدلات صعبة للغاية بسبب القيود المتعلقة بالتلاعب الجيني المستقر والتخزين طويل الأجل7،8،9،10،11. هناك بعض خطوط الخلايا التي يمكن أن تعرض جزئيا بعض وظائف العدلات ، مثل HL-60 و PLB-985 و NB4 و Kasumi-1 والخلايا الجذعية المستحثةمتعددة القدرات 12. يمكن أن تحقق خطوط الخلايا هذه تحريرا فعالا للجينات وحفظها بالتبريد. ومع ذلك ، فإنها لا تزال تختلف اختلافا كبيرا عن العدلات الأولية ، وبالتالي ، لا يمكنها تلخيص وظائف العدلات بأمانة13. وبالتالي ، فإن معظم الأبحاث في هذا المجال لا تزال تعتمد على العدلات الأولية المعزولة حديثا. لا يزال المجال يعتمد على توليد فئران مشروطة مكلفة وتستغرق وقتا طويلا للتحقيق في وظائف جينية محددة في العدلات ، ولكن لا توجد نماذج بشرية حاليا.

بعد أن بذلنا جهودنا في استكشاف العمليات غير المتجانسة التي ينطوي عليها موت العدلات والمسارات المتعددة التي تنظم هذه العمليات 14,15 ، تم الإبلاغ مؤخرا عن علاج جديد يسمى CLON-G (نفاذية الغشاء الليزوزومي - المؤكسد - تثبيط التنخر بالإضافة إلى عامل تحفيز مستعمرة المحببات) 16. يتكون CLON-G من Q-VD-oph (كينوليل - فاليل-O-ميثيل أسبارتيل- [-2،6-ثنائي فلورو فينوكسي] - ميثيل كيتون) ، Hsp70 (بروتين الصدمة الحرارية 70) ، DFO (ديفيروكسامين) ، NAC (N-أسيتيل سيستئين) ، Nec-1s (نيكروستاتين -1s) ، و G-CSF (عامل تحفيز مستعمرة المحببات). يتم التوسط في الموت التلقائي للعدلات من خلال مسارات متعددة ، بما في ذلك موت الخلايا المبرمج ، والتنخر ، والبيروبتوس. Q-VD-oph يثبط موت الخلايا المبرمج للعدلات كمثبط لعموم الكاسباز عن طريق استهداف الكاسباز 1 ، الكاسباز 3 ، الكاسباز 8 ، والكاسباز 917. يعتمد نخر العدلات على مسار إشارات يتضمن بروتين كيناز -1 المتفاعل مع المستقبلات (RIPK1) وبروتين شبيه بمجال كيناز مختلط السلالة (MLKL)18. كمثبط ل RIPK1 ، تمنع Nec-1s نخر العدلات. يمكن أن يمنع Hsp70 و DFO نفاذية الغشاء الليزوزومي (LMP) ، والتي يمكن أن تحفز موت الخلايا المبرمجالعدلات 19 و pyroptosis20. تلعب أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) أدوارا حيوية في موت العدلات عن طريق التوسط في LMP19 وموت الخلايا المبرمج21 وتثبيط إشارات البقاء على قيد الحياة22. كمضاد للأكسدة يمكن أن يقلل من تراكم أنواع الأكسجين التفاعلية ، يؤخر NAC موت العدلات. كعامل نمو ، ينشط G-CSF إشارات بقاء العدلات ويمنع موت الخلايا المبرمج الناجم عن كالبين23,24. من خلال استهداف مسارات الموت العفوية المتعددة للعدلات في وقت واحد ، يمكن تمديد عمر العدلات بشكل فعال إلى أكثر من 5 أيام دون المساس بوظيفتها. يوسع علاج CLON-G إمكانيات الحفاظ على العدلات ونقلها والتلاعب بالجينات ، والتي يمكن أن تسرع البحث في مجتمع العدلات. وفي الوقت نفسه ، بناء على معرفة موت العدلات ، يمكن أن تسبب البروتوكولات المعتمدة حاليا لمقايسات موت الخلايا أضرارا غير متوقعة للعدلات14 ، لذلك تم تحسين هذه البروتوكولات لتكون أكثر ملاءمة لدراسات العدلات. يقدم هذا التقرير بروتوكولات مفصلة لزراعة العدلات باستخدام CLON-G ومقايسة موت الخلايا في المختبر لعدلات الفئران باستخدام قياس التدفق الخلوي والتصوير الفلوري. CLON-G فعال على كل من العدلات الفأر والإنسان. ومع ذلك ، يتم عرض عينات الماوس هنا لتبسيط هذا البروتوكول. تركيز NAC هو 1 mM للعدلات الفئران و 10 μM للعدلات البشرية. Hsp70 خاص بالأنواع ، وبالتالي ، يجب استخدامه وفقا لمصدر العدلات. بالنسبة لهذا البروتوكول ، لا يهم ما إذا كانت العدلات معزولة عن الدم المحيطي أو نخاع العظم وكيف يتم عزلها.

