مقالة منهجية

التهجين الفلوري الكامل في الموقع لدراسة تكوين الحيوانات المنوية في بعوضة الأنوفيليس

5K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/65356

⸱

مايو 26, 2023

 ,  ,  , 
1Department of Life Sciences, Sir Alexander Fleming Building, Imperial College London, 2Department of Entomology, Virginia Tech

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

نظرا لتشريحها البسيط ، تقدم خصيتا الأنوفيلة نموذجا خلويا جيدا لدراسة تكوين الحيوانات المنوية. يصف هذا البروتوكول التهجين الفلوري الكامل في الموقع ، وهي تقنية تستخدم للتحقيق في هذه العملية البيولوجية ، بالإضافة إلى النمط الظاهري للسلالات المعدلة وراثيا التي تؤوي طفرات في الجينات المشاركة في إنتاج الحيوانات المنوية.

الملخص

تكوين الحيوانات المنوية عملية بيولوجية معقدة تخضع خلالها الخلايا الثنائية الصيغة الصبغية لانقسام انقسامي واختزالي متتالي تليها تغيرات تركيبية كبيرة لتكوين الحيوانات المنوية الأحادية الصيغة الصبغية. إلى جانب الجانب البيولوجي ، فإن دراسة تكوين الحيوانات المنوية لها أهمية قصوى لفهم وتطوير التقنيات الوراثية مثل محرك الجينات ومشوهات نسبة الجنس الاصطناعية ، والتي ، من خلال تغيير الوراثة المندلية ونسبة جنس الحيوانات المنوية ، على التوالي ، يمكن استخدامها للسيطرة على مجموعات حشرات الآفات. وقد أثبتت هذه التكنولوجيات أنها واعدة جدا في البيئات المختبرية ويمكن استخدامها للسيطرة على المجموعات البرية من بعوض الأنوفيلة ، وهي ناقلات للملاريا. نظرا لبساطة تشريح الخصية وأهميتها الطبية ، يمثل Anopheles gambiae ، وهو ناقل رئيسي للملاريا في أفريقيا جنوب الصحراء الكبرى ، نموذجا خلويا جيدا لدراسة تكوين الحيوانات المنوية. يصف هذا البروتوكول كيف يمكن استخدام التهجين الفلوري الكامل في الموقع (WFISH) لدراسة التغيرات الدراماتيكية في البنية النووية للخلية من خلال تكوين الحيوانات المنوية باستخدام مجسات الفلورسنت التي تلطخ على وجه التحديد كروموسومات X و Y. يتطلب FISH عادة تعطيل الأعضاء التناسلية لفضح الكروموسومات الانقسامية أو الاختزالية والسماح بتلطيخ مناطق جينومية معينة بمجسات الفلورسنت. يتيح WFISH الحفاظ على البنية الخلوية الأصلية للخصية ، إلى جانب مستوى جيد من الكشف عن الإشارات من مجسات الفلورسنت التي تستهدف تسلسل الحمض النووي المتكرر. يسمح هذا للباحثين بمتابعة التغيرات في السلوك الكروموسومي للخلايا التي تخضع للانقسام الميوزي على طول بنية العضو ، حيث يمكن تمييز كل مرحلة من مراحل العملية بوضوح. يمكن أن تكون هذه التقنية مفيدة بشكل خاص لدراسة الاقتران الاختزالي للكروموسوم والتحقيق في الأنماط الظاهرية الخلوية المرتبطة ، على سبيل المثال ، بمشوهات نسبة الجنس الاصطناعية ، وعقم الذكور الهجين ، وخروج الجينات المشاركة في تكوين الحيوانات المنوية.

المقدمة

وتفرض الملاريا عبئا هائلا على صحة ورفاه سكان العالم. في عام 2021 ، قدرت منظمة الصحة العالمية (WHO) أن الملاريا تسببت في وفاة 619,000 ، 96٪ منها حدثت في أفريقيا جنوب الصحراءالكبرى 1. ينتقل المرض عن طريق البعوض الذي ينتمي إلى جنس Anopheles ، وفي أفريقيا جنوب الصحراء الكبرى ، تلعب ثلاثة أنواع ، وهي Anopheles gambiae (An. gambiae) و Anopheles coluzzi (An، coluzzi) و Anopheles arabiensis (An. Arabiensis) دورا كبيرا بشكل غير متناسب في انتقال الملاريا ، حيث تمثل 95٪ من حالات الملاريا على مستوى العالم. وقد أنقذت برامج المكافحة التي تعتمد على الطرق التقليدية مثل المبيدات الحشرية والأدوية المضادة للملاريا ملايين الأرواح؛ ومع ذلك ، في السنوات الأخيرة ، تحدت المقاومة المتزايدة لطرق التحكم هذه فعاليتها 1,2. وبالإضافة إلى ذلك، أثرت القيود التي فرضتها جائحة كوفيد-19 على توافر التدخلات الرئيسية لمكافحة الملاريا، والتي أدت إلىزيادة حالات الإصابة بالملاريا 1 وفقا لتقرير منظمة الصحة العالمية عن الملاريا لعام 2022. في العقدين الماضيين ، تم تطوير طرق مكافحة وراثية جديدة في البيئات المختبرية لاستهداف بعوض الأنوفيليس 3،4،5،6،7،8،9،10. من بين هذه الاستراتيجيات ، تبدو تلك القائمة على أنظمة محرك الجينات (GDSs) ومشوهات نسبة الجنس الاصطناعية (SDs) واعدة. تعتمد GDS على إمكانية نقل ، بتردد عال جدا ، تعديل وراثي يؤثر على خصوبة الإناث أو يضعف دورة حياة الطفيلي في البعوض5،11،12. بدلا من ذلك ، تعمل SDs عن طريق تحريف النسبة الجنسية لذرية البعوض نحو الذكور ، مما يؤدي ، بمرور الوقت ، إلى انهيار السكان المستهدفين بسبب نقص الإناث4،6،13. تؤثر المكونات الرئيسية لهذه الأجهزة الوراثية بشكل أساسي على الأعضاء التناسلية للبعوض؛ حيث تنتج الجاميتات والبويضات والحيوانات المنوية بعد الانقسامالميوزي 14.

