يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تعزيز نمو ونمو الفئران المصابة بالشلل الدماغي الرضع باستخدام التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري

1.4K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/65659

⸱

فبراير 2, 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Yunnan University of Traditional Chinese Medicine

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

توضح هذه الدراسة تأثير التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري على نمو وتطور الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي ، مع التركيز على الإجراء المحدد والبروتوكول الموحد. تم إجراء قياس وزن الجسم ، واختبار روتارود ، ودرجة خطأ القدم ، والاختبارات السلوكية الأخرى ، والكشف عن هرمون النمو لتقييم البروتوكول.

الملخص

الشلل الدماغي (CP) هو مرض أطفال مقاوم للحرارة مع انتشار مرتفع ومعدل إعاقة مرتفع وعلاج صعب. تستخدم حاليا مجموعة متنوعة من العلاجات للشلل الدماغي. يتضمن العلاج العلاج بالعقاقير وغير الدوائية. العلاج الخارجي للطب الصيني التقليدي هو طريقة علاج مميزة للغاية في العلاج غير الدوائي. كأحد العلاجات الخارجية للطب الصيني التقليدي ، يستخدم التدليك في علاج الشلل الدماغي وله فعالية جيدة وآثار جانبية صغيرة وقابلية تشغيل قوية. كجزء من العلاج الخارجي للطب الصيني التقليدي ، يمكن أن يؤدي التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري إلى تعزيز نمو وتطور الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي بشكل فعال. تم تقسيم العملية بشكل أساسي إلى أربع خطوات: أولا ، تم تطبيق طريقة الفرك على العمود الفقري وجانبي العمود الفقري لمدة 1 دقيقة. تم تطبيق طريقة الضغط والعجن على العمود الفقري لمدة 5 دقائق ، والعضلات على جانبي العمود الفقري لمدة 5 دقائق. ثانيا ، تم إجراء الضغط على نقاط الوخز بالإبر المحلية الحساسة في العمود الفقري لمدة دقيقتين والضغط عليها. ثالثا ، تم علاج الطرف المصاب بطريقة الالتواء لمدة 1 دقيقة. رابعا ، تم تطبيق طريقة الاحتكاك على خط الوسط من الجبهة إلى الجزء الخلفي من الدماغ لمدة 1 دقيقة. تهدف هذه الدراسة إلى استخدام التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري لعلاج الفئران الرضع المصابين بالشلل الدماغي. تم الكشف عن الوزن واختبار روتارود ودرجة خطأ القدم وهرمون النمو للفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي لفهم تأثير التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري على نمو وتطور الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي. أظهرت النتائج أنه يمكن أن يعزز زيادة الوزن ، وتحسين القدرة على التوازن والوظيفة الحركية ، وتعزيز نمو وتطور الفئران المصابة بالشلل الدماغي الرضع ، وتعزيز إفراز هرمون النمو ، وزيادة درجة حرارة الأجزاء الحساسة من الظهر.

المقدمة

الشلل الدماغي (CP) ، الناجم عن تلف غير تدريجي للدماغ في الجنين أو الطفولة ، هو مجموعة من الاضطرابات التي تتميز بالتطور الحركي والوضعيغير الطبيعي 1 ، واضطرابات النمو بما في ذلك زيادة الوزن البطيئة2،3،4 ، والخلل الحركي. معدل الإصابة بالشلل الدماغي في الصين هو 2.48٪ ، ومعدل الانتشار 2.46 ‰ (1-6 سنوات) 5 ، على التوالي. أفادت الدراسات الأجنبية بانتشار 2.4٪ -3.6٪ 6. الشلل الدماغي هو سبب رئيسي للإصابة الجسدية والإعاقة عند الأطفال ، من بينها اضطرابات التوازن والحركة التي تؤثر بشكل كبير على أنشطة الحياة اليومية1. يمكن أن يحدث الشلل الدماغي بسبب الولادة المبكرة ، والعدوى ، وعلم الوراثة ، ونقص تروية الأطفال حديثي الولادة ، واليرقان الوليدي ، وغيرها من العوامل المسببة للأمراض المعقدة والمتنوعة7. الهدف من علاج الشلل الدماغي هو تحسين الوظيفة البدنية ونوعية الحياة 8. حاليا ، تشمل طرق علاج الشلل الدماغي التحفيز العميق للدماغ9 ، وتدريب المشي بمساعدةالروبوت 10 ، والوخز بالإبر في الرسغ والكاحل11 ، والوخز بالإبر الزوال جنبا إلى جنب مع التدليك12.

تم استخدام الطب الصيني التقليدي (TCM) بشكل متزايد كعلاج فعال للشلل الدماغي13،14. التدليك ، كجزء منه ، يلعب أيضا دورا معينا. على سبيل المثال ، يمكن أن ينظم التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري حالة هيدروكسي ميثيل الحمض النووي لتنظيم التطور العصبي وتحسين وظيفة التعلموالذاكرة 15. في علاج الفئران الرضيعة المصابة بالشلل الدماغي ، قد يؤدي التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري إلى تحسين التوازن الالتهابي للقشرة والحصين عن طريق تنظيم مستوى مثيلة السيتوكينات الالتهابية TNF-α و IL-10 المنطقة16 ولعب دور علاجي إيجابي في قدرة التوازن للفئران الرضيعة المصاب بالشلل الدماغي16. يمكن أن يؤدي التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري إلى تحسين الوظيفة المعرفية للفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي17. تم استخدام التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري في علاج الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي ، ولوحظ أن له أيضا تأثيرات علاجية على نموهم وتطورهم18.