بالنسبة للدراسة الحالية ، تم عزل العدلات من نخاع عظم الفأر لتحقيق ما يكفي من العدلات للتجارب ، حيث يمكن الحصول على حوالي 1 × 10 7-1.5 × 107 عدلات من نخاع العظم ، بينما يمكن عزل 1 × 10 6 عدلات فقط من الدم المحيطي لفأر واحد عمره 8-12 أسبوعا C57BL /6 (من أي من الجنسين). تم إجراء الطرد المركزي المتدرج لتجنب الضرر المحتمل والتنشيط من التحفيز الميكانيكي لفرز FACS أو فرز MACS.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

وافقت لجنة رعاية واستخدام الحيوان في مستشفى بوسطن للأطفال والمختبر الرئيسي لأمراض الدم التجريبية (SKLEH) على جميع الإجراءات وراقبتها. يصور الشكل 1 مخططا انسيابيا لزراعة العدلات باستخدام CLON-G ومقايسة الموت في المختبر .

1. تمديد عمر العدلات مع CLON-G

ملاحظة: يجب أن تكون جميع العمليات والمواد المذكورة معقمة. تأكد من خلط جميع الحلول جيدا وتوزيعها بالتساوي.

  1. الحفاظ على مكونات CLON-G
    1. قم بإذابة 50 مجم من Q-VD-oph (انظر جدول المواد) إلى تركيز نهائي قدره 100 mM بإضافة 973.7 ميكرولتر من ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO) ، وماصة السائل حتى يصبح الخليط صافيا. القسمة 50 ميكرولتر لكل أنبوب ، والحفاظ عليها عند -20 درجة مئوية.
      تنبيه: DMSO هو سائل كيميائي ضار. ارتد معطف مختبر ونظارات واقية وقناعا لتجنب ملامسة الجلد وملامسة العين والاستنشاق.
    2. قم بإذابة Hsp70 (انظر جدول المواد) عند 4 درجات مئوية ، وقم بتدوير المحتويات في القارورة. القسمة 1 ميكرولتر من Hsp70 لكل أنبوب على الجليد ، والحفاظ عليها عند -80 درجة مئوية.
      ملاحظة: Hsp70 هو بروتين. التخزين فائق البرودة ضروري للحفاظ على استقراره. تجنب دورة التجميد والذوبان.
    3. قم بإذابة 1 مجم من DFO (انظر جدول المواد) مع 7.61 مل RPMI 1640 للحصول على مخزون 200 ميكرومتر.
    4. قم بإذابة 0.1 جم من NAC (انظر جدول المواد) مع 2.5 مل من RPMI 1640 في أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل ، واضبط الرقم الهيدروجيني على 7-7.4 باستخدام NaOH. أضف RPMI 1640 إلى الحجم النهائي البالغ 3.06 مل لإنشاء مخزون NAC 200 مللي متر. قم بترشيحه بوحدة ترشيح 0.2 ميكرومتر. القسمة 500 ميكرولتر لكل أنبوب ، والحفاظ عليها عند -20 درجة مئوية.
      ملاحظة: إذابة NAC في هذا التركيز العالي ليس بالأمر السهل ، ويمكن أن تساعد الدوامة في حلها. الفينول الأحمر في RPMI 1640 هو مؤشر مثالي على درجة الحموضة. عندما يتم إذابة NAC للتو ، يكون اللون مصفرا ؛ اضبطه حتى يصبح لونه ورديا. حلول مخزون NAC مستقرة لمدة تصل إلى 1 شهر عند -20 درجة مئوية.
    5. قم بإذابة 10 مجم من Nec-1s (انظر جدول المواد) إلى 20 mM مع 1.8 مل من DMSO ، وماصة الخليط حتى يصبح واضحا. القسمة 50 ميكرولتر لكل أنبوب ، والحفاظ عليها عند -20 درجة مئوية. يحفظ بعيدا عن الضوء.