في هذا البروتوكول ، يتم استخدام التقدم في تقنيات الوراثة الخلوية لاستكشاف تكوين الحيوانات المنوية في An. gambiae مع التركيز على سلوك الكروموسومات في الموقع. تم التحقيق سابقا في بنية خصية البعوض والعمليات البيولوجية التي تحدث داخلها باستخدام عدد من الطرق الخلوية ، مثل التألق المناعي ، والجينات المحورة الفلورية ، ومضان الحمض النووي والحمض النووي الريبي في الموقع (FISH)15،16،17،18،19،20; تظهر الأعضاء شكلا يشبه المغزل ، حيث يتم توصيل القطب السفلي بقناة مختلفة متصلة بالغدد الملحقة الذكرية. في القطب العلوي ، تتكاثر مكانة الخلايا الجذعية الجرثومية وتتمايز إلى خلايا أمهات منوية مدمجة داخل أكياس الحيوانات المنوية التي تشكلها الخلايا الجسدية. بعد جولات متعددة من الانقسام الميتوزي، تتمايز أمهات المني إلى خلايا منوية، تدخل الانقسام الميوزي. عند الطور التمهيدي، يقترن الكروموسوم الجسمي والكروموسومات الجنسية مع متجانساتهما، ويحدث التقاطع. بعد الانقسامات الاختزالية ، يتم إنشاء النطائن الأحادية الصيغة الصبغية المستديرة وتدخل في تكوين الحيوانات المنوية ، وتؤدي هذه العملية إلى تكوين منوية أحادية الصيغة الصبغية ناضجة يتم فيها إزالة السيتوبلازم ، ويتكثف الكروماتين النووي ، ويظهر سوط في الجزء القاعدي من النوى21,22 (الشكل 1 والشكل 2).

بشكل عام ، يبدأ تكوين الحيوانات المنوية في مرحلة منتصف العذراء ، ويمكن اكتشاف الحيوانات المنوية الناضجة في مرحلة العذراء المتأخرة في خزان الحيوانات المنوية23. تستمر عملية نضوج الأكياس المنوية خلال حياة البالغين23،24،25. في خصيتي الأنوفيلة، يمكن التعرف بسهولة على كل خطوة من خطوات تكوين الحيوانات المنوية من خلال النظر إلى التشكل النووي للخلايا في كل كيس منوي (الشكل 2). يسمح التهجين الفلوري الكامل في الموقع (WFISH) ، الموصوف في هذا البروتوكول ، للباحثين بتسمية منطقة الكروموسومات على وجه التحديد وتتبعها أثناء تكوين الحيوانات المنوية مع الحفاظ على البنية الأصلية لموضع نوى العضو والخلية. يمثل هذا ميزة عند مقارنته ببروتوكول DNA FISH القياسي الذي يتم فيه سحق العضو عادة ، مما يؤدي إلى تلف الأنسجة19. في البروتوكول الحالي ، يتم استخدام مجسات الفلورسنت لتلطيخ التسلسلات المتكررة على الكروموسومات الجنسية ، وبالتالي تتبع سلوكها أثناء تكوين الحيوانات المنوية ، من الخلايا المنقسمة ثنائية الصيغة الصبغية إلى الحيوانات المنوية الأحادية الصيغة الصبغية الناضجة. يمكن أن يكون WFISH مفيدا بشكل خاص لدراسة الاقتران الاختزالي للكروموسوم الجنسي والتحقيق في الأنماط الظاهرية الخلوية المرتبطة ، على سبيل المثال ، بمشوهات نسبة الجنس الاصطناعية ، وعقم الذكور الهجين ، وخروج الجينات المشاركة في تكوين الحيوانات المنوية4،19،26،27.

ونظرا لدور بعوض الأنوفيلة كناقل للملاريا، فإنه يستهدف عددا متزايدا من استراتيجيات مكافحة النواقل الوراثية، التي غالبا ما تعمل في الأعضاء التناسلية لهذه الكائنات. تم إنشاء العديد من طفرات البعوض والأنماط الظاهرية الخلوية التي تتطلب تقنيات خلوية جديدة للتحقيقفي 26،27،28،29. تلقي الطريقة الموصوفة في هذه الدراسة الضوء على فهم تكوين الحيوانات المنوية ، وكذلك الآليات الخلوية وراء الاستراتيجيات الجينية التي لديها القدرة على السيطرة على البعوض الناقل للملاريا.

البروتوكول

1. وسم مسبار الحمض النووي

ملاحظة: فيما يلي الخطوات الفنية لإنشاء مجسات الحمض النووي الفلورية التي تحدد على وجه التحديد الكروموسومات الجنسية لبعوض An. gambiae.

  1. دقق في وضع العلامات باستخدام تفاعل البوليميراز المتسلسل
    1. استخراج الحمض النووي الجينومي من الشرانق أو الذكور البالغين لتسمية الكروموسومات X أو Y باستخدام مجموعة استخراج الحمض النووي الجينومي المتاحة تجاريا (انظر جدول المواد).
    2. تحضير خليط تفاعل تفاعل البوليميراز المتسلسل: 200 نانوغرام من الحمض النووي الجينومي ، 0.05 مللي متر من النوكليوتيدات غير المسماة (dATP ، dCTP ، dGTP) ، 0.015 mM من dTTP ، و 1 ميكرولتر من dUTP المسمى بالفلورسنت (Cy3 ، Cy5 ، أو فلوروكروم آخر) ، 50 pmol من التمهيدي الأمامي والخلفي (الجدول 1) ، 5 ميكرولتر من 10x PCR-buffer ، و 10 U من Taq DNA polymerase (انظر جدول المواد).
    3. لتسمية 18S rDNA والقمر الصناعي AgY53B (الجدول 1) ، قم بإجراء تفاعل تفاعل PCR باستخدام معلمات تفاعل البوليميراز المتسلسل التالية: دورة واحدة من 95 درجة مئوية لمدة 10 دقائق ؛ 35 دورة من 95 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، و 52 درجة مئوية لمدة 30 ثانية ، و 72 درجة مئوية لمدة 45 ثانية ؛ دورة واحدة من 72 درجة مئوية لمدة 5 دقائق ؛ وعقد نهائي عند 4 درجات مئوية.
      ملاحظة: للحصول على تركيز جيد للمسبار باستخدام طريقة وضع العلامات PCR (~ 1 ميكروغرام في 5 ميكرولتر) ، وهو أمر بالغ الأهمية لنجاح WFISH ، يجب أن يكون تفاعل تفاعل PCR عالي الكفاءة. لهذا السبب ، قبل تسمية المسبار ، يقترح بشدة اختبار فعالية الأوائل المختارة للتضخيم. بالإضافة إلى ذلك ، فإن تضمين التحكم الإيجابي في تفاعل PCR (بدون dUTP الفلوري) سيساعد على التحقق من فعالية تفاعل وضع العلامات.
    4. قم بتخزين المسبار في درجة حرارة -20 درجة مئوية في مكان مظلم.
  2. الحصول على 3 'مجسات قليلة النوكليوتيد الفلورية
    1. احصل على مجسات قليلة النوكليوتيد الفلورية المتاحة تجاريا كأوليجوات معدلة عن طريق إضافة فلوروكرومات Cy3 أو Cy5 (أو أي فلوروكروم آخر) إلى نهاية 3 'من تسلسل النوكليوتيدات (انظر جدول المواد). انظر البادئات/قليل النوكليوتيد في الجدول 1 للاطلاع على التسلسلات المرجعية المستخدمة لتسمية منطقة تقاطع الساتل AgY477-AgY53B المرتبط ب Y والساتل المرتبط X من Contig_240.
      ملاحظة: لا توجد عوائق فنية تتعلق بتركيز 3 'oligonucleotides المسمى في نهاية المطاف ، حيث يمكن للمستخدم عادة اختيار هذا قبل الشراء. نقترح تخفيف ~ 800 نانوغرام من محلول مسبار oligo في المخزن المؤقت للتهجين لوضع العلامات بكفاءة باستخدام مسبار oligo. تم استخدام مجسات oligo الخاصة ب X و Y سابقا ل WFISH بواسطة Liang و Sharakhov19 ، ويمكن العثور على التسلسل المرجعي في الجدول 1.

