يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

الكى المضاعف في نموذج فأر من التهاب الفقار اللاصق

2.7K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/65586

⸱

أكتوبر 27, 2023

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Acupuncture-Moxibustion and Tuina, Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 2School of First Clinical Medicine, Shandong University of Traditional Chinese Medicine, 3External Treatment Center, Affiliated Hospital of Shandong University of Traditional Chinese Medicine

في هذه المقالة

ملخص

تصف هذه الورقة بالتفصيل إجراءات العملية والاحتياطات الواجب اتخاذها أثناء الكى في علاج التهاب الفقار اللاصق في فئران التجارب.

الملخص

التهاب الفقار اللاصق (AS) هو شكل من أشكال التهاب المفاصل يزداد سوءا وتعطيلا يؤثر بشكل أساسي على الهيكل العظمي المحوري. هذا المرض يشمل أساسا العمود الفقري والمفصل العجزي الحرقفي. قد يحدث اندماج العمود الفقري والمفصل العجزي الحرقفي في المرحلة المتأخرة من المرض ، مما يؤدي إلى تصلب العمود الفقري وحداب ، وكذلك صعوبة في المشي ، مما يؤثر بشكل خطير على جودة العمل وأنشطة الحياة اليومية ويفرض عبئا ثقيلا على المريض والأسرة والمجتمع. تم إيلاء اهتمام متزايد للعلاج غير الدوائي كعلاج بديل ل AS. الكى هو تقنية علاجية قديمة تستخدم في الطب الصيني التقليدي (TCM). علاج الكى Du ، وهو علاج خارجي فريد ومبتكر تم تطويره على أساس الكى العادي ، له تأثير علاجي واضح على AS. يجمع Du-mokibustion بمهارة بين التقنيات المتوافقة للطب الصيني التقليدي لدمج خطوط الطول ونقاط الوخز والأدوية العشبية الصينية والكي. يصف هذا البحث إجراءات التشغيل والاحتياطات الواجب اتخاذها أثناء الكى المثاني في فئران التجارب بالتفصيل لتوفير أساس تجريبي لدراسة آلية الكى المثاني في علاج AS.

المقدمة

التهاب الفقار اللاصق (AS) هو شكل من أشكال التهاب المفاصل يزداد سوءا وتعطيلا يؤثر بشكل أساسي على الهيكل العظمي المحوري. وفقا لأحدث مسح وبائي ، ~ 0.01٪ -1.8٪ من الناس في العالم يعانون من هذه الحالة1 ، معظمهم من الشباب الذكور (نسبة الذكور إلى الإناث هي ~ 2-3: 1) 2. معدل حدوث AS في السكان الصينيين هو 0.2 ٪ -0.4 ٪. هذا المرض يشمل أساسا العمود الفقري والمفصل العجزي الحرقفي. قد يحدث اندماج العمود الفقري والمفصل العجزي الحرقفي في المراحل المتأخرة من المرض ، مما يؤدي إلى تصلب العمود الفقري وحداب ، وكذلك صعوبة في المشي ، مما يؤثر بشكل خطير على جودة العمل وأنشطة الحياة اليومية ويفرض عبئا ثقيلا على المريض والأسرة والمجتمع1. حاليا ، لا يوجد حل نهائي ل AS ، وتركز العلاجات المقدمة ، الدوائية وغير الدوائية ، في المقام الأول على تخفيف الألم ، وإبطاء تطور المرض ، وتحسين نوعية الحياة. في السنوات الأخيرة ، نظرا لأن خيارات العلاج الدوائي كانت محدودة للغاية3 ، فقد تم إيلاء اهتمام متزايد للعلاج غير الدوائي ، والذي أصبح علاجا بديلا ل AS. في الصين ، غالبا ما يفضل المرضى العلاج الخارجي الذي يتكون من الطب الصيني التقليدي (TCM) ، والذي له آثار جانبية طفيفة وراحة كبيرة أثناء العلاج.

الكى هو تقنية علاجية قديمة تستخدم في الطب الصيني التقليدي. الكى المدو هو تقنية علاج خارجية تتكون من "الكى الطبي بالرغوة" على الجزء الفقري من خط الطول Du. يستخدم بشكل رئيسي في علاج AS وقد أظهر السلامة والفعالية. بالمقارنة مع الكى العادي ، يتميز Du-moxibustion بخصائص منطقة الكى الواسعة ، ومخروط moxa الكبير ، وقوة النيران القوية ، ودرجة الحرارةالعالية 4. تشير المراجعة المنهجية والتحليل التلوي إلى أن الكى هو علاج تكميلي فعال ل AS5. أكدت دراسة حديثة أن الأعراض السريرية وبعض العوامل الالتهابية لمرضى AS قد تحسنت بسبب الكى6. كشفت الدراسات أن الكى Du يمكن أن يزيد من محتوى الدماغ من β-endorphin ويمارس تأثيرا مسكنا مركزيا7 ، ويقلل من تنظيم التعبير عن جين HLA-B27 8 ، ويؤخر معدل تكرار AS. كما أن الكى المتساوي له تأثير محسن على تطور AS عن طريق تقليل مؤشر الالتهاب ESR (ESR) ومستويات البروتين التفاعلي C (CRP) ، والببتيد C-terminal من الكولاجين من النوع الأول (CTX-I) ، وبروتين Dickkopf1 (DKK1) 9,10.