الغرض من هذه الدراسة هو توضيح تأثير التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري على نمو وتطور الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي من خلال قياس وزن الجسم ، واختبار روتارود19 ، ودرجة خطأالقدم 20،21 ، والاختبارات السلوكية الأخرى والكشف عن هرمون النمو ، وتقديم أفكار بحثية للموظفين المعنيين.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على هذه الدراسة من قبل لجنة أخلاقيات التجريبية بجامعة يونان للطب الصيني التقليدي. اتبعت جميع العمليات التجريبية على مبدأ 3R لتقليل التجريبية وتحسينها واستبدالها (رقم R-06202018). تم استخدام فئران Sprague Dawley (SD) الصحية (14 ذكرا و 7 إناث) من درجة محددة خالية من مسببات الأمراض (SPF) بمتوسط وزن جسم 250-300 جم في هذه التجربة. تم تربية الفئران في غرفة SPF بجامعة يوننان للطب الصيني التقليدي ، رقم الشهادة: SYXK (Yunnan) K2022-0004. تم إيواء جميع الفئران تحت دورة ضوئية / مظلمة مدتها 12 ساعة مع بيئة طبيعية يتم التحكم فيها بالضوء عند درجة حرارة الغرفة من 22 إلى 26 درجة مئوية ورطوبة نسبية تتراوح بين 40٪ و 50٪. بعد أسبوع واحد من التغذية التكيفية ، تم الحفاظ على نسبة الذكور إلى الإناث عند 1: 2. بعد أسبوع واحد ، تم إيواء الفئران الحامل في قفص واحد ، وإطعامها بشكل طبيعي ، وتناول الطعام والشرب بحرية. بعد الولادة الطبيعية ، تم اختيار الفئران الرضع الأصحاء المولودين للفئران الحامل. تم تقسيم الفئران الرضع إلى مجموعات الشام والتحكم والعلاج لمراقبة تأثير التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري على نمو وتطور الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي. من كل مجموعة ، تم اختيار 6 صغار ذكور للتجربة. تم علاج مجموعة العلاج بالتلاعب الانتقائي بالعمود الفقري من اليومالخامس بعد الولادة ، وتم إعطاء العلاج لمدة 6 أيام تليها الراحة لمدة يوم واحد.

1. إنشاء نموذج الشلل الدماغي

  1. تعقيم المجهر ومقص العيون والملقط والخياطة والصفيحة الجراحية والمقص ومسحات القطن والقفازات اللازمة للجراحة ووضعها في غرفة العمليات.
  2. افصل الجرو مؤقتا عن والدته في اليوم الثالث من الحياة ، وضعه في إطار واحد ، وانقله إلى غرفة العمليات المعقمة.
  3. قياس وزن الجسم. قم بتضمين الفئران الرضع التي يتراوح وزنها من 7-9 جم في الدراسة ، واستبعد أولئك الذين لم يتوافقوا مع وزن الجسم. قسم الفئران الرضع بشكل عشوائي إلى مجموعات الشام والتحكم والعلاج.
  4. تحفيز التخدير باستخدام الأيزوفلوران بتركيز 2٪ والحفاظ على التخدير عند 1٪ باستخدام آلة تخدير غاز استنشاق الصغيرة.
    ملاحظة: تهدف هذه التجربة بشكل أساسي إلى مراقبة آثار التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري على نمو وتطور الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي. تم إجراء التخدير وفقا للمتطلبات العامة أثناء عملية النمذجة ، وسيؤثر التسكين الإضافي على نتائج الملاحظة.
    1. قم بتوصيل مخدر غاز الصغيرة بمصدر الطاقة وافتح الصمام المتصل بصندوق الحث.
    2. ضع الجرذ الرضيع في صندوق الحث ، وأدر مقبض ضبط التركيز ، واضبط تركيز الأيزوفلوران على 2٪ للحث على التخدير.
    3. عندما يكون الجرذ الرضيع فاقدا للوعي ، أخرجه من صندوق الحث. ضعه على لوحة العمليات وأغلق القناة 1 لآلة التخدير.
    4. ضع الفئران الرضيعة ضعيفة. إصلاح قناع استنشاق التخدير للحفاظ على التخدير.
    5. افتح القناة المتصلة بقناع استنشاق التخدير. حافظ على التخدير عن طريق تدوير مقبض ضبط التركيز وضبط تركيز الأيزوفلوران إلى 1٪.
      ملاحظة: بعد التخدير ، قم بتقييم عمق التخدير عن طريق رفع أصابع القدم والذيل بالقوة والضغط عليها. يؤكد عدم الاستجابة عند رفع أصابع القدم والذيل وضغطهما على عمق التخدير قد وصل.
  5. تطهير جلد رقبة الجرذ الرضيع ثلاث مرات بالكحول بنسبة 75٪ وقطع شق طولي بطول 1 سم على جلد الرقبة لكشف الأنسجة تحت الجلد.
    ملاحظة: الشق الطولي لجلد الرقبة لا يسبب عيبا في الجلد.
  6. قم بقص جلد الرقبة اليسرى تحت مجهر تشريح ، واستخدم ملاقط العين لفصل العضلات القصية الكريمة عن العضلة القصية اليسرى بشكل صريح.
    1. ابحث عن الشريان السباتي المشترك الأيسر والعصب المبهم ، وافصل الشريان السباتي المشترك الأيسر عن العصب المبهم.
    2. في مجموعة النماذج، اقطع الشريان السباتي المشترك الأيسر بقلم تخثر كهربائي. نظف وخياطة شق الرقبة.
    3. في مجموعة الشام ، افصل الشريان السباتي المشترك الأيسر عن العصب المبهم.
  7. بعد العملية ، ضع الجرذ الرضيع في حمام مائي ثرموستاتي في وضع الانبطاح للإنعاش لمدة 1 ساعة.
    ملاحظة: بعد الشفاء الطبيعي ، كان لون بشرة الأطراف والجسم كله أحمر الأحمر. يمكن للفأر الرضيع تحريك أطرافه بشكل مستقل والزحف بشكل مستقل.
  8. ضع الفئران التي تم إنعاشها من مجموعات التحكم والعلاج في حاضنة مغلقة عند 37 درجة مئوية في وضع الانبطاح. أدخل مزيجا من 5٪ أكسجين و 95٪ غاز النيتروجين للحث على نقص الأكسجة ، وإزالة الفئران بعد ساعتين.
  9. قم بإزالة الجرذ الرضيع الذي أكمل عملية نقص الأكسجة من صندوق نقص الأكسجة وضعه في وضع الانبطاح في صندوق به محتوى طبيعي من الأكسجين في الغلاف الجوي. ضعها في حمام مائي ترموستاتي 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة. بعد الشفاء التام ، انقل الجرذ الرضيع مرة أخرى إلى قفص الأم.
    ملاحظة: بعد التعافي بشكل طبيعي ، كان لون بشرة الأطراف والجسم كله أحمر. يمكن للفئران الرضيعة تحريك أطرافها بشكل مستقل ويمكنها الزحف بشكل مستقل.
  10. ضع الجرذ الرضيع من مجموعة الشام في صندوق واحد يحتوي على محتوى طبيعي من الأكسجين في الغلاف الجوي ، وضع الصندوق في حمام مائي حراري 37 درجة مئوية لمدة 1 ساعة. بعد الشفاء التام ، أعد الجرذ الرضيع إلى قفص الأم لإطعامه.
    ملاحظة: بعد التعافي بشكل طبيعي ، كان لون بشرة الأطراف والجسم كله أحمر. يمكن للفئران الرضيعة تحريك أطرافها بشكل مستقل ويمكنها الزحف بشكل مستقل. تم الانتهاء من عملية العملية بأكملها في غرفة العمليات الخاصة بغرفة SPF بجامعة يونان للطب الصيني التقليدي. أثناء الإنعاش ونقص الأكسجة ، يراقب المشغل الجرذ الرضيع في جميع الأوقات لمنع الوفاة الناجمة عن الموقف غير السليم. تم تغذية إناث الفئران المرضعة بعلف تربية خال من مسببات الأمراض (SPF) ، وعندما تمكنت الجراء من التغذية الذاتية ، تم فطام الجراء (يوم ما بعد الولادة 21) وإطعامها بعلف صيانة SPF.