2. تحضير محلول التهجين

ملاحظة: يجب دمج مجسات الفلورسنت المتولدة في الخطوة 1 في محلول كيميائي يهجن مع التسلسلات المستهدفة.

  1. دقق في هطول الأمطار قبل التهجين الفلوري في الموقع
    1. إلى أنبوب سعة 1.5 مل ، أضف 5 ميكرولتر من مسبار الحمض النووي المسمى (إذا تم الحصول عليه بطريقة وضع العلامات PCR) أو 2.2 ميكرولتر من مسبار oligo المعدل 3 بوصات (~ 800 نانوغرام من المسبار) من الخطوة 1 و 5 ميكرولتر من الحمض النووي للحيوانات المنوية لسمك السلمون (انظر جدول المواد). اجمع بين المجسات الخاصة بمناطق جينومية مختلفة في نفس الأنبوب ، واستخدمها كحل فريد في الخطوات التالية.
    2. ترسيب مسبار الحمض النووي بإضافة 0.1 حجم من 3 M أسيتات الصوديوم و 2 مجلدات من الإيثانول 100٪. الحفاظ على -20 درجة مئوية لمدة 2.5 ساعة على الأقل (زيادة وقت الحضانة عند -20 درجة مئوية سيزيد من العائد النهائي). في هذه المرحلة ، يمكن أيضا تخزين المجسات بين عشية وضحاها قبل الطرد المركزي.
    3. أجهزة الطرد المركزي عند 17000 × جم عند 4 °C لمدة 20 دقيقة ، قم بإزالة الإيثانول ، وجفف الحبيبات بالهواء في RT في الظلام لمدة ~ 20 دقيقة.
  2. حل التهجين
    1. قبل الشروع في تشريح الخصية (الخطوة 3) ، قم بإعداد المخزن المؤقت للتهجين عن طريق خلط الكواشف التالية في أنبوب 1.5: 500 ميكرولتر من الفورماميد ، 0.2 غرام من كبريتات ديكستران ، 100 ميكرولتر من 20x سترات محلول ملحي الصوديوم (SSC) ، و 200 ميكرولتر من H20 المعقم (انظر جدول المواد). دوامة محلول التهجين لمدة 1 دقيقة ، والسماح لكبريتات ديكستران لتذوب عند 37 درجة مئوية لمدة 30 دقيقة.
    2. قم بإذابة الحبيبات من الخطوة 2.1.3 في 20-30 ميكرولتر من محلول التهجين (دوامة لمدة 1 دقيقة تقريبا ، وقم بإجراء دوران سريع ، وقم بتخزين الأنابيب عند 37 درجة مئوية في الظلام) للحصول على محلول التهجين.

3. تشريح الخصية والتثبيت

  1. في درجة حرارة الغرفة (RT) ، قم بتشريح 21 خصية على الأقل ~20 من الشرانق أو البالغين بعمر يوم واحد في محلول ملحي معقم 1x مخزن بالفوسفات (PBS) ، وانقلها إلى شريحة مجهرية نظيفة تحتوي على قطرة جديدة من محلول 1x PBS.
  2. انقل الخصيتين باستخدام طرف مرشح عريض التجويف P1,000 أو طرف إبرة تشريح من قطرة PBS 1x في طبق جنين يحتوي على 3.7٪ فورمالديهايد في 1x PBS مع 0.1٪ Tween-20 (PBST) ، واحتضانها لمدة 10 دقائق في RT.
  3. اغسل الخصيتين في 1x PBST لمدة 5 دقائق في RT. احتضان الخصيتين في 0.1 مجم / مل RNAse A (انظر جدول المواد) المخفف في 1x PBS معقم لمدة 30 دقيقة عند 37 درجة مئوية.
  4. قم بإزالة محلول RNAse ، وأضف محلول الاختراق (1٪ Triton / 0.1 M HCl في 1x PBST) ، واحتضانه في RT لمدة 10 دقائق.
    ملاحظة: يمكن استخدام Proteinase K كعامل اختراق بتركيز نهائي قدره 10 ميكروغرام / مل في 1x PBST لزيادة نفاذية الخصيتين.
  5. اغسل الخصيتين في 1x PBST مرتين لمدة 5 دقائق لكل منهما في RT.

4. التهجين

ملاحظة: يصف هذا القسم الخطوات النهائية للتهجين في الموقع .

  1. بعد خطوة الغسيل (الخطوة 3.5) ، انقل الخصيتين في أنبوب سعة 1.5 مل مع 20-30 ميكرولتر من محلول التهجين الذي يحتوي على المسبار المعد مسبقا (الخطوة 2.2.2). استخدم طرف الماصة لخلط المحلول برفق. حرك الأنبوب برفق خمس مرات قبل المتابعة إلى الخطوات التالية.
  2. احتضان لمدة 5 دقائق عند 75 درجة مئوية لتمسخ الحمض النووي.
  3. احتضان بين عشية وضحاها عند 37 درجة مئوية (إن أمكن ، مع هزاز عند أقل من 100 دورة في الدقيقة) لتهجين الحمض النووي والحمض النووي.
  4. انقل الخصيتين مرة أخرى إلى طبق الجنين باستخدام طرف مرشح عريض التجويف P1,000 ، واغسلهما في 2x SSC مسخن مسبقا إلى 50 درجة مئوية لمدة 5 دقائق.
    ملاحظة: بعد خطوة التهجين ، يلزم إجراء خطوة غسيل نهائية باستخدام 2x SSC ؛ يلعب هذا دورا مهما في إزالة أي إشارة خلفية ناتجة عن وجود مجسات غير مهجنة داخل أنسجة الأعضاء. في حالة وجود إشارة خلفية قوية ، يوصى بتكرار خطوة الغسيل النهائية.
  5. قم بإزالة 2x SSC ، وقم بتركيب الخصيتين باستخدام وسيط تركيب متاح تجاريا مع 4 ′ ، 6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) (انظر جدول المواد) على شريحة زجاجية بلورية ، وختم بمادة مانعة للتسرب ، واحتضانها لمدة ساعتين على الأقل في RT في الظلام.
  6. أداء التصوير متحد البؤر. يمكن تصور الخصيتين بالكامل باستخدام أهداف غمر الزيت 40x أو 63x. إذا تم تنفيذ مكدس z ، نقترح استخدام خطوة z تبلغ 1.25 ميكرومتر.