    6. قم بإذابة 250 ميكروغرام من G-CSF (انظر جدول المواد) إلى 200 ميكروغرام / مل مع 1.25 مل من RPMI 1640. القسمة 50 ميكرولتر لكل أنبوب ، والحفاظ عليها عند 4 درجات مئوية.
  2. تحضير 2x وسط استزراع CLON-G
    1. تحضير الوسط الأساسي. أضف 39.5 مل من RPMI 1640 ، و 10 مل من مصل الجنين البقري (FBS) ، و 0.5 مل من البكتيريا العقدية (المضادات الحيوية) إلى أنبوب سعة 50 مل لصنع RPMI 1640 مع 20٪ FBS و 1٪ PS كوسيط أساسي.
      ملاحظة: يستخدم هذا التركيز العالي من FBS لتوفير الثقافة المطولة للعدلات ، والتي قد تكون أكبر من 5 أيام. إذا كان وقت الزراعة 1-2 أيام ، فإن 10٪ -15٪ FBS كافية.
    2. قم بإذابة جميع حلول المخزون لمكونات CLON-G على الجليد.
    3. تمييع 1 ميكرولتر من Hsp70 إلى 20 ميكرومتر بإضافة 606 ميكرولتر من الوسط الأساسي. خفف 1 ميكرولتر من 200 ميكروغرام / مل G-CSF إلى 20 ميكروغرام / مل بإضافة 9 ميكرولتر من الوسط الأساسي.
    4. أضف 976 ميكرولتر من الوسط الأساسي إلى أنبوب طرد مركزي سعة 15 مل. أضف 1 ميكرولتر من Q-VD-oph (100 مللي مول) ، و 10 ميكرولتر من DFO (200 ميكرومتر) ، و 1 ميكرولتر من Hsp70 (20 ميكرومتر) ، و 10 ميكرولتر من NAC (200 مللي مول) ، و 1 ميكرولتر من Nec-1s (20 مللي مول) ، و 1 ميكرولتر من G-CSF (20 ميكروغرام / مل) لجعل 1 مل من 2x وسط CLON-G.
      ملاحظة: يجب استخدام وسيط 2x CLON-G فور تحضيره. يمكن للمرء تخزين 2x CLON-G مؤقتا عند 4 درجات مئوية. يجب التخلص من بقايا 20 ميكرومتر Hsp70.
  3. ثقافة العدلات
    1. عزل العدلات الفئران عن طريق الطرد المركزي المتدرج بعد تقرير سابق25. إعادة تعليق العدلات الفأر المعزولة في الوسط الأساسي (1 مليون خلية / 100 ميكرولتر).
      ملاحظة: تجنب تنشيط العدلات عن طريق التعامل معها بلطف. تجنب الرغوة أثناء العملية برمتها.
    2. أضف 500 ميكرولتر من 2x وسط CLON-G ، و 400 ميكرولتر من الوسط الأساسي ، و 100 ميكرولتر من تعليق الخلية إلى 24 لوحة استزراع غير أنسجة جيدة (انظر جدول المواد) ، وماصة بلطف ثلاث إلى أربع مرات.
      ملاحظة: قد تؤدي التركيزات العالية للمكونات في وسط 2x CLON-G إلى إتلاف العدلات. تجنب إضافتها معا بدون الوسيط الأساسي. لوحة الثقافة غير المزروعة بالأنسجة ضرورية لتجنب التصاق العدلات.
    3. ضع طبق الاستزراع في حاضنة 37 درجة مئوية و 5٪ CO2 بسلاسة.
      ملاحظة: ليس من الضروري استبدال وسيط الخلية في غضون 7 أيام. التركيزات النهائية لتكوين CLON-G هي 50 ميكرومتر Q-VD-Oph ، 1 ميكرومتر DFO ، 10 pM Hsp70 ، 1 mM NAC ، 10 μM Nec-1 s ، و 10 ng / mL G-CSF.
    4. قم بتلطيخ العدلات المستزرعة باستخدام صبغة Wright Giemsa المركبة (انظر جدول المواد) ، وقم بتحليلها باستخدام المجهر الضوئي (الشكل 2A-D). بدلا من ذلك ، قم بتلطيخ بالأجسام المضادة APC-CD11b و PE-Cy7-Ly6G ، وقم بتحليلها باستخدام قياس التدفق الخلوي (الشكل 2E-I) كما هو موضح سابقا26.