2. تصحيح تجربة الانعكاس

  1. فياليوم الرابع بعد الولادة(اليوم الثاني بعد النمذجة) ، قم بإجراء تجربة الانعكاس الصحيح للتحقق مما إذا كان النموذج ناجحا (الشكل 1 والجدول 1).
    1. ارفع ذيل الجرذ الرضيع ، وأريح ظهره على لوح أفقي ، واستخدم الإبهام والسبابة لتأمين بطنه ورقبته. تحقق مما إذا كان بإمكان الجرذ العودة إلى وضعه الطبيعي. يتم تسجيل عدم قدرة الفئران على العودة إلى الوضع الطبيعي من الوضع غير الطبيعي بسبب فقدان منعكس الصحيح كنموذج ناجح16،22.
    2. سجل الوقت الذي تستغرقه كل مجموعة من الجراء للتحول من وضعية الاستلقاء إلى وضعية الانبطاح. ابدأ في تسجيل الوقت الذي يتم فيه تحرير أصابع الإبهام والسبابة في وقت واحد في وضع الاستلقاء ، والسماح للفأر الرضيع بالتحول إلى وضع الانبطاح ، وإيقاف التسجيل عند وضع الكفوف الأمامية والخلفية على الأرض. إذا لم يتمكن الجرذ الرضيع من العودة إلى الوضع الطبيعي لأكثر من 20 ثانية ، فسجل وقت التصحيح على أنه 20 ثانية.

3. التحضير قبل العملية

  1. بعد النمذجة ، افصل الجرذ الرضيع المصاب بالشلل الدماغي عن والدته وأحضره إلى غرفة العمليات بدرجة حرارة غرفة ثابتة تتراوح من 22 إلى 26 درجة مئوية لمدة دقيقتين للتكيف مع البيئة المحيطة.
  2. ارتد قفازات يمكن التخلص منها للحفاظ على راحة اليد خفيفة وناعمة ودرجة الحرارة بين 36-37 درجة مئوية.
  3. ضع الجرذ برفق في راحة اليد اليسرى. ثني الإبهام الأيسر لتغطية عيون الجرذ لمدة دقيقتين لتشكيل مجال رؤية مظلم حتى يتمكن الجرذ من التكيف مع بيئة راحة المشغل. استخدم السبابة اليمنى والأصابع الوسطى للتلاعب.
    ملاحظة: يمكن أن يؤدي تغطية عيون الجرذ الرضيع إلى خلق بيئة مظلمة. سيمنع هذا الفئران الرضيعة من الانزعاج بسبب البيئة غير الآمنة وغير المؤكدة التي تؤثر على النتائج التجريبية.