النتائج

في هذا العمل ، تم استخدام WFISH للتحقيق في سلوك الكروموسوم أثناء تكوين الحيوانات المنوية في An. gambiae. الخطوة الأولى الحاسمة لتطبيق هذا البروتوكول هي الحصول على الخصيتين التي تظهر مستوى منخفض من التغيير المورفولوجي بعد التشريح. مطلوب معرفة أساسية بتشريح البعوض لإجراء تشريح ناجح للخصية ، وفيما يلي بعض الإرشادات لهذا الإجراء. في بعوضة Anopheles ، يمكن العثور على الخصيتين الناضجة ملقاة في الجزء البطني السادس من مراحل العذراء والكبار21. كما هو موضح في الشكل 1، يربط الأسهر الخصيتين بالغدد الملحقة الذكرية (MAGs)، التي تقع في الجزء الأخير من البطن. ترتبط MAGs بقناة قذف فريدة تنقل الحيوانات المنوية والسوائل المنوية إلى العضو التناسلي والجزء الخارجي من الجهاز التناسلي الذكري21. يمكن تشريح الجهاز التناسلي الذكري الداخلي بأكمله باستخدام طرق مختلفة اعتمادا على مرحلة حياة البعوض. خلال مرحلة العذراء ، يمكن التعرف بسهولة على الخصيتين باستخدام مجهر مجسم في جميع أنحاء بشرة الضوء من خلال النظر إلى الجانب البطني من البطن بالقرب من الجزء السادس (الشكل 1). لتشريح الخصيتين ، يمكن عزل الجزء السفلي من البطن ، بما في ذلك الجزء السادس ، عن بقية الجسم باستخدام زوج من الإبر ونقله إلى قطرة نظيفة من 1x PBS. بعد إزالة الجزء الأخير ، يمكن سحق الجهاز بأكمله من البطن عن طريق الضغط اللطيف باستخدام إبر التشريح. لتشريح الخصيتين من الذكور البالغين ، تتضمن الخطوة الأولى عزل البطن بالكامل في قطرة جديدة من 1x PBS ثم سحب الجزء الأخير الذي يحمل المشابك ، وهي الهياكل الجماعية الذكرية (الشكل 1). في هذه المرحلة ، يجب أن يظهر الجزء السفلي من MAGs ويمكن التعرف عليه بسهولة بسبب لونه الأصفر. يمكن بعد ذلك سحب الجهاز الذكري بالكامل ببطء بمساعدة إبرة أو ملقط في قطرة 1x PBS حتى يصبح زوج الخصيتين المتصلين بالأسهر مرئيا. قبل الشروع في التثبيت ، من المهم عزل الخصيتين عن الأجزاء الأخرى من الجهاز الذكري عن طريق قطع بالقرب من الجزء السفلي من الأسهر (الشكل 1).

يعد عمر الشرانق أو الذكور البالغين عاملا مهما يجب مراعاته اعتمادا على مرحلة تكوين الحيوانات المنوية قيد الفحص. في An. gambiae ، يبدأ تكوين الحيوانات المنوية في مرحلة مبكرة / منتصف العذراء ، ويستمر طوال حياة الفرد24. بين 3 ساعات إلى 10 ساعات بعد التشرد ، يتم تمثيل المراحل الأولية والانقسام الاختزالي بشكل أكبر في الخصية (الطور الاختزالي ، الانقسامات الاختزالية) ، والحمض النووي للحيوانات المنوية غير مكثف نسبيا ، ولم تتشكل الحيوانات المنوية الناضجة بعد. توفر الشرانق المتأخرة والبالغين من العمر يوما واحدا توازنا جيدا بين المراحل السابقة والاختزالية وما بعد الانقسام الاختزالي (الشكل 2 والشكل 3). في البالغين الذين يزيد عمرهم عن 4 أيام ، تكون المراحل الأولية و spermatocysts أقل تمثيلا ، وتشغل الخصيتين بشكل أساسي الحيوانات المنوية الناضجة الموجودة في خزان الحيوانات المنوية.

للتحقيق في سلوك الكروموسومات الجنسية خلال مراحل مختلفة من تكوين الحيوانات المنوية ، تم إجراء WFISH على الخصيتين تشريح في مرحلة العذراء المتأخرة لضمان تمثيل جيد للعملية برمتها. لمتابعة سلوك هذه الكروموسومات ، تم استخدام مجسات الفلورسنت الخاصة بالتسلسلات المتكررة الموجودة حصريا على كروموسوم X أو Y. يمكن إنشاء مجسات الفلورسنت باستخدام تفاعل البوليميراز المتسلسل أو الحصول عليها تجاريا على شكل أوليغونيوكليوتيدات 3 'ذات علامة نهائية. يوصى باستخدام oligo بطول >40 بت في الثانية للسماح باكتشاف إشارة جيدة من مسبار oligo الفلوري. في تجربتنا ، تعمل oligos ذات العلامات النهائية مقاس 3 بوصات بشكل أفضل من المجسات التي تحمل علامة PCR من حيث اكتشاف الإشارة. بالإضافة إلى ذلك ، فإن رقم نسخة التسلسل المستهدف هو عامل قد يؤثر على فعالية WFISH. إذا لم ينجح وضع العلامات ، يقترح استخدام طريقة وضع العلامات PCR على جزء أطول أو تصميم العديد من oligos الخاصة بالمنطقة المستهدفة.