2. في المختبر مقايسة الموت التلقائي من العدلات

  1. تحليل التدفق الخلوي
    1. العدلات المعزولة المستزرعة بكثافة 1 مليون خلية / مل في الوسط الأساسي عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO2. لوحة الاستزراع المكونة من 24 بئرا غير مستزرعة بالأنسجة. أضف 1 مل من وسط الخلية لكل بئر.
    2. قم بإذابة 1 جم من CaCl 2 مع 45 مل من المحلول الملحي لعمل 200 mM CaCl2. قم بترشيحه بوحدة ترشيح 0.2 ميكرومتر. يحفظ عند 4 درجات مئوية.
    3. تحضير مزيج تلطيخ. أضف 7 ميكرولتر من المحلول الملحي لكل عينة إلى أنبوب 1.5 مل ، وأضف 0.4 مجم / مل FITC-Annexin-V ، و 0.5 مجم / مل يوديد البروبيديوم (PI) ، و 200 مللي متر محلول CaCl2 بمعدل 1 ميكرولتر لكل عينة. تخلط جيدا. استخدم الحل مباشرة بعد التحضير.
    4. ماصة وسط الخلية بلطف خمس إلى سبع مرات لخلط جيد ، تليها نقل 100 ميكرولتر إلى أنبوب قياس التدفق الخلوي في النقاط الزمنية المطلوبة.
      ملاحظة: تجنب الرغوة أثناء العملية برمتها.
    5. حبات عد الدوامة (انظر جدول المواد) لخلطها جيدا. ماصة 10 ميكرولتر من حبات العد المخلوطة جيدا لنفس أنبوب قياس التدفق الخلوي كما في الخطوة 2.1.4.
    6. أضف 10 ميكرولتر من مزيج التلوين المحضر (الخطوة 2.1.3) إلى أنبوب قياس التدفق الخلوي. احتضان في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق بعيدا عن الضوء.
    7. أضف 100 ميكرولتر من المحلول الملحي إلى الأنبوب ، واخلطه جيدا لضمان التوزيع المتساوي لخرز العد والخلايا.
    8. إجراء تحليل التدفق الخلوي لوسط الخلية. اجمع الخلايا بمعدل منخفض مع ~ 400 حدث / ثانية. بوابة خلايا APC-PE-Cy7- إلى FSC-A و SSC-A ، وبوابة الخلايا السليمة ذات المواضع المتوسطة FSC-A و SSC-A إلى FITC-Annexin-V و PE-PI ؛ يتم تصنيف مجموعة Annexin-V−PI− على أنها خلايا سليمة.
      ملاحظة: تحدد المعادلات التالية العدد الإجمالي للخلايا السليمة لكل عينة وصلاحية العدلات:
      إجمالي عدد الخلايا السليمة لكل عينة27 = (1000 / عدد حبات العد) × عدد سكان Annexin-V−PI− ×10
      صلاحية العدلات = إجمالي عدد الخلايا السليمة في الوقت المحدد / إجمالي عدد الخلايا السليمة في الوقت صفر
  2. مقايسة صورة الفلورسنت
    1. العدلات المعزولة المستزرعة بكثافة 1 مليون خلية / مل في الوسط الأساسي عند 37 درجة مئوية و 5٪ CO 2 في صفيحة متحدة البؤر مع2 مل من وسط الخلية لكل لوحة.
      ملاحظة: يتمتع المجهر الفلوري متحد البؤر بأفضل جودة للصورة ، ولكن أي مجهر مضان يحتوي على قنوات 488/561 / DIC يكفي لدعم هذه التجربة.
    2. أخرج اللوحة برفق في النقطة الزمنية المحددة. أضف 10 ميكرولتر لكل من 0.4 مجم / مل FITC-Annexin-V و 0.5 مجم / مل PI و 200 مللي متر CaCl2 إلى اللوحة بالتساوي. وصمة عار في درجة حرارة الغرفة لمدة 5 دقائق.
      ملاحظة: تجنب الاهتزاز أثناء العملية برمتها. أضف عوامل التلوين بالتساوي وبلطف.
    3. التقط صورا مضان عند قنوات 488 (annexin-V) / 561 (PI) / DIC باستخدام مجهر مضان متحد البؤر مع عدسة موضوعية 20x (انظر جدول المواد). قم بتعيين وقت التعرض لقناة 488 على أنه 500 مللي ثانية وقناة 561 على 200 مللي ثانية وقناة DIC على أنها 100 مللي ثانية. حدد 5-10 مناطق عشوائية لكل لوحة. يتم تعريف أنواع الخلايا في تقريرناالمنشور سابقا 14.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