أظهرت دراسة سريرية أخرى أن الكى Du يمكن أن يزيد من ضبط المجموعات الفرعية للخلايا التائية المضطربة ، Ig ، ويكمل C3 لتحقيق التوازن بين آلية المناعة11. من حيث استقلاب العظام ، يمكن أن يمنع الكى صعود الفوسفاتيز القلوي في الدم (ALP) وفوسفور المصل (S-P) ، ويزيد من الكالسيوم في الدم (S-Ca) ، وكثافة المعادن في العظام (BMD) ، وقوة العظام12. علاوة على ذلك ، يمكن ل Du-mokibustion إصلاح وظيفة العمود الفقري في نقاط متعددة لتخفيف أعراض التعب لدى مرضى AS13. كشفت بعض الدراسات التي أجريت على عن الآلية المحتملة للكي في علاج AS. أشارت دراسة إلى أن الكى حسن بشكل كبير الحالة الصحية العامة ، وقلل من مستويات سمك المخلب ، وقلل من مستويات IL-1β و PGE2 و IL-6 و TNF-α في عينات أنسجة الأربطة في العمود الفقري. ربط تحليل المسار الأيضي المستقلبات المحددة بدورة TCA ، وكذلك الدهون والأحماض الأمينية والنباتات المعوية واستقلاب البيورين14. أظهرت دراسة أخرى أن الكى قمع التعبير عن السيتوكينات المؤيدة للالتهابات ، IL-1β ، TNF-α ، IL-17 ، و IL-6. خفض مستويات mRNA من RANKL و RANK و ALP و OCN ؛ وتحسين السمات النسيجية المرضية في الفئرانAS 15.

في حين أن هذه الدراسات تشير إلى أن الكى قد يكون فعالا في علاج AS، هناك حاجة إلى مزيد من البحوث لتأكيد هذه النتائج وتحديد بروتوكول العلاج الأمثل للكي في المرضى الذين يعانون من AS. قام فريقنا بإنشاء وتعديل علاج الكى بناء على النظرية الأساسية والتشغيل العملي للكي الصيني التقليدي ، والذي تم تنفيذه وتطبيقه على نطاق واسع في الممارسة السريرية الصينية لأكثر من 35 عاما. على الرغم من وجود عدد قليل من الدراسات عالية الجودة حول علاج AS بواسطة Du-moxibustion ، إلا أن دلالته في علاج AS مدعومة بالأدلة. ومع ذلك ، فإن آلية علاج AS مع Du-mokibustion تستحق مزيدا من الدراسة. تعد الدراسة على طريقة مهمة لاستكشاف آلية الكى في علاج AS. العملية السريرية ل Du-mokibustion ناضجة نسبيا ولكنها نادرا ما تستخدم في دراسة الآلية في التجارب على. تصف هذه الورقة بالتفصيل العملية والاحتياطات الواجب اتخاذها أثناء الكى Du في علاج فئران التجارب AS.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على جميع التجارب على من قبل لجنة مراجعة أخلاقيات رعاية التجريبي بجامعة شاندونغ للطب الصيني التقليدي (No. SDUTCM20230831301).

1. إعداد

  1. تحديد المجموعات التجريبية وعدد لكل مجموعة مقدما.
  2. اختر ذكور الفئران BALb / c ، وقم بإيوائها في درجة حرارة ثابتة تبلغ 22 ± 1 درجة مئوية ، ورطوبة ثابتة تبلغ 60 ± 5٪ ، وبيئة إضاءة دورة نهارية لمدة 12 ساعة.

2. إنشاء نموذج الماوس AS

ملاحظة: تم تحفيز نموذج AS باستخدام بروتيوغليكان الغضروف (PG) ، وهي طريقة نمذجة كلاسيكية16،17،18،19،20،21. تم تحصين الفئران من سلالة BALB / c بشكل متكرر باستخدام PG للحث على التهاب الأوتار والتهاب الفقار. انظر جدول المواد للحصول على التفاصيل المتعلقة بالمواد والكواشف والأدوات المستخدمة في هذا البروتوكول.

  1. استخدم ماصة 200 ميكرولتر لسحب 200 ميكرولتر من PG و CFA (أو IFA) في أنبوب طرد مركزي سعة 1.5 مل. يهتز بلطف لخلط السائل في أنبوب الطرد المركزي.
  2. ضع أنبوب الطرد المركزي في مطحنة الأنسجة للتجانس ثم احتضانه على الثلج لمدة 4 دقائق. كرر 5x. اضبط المعلمات التالية في مطحنة الأنسجة: 60 هرتز ، طحن 30 ثانية ، فاصل 10 ثوان لما مجموعه 6 دورات.
  3. استخراج 0.2 مل من بروتين PG المستحلب من أنبوب الطرد المركزي مع حقنة 1 مل.
  4. الاستيلاء على الماوس وإصلاحه باليد اليسرى. ضع الماوس في وضع ضعيف ، مع إبقاء الرأس أقل من الذيل لمنع تلف أعضاء البطن عند إدخال المحقنة.
  5. تعقيم البطن مع مسحات الكحول باستخدام اليد اليمنى.
  6. مع وجود المحقنة في اليد اليمنى ، أدخل الإبرة تحت الجلد قليلا إلى يسار أو يمين الخط البطني في النصف السفلي من البطن.
  7. ادفع الإبرة 3-5 مم بالتوازي مع خط منتصف البطن ثم ادفع الإبرة إلى تجويف البطن بزاوية 45 درجة على الجلد.
  8. اختراق الصفاق ، وسحب سد الإبرة ، وحقن ببطء بروتين PG المستحلب.

3. دو الكى

ملاحظة: قم بإعداد أهم ثلاث مواد خام ل Du-mokibustion مسبقا (الشكل 1).

  1. تحضير المخاريط moxa. خذ المخمل في اليد ، مع وجود راحتين تواجهان اتجاهين متعاكسين يمارسان قوة التواء لفرك المخمل في شكل مغزل (الشكل 2)
  2. قطع الزنجبيل إلى قطع صغيرة وهرسه في عصارة (الشكل 3). تصفية هريس الزنجبيل من خلال الشاش القطني. افصل عصير الزنجبيل وطين الزنجبيل عن هريس الزنجبيل للتحضير للخطوة التالية.
  3. تحضير 10 غرام من طين الزنجبيل و 20 مل من عصير الزنجبيل ووضعها في أكواب ورقية لاستخدامها لاحقا.
  4. تزن 0.1 غرام من مسحوق الطب الصيني التقليدي (خليط من مسحوق القرفة ، مسحوق القرنفل ، مسحوق notopterygium ، مسحوق أنثاريدين ، والمسك الاصطناعي)22 وطحنها في الهاون.
  5. ضع الفئران في صندوق تحريض التخدير في آلة التخدير الحيواني وقم بتخديرها بمزيج من 2-3٪ إيزوفلوران وأكسجين بمعدل تدفق 2 لتر / دقيقة.
  6. قم بتقييم عمق التخدير من خلال مراقبة عدم وجود منعكس مفاجئ في البداية والتحقق من مستوى التخدير الجراحي عن طريق التحقق من عدم وجود منعكس دواسة استجابة لقرصة إصبع القدم اللطيفة.
  7. بعد أن يصل الماوس إلى التخدير الجراحي للطائرة ، أخرجه من الصندوق وقم بتثبيته على طاولة العمليات في وضع الانبطاح. قم بمحاذاة فم الفأر وأنفه مع مخرج المخدر.
  8. إدارة التخدير عن طريق قناع متصل بجهاز التخدير ، والذي يتم من خلاله توصيل الأيزوفلوران والأكسجين عبر دائرة غير قابلة لإعادة التنفس. حافظ على التخدير واحتفظ بالماوس على وسادة تسخين 37 درجة مئوية أثناء الإجراء التشغيلي بأكمله. ضع مادة التشحيم على العينين لمنع الجفاف.
  9. حدد موقع نقاط الوخز وحدد منطقة التحفيز (الشكل 4).
  10. حلق الشعر على ظهر الفأر حتى يظهر الجلد بلون اللحم على ظهر الماوس. تأكد من أن عرض إزالة الشعر ~ 1.5 سم والطول من فقرة عنق الرحم السابعة إلى فقرة الذيل (الشكل 5 أ).
  11. ضع عصير الزنجبيل المحضر بشاش قطني على المنطقة المحلوقة (الشكل 3).
  12. رش مسحوق TCM بالتساوي بفرشاة كتابة على الخط المتوسط للجزء الخلفي من الماوس وقم بتغطيته بورق التوت (الشكل 5B-D).
  13. اصنع عمود زنجبيل شبه منحرف بطول 6 سم وعرض 1.5 سم وسمك 3 مم بطين الزنجبيل. ثبت عمود الزنجبيل على ورق التوت (الشكل 5E).
  14. اصنع أخدودا فوق خط الوسط لعمود الزنجبيل (الشكل 3) ، وضع مخروط moxa على عمود الزنجبيل.
  15. أشعل مخروط moxa ، وضع مخروط moxa جديدا بعد احتراق المخروط السابق. تحقق من صلابة عمود الزنجبيل لمنع حرق الماوس ، وحرق ما مجموعه ثلاثة مخاريط (الشكل 5F).
  16. بعد حرق مخاريط moxa ، امسح الزنجبيل ومسحوق TCM ، ونظف الجزء الخلفي من الماوس. توقف عن التخدير في هذه المرحلة.
  17. اسمح للفأر باستعادة وعيه في قفص جديد مع وصول غير مقيد إلى الطعام والماء. ضع القفص على وسادة ساخنة للمساعدة في عملية التعافي. راقب حتى يستعيد وعيه الكافي.
  18. بمجرد أن يتعافى الماوس تماما ، تأكد من وجود رد الفعل الصحيح قبل إعادته إلى غلافه الطبيعي.
    ملاحظة: أثناء العملية ، من الضروري مراقبة الحالة العقلية للفئران لتجنب ضعف التنفس. منع السمط ، ولكن الحفاظ على الفئران دافئة ، وتجنب كدمات من مخالب والذيل.

4. تقييم مؤشر التهاب المفاصل (الذكاء الاصطناعي)

  1. تقييم درجة الذكاء الاصطناعي ثلاث مرات: قبل النمذجة ، وبعد النمذجة ، وبعد العلاج. معايير التقييم هي كما يلي: 0 ، لا احمرار أو تورم. 1 ، احمرار طفيف أو تورم في عدد قليل من أصابع القدم ؛ 2 ، احمرار وتورم في معظم المفاصل أصابع القدم وأصابع القدم. 3 ، احمرار خطير وتورم في القدمين وتحت مفصل الكاحل ؛ و 4 ، احمرار وتورم في القدمين ومفصل الكاحل23.
  2. احسب الدرجات الذكاء الاصطناعي لجميع الكفوف الأربعة ، بحد أقصى 16.

5. اختبار الروتارود

ملاحظة: يستخدم اختبار الروتارود لتقييم التنسيق الحركي والتوازن عن طريق تسجيل الوقت الذي تقضيه الفئران على الأسطوانة الدوارة. تألفت هذه التجربة من ثلاث تجارب تفصل بينها فواصل زمنية مدتها 20 دقيقة. تم تسجيل بيانات الاختبار الرسمية من التجربة الثالثة ، حيث كان أول اختبارين بمثابة تمارين تدريبية.

  1. ضع الفئران على براميل دوارة تدور تحت تسارع مستمر من 4 إلى 40 دورة في الدقيقة على 300 ثانية24.
  2. قم بقياس وقت الكمون (الوقت حتى يسقط الماوس من القضيب). توفير حشوة لمنع الإصابة عند سقوطها.

6. اختبار المجال المفتوح (OFT)

ملاحظة: يستخدم OFT لتقييم حالة الحركة اللاإرادية ، بهدف تحديد السلوك المرضي. تم وضع أربع ساحات مربعة مفتوحة المجال (50 سم × 50 سم × 40 سم) معا لتشكيل الجهاز. تم تقسيم الجزء السفلي من الصندوق إلى تسعة مربعات متساوية.

  1. التحكم في ضوضاء خلفية المختبر إلى أقل من 65 ديسيبل.
  2. امسح الجهاز بالكامل بنسبة 75٪ من الإيثانول قبل كل تجربة.
  3. ضع جميع الفئران في غرفة الاختبار قبل 1 ساعة من الاختبار للسماح لها بالتكيف مع بيئتها.
  4. ضع الفئران في ساحات الحقول المفتوحة المربعة واسمح لها بالاستكشاف لمدة 10 دقائق.
  5. سجل المسافة الإجمالية وسرعة الحركة لمدة 10 دقائق.

7. القتل الرحيم وجمع العينات

  1. ضع الماوس في صندوق تحريض التخدير وقم بتخديره بمزيج من 2-3٪ إيزوفلوران وأكسجين بمعدل تدفق 2 لتر / دقيقة. بمجرد دخول الماوس في حالة تخدير عميق يؤكدها عدم وجود منعكس دواسة ، قم بنقله إلى طاولة العمليات لتخدير الصيانة.
  2. الاستيلاء على الماوس وإصلاحه باليد غير المهيمنة.
  3. اضغطي برفق على منطقة العين لجعل مقل العيون مزدحمة وبارزة.
  4. استخدم المقص لتقليم شعيرات الماوس لمنع انحلال الدم الناجم عن الشعر.
  5. تأكد من عمق التخدير عن طريق التحقق من عدم وجود منعكس دواسة استجابة لقرصة إصبع القدم. استخدم الملقط للإمساك بمقلة العين وإزالتها بسرعة ، مما يسمح للدم بالتدفق إلى أنبوب طرد مركزي دقيق من مقبس العين.
    ملاحظة: يمكن أيضا استخدام طرق بديلة لجمع الدم ، مثل ثقب القلب.
  6. عندما يتباطأ معدل تنقيط الدم ، اضغط برفق على منطقة قلب الفأر لتسريع ضخ الدم والحصول على المزيد من الدم. ثم القتل الرحيم للفأر باستخدام خلع عنق الرحم.
  7. امسك الساق فوق مفصل الكاحل مباشرة باستخدام ملقط في اليد غير المهيمنة. ثم ، قم بقص الساق فوق مفصل الكاحل مباشرة باستخدام المقص.

8. التحليل النسيجي

  1. اغمر عينات الكاحل في 4٪ بارافورمالدهيد لأكثر من 24 ساعة. إزالة الكلسify في 10 ٪ EDTA (درجة الحموضة = 7.4) لمدة 1 شهر.
  2. نقع العينات في 4 ٪ بارافورمالدهيد لمدة 2 ساعة.
  3. ثم ، نقع العينات في تدرج زيادة تركيزات الإيثانول (70 ٪ ، 80 ٪ ، 90 ٪ ، 100 ٪ ، 100 ٪ ، 100 ٪). نقع كل تركيز الإيثانول لمدة 1 ساعة.
  4. نقع العينات في الزيلين لمدة 3 ساعات.
  5. اغمر عينات الكاحل في البارافين لمدة 7 ساعات. توضع مكعبات البارافين جانبا في ثلاجة على حرارة 4 درجة مئوية.
  6. قم بتقطيع كتل البارافين إلى سمك 6 ميكرومتر باستخدام آلة تقطيع البارافين شبه الأوتوماتيكية.
  7. انقع الشرائح لمدة 4 × 5 دقائق في الزيلين لإكمال إزالة الشمع.
  8. انقع الشرائح في تدرج من تركيزات الإيثانول المتناقصة (100٪ ، 100٪ ، 95٪ ، 75٪) لمدة 2 دقيقة لكل منها. نقع في الماء المقطر لمدة 2 دقيقة.
  9. تلطيخ الشرائح بالهيماتوكسيلين لمدة 10 دقائق واشطفها بالماء المقطر لمدة 5 ثوان.
  10. نقع الشرائح لمدة 30 ثانية في سائل التمايز وشطف بالماء المقطر لمدة 5 ثوان.
  11. تلطيخ شرائح مع eosin لمدة 1 دقيقة وشطف بالماء المقطر لمدة 3 دقائق.
  12. نقع الشرائح في تدرج من تركيزات الإيثانول المتزايدة (80 ٪ ، 95 ٪ ، 100 ٪ ، 100 ٪) لمدة 1 دقيقة لكل منهما. ينقع في الزيلين لمدة 3 × 3 دقائق ويغلق الشرائح25.

9. مقايسة الممتز المناعي المرتبط بالإنزيم (ELISA)

  1. قم بقياس تركيزات IL-17 و TNF-α في البلازما باستخدام المجموعات المعنية وفقا لتعليمات الشركات المصنعة.

10. التحليل الإحصائي

  1. التعبير عن البيانات كمتوسط ± خطأ معياري للمتوسط (SEM).
  2. تحديد الأهمية من خلال تحليل التباين أحادي الاتجاه (ANOVA) أو المقاييس المتكررة ثنائية الاتجاه ANOVA ، تليها اختبارات Bonferroni أو Tamhane T2 اللاحقة.
  3. ضع في اعتبارك أن P < 0.05 ذات دلالة إحصائية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

طورت الفئران النموذجية التي يسببها PG أعراض التهاب المفاصل المحيطي ، والتي تتميز باحمرار وتورم الأطراف وأصابع القدم ، وطورت تدريجيا التهاب المفاصل المحوري في وقت مبكر من الأسبوع 14 ، وهو مشابه جدا لمظهر AS. لذلك ، اعتبر نموذج الماوس AS ناجحا إذا كان مؤشر التهاب المفاصل (الذكاء الاصطناعي) أكثر من 3 نقاط في 14 أسبوعا بعد الحقنالأخير 22. عندما بدت أقدام الفئران منتفخة ، تم إجراء علاج الكى Du مرة واحدة في الأسبوع لما مجموعه 3x. بعد العلاج ، تم القتل الرحيم للفئران عن طريق خلع عنق الرحم تحت التخدير الع...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يتجلى AS سريريا كألم تورم في الظهر وأسفل الظهر والمفاصل ، وقد يحدث تشوه في العمود الفقري وصلابة المفاصل في الحالات الشديدة26. يمكن أن يؤدي التشخيص والعلاج المبكر إلى تحسين نوعية الحياة وتقليل معدلات الإعاقة وتحسين توقعات المرضى الذين يعانون من AS. وفقا للطب الصيني التقليدي (TCM) ، يعتقد أن AS ناتج عن نقص يانغ في الكلى وخط الطول دو ، بالإضافة إلى تراكم الشر البارد داخليا. يرى الطب الصيني التقليدي أن الكى ، بناء على مفهوم خطوط الطول ، يمكن أن يولد Qi الذي يسخن سطح الجسم. ثم ينتقل Qi هذا لأسفل على طو...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإعلان عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل البرنامج العام للمؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (رقم 82174491) ومشروع الميراث الأكاديمي لمدرسة تشيلو للطب الصيني التقليدي (No. لو ويهان [2020]132). شكرا لمركز المختبر بجامعة شاندونغ للطب الصيني التقليدي لتزويدنا بالظروف التجريبية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
10 ٪ EDTAشنغهاي ماكلين الكيمياء الحيوية المحدودة ، شنغهاي ، الصين
منصات الكحولHYNAUT ، تشينغداو هاينو للهندسة البيولوجية المحدودة ، تشينغداو ، الصين
آلة التخديرالمستلزمات الطبية & الخدمات INT. المحدودة ، Keighley ، أنابيب الطرد المركزي في المملكة المتحدة
Axygen ، Corning ، NewYork ، UAS
كاملة مساعد Frech (CFA)علاء الدين ، شنغهاي ، الصينF393378
كرة القطنHenan RUIKE Medical Equipment Co.، Ltd. ، Xinxiang ، الصين
شاش القطنHenan RUIKE MEDICAL Equipment Co.، Ltd. ، Xinxiang ، الصين
لوح التقطيعالتحضير
decorin من الغضروف المفصلي البقريSigma-Aldrich ، MO ، الولايات المتحدة الأمريكيةD8428
Veet ، Reckitt Benckiser (الصين) Investment Co. LTD ، شنغهاي ، الصين
مقياس إلكترونيشنغهاي Yajin Electronic Technology Co.، Ltd. ، شنغهاي ، الصين
أنبوبEppendorfAxygen ، Corning ، نيويورك ، زيوت
Beijing Shuangji Pharmaceutical Co.، LTD. ، بكين ، الصين
الزنجبيلذاتي التحضير
GraphPad Prism 7 برنامجGraphPad Software ، بوسطن ، الولايات المتحدة الأمريكية
ماكينة قص الشعرSuper Human Group CO LTD ، Jinhua ، الصين
وساداتالتدفئةشنتشن Leshuo التكنولوجيا المحدودة ، شنتشن ، الصين
فرويند غير المكتمل s مساعد (IFA)علاء الدين ، شنغهاي ، الصينحقن F393371
  ؛ حقنةشاندونغ شينخوا أندي للمستلزمات الطبية المحدودة ، زيبو ، الصين
isofluraneشنتشن Rayward Life Technology Co.، LTD ، Shenzhen ، الصينR510-22-10
جوس عصاShijiazhuang Lidu Fragrant Industry Co.، LTD. ، Shijiazhuang ، الصين
عصارةبراون (شنغهاي) المحدودة ، شنغهاي ، الصين
سكينولاعة ذاتية التحضير
تشجيانغ ولاعة النمر المحدودة
ملاطLuoyang Yinai Ceramic Technology Co.، LTD.، Luoyang، الصين
Mouse IL-17 ELISA Kitabsin، شنغهاي، الصينabs520009-96T
ماوس  TNF- & ألفا; إليسا كيتووهان  Sanying ، Wuhan ، الصينKE10002
ورق التوتYishui County Mulinsang paper Co.، LTD ، Linyi ، China
OFTXinruan ، Shanghai ، ChinaXR-XZ301
التحضيرالذاتي للأكواب الورقية
OXFORD BIO INSTRUMENTS INC. ، أكسفورد ، المملكة المتحدة
المكررة MOXA المخمليةالإعدادالذاتي
rotarodXinruan ، شنغهاي ، الصينXR-6C
scientz-48L طاحونة الأنسجة المبردة عالية الإنتاجيةنينغبو Xinzhi التكنولوجيا الحيوية المحدودة
مقصشاندونغ جيaren للمستلزمات الطبية المحدودة ، زيبو ، الصين
آلة تقطيع البارافين شبه الأوتوماتيكيةLeica Camera AG ، Watznach ، ألمانيا
SPSS 25.0 برنامجInternational Business Machines Corporation ، نيويورك ، UAS
التحضيرالذاتي لمسحوق الطب الصيني
التقليدي Biosharp ، Labgic ، بكين ، الصين
فرشاة الكتابةYishui County Mulinsang paper Co.، LTD ، Linyi ، الصين
الذاتي كريم مزيل الشعر تشحيم العين UAS ماصات نصائح

المراجع

  1. Sieper, J., Poddubnyy, D. Axial spondyloarthritis. Lancet. 390 (10089), 73-84 (2017).
  2. Lee, W., Reveille, J. D., Weisman, M. H. Women with ankylosing spondylitis: a review. Arthritis Rheum. 59 (3), 449-454 (2008).
  3. Sari, İ, Öztürk, M. A., Akkoç, N. N. of ankylosing spondylitis. Turk J Med Sci. 45 (2), 416-430 (2015).
  4. Zhang, L., et al. Governor vessel moxibustion: Ancient Chinese medical technology with new vitality. Chin J Integr Med. 23 (5), 396-400 (2017).
  5. Hu, J., et al. Moxibustion for the treatment of ankylosing spondylitis: a systematic review and meta-analysis. Ann Palliat Med. 9 (3), 709-720 (2020).
  6. Liu, Y., Wang, P., Sun, Y. Y., Qu, J., Li, M. Efficacy of thunder-fire moxibustion in treating ankylosing spondylitis of kidney deficiency and governor meridian cold and its influence on TNF-α and RANKL: study protocol for a prospective, nonblinded, single-center, randomized controlled trial. Trials. 23 (1), 344(2022).
  7. Chong, G. Q., Ma, Y., Sun, H. S., Zhang, T., Peng, W. Study on clinical and analgesic mechanism of moxibustion in the treatment of ankylosing spondylitis. J Clin Acupunct Moxib. (06), 48-49 (1999).
  8. Liu, W. Q., Lu, X. H. Clinical observation of Melilotus extract tablets combined with Dujiu for treating ankylosing spondylitis. Pharm Res. 35 (03), 182-184 (2016).
  9. Zhang, Y. L., Lin, J. H., Zhou, Y. Y., Zhao, G. Q., He, Y. T. Clinical observation of Bushen Qiangdu Zhilou decoction combined Du-moxibustion in treating ankylosing spondylitis. Chin J Exp Tradit Med Formulae. 21 (10), 190-194 (2015).
  10. Guo, L. J., et al. Clinical effect of moxibustion at governor vessel combined with Bushen Quhan Huashi prescription for ankylosing spondylitis and its effect on levels of CTX-I and DKK1 in serum. New Chin Med. 53 (10), 117-121 (2021).
  11. Deng, Y. X. Governor moxibustion treatment of ankylosing spondylitis the adjustment of the T-cell subsets observed. J Practical Tradi Chin Inter Med. 26 (18), 77-78 (2012).
  12. Wang, Y. Q. Mechanism of exercise combined with moxibustion in the treatment of osteoporosis in castrated rats. Chin J Gerontol. 37 (04), 839-840 (2017).
  13. Ren, J. Y., Li, F., Yan, J., Wan, C., Cai, L. Clinical study of Du-moxibustion combined with needling Huatuo Jiaji acupoint in the treatment of AS of kidney-Yang deficiency. J Clin Acupunct Moxib. 35 (06), 41-44 (2019).
  14. Xu, X., et al. Metabolomic analysis of biochemical changes in the tissue and urine of proteoglycan-induced spondylitis in mice after treatment with moxibustion. Integr Med Res. 10 (1), 100428(2021).
  15. Xu, X., et al. Moxibustion attenuates inflammation and alleviates axial spondyloarthritis in mice: Possible role of APOE in the inhibition of the Wnt pathway. J Tradit Complement Med. 12 (5), 518-528 (2022).
  16. Li, X., et al. Inflammation intensity-dependent expression of osteoinductive wnt proteins is critical for ectopic new bone formation in ankylosing spondylitis. Arthritis Rheum. 70, 1056-1070 (2018).
  17. Cui, H., et al. CXCL12/CXCR4-Rac1-mediated migration of osteogenic precursor cells contributes to pathological new bone formation in ankylosing spondylitis. Sci Adv. 8 (14), eabl8054(2022).
  18. Braem, K., Lories, R. J. Insights into the pathophysiology of ankylosing spondylitis: contributions from animal models. Joint Bone Spine. 79 (3), 243-248 (2012).
  19. Mikecz, K., Glant, T. T., Poole, A. R. Immunity to cartilage proteoglycans in BALB/c mice with progressive polyarthritis and ankylosing spondylitis induced by injection of human cartilage proteoglycan. Arthritis Rheum. 30, 306-318 (1987).
  20. Li, Z., et al. Tenascin-C-mediated suppression of extracellular matrix adhesion force promotes entheseal new bone formation through activation of Hippo signalling in ankylosing spondylitis. Ann Rheum Dis. 80 (7), 891-902 (2021).
  21. Glant, T. T., Cs-Szabo´, G., Nagase, H., Jacobs, J. J., Mikecz, K. Progressive polyarthritis induced in BALB/c mice by aggrecan from human osteoarthritis cartilage. Arthritis Rheum. 41, 1007-1018 (1998).
  22. Hu, B., Li, Y., Tan, J. Research progress of moxibustion in the treatment of ankylosing spondylitis. Rheum & Arthritis. 11 (05), 77-80 (2022).
  23. Yang, Y., Dong, Q., Li, R. Matrine induces the apoptosis of fibroblast-like synoviocytes derived from rats with collagen-induced arthritis by suppressing the activation of the JAK/STAT signaling pathway. Int J Mol Med. 39 (2), 307-316 (2017).
  24. Shiotsuki, H., et al. A rotarod test for evaluation of motor skill learning. J Neurosci Methods. 189 (2), 180-185 (2010).
  25. Liu, P., et al. A mouse model of ankle-subtalar joint complex instability induced post-traumatic osteoarthritis. J Orthop Surg Res. 16 (1), 541(2021).
  26. Taurog, J. D., Chhabra, A., Colbert, R. A. Ankylosing spondylitis and axial spondyloarthritis. N. Engl. J. Med. 374, 2563-2574 (2016).
  27. Schett, G., et al. Enthesitis: From pathophysiology to treatment. Nat. Rev. Rheumatol. 13, 731-741 (2017).
  28. Duan, W. X., et al. Effect of different concentrations of Moxa-smoke on lung function and TNF-α and IL-1 β levels in serum and lung tissues in normal rats. Zhen Ci Yan Jiu [Acupuncture Research]. 43 (2), 98-103 (2018).
  29. Callhoff, J., Sieper, J., Weiß, A., Zink, A., Listing, J. Efficacy of TNFα blockers in patients with ankylosing spondylitis and non-radiographic axial spondyloarthritis: a meta-analysis. Ann Rheum Dis. 74 (6), 1241-1248 (2015).
  30. Schinocca, C., et al. Role of the IL-23/IL-17 pathway in rheumatic diseases: an overview. Front Immunol. 12, 637829(2021).
  31. Gravallese, E. M., Schett, G. Effects of the IL-23-IL-17 pathway on bone in spondyloarthritis. Nat Rev Rheumatol. 14 (11), 631-640 (2018).
  32. Kenna, T. J., et al. Enrichment of circulating interleukin-17-secreting interleukin-23 receptor-positive γ/δ T cells in patients with active ankylosing spondylitis. Arthritis Rheum. 64 (5), 1420-1429 (2012).
  33. Poddubnyy, D., Sieper, J. Treatment of axial spondyloarthritis: what does the future hold. Curr Rheumatol Rep. 22 (9), 47(2020).
  34. van der, H. D., et al. COAST-V study group. Ixekizumab, an interleukin-17A antagonist in the treatment of ankylosing spondylitis or radiographic axial spondyloarthritis in patients previously untreated with biological disease-modifying anti-rheumatic drugs (COAST-V): 16 week results of a phase 3 randomised, double-blind, active-controlled and placebo-controlled. Lancet. 392 (10163), 2441-2451 (2018).
  35. Fu, Y. S., et al. Pharmacological properties and underlying mechanisms of curcumin and prospects in medicinal potential. Biomed Pharmacother. 141, 111888(2021).
  36. Hassan, A. S., Hofni, A., Abourehab, M. A. S., Abdel-Rahman, I. A. M. Ginger extract-loaded transethosomes for effective transdermal permeation and anti-inflammation in rat model. Int J Nanomedicine. 18, 1259-1280 (2023).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

الطب الصيني التقليديالعلاج الخارجيتحفيز نقاط الوخزمخروط الموكساتطبيق الزنجبيلعلاج العمود الفقريالعلاج غير الدوائي
الكى المضاعف في نموذج فأر من التهاب الفقار اللاصق
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.