تسمح الطرق الحالية ، القائمة على استخدام محلول اختراق (1٪ Triton / 0.1 M HCl في 1x PBST) ، بمستوى جيد من نفاذية الخصية واختراق المجسات ، مما يؤدي إلى تفاعل تهجين ناجح. يمكن تصميم مجسات Oligo الخاصة بالتسلسلات المتكررة للكروموسوم الجنسي بناء على التوصيف الشامل للعناصر المتكررة التي يقوم بها Hall et al.20. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن الحصول على تسلسلات إجماع خاصة بالعناصر المتكررة المرتبطة ب X أو Y باستخدام منصة معلوماتية حيوية مثل خط أنابيب RedKmer30. من المهم ملاحظة أن مجسات الكروموسومات الجنسية يمكن أن تستهدف العناصر المتكررة مثل الأقمار الصناعية و retrotransposons ، ويمكن أن يكون لها مستوى مختلف من التهجين مع الكروموسومات X أو Y اعتمادا على الأنواع قيد الفحص20،31،32. كما هو موضح في الشكل 3 ، سمح المستوى الجيد من تهجين المجسات والخلفية المنخفضة بتصور الكروموسومات المستهدفة خلال تكوين الحيوانات المنوية. يمكن رؤية اقتران الكروموسومات الجنسية الموصوفة في مرحلتي ما قبل الكروموسوم والانقسام الاختزالي. تبع ذلك اكتشاف الكروموسومات X أو Y في كروموسومات نوى الخلايا الأحادية الصيغة الصبغية الناتجة عن الانقسامات الاختزالية. بعد ذلك، يمكن تتبع الطلائع المنوية الحاملة ل X أو Y خلال تكوين الحيوانات المنوية، والتي تتميز بمستويات مختلفة من تكثيف الحمض النووي، إلى الخطوة الأخيرة من الحيوانات المنوية الناضجة على شكل سهم. في الإعداد التجريبي الحالي ، تم استخدام مكدسات Z متحدة البؤر للحصول على معلومات تتعلق بالتنظيم المكاني ثلاثي الأبعاد للخلايا أثناء هذه العملية (الفيديو 1).

figure-results-1
الشكل 1: تشريح الخصيتين من الشرانق وذكور الأنوفيلة الغامبية البالغة من العمر يوما واحدا. (أ) تشريح البطن في مرحلة العذراء المتأخرة يوضح موضع الخصيتين بالقرب من الجزء السادس من البطن. يمكن التعرف على الخصيتين في جميع أنحاء بشرة وتظهر كهياكل بنية على جانبي البطن (مع السهام). (ب) تشريح الخصيتين في مرحلة العذراء ، مع إظهار الخصيتين الناضجتين (1) ، الأسهر (2) ، MAGs (3) ، وقناة القذف (4). (ج) تشريح البطن من ذكر بالغ يبلغ من العمر 1 يوم بعد إزالة جزء المشبك القاعدي. يمكن سحق MAGs من البطن عن طريق الضغط اللطيف (السهم الأبيض). (د) جهاز تناسلي داخلي للذكور تم تشريحه من ذكر بالغ عمره 1 يوم. يشير السهم الأبيض إلى الموضع الذي تشغله الحيوانات المنوية الناضجة ، والتي تظهر على شكل تجمع أبيض في القطب القاعدي للخصية. قضبان المقياس: (A ، C) 200 ميكرومتر ؛ (ب ، د) 100 ميكرومتر. تشير الأرقام الرومانية من الأول إلى الثامن إلى شرائح البطن. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2
الشكل 2: تمثيل تكوين الحيوانات المنوية في الأنوفيلة الغامبية. تظهر الصورة الموجودة على اليسار خصية خادرة متأخرة من An. gambiae بعد تلطيخ DAPI بالكامل. على اليمين نسخة تخطيطية لتصور أفضل. من خلال مراقبة الشكل النووي ومستوى التكثيف، من السهل نسبيا متابعة جميع مراحل تكوين الحيوانات المنوية من الخلايا الثنائية الصيغة الصبغية إلى الحيوانات المنوية الأحادية الصيغة الصبغية. يقع مكان الخلايا الجذعية في القطب العلوي للعضو ، حيث يبدأ التمايز إلى أمهات المني. يزداد عدد خلايا أمهات المني بعد الانقسام الانقسامي (الخلايا الخضراء) ، ويزداد حجم الكيسات المنوية (الخلايا الصفراء). تتمايز خلايا أمهات المني إلى خلايا منوية بعد جولات متعددة من الانقسامات الانقسامية (الخلايا الزرقاء). الخلايا المنوية ، التي تتميز بنوى أكبر نسبيا من خلايا المراحل الأخرى من العملية ، هي الخلايا التي ستخضع للانقسام الميوطي. يمكن الكشف عن الخلايا التي تخضع للانقسام الاختزالي من خلال النظر في وجود الكروموسومات في مراحل الانقسام الاختزالي المختلفة. يمكن اكتشاف كروموسومات Chiasmata و metaphase حتى عند التكبير المنخفض. يتم تمثيل المراحل الأولية بشكل مفرط في الخصيتين التي تم تشريحها في مرحلة العذراء المبكرة. بعد الانقسامين الميوتي الأول والثاني، تنتج الطلائع المنوية، وعادة ما توجد ملقاة في منتصف الخصية. تظهر نوى الطلائع المنوية درجة معينة من الاختلاف في شكلها ، من شكل دائري إلى شكل يشبه السهم. تدخل الطلائع المنوية في عملية تكوين الحيوانات المنوية ، والتي تبدأ خلالها النوى في التكثيف ، ويتغير هيكلها إلى نقاط تشبه السهم. عندما ينضج البعوض جنسيا بعد ظهوره ، يمكن أن تشغل الأكياس المنوية التي تحتوي على منوية ناضجة معظم حجم الخصية على حساب أكياس الحيوانات المنوية في مرحلة مختلفة من التطور. شريط المقياس: 20 ميكرومتر. تشير العلامة النجمية (*) إلى الجزء القمي من الخصية. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-3
الشكل 3: WFISH على خصية An. gambiae تشريح من مرحلة العذراء المتأخرة. تم إجراء WFISH باستخدام مجسات محددة للكروموسومات X (Contig_240) و Y (مسبار oligo الخاص ب AgY53B). (أ) يسمح WFISH بمتابعة سلوك الكروموسوم الجنسي أثناء تكوين الحيوانات المنوية من الخلايا الثنائية الصيغة الصبغية إلى الحيوانات المنوية الأحادية الصيغة الصبغية. في هذه الصورة ، من الممكن تقدير التغيرات الدراماتيكية التي تمر بها النوى أثناء تكوين الحيوانات المنوية. يسمح تصنيف الكروموسومات الجنسية بالتمييز بين الخلايا الثنائية الصيغة الصبغية والأحادية الصيغة الصبغية. في الخلايا الثنائية الصيغة الصبغية ، ترتبط الإشارة من الكروموسومات الجنسية بنفس النوى. في الخلايا الأحادية الصيغة الصبغية (الطلائع المنوية والحيوانات المنوية) ، لا ترتبط إشارة الكروموسومات الجنسية بسبب الانقسام الاختزالي الاختزالي. (ب، ج) صورة تكبير أعلى (63x) للخصية موضحة في (A). تم الحصول عليها في مواقع مختلفة على طول المحور Z. تشير الإطارات المنقطة البيضاء إلى منطقة الاستحواذ. ب: المرحلة الانتقالية بين الخلايا المنوية والطلائع المنوية، التي توضح تكوين الخلايا الأحادية الصيغة الصبغية وفصل الإشارات من الكروموسومات الجنسية إلى نوى منفصلة. ج: المرحلة الانتقالية بين الطلائع المنوية الأحادية الصيغة الصبغية والحيوانات المنوية الناضجة. تظهر هذه المرحلة التغيرات في مستوى التكثيف النووي. تظهر الحيوانات المنوية الناضجة شكلا أكثر كثافة واستطالة من الحيوانات المنوية. قضبان المقياس: (A) ، 30 ميكرومتر ؛ (ب ، ج) ، 10 ميكرومتر ؛ الرمادي: دابي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