لم يتأثر مورفولوجيا رايت جيمسا الملطخة (الشكل 2A-D) والأنماط الظاهرية FACS (الشكل 2E-J) للعدلات المعالجة CLON-G. كانت صلاحية العدلات المعالجة ب CLON-G عند 24 ساعة حوالي 90٪ + بناء على تحليل قياس التدفق الخلوي (الشكل 3) ومقايسات الصور الفلورية (الشكل 4). يمكن أن ينتج انخفاض الصلاحية عن التخزين غير السليم ، أو التركيزات غير الصحيحة لمكونا...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

تلعب العدلات أدوارا حيوية في المناعة الفطرية والتكيفية، وينظم توازنها بإحكام. العدلات هي الكريات البيض الأكثر وفرة في الدم المحيطي البشري ، ولها دوران قوي وسريع. يمكن للبالغين الأصحاء إطلاق 1 × 109 عدلات / كجم يوميا من نخاع العظم28. وبالتالي أصبح موت العدلات أحد الألغاز المحيرة في هذا المجال ، وقد تم تكريس الكثير من الجهد لفهمها بشكل أفضل. وقد ثبت أن Caspase29،30،31،32 ، و LMP 33 ، و ROS21،22...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

يعلن المؤلفون أن البحث قد أجري في غياب أي تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