4. تقسيم الفئران إلى مجموعات التحكم والعلاج

  1. في اليوم الثاني بعد النمذجة (P5) ، تحقق من النموذج عن طريق اختبار الانعكاس التصحيحي وقسم الفئران الرضيعة بشكل عشوائي إلى مجموعات التحكم والعلاج. إجراء معالجة انتقائية للعمود الفقري على الفئران الرضع في مجموعة العلاج.
  2. ضع الجرذ الرضيع في وضع الانبطاح. تأكد من أن العمود الفقري دائما على مستوى مستقيم (الشكل 2 أ).
  3. قم بتدليك العمود الفقري وجانبي العمود الفقري لمدة 1 دقيقة باستخدام طريقة الفرك ، واستخدم طريقة الضغط والعجن على العمود الفقري والعضلات على جانبي العمود الفقري لمدة 5 دقائق.
    1. قم بتدليك العمود الفقري والجلد على كلا الجانبين باستخدام طريقة الفرك لإرخاء الجرذ الرضيع وتخفيف توتره تماما. تأكد من أن تواتر الاحتكاك هو 100-120 مرة / دقيقة لمدة دقيقة واحدة بعد أن يكون الجرذ الرضيع هادئا وبدون تحريض.
      1. استخدم السبابة اليمنى والإصبع الأوسط والبنصر كسطح تلامس ، وقم بحركة فرك دائرية على الجلد السطحي للعمود الفقري العنقي والعمود الفقري الصدري والعمود الفقري القطني من الرأس إلى الذيل دون إزعاج الأنسجة تحت الجلد.
      2. باستخدام السبابة اليمنى والإصبع الأوسط والإصبع الدائري كأسطح تلامس ، قم بإجراء حركة دائرية على سطح الجلد للعضلة شبه المنحرفة ، وعضلة الألوية السطحية ، والعضلة المعينية العنقية ، والعضلة المعينية الصدرية ، والعضلة الظهرية العريضة ، والعضلات المائلة الخارجية بالترتيب من الرأس إلى الذيل وفقا للمعيار التشريحي للحيوان23 ، دون إزعاج الأنسجة تحت الجلد.
    2. عالج العمود الفقري أولا بالضغط والعجن لمدة 5 دقائق ، متبوعا بالضغط على العضلات على جانبي العمود الفقري وعجانها لمدة 5 دقائق.
      1. ضع طريقة العجن على العمود الفقري بتردد 120 مرة / دقيقة لمدة 5 دقائق. استخدم السبابة اليمنى أو الأصابع الوسطى كسطح تلامس. من الرأس إلى الذيل ، قم بإجراء العجن الدائري على الجلد السطحي للفقرات العنقية والصدرية والقطنية ، جنبا إلى جنب مع الضغط لأسفل (1.77 ± 0.54 نيوتن). تأكد من وصول القوة إلى فقرات عنق الرحم والفقرات الصدرية والفقرات القطنية والأربطة فوق الشوكية.
      2. ضع طريقة الضغط والعجن على العضلات على جانبي العمود الفقري بتردد 120 مرة / دقيقة لمدة 5 دقائق. استخدم السبابة اليمنى أو الإصبع الأوسط كسطح تلامس. وفقا للمعيار التشريحي الحيواني23 ، اضغط على سطح الجلد شبه المنحرف ، والألوية السطحية ، والرقبة المعينية ، والصدرية المعينية ، والظهرية العريضة ، وعضلات البطن المائلة الخارجية في حركة عجن مستديرة من الرأس إلى الذيل ، بقوة 1.77 ± 0.54 نيوتن ، بحيث تصل القوة إلى شبه المنحرف ، الألوية السطحية ، الرقبة المعينية ، الصدرية المعينية ، العضلة الظهرية العريضة ، وعضلات البطن المائلة الخارجية (الشكل 2 ب) 23.
  4. اضغط على نقاط الوخز بالإبر الشوكي الحساسة (مثل Ganshu و Xinshu و Pishu و Shenshu و Feishu24) بتردد 100-120 مرة / دقيقة لمدة دقيقتين. باستخدام السبابة اليمنى أو الإصبع الأوسط كسطح تلامس ، قم بإجراء العجن الدائري والضغط لأسفل (1.77 ± 0.54 نيوتن) على الجلد السطحي لنقاط الوخز بالإبر الموضعية (مثل Ganshu و Xinshu و Pishu و Shenshu و Feishu) في الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي.
    ملاحظة: تم اختيار نقاط الوخز بالإبر وفقا ل "خريطة نقطة الوخز بالإبر الحيوانية" التي صاغها فرع أبحاث الوخز بالإبر التجريبي التابع لجمعية الوخز بالإبر الصينية) (الشكل 3) 25.
  5. تحفيز الطرف المصاب محليا بطريقة الالتواء بتردد 25 مرة / دقيقة لمدة 1 دقيقة.
    1. باستخدام الإبهام الأيمن والسبابة ، اضغط على الطرف المصاب بالجرذ الرضيع المصاب بالشلل الدماغي ، مع ممارسة قوة متناظرة على الإصبعين. تأكد من أن القوة لطيفة وأن الحركة خفيفة ولطيفة. فرك الباسطة الصحيحة carpi radialis ، الباسطة الدنيا الشائعة ، الباسطة carpi ulnaris ، الكتائب ، المفصل بين الكتائب ، العضلة المعدية ، العضلة شبه الوترية ، عظم مشط القدم ، والمفصل بين مشط القدم للفئران الرضيع ذهابا وإيابا.
  6. تطبيق طريقة الفرك على خط الوسط من الجبهة إلى الجزء الخلفي من الدماغ بتردد 100-120 مرة / دقيقة لمدة 1 دقيقة. استخدم السبابة الأيمن كسطح تلامس ، واستخدم طريقة الفرك على خط وهمي من الجبهة إلى منتصف الدماغ الخلفي للفأر الرضيع (أي سطر واحد من Baihui و Fengfu و Dazhui) (الشكل 3).
    ملاحظة: يتم تطبيق التدليك بشكل أساسي على الجلد. إنها حركة دائرية على سطح جلد رأس الجرذ الرضيع المصاب بالشلل الدماغي. لا يحتاج إلى دفع حركة العضلات تحت الجلد لفأر رضيع مصاب بالشلل الدماغي.
  7. في نهاية الإجراء ، اترك الجرذ الرضيع بمفرده لمدة 30 دقيقة قبل إعادته إلى قفص الفئران الأم.
    ملاحظة: مع تقدم العمر ، يصبح شعر الفئران الصغيرة كثيفا ، لذلك من الضروري إزالة الشعر الخلفي لجميع مجموعات الفئران الرضع أثناء عملية التدليك لتجنب التأثير على التأثير التجريبي.

5. الكشف عن درجة حرارة نقاط الوخز بالإبر المحلية

  1. استخدم جهاز تصوير حراري بالأشعة تحت الحمراء للكشف عن درجة حرارة منطقة نقطة الوخز بالإبر المحلية قبل العملية وبعدها.
    1. قبل تدليك العمود الفقري الانتقائي ، قم بتوصيل واجهة Type-C للهاتف المحمول بواجهة USB لجهاز التصوير بالأشعة تحت الحمراء باستخدام كابل بيانات ، وقم بتشغيل زر الطاقة.
    2. انقر تحليل للدخول إلى محطة الهاتف المحمول الخاصة بالبرنامج ، وحدد صورة للدخول إلى وضع الصورة ، وانقر فوق صورة في وضع الصورة في الزاوية اليمنى السفلية.
    3. ركز الكاميرا على مناطق الوخز بالإبر في نقاط الوخز بالإبر Dazhui و Xinshu و Shenshu (الشكل 3) على ظهر الجرذ الرضيع لالتقاط لقطات درجة الحرارة. انقر الصورة لإكمال التقاط الصورة وحفظها بتنسيق JPG.
    4. قم بتوصيل الكمبيوتر بكابل بيانات وقم بتحميل الصورة المحفوظة على جهاز كمبيوتر مثبت عليه برنامج Fotric لتحليله.
      1. افتح برنامج Fotric على جهاز الكمبيوتر ، وافتح الملف المحلي ، وابحث عن موقع الصورة.
      2. حدد مساحة عمل Thermogram ، وحدد الصورة المراد تحليلها ، وادخل إلى واجهة التحليل.
      3. في شاشة التحليل ، حدد الصورة في مربع الصورة الحرارية على اليمين وافتح القفل.
      4. حدد وظيفة التكبير/التصغير ، واضبط حجم الصورة الحرارية والمربع الأيسر صورة الخلفية لتتزامن ، وقم بإيقاف تشغيل ملف قفل على اليمين.
      5. ابحث عن مستطيل القياس التعيين في شريط الأدوات في الأعلى وحدد نقطة الوخز المراد اكتشافها في الشكل.
      6. انقر فوق تقرير على اليمين لتسجيل قيمة درجة الحرارة.

6. الكشف عن وظيفة التوازن الحركي للفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي

  1. استخدم اختبار Rotarod السلوكي19 للكشف عن الوظيفة الحركية للفئران في مجموعات الشام والتحكم والعلاجفي اليوم 61 بعد الولادة.
    1. إعدادات المعلمة: ابدأ مفتاح الطاقة ، وحدد قم بالتجربة للدخول إلى الخطوة التالية ، وحدد إيجابي ، والجرذان ، والتوقيت 5 دقائق للدخول إلى الخطوة التالية ، وحدد وقت التصحيح: 10 ثوان ، السرعة: 10 دورة في الدقيقة.
    2. بعد ذلك ، ضع الفئران على مضمار الجري وابدأ الاختبار بالنقر فوق تشغيل بعد أن تقف بثبات. اضبط حالة تشغيل كل تشغيل على ON. قم بتدريب كل فأر مرة واحدة لمدة 5 دقائق ، ثم ابدأ في إجراء الاختبار ثلاث مرات.
    3. بعد التدريب ، ضع الفئران الصغيرة على مسار الجري الدوتارود. بعد أن يصبح مستقرا ، انقر فوق تشغيل ، واضبط حالة التشغيل على ON. في نهاية 5 دقائق ، حدد التاريخ لتسجيل وقت وسرعة سقوط كل فأر من مسار الجري الدوتارود لأول مرة ، أي بيانات وقت التشغيل.
  2. استخدم اختبار خطأ القدم20،21 لتقييم الوظيفة الحركية المتوازنة للطرف الأمامي الأيمن لمجموعات الشام والتحكم والعلاجفي اليوم 61 بعد الولادة.
    1. ضع الفئران الصغيرة في نهاية البداية من السلم الأفقي وسجل مقطع فيديو لها وهم يعبرونها إلى الطرف الآخر (بطول 100 سم ، والمسافة بين كل سلم 2 سم). بعد جلسة تدريبية واحدة ، قم بإجراء الاختبار الرسمي ثلاث مرات لكل فأر بفاصل 5 دقائق.
    2. راقب الطرف الأمامي الأيمن عندما يعبر السلم باستخدام التشغيل منخفض السرعة لتسجيل النتيجة ، كما هو موضح في معيار التسجيل (الجدول 2).

7. النشاف الغربي

  1. إجراء تحليل النشاف الغربي لعينات الأنسجة كما هو موضحسابقا 26.
    ملاحظة: تم تحديد كمية المحللة وفقا لحجم كتلة الأنسجة. كانت الأجسام المضادة المستخدمة على النحو التالي: الجسم المضاد الأولي المضاد لهرمون النمو (0.5 ميكروغرام [0.5 نانوغرام / حارة]) ؛ الأجسام المضادة لمستقبلات هرمون النمو (1/1000) ؛ المرجع الداخلي المضاد للأجسام المضادة للأكتين (1/2000) للأجسام المضادة الأولية. الماعز المضاد للأرانب IgG H&L (HRP) (1/10000) للأجسام المضادة الثانوية.

8. الكشف عن قوة اليد

  1. ارتد الجهاز المستخدم للكشف عن قوة التلاعب على اليد المستخدمة للتدليك. قم بتركيب الإصبع المستخدم لتدليك الجرذ الرضيع بشريحة المستشعر الخاصة بالجهاز ، وقم بتشغيل زر الطاقة .
  2. قم بتوصيل واجهة القرص الصلب التي تخزن برنامج الاختبار اليدوي بالكمبيوتر ، وأدخل عنوان IP المخصص للمختبر اليدوي في مربع إدخال URL .
  3. قم بتثبيت عميل SpringVR على الكمبيوتر ، وانقر للدخول إلى واجهة المجموعة ، وحدد نمط الإصبع في الزاوية اليمنى السفلية لاختبار قوة التلاعب.
  4. حدد خيار الضغط وانقر فوق ابدأ لبدء تسجيل القوة اليدوية للمشغل أثناء التشغيل. سيقوم البرنامج تلقائيا بتسجيل شدة التلاعب وإنشاء جدول بيانات على القرص المحلي حيث سيتم العثور على البيانات الموجودة في اسم الملف PressureSensor .

9. إحصائيات البيانات

ملاحظة: تم استخدام برنامج SPSS26.0 للتحليل الإحصائي ، و Graphpad Prism9.0.0 لإنتاج المخططات الشريطية ، و Image J لتحليل القيمة الرمادية لنطاقات البروتين.

  1. تحليل وعرض جميع البيانات كمتوسط ± انحراف معياري (متوسط ± SD).
    ملاحظة: كان معيار الاختبار α = 0.05 ، واعتبر P ≤ 0.05 ذا دلالة إحصائية. تم استخدام اختبار فيشر لأن البيانات تم تحليلها عن طريق تحليل التباين والطبيعية ومطابقتها لخصائص التوزيع الطبيعي وتجانس التباين.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

يمكن أن يعزز التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري زيادة وزن الجسم لدى الفئران الرضع المصابة بالشلل الدماغي.
أثناء العلاج ، تم قياس وزن الجسم في أيام ما بعد الولادة 3 و 14 و 28 و 42 و 61 (الشكل 4 ، الجدول 3). في اليوم الثالث بعد الولادة ، كان وزن جسم مجموعة الشام 5.53 ± 0.035 جم ، ووزن الجسم للمجموعة الضابطة 3.15 ± 0.43 جرام. كان وزن الجسم لمجموعة العلاج 4.42 ± 0.13 جم ، ولم يكن مختلفا بشكل كبير عن وزن مجموعات الشام والكونترول قبل النمذجة.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

نظرا لأن نقص التروية ونقص الأكسجة من العوامل المسببة للأمراض المهمة للشلل الدماغي ، فإن الطريقة المعترف بها دوليا لإنشاء نموذج الشلل الدماغي يتم الجمع بين نقص الأكسجة لإعداد نموذج الشلل الدماغي16،28،29،30. عندما يتطور الشلل الدماغي ، فإنه يسبب تأخر في النمو العالمي ، بما في ذلك الوزن والوظيفة الحركية ، والتي قد تكون مرتبطة بمستوى إفراز هرمونال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب مالي أو غيره من تضارب المصالح في إطار هذا العمل.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل البرنامج العام للمؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (82374614) ، والمشروع الطبي الحيوي الرئيسي التابع لإدارة العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة يونان (202102AA100016) ، والمشروع الرئيسي المشترك للبحوث الأساسية التطبيقية لقسم العلوم والتكنولوجيا بمقاطعة يونان - جامعة يوننان للطب الصيني التقليدي (201901AI070004) ، بدعم من المختبر الرئيسي للوخز بالإبر والكي والتدليك للوقاية والعلاج من اعتلال الدماغ في كليات وجامعات مقاطعة يونان (2019YGZ04) ، قسم العلوم والتكنولوجيا في مقاطعة يونان - مشروع الشباب لبرنامج البحوث الأساسية لمقاطعة يونان (202101AU070002) ، برنامج الدراسات العليا لصندوق البحوث العلمية التابع لإدارة التعليم في مقاطعة يونان ، (2023Y0433) ؛ مؤسسة البحث العلمي التابعة لإدارة التعليم بمقاطعة يونان ، (2023Y0462).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
96 بئر لوحاتBeijing Lanjieke Biotechnology Co.، LTD11510تحديد تركيز البروتين
الأجسام المضادة للأكتينبيتا AbacmAb8227التخفيف: 1/2000
الجسم المضاد لهرمونAbacmAb1268820.5 & micro ؛ ز (0.5 نانوغرام / حارة)
الجسم المضاد لمستقبلات هرمون النموAbacmAb202964التخفيف: 1/1000
مجهر التشغيل الأساسيشنغهاي YuYAN Scientific Instrument Co. LTDSM-101تم عزل الشريان السباتي المشترك تحت المجهر أثناء نمذجة
مطور BCABiyuntian Biological Engineering Co.، LTDP0010تحديد تركيز
البروتيننظام التصوير الكيميائيشنغهاي Qinxiang Scientific Instrument Co.، LTD100240073تصوير نطاقات البروتين
التحميل المباشر علامة اللونالملون بكين Kangrunchengye التكنولوجيا الحيوية المحدودة (GenStar)M221Western Blot
DK-30صانع الثلج الأوتوماتيكيHenan Brothers instrument Equipment Co.، LTDSHDX0023طقم
الركيزة المضيئة ECLشركة Beijing Lanjieke Biotechnology Co.، LTDBL520Bتحويل الصور الكامنة في الفيلم المكشوف إلى صور مرئية
حمام مائي حراري ساخن كهربائياTAISITE INSTRUMENTDK-98-IIتم إنعاش الفئران الصغيرة بعد نمذجة
الموازين الإلكترونيةKunshan YoukeWEI ELECTRONIC Technology Co. LTDCN-LQC10002تم قياس
وزن جسم الفئران الصغيرةقلم التخثر الكهربائي الأبيض الألماني الصغير hemostatHaohangL55 & times; W125 & مرات ؛ H37تم استخدامه لتخثر الشريان السباتي المشترك الأيسر
قفازJiangsu YANGzi LiDE Medical Device Co. LtdQ / 320684 YZYL001-2017لعملية التدليك
GlycineBeijing Soleibao Technology Co.، Ltd.الحل الكهربائي Cat # G8200، تكوين سائل نقل
الماعز المضاد للأرانب IgG H& L (HRP) AbacmAb6721التخفيف: 1/10000
مختبر ذكي آلة مياه فائقة النقاءتشونغتشينغ هواتشواغ لهندسة معالجة المياه المحدودةالترشيح (15 لتر)
IsofluraneShandong Ante Animal Farming Technology Co. LTD15198تم الحفاظ على التخدير عن طريق الحث في الفئران الصغيرة
LinkIRFOTIRCV1.3.2.134برنامج تحليل الصور بالأشعة تحت الحمراء
طاحونة الأنسجة ذات درجة الحرارة المنخفضةووهان Servicebiotechnology CO.، LTDSKZ3F20200191طحن الأنسجة
الميثانولقوانغدونغ قوانغهوا Sci-Tech Co.، Ltd20220519تكوين سائل
النقل Mini-PROTEAN TetraBole Life Medical Products (Shanghai) Co.، Ltd552BR 233193Electrophorese
Multiskan Spectrum Microplate SpectrophotometerTECANSparkتم الكشف عن امتصاص وتركيز بروتين
الأنسجة قفازات ذكية مستشعرة للضغطJinan Super Sense Intelligent Technology Co., LTDMiigloveيتم استخدامه لقياس قوة التلاعب بغشاء
PVDFMerckMillipore Corporation  IPVH00010 اللطخة الغربية
جهاز طرد مركزي مبردHettich Precision Technology (Zhuhai) Co.، LTDMIKRO 220Rالطرد المركزي
للأبحاث ثلاثة في واحد جهاز تصوير حراريFOTIRC226S (384 × 288) قياسدرجة الحرارة
RIPA lysateBeijing Solaibao Technology Co.، LTD (Solarbio)R0010الأنسجة اللايتية
SHA-CA شاشة رقمية حمام مائي مذبذب حراريChangzhou Aohua تم استخدام Instrument Co. LTDSHA-CAالفئران الصغيرة في نقص الأكسجة
جهاز روتارود التعب الستة للفئرانShanghai Duoyi Industry Co.، LTDDO01104RT703تم الكشف عن وظيفة محرك CP مسحوق
الحليب الخالي من الدسمGuangzhou Saiguo Biotechnology Co.، LTD (BIOFROXX)1172GR500حصر تغذية تربية
SPF(بكين) التكنولوجيا الحيوية المحدودة.A1EC30005A1S4285266تم تغذية إناث الفئران المرضعة بتغذية
صيانة SPF(بكين) شركة التكنولوجيا الحيوية المحدودة.A1EC30005A1S4285267تم إطعام الجراء بعد الفطام
اللوحة الجراحيةShanghai YuYAN Scientific Instrument Co. LTD51002تم إنشاء طاولة العمليات النموذجية في الفئران الصغيرة
TS-200 شاكر المداريHaimen Qilin Bell Manufacturing Co.، Ltd.TS-8Sجل تثبيت
Tween 80MedChemExpressHY-Y1819تكوين TBST 
آلة التخدير المحمولة ZS-MVZHONGSHI SCIENCE & التكنولوجياتم تحفيز التخدير ZS-MV-Iوالحفاظ عليه في التجارب
المضادة النمو لصنع الثلج أجهزة

المراجع

  1. Paul, S., Nahar, A., Bhagawati, M., Kunwar, A. J. A review on recent advances of cerebral palsy. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. , 2622310(2022).
  2. Şimşek, T. T., Tuç, G. Examination of the relation between body mass index, functional level and health-related quality of life in children with cerebral palsy. Turk Pediatri Arsivi. 49 (2), 130-137 (2014).
  3. Dahlseng, M. O., et al. Feeding problems, growth and nutritional status in children with cerebral palsy. Acta Paediatrica. 101 (1), Oslo, Norway. 92-98 (2012).
  4. Fogarasi, A., et al. The purple n study: Objective and perceived nutritional status in children and adolescents with cerebral palsy. Disability and Rehabilitation. 44 (22), 6668-6675 (2022).
  5. Xiaojie, L., et al. Epidemiological characteristics of cerebral palsy in twelve province in China. Chinese Journal of Practical Pediatrics Clinical. 33 (5), 378-383 (2018).
  6. Kakooza-Mwesige, A., et al. Prevalence of cerebral palsy in Uganda: A population-based study. The Lancet. Global Health. 5 (12), e1275-1282 (2017).
  7. Korzeniewski, S. J., Slaughter, J., Lenski, M., Haak, P., Paneth, N. The complex aetiology of cerebral palsy. Nature Reviews. Neurology. 14 (9), 528-543 (2018).
  8. Vargus-Adams, J. N., Martin, L. K. Domains of importance for parents, medical professionals and youth with cerebral palsy considering treatment outcomes. Child: Care, Health and Development. 37 (2), 276-281 (2011).
  9. Koy, A., et al. Quality of life after deep brain stimulation of pediatric patients with dyskinetic cerebral palsy: A prospective, single-arm, multicenter study with a subsequent randomized double-blind crossover (stim-cp). Movement Disorders. 37 (4), 799-811 (2022).
  10. Pool, D., Valentine, J., Taylor, N. F., Bear, N., Elliott, C. Locomotor and robotic assistive gait training for children with cerebral palsy. Developmental Medicine and Child Neurology. 63 (3), 328-335 (2021).
  11. Li, J., et al. Evaluating the effects of 5-hz repetitive transcranial magnetic stimulation with and without wrist-ankle acupuncture on improving spasticity and motor function in children with cerebral palsy: A randomized controlled trial. Frontiers In Neuroscience. 15, 771064(2021).
  12. Chen, K., Shu, S., Yang, M., Zhong, S., Xu, F. Meridian acupuncture plus massage for children with spastic cerebral palsy. American Journal of Translational Research. 13 (6), 6415-6422 (2021).
  13. Gao, J., et al. Rehabilitation with a combination of scalp acupuncture and exercise therapy in spastic cerebral palsy. Complementary Therapies in Clinical Practice. 35, 296-300 (2019).
  14. Chen, Z., et al. Effects of traditional Chinese medicine combined with modern rehabilitation therapies on motor function in children with cerebral palsy: A systematic review and meta-analysis. Frontiers In Neuroscience. 17, 1097477(2023).
  15. Zhang, Y., et al. Tuina massage improves cognitive functions of hypoxic-ischemic neonatal rats by regulating genome-wide DNA hydroxymethylation levels. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine: ECAM. 2019, 1282085(2019).
  16. Zhang, P., et al. Chinese tuina protects against neonatal hypoxia-ischemia through inhibiting the neuroinflammatory reaction. Neural Plasticity. 2020, 8828826(2020).
  17. Niu, F., et al. Spinal tuina improves cognitive impairment in cerebral palsy rats through inhibiting pyroptosis induced by nlrp3 and caspase-1. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine: ECAM. 2021, 1028909(2021).
  18. Bowen, Z., Guangyi, X., Qian, Z., Xueping, H., Xiantao, T. Time-dose effect of spinal manipulation on growth and motor function in infant rat with cerebral palsy. Shi Zhen National Medicine and National Medicine. 28 (09), 2274-2277 (2017).
  19. Yang, L. J., Cui, H. Olig2 knockdown alleviates hypoxic-ischemic brain damage in newborn rats. Histology and Histopathology. 36 (6), 675-684 (2021).
  20. Martins, L. A., Schiavo, A., Xavier, L. L., Mestriner, R. G. The foot fault scoring system to assess skilled walking in rodents: A reliability study. Frontiers in Behavioral Neuroscience. 16, 892010(2022).
  21. Li, S., et al. Plxna2 knockdown promotes m2 microglia polarization through mtor/stat3 signaling to improve functional recovery in rats after cerebral ischemia/reperfusion injury. Experimental Neurology. 346, 113854(2021).
  22. Naomi, R., Rusli, R. N. M., Teoh, S. H., Bahari, H., Zakaria, Z. A. Remodulation effect of elateriospermum tapos yoghurt on metabolic profile of maternal obesity induced cognitive dysfunction and anxiety-like behavior in female offspring-an in vivo trial on sprague dawley rats. Foods (Basel, Switzerland). 12 (8), (2023).
  23. Naomi, R., et al. The role of elateriospermum tapos yoghurt in mitigating high-fat dietary cause of maternal obesity-an experimental study. Frontiers In Endocrinology. 14, 1131830(2023).
  24. Mukonowenzou, N. C., Dangarembizi, R., Chivandi, E., Nkomozepi, P., Erlwanger, K. H. Administration of ursolic acid to new-born pups prevents dietary fructose-induced non-alcoholic fatty liver disease in sprague dawley rats. Journal of Developmental Origins of Health and Disease. 12 (1), 101-112 (2021).
  25. Wei, W., et al. Neuroprotective effect of verbascoside on hypoxic-ischemic brain damage in neonatal rat. Neuroscience Letters. 711, 134415(2019).
  26. Taiyi, W., Ziyu, H. Anatomical Atlas of Experimental Animals in Chinese and English. , Liaoning Fine Arts Publishing House; Shenyang: Liaoning Science and Technology Press. Shenyang. (2000).
  27. Na, X. Study on the sensitization rule of dorsal acupoints in children with spastic cerebral palsy based on infrared thermal imaging technology and the effect of massage intervention. , (2021).
  28. China Association for Acupuncture and Moxibustion. Names and localization of commonly used acupoints in laboratory animals Part 2: Rats. Acupuncture Research. 46 (04), 351-352 (2021).
  29. Yinghua, S., Xiantao, T. Effect of spinal manipulation on the expression of growth hormone and its receptor protein in hypothalamus of infant rat with cerebral palsy. Sichuan Traditional Chinese Medicine. 39 (02), 55-59 (2021).
  30. Qi, H., et al. Effect of spinal manipulation on learning and memory in infant rat with cerebral palsy and its mechanism. Guide to Traditional Chinese Medicine. 24 (11), 36-39 (2018).
  31. Tai, W. -C., Burke, K. A., Dominguez, J. F., Gundamraj, L., Turman, J. E. Growth deficits in a postnatal day 3 rat model of hypoxic-ischemic brain injury. Behavioural Brain Research. 202 (1), 40-49 (2009).
  32. Huang, L., et al. Animal models of hypoxic-ischemic encephalopathy: Optimal choices for the best outcomes. Reviews In the Neurosciences. 28 (1), 31-43 (2017).
  33. Lyu, H., et al. A new hypoxic-ischemic encephalopathy model in neonatal rats. Heliyon. 7 (12), e08646(2021).
  34. Hegazi, M. A., et al. Growth hormone/insulin-like growth factor-1 axis: A possible non-nutritional factor for growth retardation in children with cerebral palsy. Jornal de Pediatria. 88 (3), 267-274 (2012).
  35. Boboc, I. K. S., et al. A preclinical systematic review and meta-analysis of behavior testing in rat models of ischemic stroke. Life. 13 (2), Basel, Switzerland. 567(2023).
  36. Lubrich, C., Giesler, P., Kipp, M. Motor behavioral deficits in the cuprizone model: Validity of the rotarod test paradigm. International Journal of Molecular Sciences. 23 (19), 11342(2022).
  37. Tan, Y., et al. Vof-16 knockout improves the recovery from hypoxic-ischemic brain damage of neonatal rats. Brain Research. 1748, 147070(2020).
  38. Xiantao, T., Pengyue, Z., Xinghe, Z. Construction and application of selective spinal manipulation in the treatment of children with cerebral palsy. China's Scientific and Technological Achievements. 23 (9), 1-2 (2022).
  39. Matos, L. C., Machado, J., Greten, H. J., Monteiro, F. J. Changes of skin electrical potential in acupoints from ren mai and du mai conduits during qigong practice: Documentation of a clinical phenomenon. Journal of Bodywork and Movement Therapies. 23 (4), 713-720 (2019).
  40. Levkovets, I. L., Kiryanova, V. V. Systemic and pathogenetic approach: A new look at traditional Chinese medicine. Voprosy Kurortologii, Fizioterapii, I Lechebnoi Fizicheskoi Kultury. 99 (1), 80-88 (2022).
  41. Efferth, T., Xu, A. -L., Lee, D. Y. W. Combining the wisdoms of traditional medicine with cutting-edge science and technology at the forefront of medical sciences. Phytomedicine: International Journal of Phytotherapy and Phytopharmacology. 64, 153078(2019).
  42. Zhang, Z., et al. Correlated sensory and sympathetic innervation between the acupoint bl23 and kidney in the rat. Frontiers In Integrative Neuroscience. 14, 616778(2020).
  43. Zhu, X., et al. Effects of electroacupuncture at st25 and bl25 in a sennae-induced rat model of diarrhoea-predominant irritable bowel syndrome. Acupuncture In Medicine: Journal of the British Medical Acupuncture Society. 35 (3), 216-223 (2017).
  44. Gimarc, K., Yandow, S., Browd, S., Leibow, C., Pham, K. Combined selective dorsal rhizotomy and single-event multilevel surgery in a child with spastic diplegic cerebral palsy: A case report. Pediatric Neurosurgery. 56 (6), 578-583 (2021).
  45. Zhang, W. -B., Wang, Y. -P., Li, H. -Y. Analysis on correlation between meridians and viscera in book the yellow emperor's internal classic. Acupuncture Research. 43 (7), 424-429 (2018).
  46. Wang, Y. -P., Hou, X. -S. Discussion on the classification of acupoints. Chinese Acupuncture & Moxibustion. 39 (10), 1069-1072 (2019).
  47. Chen, R. -X., Kang, M. -F. Clinical application of acupoint heat-sensitization. Chinese Acupuncture & Moxibustion. 27 (3), 199-202 (2007).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

التلاعب الفقري الانتقائينموذج جرذان رضيعةالطب الصيني التقليديالعلاج الخارجيتحسين الوظيفة الحركيةإفراز هرمون النموتحليل سلوك الحيوانتحفيز نقاط الوخز بالإبر الشوكيةالاضطرابات العصبية لدى الأطفال
تعزيز نمو ونمو الفئران المصابة بالشلل الدماغي الرضع باستخدام التلاعب الانتقائي بالعمود الفقري
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.