التسلسل المستهدفتسلسل التمهيدي وإجماع مسبار Oligoمرجع
Contig_240 (X)5'-CAATAAATTTCCTTTTTAATGATGC
AAAATCTACGTCTCTAGC-3'-[فلوروكروم]		19
AgY53B (Y)5'AGAAGAATAGAATCAGAATAGTCGG
TTTCTTCATCCTGAAAGCC-3'-[فلوروكروم]		هذه الدراسة
AgY477-
AgY53B
تقاطع
المنطقة (Y)		5'-TTCTAAGTTTCTAGGCTTTAAGGAT
GAAGAAACCGACTATTC-3'-[فلوروكروم]		19
18S rDNA (X)F: AACTGTGGAAGAGCAGC
R: TCCACTTGATCCTTGCAAAA		19
AgY53B (Y)F: CCTTTAAACACATGCTCAAATT
R: GTTTCTTCATCCTTAAAGCCTAG		19

الجدول 1: قائمة مجسات oligo الخاصة بالكروموسوم X أو Y في An. gambiae.

فيديو 1: كومة 3D على WFISH أجريت على An. gambiae testis تشريح من مرحلة العذراء المتأخرة. للحصول على تمثيل ثلاثي الأبعاد لعملية تكوين الحيوانات المنوية ، يمكن إجراء مكدس ثلاثي الأبعاد متحد البؤر على الخصيتين تظهر عددا منخفضا من التعديلات الهيكلية. في هذه الدراسة ، تم إجراء المداخن بفاصل 1.25 ميكرومتر بين قسمين بصريين تحت عدسة زيت 63x أو 40x حتى لا تفقد المعلومات حول التنظيم المكاني ثلاثي الأبعاد للخلايا. الرمادي: DAPI ، الأصفر: Contig_240 (X) ، أرجواني: AgY53B (Y). الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الفيديو.

المناقشة

عادة ، تتطلب بروتوكولات FISH سحق العضو محل الاهتمام للسماح بتلطيخ الكروموسوم. هذا يسبب فقدان المعلومات المتعلقة بالترتيب المكاني للخلايا داخل هذا العضو33. يصف هذا البروتوكول كيف يمكن دراسة العمليات البيولوجية ، مثل تكوين الحيوانات المنوية ، في الموقع مع الحفاظ على البنية الأصلية السليمة للخصية وتنظيمها الخلوي الداخلي. يمكن استخدام المجسات التي تستهدف عناصر الحمض النووي المتكررة المختلفة ، والتي يتم تخصيبها بشكل خاص في الكروموسومات الجنسية20 ، في وقت واحد للكشف عن ديناميكيات نضوج الحيوانات المنوية. اعتمادا على توقيت تشريح الخصية ، يوفر WFISH الفرصة لدراسة مراحل مختلفة من تكوين الحيوانات المنوية من خلال تطور البعوض. WFISH مفيد لدراسة ظواهر محددة مثل عدم التوافق الهجين ، والذي يرجع في بعوض الأنوفيليس إلى وجود عيوب اختزالية مثل الفشل الأولي وعدم انفصال الكروموسوم الجنسي19،34،35. إلى جانب الجانب البيولوجي ، فإن تكوين الحيوانات المنوية هو هدف لعدد من الاستراتيجيات الوراثية التي تم تطويرها للسيطرة على حشرات الآفات مثل بعوض الأنوفيلة. في هذا السياق ، تم استخدام موضع rDNA المرتبط ب X ل An. gambiae كهدف لتطوير مشوه نسبة الجنس الاصطناعي ، والذي ، من خلال إتلاف الحيوانات المنوية الحاملة ل X ، ينحاز النسل نحو الذكور4،8،13.

تعكس هذه التقنية عمل محركات الانقسام الاختزالي لنسبة الجنس الطبيعية التي تم تحديدها في العديد من الأصناف ، بما في ذلك البعوض ، ولكنها لا تزال غير مفهومةبشكل جيد 28،36،37،38،39،40،41. يوفر WFISH الفرصة للتحقيق في هذه الظاهرة ويمهد الطريق لتحسين أو تحسين الاستراتيجيات الجينية القائمة على التشويه الجنسي من خلال ، على سبيل المثال ، توفير معلومات حول كيفية تأثر علم الخلايا لإنتاج الحيوانات المنوية باختيار المواقع المستهدفة المستخدمة لتمزيق الكروموسومات الجنسية. على الرغم من أن WFISH ، في تجربتنا ، تظهر فرصا عالية للنجاح ، إلا أنه لا يزال من الممكن حدوث الفشل. قد يكون هذا بسبب عدم كفاءة مستوى نفاذية الأنسجة ، والذي يمكن التغلب عليه عن طريق زيادة وقت حضانة المحلول المخترق. بدلا من ذلك ، يمكن استخدام Proteinase K أثناء خطوة النفاذية. في بعض الحالات ، لاحظنا مستوى غير موحد من اختراق المسبار ، مع إشارة أعلى في نوى الخلايا المنوية وإشارة أقل أو غائبة في مراحل الانقسام الاختزالي وتكوين الحيوانات المنوية. قد يكون هذا بسبب اختلاف في مستوى النفاذية اعتمادا على مرحلة الخلية. بالإضافة إلى ذلك ، أثبت WFISH أنه ذو قيمة عند استخدام مجسات الفلورسنت المصممة لاستهداف تسلسلات الحمض النووي الموجودة بأعداد نسخ عالية. عند استهداف الجينات أحادية النسخة ، قد لا يكون اكتشاف الإشارة كافيا. في هذه الحالة ، يجب دمج طرق تضخيم الإشارة ، مثل تضخيم إشارة التيراميد (TSA) ،42.