تم دعم هذا المشروع من قبل مختبر Haihe لصندوق ابتكار النظام البيئي للخلايا (22HHXBSS00036 ، 22HHXBSS00019) ، وصندوق الابتكار للعلوم الطبية التابع للأكاديمية الصينية للعلوم الطبية (CAMS) (2021-I2M-1-040،2022-I2M-JB-015) ، وصندوق البحوث الخاص للجامعات المركزية ، وكلية الطب في اتحاد بكين (3332022062) ، وبرنامج دعم العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة سيتشوان (رقم 2021YJ0480).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
0.2 وميكرو ؛ مرشح حقنة mPall Corporation4612Filtrate أعدت مكونات CLON-G.
1.5 مل أنبوب الطرد المركزي الصغيرLABSELECTMCT-001-150مختبر مستهلك.
أنابيب الطرد المركزي سعة 15 مل LABSELECTCT-002-15Lab مستهلكة.
24 لوحة ثقافة خلية البئرFalcon351147لوحة ثقافة العدلات.
50 مل أنابيب الطرد المركزيLABSELECTCT-002-50مختبر مستهلكة.
BD LSRIIBDأداة لتحليل قياس التدفق الخلوي لموت العدلات.
كلوريد الكالسيوم (CaCl 2< / sub>)Sigma AldrichC4901مساعد ربط Annexin-V   ؛ إلى الفوسفاتيديل سيرين.
مجهر متحد البؤرأداة PerkinelmerUltraVIEW VOXلتحليل الفلورسنت لموت العدلات.
لوحة متحدة البؤرNEST801001-20mmمختبر مستهلكة لفحص صورة الفلورسنت.
عد الخرزاتThermo FisherC36950القياس الكمي في تحليل قياس التدفق الخلوي لموت العدلات.
DFOSigma AldrichD9533مكون CLON-G. مثبط LMP.
ثنائي ميثيل سلفوكسيد (DMSO) مذيبسيجما ألدريتشD2650ل Q-VD-oph و Nec-1s.
مصل الأبقار الجنينيجيبكو10099141Cمكون من الوسط الأساسي لثقافة العدلات. إمدادات التغذية.
يمكن أن يرتبط FITC-Annexin-VBD51-65874XAnnexin-V بالفوسفاتيديل سيرين للخلايا القديمة. هذا في قناة FITC.
Hsp70Abcamab113187مكون CLON-G. مثبط LMP.
NACSigma AldrichA9165مكون من CLON-G. مضادات الاكسده.
Nec-1sEMD Millipore852391-15-2مكون CLON-G. مثبط التشريح.
محلول البنسلين والستربتومايسين (PS)جيبكو15070063مكون من الوسط الأساسي لثقافة العدلات. المضادات الحيوية لحماية الخلايا من تلوث البكتيريا.
بروبيديوم يوديد (PI)BioLegend421301لمقايسة موت العدلات. جزيء فلورسنت صغير يرتبط بالحمض النووي   ؛ ولكن لا يمكن أن يجتاز بشكل سلبي إلى الخلايا التي تمتلك غشاء بلازما سليما.
Q-VD-ophSelleck chemS7311مكون CLON-G. مثبط عموم كاسباس.
عامل تحفيز مستعمرة الخلايا الحبيبية البشرية المؤتلف للحقن (خلية CHO) (G-CSF)Chugai Pharma ChinaGRANOCYTEمكون من CLON-G. & nbsp ؛ تعزيز بقاء العدلات من خلال مسار Akt.
أنابيب البوليسترين المستديرةFalcon100-0102Lab مستهلكة لتحليل قياس التدفق الخلوي.
RPMI1640GibcoC11875500BTمكون من الوسط الأساسي لثقافة العدلات.
محلول سالينليجينR00641لتحليل قياس التدفق الخلوي لموت العدلات.
هيدروكسيد الصوديوم (NaOH)FENGCHUAN13-011-00029ضبط الأس الهيدروجيني ل NAC.
البقع Wright-GiemsaSolarbioG1020تلطيخ العدلات
القاع محلول الخلوية.

المراجع

  1. Segal, A. W. How neutrophils kill microbes. Annual Review of Immunology. 23, 197-223 (2005).
  2. Rosales, C. Neutrophil: A cell with many roles in inflammation or several cell types. Frontiers in Physiology. 9, 113(2018).
  3. Chung, S., Armstrong-Scott, O., Charlewood, R. Therapeutic granulocyte infusion for patients with severe neutropaenia and neutrophilic dysfunction: New Zealand experience. Vox Sanguinis. 117 (2), 220-226 (2021).
  4. Zhou, B., et al. Clinical outcome of granulocyte transfusion therapy for the treatment of refractory infection in neutropenic patients with hematological diseases. Annals of Hematology. 97 (11), 2061-2070 (2018).
  5. Covas, D. T., et al. Granulocyte transfusion combined with granulocyte colony stimulating factor in severe infection patients with severe aplastic anemia: A single center experience from China. PLoS One. 9 (2), e88148(2014).
  6. Tecchio, C., Cassatella, M. A. Uncovering the multifaceted roles played by neutrophils in allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Cellular & Molecular Immunology. 18 (4), 905-918 (2021).
  7. Lahoz-Beneytez, J., et al. Human neutrophil kinetics: Modeling of stable isotope labeling data supports short blood neutrophil half-lives. Blood. 127 (26), 3431-3438 (2016).
  8. Pillay, J., et al. In vivo labeling with 2H2O reveals a human neutrophil lifespan of 5.4 days. Blood. 116 (4), 625-627 (2010).
  9. Kolaczkowska, E., Kubes, P. Neutrophil recruitment and function in health and inflammation. Nature Reviews Immunology. 13 (3), 159-175 (2013).
  10. Tofts, P. S., Chevassut, T., Cutajar, M., Dowell, N. G., Peters, A. M. Doubts concerning the recently reported human neutrophil lifespan of 5.4 days. Blood. 117 (22), 6050-6052 (2011).
  11. McDonald, J. U., et al. In vivo functional analysis and genetic modification of in vitro-derived mouse neutrophils. FASEB Journal. 25 (6), 1972-1982 (2011).
  12. Pedruzzi, E., Fay, M., Elbim, C., Gaudry, M., Gougerot-Pocidalo, M. -A. Differentiation of PLB-985 myeloid cells into mature neutrophils, shown by degranulation of terminally differentiated compartments in response to N-formyl peptide and priming of superoxide anion production by granulocyte-macrophage colony-stimulating factor. British Journal of Haematology. 117 (3), 719-726 (2002).
  13. Blanter, M., Gouwy, M., Struyf, S. Studying neutrophil function in vitro: Cell models and environmental factors. Journal of Inflammation Research. 14, 141-162 (2021).
  14. Teng, Y., Luo, H. R., Kambara, H. Heterogeneity of neutrophil spontaneous death. American Journal of Hematology. 92 (8), E156-E159 (2017).
  15. Luo, H. R., Loison, F. Constitutive neutrophil apoptosis: Mechanisms and regulation. American Journal of Hematology. 83 (4), 288-295 (2008).
  16. Fan, Y., et al. Targeting multiple cell death pathways extends the shelf life and preserves the function of human and mouse neutrophils for transfusion. Science Translational Medicine. 13 (604), (2021).
  17. Caserta, T. M. Q-VD-OPh, a broad spectrum caspase inhibitor with potent antiapoptotic properties. Apoptosis. 8, 345-352 (2003).
  18. Wang, X., Yousefi, S., Simon, H. U. Necroptosis and neutrophil-associated disorders. Cell Death and Disorders. 9 (2), 111(2018).
  19. Loison, F., et al. Proteinase 3-dependent caspase-3 cleavage modulates neutrophil death and inflammation. Journal of Clinical Investigation. 124 (10), 4445-4458 (2014).
  20. Kambara, H., et al. Gasdermin D exerts anti-inflammatory effects by promoting neutrophil death. Cell Reports. 22 (11), 2924-2936 (2018).
  21. Zhu, D., et al. Deactivation of phosphatidylinositol 3,4,5-trisphosphate/Akt signaling mediates neutrophil spontaneous death. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 103 (40), 14836-14841 (2006).
  22. Xu, Y., Loison, F., Luo, H. R. Neutrophil spontaneous death is mediated by down-regulation of autocrine signaling through GPCR, PI3Kgamma, ROS, and actin. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 107 (7), 2950-2955 (2010).
  23. van Raam, B. J., Drewniak, A., Groenewold, V., vanden Berg, T. K., Kuijpers, T. W. Granulocyte colony-stimulating factor delays neutrophil apoptosis by inhibition of calpains upstream of caspase-3. Blood. 112 (5), 2046-2054 (2008).
  24. Klein, J. B., et al. Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor delays neutrophil constitutive apoptosis through phosphoinositide 3-kinase and extracellular signal-regulated kinase pathways. Journal of Immunology. 164 (8), 4286-4291 (2000).
  25. Fan, Y., et al. Targeting multiple cell death pathways extends the shelf life and preserves the function of human and mouse neutrophils for transfusion. Science Translational Medicine. 13 (604), (2021).
  26. Xie, X., et al. Single-cell transcriptome profiling reveals neutrophil heterogeneity in homeostasis and infection. Nature Immunology. 21 (9), 1119-1133 (2020).
  27. Cosimo, E., et al. Inhibition of NF-kappaB-mediated signaling by the cyclin-dependent kinase inhibitor CR8 overcomes prosurvival stimuli to induce apoptosis in chronic lymphocytic leukemia cells. Clinical Cancer Research. 19 (9), 2393-2405 (2013).
  28. Borregaard, N. Neutrophils, from marrow to microbes. Immunity. 33 (5), 657-670 (2010).
  29. Porter, A. G., Jänicke, R. U. Emerging roles of caspase-3 in apoptosis. Cell Death and Differentiation. 6 (2), 99-104 (1999).
  30. Scheel-Toellner, D., et al. Clustering of death receptors in lipid rafts initiates neutrophil spontaneous apoptosis. Biochemical Society Transactions. 32, 679-681 (2004).
  31. Geering, B., Simon, H. U. Peculiarities of cell death mechanisms in neutrophils. Cell Death and Differentiation. 18 (9), 1457-1469 (2011).
  32. Gabelloni, M. L., Trevani, A. S., Sabatté, J., Geffner, J. Mechanisms regulating neutrophil survival and cell death. Seminars in Immunopathology. 35 (4), 423-437 (2013).
  33. Loison, F., et al. Proteinase 3-dependent caspase-3 cleavage modulates neutrophil death and inflammation. Journal of Clinical Investigation. 124 (10), 4445-4458 (2014).
  34. Cho, Y. S., et al. Phosphorylation-driven assembly of the RIP1-RIP3 complex regulates programmed necrosis and virus-induced inflammation. Cell. 137 (6), 1112-1123 (2009).
  35. He, S., et al. Receptor interacting protein kinase-3 determines cellular necrotic response to TNF-alpha. Cell. 137 (6), 1100-1111 (2009).
  36. Sun, L., et al. Mixed lineage kinase domain-like protein mediates necrosis signaling downstream of RIP3 kinase. Cell. 148 (1-2), 213-227 (2012).
  37. Zhang, D. -W., et al. RIP3, an energy metabolism regulator that switches TNF-induced cell death from apoptosis to necrosis. Science. 325 (5938), 332-336 (2009).
  38. Wang, X., He, Z., Liu, H., Yousefi, S., Simon, H. -U. Neutrophil necroptosis is triggered by ligation of adhesion molecules following GM-CSF priming. Journal of Immunology. 197 (10), 4090-4100 (2016).
  39. Hsu, A. Y., Peng, Z., Luo, H., Loison, F. Isolation of human neutrophils from whole blood and buffy coats. Journal of Visualized Experiments. (175), e62837(2021).
  40. George, B., Bhattacharya, S. Infections in hematopoietic stem cell transplantation (HSCT) patients. Contemporary Bone Marrow Transplantation. Chandy, M., Radhakrishnan, V. S., Sukumaran, R. , Springer. Cham, Switzerland. (2020).
  41. Lucena, C. M., et al. Pulmonary complications in hematopoietic SCT: A prospective study. Bone Marrow Transplant. 49 (10), 1293-1299 (2014).
  42. Tomblyn, M., et al. Guidelines for preventing infectious complications among hematopoietic cell transplantation recipients: A global perspective. Biology of Blood and Marrow Transplantation. 15 (10), 1143-1238 (2009).
  43. Wingard, J. R., Hiemenz, J. W., Jantz, M. A. How I manage pulmonary nodular lesions and nodular infiltrates in patients with hematologic malignancies or undergoing hematopoietic cell transplantation. Blood. 120 (9), 1791-1800 (2012).
  44. Wingard, J. R., Hsu, J., Hiemenz, J. W. Hematopoietic stem cell transplantation: An overview of infection risks and epidemiology. Infectious Disease Clinics of North America. 24 (2), 257-272 (2010).
  45. Netelenbos, T., et al. The burden of invasive infections in neutropenic patients: incidence, outcomes, and use of granulocyte transfusions. Transfusion. 59 (1), 160-168 (2019).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

المعالجة بـ CLON-Gحفظ الخلايا المتعادلةقياس التدفق الخلويالمجهر البؤريزراعة الخلايا المتعادلةحيوية الخلاياالعامل المحفز للمستعمرات المحببةصبغ الأنيكسين-V
تمديد عمر العدلات مع CLON-G ومقايسة الموت التلقائي في المختبر
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.