يمكن أن يقترن هذا البروتوكول بتلطيخ مناعي أو سلالات مراسلة معدلة وراثيا تؤوي علامات الفلورسنت الخاصة بالخط الجرثومي16،18 ، لأن هذا من شأنه أن يضيف معلومات حول توطين البروتين والتعبير الجيني في الموقع. في هذا العمل ، يوصف WFISH بأنه تقنية للتحقيق في تكوين الحيوانات المنوية في بعوض الأنوفيلة. ومع ذلك ، نظرا للتشريح المشترك للأعضاء التناسلية الذكرية ، يمكن تطبيق هذا البروتوكول على أنواع البعوض الأخرى التي تلعب دورا في انتقال المرض. وبالمثل، يمكن دراسة تكوين الأمشاج الأنثوية باستخدام هذه التقنية. بالإضافة إلى ذلك ، يمكن استكشاف الدراسات الخلوية في الأعضاء أو الأنسجة ذات الأهمية ، مثل الأمعاء الوسطى للبعوض ، والتي تعد هدفا لغزو الطفيليات ، أو الخلفيات الجينية غير النمطية ، مثل تلك الموجودة في البعوض الهجين ،43. علاوة على ذلك ، يمكن نقل هذه التقنية إلى كائنات أخرى ضمن رتبة Diptera.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل بمنحة من مؤسسة بيل وميليندا غيتس و Open Philanthropy. نشكر مرفق التصوير بالمجهر الضوئي (FILM) في إمبريال كوليدج لندن على التحليل المجهري. تم إنشاء الشكل 2 باستخدام Biorender.com.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
نيوكليوتيدات الفلورسنت Amersham CyDye ،CytivaPA53022
Amersham CyDye ، Cy5-dUTPCytivaPA55022
ART أطراف ماصة مفلترة واسعة التجويفThermoFisher Scientific2079GPK
CytoBond قابلة للإزالة Coverslip مانع التسربSciGene2020-00-1
ملح الصوديوم كبريتات ديكستران من Leuconostoc spp.سيجما ألدريتشD8906-5G
DNeasy الدم & مجموعات المناديل الورقية أطباق الأجنة Qiagen69504
VWR70543-30
الإيثانول ، درجة الجزيئيةSigma-Aldrich51976
فورماميدThermoFisher Scientific17899
GoTaq G2 DNA PolymerasePromegaM7841
حمض الهيدروكلوريك ، 37٪سيجماألدريتش 320331
شرائح المجهر, SuperFrostVWR 631-0114
PBS (10x) ، درجة الحموضة 7.4ThermoFisher Scientific70011044
بيرس 16٪ فورمالديهايد (وزن / حجم) ، خال من الميثانولThermoFisher Scientific28906
ProLong Gold Antifade Mountant مع DAPIThermoFisher ScientificP36941
RNase A / T1 MixThermoFisher ScientificEN0551
مجموعة من dATP ، dCTP ، dGTP ، dTTPPromegaU1330
محلول أسيتات الصوديومThermoFisher ScientificR1181
SP8 مجهر متحد البؤر المقلوبLeica
Triton X-100Sigma-Aldrich9036-19-5
TWEEN 20Sigma-AldrichP1379
محلول الحمض النووي للحيوانات المنوية السلمون UltraPureThermoFisher Scientific15632011
UltraPure SSC 20xThermoFisher Scientific15557044
Primer sequences
5'-CAATAAATTTCCTTTTTTATGATGC
AAAATCTACGTCTCTAGC-3'-[Fluorochrome]		Eurofins GenomicsContig_240 (X)
5 ' AGAAGAATAGAATCAGAATAGT
CGG
TTTCTTCATCCTGAAAGCC-3'-[Fluorochrome]		Eurofins GenomicsAgY53B (Y)
5'-TTCTAAGTTTCTAGGCTTTAAGGA
T
GAAGAAACCGACTATTC-3'-[Fluorochrome]		Eurofins GenomicsAgY477-
AgY53B
تقاطع
المنطقة (Y)
F: AACTGTGGAAAAGCCAGAGC
R: TCCACTTGATCCTTGCAAAA		Eurofins Genomics18S rDNA (X)
F: CCTTTAAACACATGCTCAAATT
R: GTTTCTTCATCCTTAAAGCCTAG		Eurofins GenomicsAgY53B (Y)
نيوكليوتيدات الفلورسنت Cy3-dUTP

المراجع

  1. World Malaria Report. World Health Organization. , Available from: https://www.who.int/teams/global-malaria-programme/reports/world-malaria-report-2022 (2022).
  2. Bhatt, S., et al. The effect of malaria control on Plasmodium falciparum in Africa between 2000 and 2015. Nature. 526 (7572), 207-211 (2015).
  3. Hammond, A., et al. A CRISPR-Cas9 gene drive system targeting female reproduction in the malaria mosquito vector Anopheles gambiae. Nature Biotechnology. 34 (1), 78-83 (2016).
  4. Galizi, R., et al. A synthetic sex ratio distortion system for the control of the human malaria mosquito. Nature Communications. 5 (1), 3977(2014).
  5. Kyrou, K., et al. A CRISPR-Cas9 gene drive targeting doublesex causes complete population suppression in caged Anopheles gambiae mosquitoes. Nature Biotechnology. 36 (11), 1062-1066 (2018).
  6. Simoni, A., et al. A male-biased sex-distorter gene drive for the human malaria vector Anopheles gambiae. Nature Biotechnology. 38 (9), 1054-1060 (2020).
  7. Gantz, V. M., et al. Highly efficient Cas9-mediated gene drive for population modification of the malaria vector mosquito Anopheles stephensi. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 112 (49), E6736-E6743 (2015).
  8. Bernardini, F., Kriezis, A., Galizi, R., Nolan, T., Crisanti, A. Introgression of a synthetic sex ratio distortion system from Anopheles gambiae into Anopheles arabiensis. Scientific Reports. 9 (1), 5158(2019).
  9. Hammond, A. M., Galizi, R. Gene drives to fight malaria: Current state and future directions. Pathogens and Global Health. 111 (8), 412-423 (2017).
  10. Garrood, W. T., et al. Driving down malaria transmission with engineered gene drives. Frontiers in Genetics. 13, 891218(2022).
  11. Hoermann, A., et al. Gene drive mosquitoes can aid malaria elimination by retarding Plasmodium sporogonic development. Science Advances. 8 (38), (2022).
  12. Nash, A., et al. Integral gene drives for population replacement. Biology Open. 8 (1), (2019).
  13. Galizi, R., et al. A CRISPR-Cas9 sex-ratio distortion system for genetic control. Scientific Reports. 6 (1), 31139(2016).
  14. Terradas, G., Hermann, A., James, A. A., McGinnis, W., Bier, E. High-resolution in situ analysis of Cas9 germline transcript distributions in gene-drive Anopheles mosquitoes. G3: Genes, Genomes, Genetics. 12 (1), (2022).
  15. Durant, A. C., Donini, A. Ammonium transporter expression in sperm of the disease vector Aedes aegypti mosquito influences male fertility. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 117 (47), 29712-29719 (2020).
  16. Taxiarchi, C., et al. High-resolution transcriptional profiling of Anopheles gambiae spermatogenesis reveals mechanisms of sex chromosome regulation. Scientific Reports. 9 (1), 14841(2019).
  17. Pompon, J., Levashina, E. A. A new role of the mosquito complement-like cascade in male fertility in Anopheles gambiae. PLoS Biology. 13 (9), e1002255(2015).
  18. Papathanos, P. A., Windbichler, N., Menichelli, M., Burt, A., Crisanti, A. The vasa regulatory region mediates germline expression and maternal transmission of proteins in the malaria mosquito Anopheles gambiae: A versatile tool for genetic control strategies. BMC Molecular Biology. 10 (1), 13(2009).
  19. Liang, J., Sharakhov, I. V. Premeiotic and meiotic failures lead to hybrid male sterility in the Anopheles gambiae complex. Proceedings of the Royal Society B. 286 (1906), 20191080(2019).
  20. Hall, A. B., et al. Radical remodeling of the Y chromosome in a recent radiation of malaria mosquitoes. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 113 (15), E2114-E2123 (2016).
  21. Clements, A. N. The Biology of Mosquitoes. Volume 1: Development, Nutrition and Reproduction. , CABI. Wallingford, Oxfordshire. (1992).
  22. Demarco, R. S., Eikenes, ÅH., Haglund, K., Jones, D. L. Investigating spermatogenesis in Drosophila melanogaster. Methods. 68 (1), 218-227 (2014).
  23. Helinski, M. E., Parker, A. G., Knols, B. G. Radiation biology of mosquitoes. Malaria Journal. 8, S6(2009).
  24. Huho, B. J., et al. A reliable morphological method to assess the age of male Anopheles gambiae. Malaria Journal. 5 (1), 62(2006).
  25. Fabian, L., Brill, J. A. Drosophila spermiogenesis. Spermatogenesis. 2 (3), 197-212 (2012).
  26. Li, M., et al. Suppressing mosquito populations with precision guided sterile males. Nature Communications. 12 (1), 5374(2021).
  27. Thailayil, J., Magnusson, K., Godfray, H. C., Crisanti, A., Catteruccia, F. Spermless males elicit large-scale female responses to mating in the malaria mosquito Anopheles gambiae. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108 (33), 13677-13681 (2011).
  28. Haghighat-Khah, R. E., et al. Cellular mechanisms regulating synthetic sex ratio distortion in the Anopheles gambiae germline. Pathogens and Global Health. 114 (7), 370-378 (2020).
  29. Yamamoto, D. S., et al. A synthetic male-specific sterilization system using the mammalian pro-apoptotic factor in a malaria vector mosquito. Scientific Reports. 9 (1), 8160(2019).
  30. Papathanos, P. A., Windbichler, N. Redkmer: An assembly-free pipeline for the identification of abundant and specific X-chromosome target sequences for X-shredding by CRISPR endonucleases. The CRISPR Journal. 1 (1), 88-98 (2018).
  31. Sharma, A., Kinney, N. A., Timoshevskiy, V. A., Sharakhova, M. V., Sharakhov, I. V. Structural variation of the X chromosome heterochromatin in the Anopheles gambiae complex. Genes. 11 (3), 327(2020).
  32. Krzywinski, J., Sangaré, D., Besansky, N. J. Satellite DNA from the Y chromosome of the malaria vector Anopheles gambiae. Genetics. 169 (1), 185-196 (2005).
  33. Timoshevskiy, V. A., Sharma, A., Sharakhov, I. V., Sharakhova, M. V. Fluorescent in situ hybridization on mitotic chromosomes of mosquitoes. Journal of Visualized Experiments. (67), e4215(2012).
  34. Liang, J., Hodge, J. M., Sharakhov, I. V. Asymmetric phenotypes of sterile hybrid males from reciprocal crosses between species of the Anopheles gambiae complex. Frontiers in Ecology and Evolution. 9, 660207(2021).
  35. Slotman, M., Torre, A. D., Powell, J. R. The genetics of inviability and male sterility in hybrids between Anopheles gambiae and An. arabiensis. Genetics. 167 (1), 275-287 (2004).
  36. Wood, R. J., Newton, M. E. Sex-ratio distortion caused by meiotic drive in mosquitoes. The American Naturalist. 137 (3), 379-391 (1991).
  37. Cazemajor, M., Joly, D., Montchamp-Moreau, C. Sex-ratio meiotic drive in Drosophila simulans is related to equational nondisjunction of the Y chromosome. Genetics. 154 (1), 229-236 (2000).
  38. Jaenike, J. Sex chromosome meiotic drive. Annual Review of Ecology and Systematics. 32 (1), 25-49 (2001).
  39. Courret, C., Chang, C. H., Wei, K. H., Montchamp-Moreau, C., Larracuente, A. M. Meiotic drive mechanisms: Lessons from Drosophila. Proceedings of the Royal Society B. 286 (1913), 20191430(2019).
  40. Zanders, S. E., Unckless, R. L. Fertility costs of meiotic drivers. Current Biology. 29 (11), R512-R520 (2019).
  41. Newton, M. E., Wood, R. J., Southern, D. I. A cytogenetic analysis of meiotic drive in the mosquito, Aedes aegypti (L.). Genetica. 46 (3), 297-318 (1976).
  42. Carabajal Paladino, L. Z., Nguyen, P., Šíchová, J., Marec, F. Mapping of single-copy genes by TSA-FISH in the codling moth, Cydia pomonella. BMC Genomic Data. 15, S15(2014).
  43. Bernardini, F., et al. Cross-species Y chromosome function between malaria vectors of the Anopheles gambiae species complex. Genetics. 207 (2), 729-740 (2017).

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة