يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

نموذج تجريبي لالتهاب ما حول الزرع الناجم عن الأربطة في الفئران

4.1K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/66316

⸱

مايو 17, 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1School of Dentistry, Section of Periodontics, University of California, 2School of Dentistry, Department of Periodontology, Federal University of Pelotas

في هذه المقالة

ملخص

هذا تقرير عن نموذج تجريبي لالتهاب ما حول الزرع الناجم عن الأربطة في الفئران. نحن نصف جميع الخطوات الجراحية ، من الإدارة قبل وبعد الجراحة للحيوانات ، والخلع ، ووضع الزرع ، والتهاب ما حول الزرع الناجم عن الرباط.

الملخص

زراعة الأسنان لديها نسبة عالية من النجاح والبقاء على قيد الحياة. ومع ذلك ، فإن المضاعفات مثل التهاب ما حول الزرع (PI) يصعب علاجها للغاية. يتميز PI بالتهاب في الأنسجة حول زراعة الأسنان مع فقدان تدريجي للعظام الداعمة. لتحسين طول عمر زراعة الأسنان من حيث الصحة والوظائف ، من الأهمية بمكان فهم الفيزيولوجيا المرضية حول الزرع. في هذا الصدد ، أثبت استخدام نماذج الفئران في البحث فوائد واضحة في إعادة إنشاء الظروف السريرية. تهدف هذه الدراسة إلى وصف نموذج تجريبي لالتهاب ما حول الزرع الناجم عن الأربطة في الفئران وتحديد ما إذا كانت هناك فعالية في إحداث هذا المرض ، بالنظر إلى التغيرات الملحوظة في العظام والأنسجة. يستوعب الحث التجريبي حول الزرع الخطوات التالية: قلع الأسنان ، ووضع الزرع ، و PI المستحث بالأربطة. تم تقسيم عينة من ثمانية عشر فأرا من ذكور C57BL / 6J البالغة من العمر 3 أسابيع إلى مجموعتين ، الرباط (N = 9) والتحكم غير الرباطي (N = 9). تم إجراء تقييم العوامل السريرية والشعاعية والنسيجية. أظهرت مجموعة الأربطة فقدانا أعلى بكثير للعظام ، وزيادة وذمة الأنسجة الرخوة ، والهجرة الظهارية القمية مقارنة بالمجموعة غير الأربطة. وخلص إلى أن هذا النموذج قبل السريري يمكن أن يحفز بنجاح التهاب ما حول الزرع في الفئران.

المقدمة

تنتشر زراعة الأسنان بشكل متزايد كخيار مرغوب فيه لاستبدال الأسنان المفقودة1. من المتوقع أن يزداد انتشار زراعة الأسنان بين السكان البالغين في الولايات المتحدة بنسبة تصل إلى 23٪ بحلول عام 20262. استنادا إلى تقرير تحليل السوق الصادر عن Grand View Research (2022) ، كان من المتوقع أن يصل حجم السوق العالمي لزراعة الأسنان إلى حوالي 4.6 مليار دولار أمريكي في عام 2022. علاوة على ذلك ، من المتوقع أن تظهر معدل نمو سنوي ثابت يبلغ حوالي 10٪ حتى عام 20303. لسوء الحظ ، يمكن أن يؤدي استخدام زراعة الأسنان إلى مضاعفات ، مثل التهاب ما حول الزرع. تم تعريف التهاب ما حول الزرع على أنه حالة يسببها الغشاء الحيوي تتميز بالتهاب في الغشاء المخاطي حول الزرع وفقدان تدريجي لاحق للعظام الداعمة4.

وجدت مراجعة منهجية أن متوسط انتشار التهاب ما حول الزرع كان 19.53٪ (فاصل الثقة 95٪ [CI] ، 12.87 إلى 26.19٪) على مستوى المريض و 12.53٪ (95٪ CI 11.67 إلى 13.39٪) على مستوىالزرع 5. يمثل التهاب ما حول الزرع صحة عامة متنامية ، بسبب زيادة فشل الزرع ، وبالتالي تكاليف العلاج الكبيرة6.

يعد فهم التسبب في التهاب ما حول الزرع أمرا بالغ الأهمية لتطوير نهج منظم لمنع ظهوره وتقدمه وزيادة طول عمر زراعة الأسنان من حيث الجماليات والوظيفة 7,8. بهذا المعنى ، أثبت استخدام نماذج الفئران في أبحاث طب الأسنان أنه مفيد ، بالنظر إلى أن الفئران تشترك في أكثر من 95٪ من جيناتها مع البشر 9,10 ، وعدد قواعد البيانات الجينية المتاحة على الإنترنت ، والقدرة على إعادة إنتاج السيناريوهات السريرية11. تسمح جميع المزايا الموصوفة بتشريح الآليات الجينية في الأمراض المختلفة12 ، والإقامة والإدارة التي يمكن الوصول إليها ، والأجسام المضادة المتاحة على نطاق واسع كألواح بشرية ، بما يتجاوز توافر التعديل الجيني (على سبيل المثال ، الضربة القاضية والإفراط في التعبير) لتقييم الأنسجة الالتهابية ورسم خرائط المرض13. على الرغم من أنه مفيد ، إلا أن هناك القليل من المنشورات التي تتناول التهاب ما حول الزرع في الفئران. ويرجع ذلك إلى التحديات المنهجية ، من بين أمور أخرى ، بما في ذلك صعوبة الحصول على غرسات صغيرة أو تركيبها.

لتطوير التهاب ما حول الزرع في الفئران ، تم وصف العديد من البروتوكولات ، مثل التهاب ما حول الزرع الناجم عن الرباط ، أو التهاب ما حول الزرع الناجم عن البكتيريا14 ، أو التهاب ما حول الزرع الناجم عن عديد السكاريد الشحمي (LPS)15 ، أو الجمع بين LPS + التهاب ما حول الزرع الناجم عن الرباط16. هنا ، سنركز على نموذج الرباط لأنه الطريقة الأكثر قبولا على نطاق واسع للحث على التهاب دواعم السن17،18،19 ، ومؤخرا ، التهاب ما حول الزرع20،21. يحفز الرباط الموجود حول الغرسات في وضع تحت المخاطية تراكم البلاك ، وبالتالي التهاب الأنسجة. لذلك ، يعتمد تطوير هذا النهج على الإشارة إلى تقنية التكلفة والفائدة القابلة للتطبيق للتحقيقات قبل السريرية على الأمراض المحيطة بالزرع. تهدف هذه الدراسة إلى وصف نموذج تجريبي لالتهاب ما حول الزرع الناجم عن الأربطة في الفئران وتحديد ما إذا كانت هناك فعالية في إحداث هذا المرض بالنظر إلى التغيرات الملحوظة في العظام والأنسجة.

الهدف العام من هذه المقالة هو الإبلاغ عن البروتوكول المطبق للحث على التهاب ما حول الزرع في الفئران عن طريق الرباط ومراقبة فعاليته من خلال تقييم الأنسجة وفقدان العظام حول الغرسات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

تمت الموافقة على الإجراءات التي تنطوي على مواضيع حيوانية من قبل لجنة أبحاث التابعة للمستشار بجامعة كاليفورنيا ، لوس أنجلوس (رقم بروتوكول ARC 2002-125) ، والبحوث الحيوانية: الإبلاغ عن التجارب في الجسم الحي (ARRIVE) 22. لهذه الطريقة ، تم استخدام ثمانية عشر فأرا من ذكور C57BL / 6J عمرها 3 أسابيع وخضعوا لقلع الأسنان ووضع الزرع وتحريض التهاب ما حول الزرع. تم تنفيذ جميع إجراءات طب الأسنان تحت التكبير المجهري 10× وتم تنفيذها بواسطة مشغلين مدربين ومعايرين (الشكل 1 أ).

1. خطوات ما قبل الاستخراج

  1. إجراء العملية في غرفة جراحية تتوافق مع جميع معايير السلامة البيولوجية والحماية.
  2. أداء التعقيم لجميع الأسطح مع الاحتكاك الثلاثي باستخدام محلول كحول الأيزوبروبيل بنسبة 70 ٪.
  3. تخدير الفئران الذكور C57BL / 6J البالغة من العمر 3 أسابيع باستخدام 3٪ إيزوفلوران. تحقق من عدم الاستجابة لسحب المخلب عند اللمس لضمان الحصول على عمق مخدر كاف.
  4. لتجنب التدخل في الإجراءات في الفم ، استخدم مخروط الأنف للحفاظ على تخدير الأيزوفلوران.
  5. لديك مشغل مساعد لتثبيت والحفاظ على فتح الفم (الشكل 1 ب).
  6. تطبيق مواد التشحيم العينية, لمنع تهيج في العينين قبل البدء في استخراج.

figure-protocol-1
الشكل 1: التكيفات العملية: (أ) التكبير المجهري. (ب) نظام تخدير استنشاقي مكيف وتثبيت لفتح الفم. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

2. قلع الأسنان

  1. بالنسبة لخلع الأسنان ، أدخل مستكشف أسنان #5 بين الضرس الأول والثاني لبدء إجراءات الارتفاع والخلع عن طريق تحريك الأداة في الاتجاه المتوسط البعيد حتى يتحرك السن في التجويف (الأشكال 2 أ).
  2. بعد ذلك ، قدم مستكشف الأسنان # 5 في الموقع المتوسط للضرس الأول. افعل ذلك عن طريق تحريك الأداة في الاتجاه المتوسط البعيد حتى يتحرك السن في التجويف.
  3. بعد الارتفاع ، استخدم ملقط الطرف وملقط ربط الخيطلإزالة الضرس 1.
  4. بعد ذلك ، قدم مستكشف الأسنانبين الضرس الثاني و 3 لرفع وخلع الضرس الثاني (الشكل 2 ب).
  5. بعد ذلك ، استخدم ملقط الطرف و / أو ملقط ربط الخيط لإزالة السن باستخدام الأدوات لتثبيته وإخراجه من الفم. (الشكل 2 ج).
  6. بعد قلع الأسنان ، تأكد من تحقيق الإرقاء الكامل باستخدام قطن معقم مائل (الشكل 2 د) لمدة 1 دقيقة (الشكل 2E ، F).
  7. بعد الاستخراج مباشرة، يجب تزويد جميع بمسكنات الألم (كاربروفين/ريماديل، 5 ملغ/كغ) كل 24 ساعة. إدارة الدواء عن طريق الحقن تحت الجلد.
  8. بالإضافة إلى ذلك ، استبدل الطعام العادي بنظام غذائي ناعم. تطبيق المضاد الحيوي (أموكسيل 0.25 ملغ/مل) عن طريق الفم عن طريق دمج الدواء في مياه الشرب. افعل ذلك لمدة أربعة أسابيع بعد الاستخراج.

figure-protocol-2
الشكل 2: تسلسل الاستخراج الأولي: (أ ، ب) منطقة الفك العلوي مع الأسنان المولية 1 و 2 واستخدام مستكشف الأسنان للارتفاع والخلع. (ج) استخدام ملقط الأطراف والمستكشف للخلع وإزالة الأسنان. د: الإرقاء. (ه، واو) المظهر السنخي بعد الاستخراج. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

3. وضع الزرع

  1. باستخدام شفرة 15c ، قم بإنشاء شق بعيد من خلال الأنسجة الكيراتينية في المنطقة المقابلة للأسنان الموجودة سابقا. استخدم أضراس الفك العلوي اليمنى كمرجع مكاني (الشكل 3 أ).
  2. ارفع اللوحات الشدقية والحنكية كاملة السماكة باستخدام مستكشف الأسنان # 5 ، مما يضمن الارتفاع الكامل للرفرف (الشكل 3 ب).
  3. قم بإجراء قطع العظم باستخدام مثقاب يدوي صغير من كربيد قطره 0.3 مم متصل ب Pin Vise (مثقاب يدوي) وقم بتنشيطه في اتجاه عقارب الساعة. قم بإنشاء مواقع قطع العظم بعمق 1 مم تقريبا في مآخذ الاستخراج الملتئمة (الشكل 3C).
  4. ضع الغرسات المصممة خصيصا على شكل لولبي بسطح أملس (طوله 1.0 مم وقطره 0.5 مم) مصنوع من قضبان التيتانيوم 6AL4V (الشكل 3D) ، واحد لكل ، عن طريق التنصت الذاتي في منطقة الأضراس اليسرى الأولى والثانية باستخدام حركة الشد في اتجاه عقارب الساعة (الشكل 3E-I).
  5. مباشرة بعد وضع الغرسة، يتم تطبيق مسكنات الألم (كاربروفين/ريماديل/كغ كل 24 ساعة) عن طريق الحقن تحت الجلد.
  6. اسمح للغرسات بالشفاء لمدة أربعة أسابيع ، وخلال هذه الفترة قم بإعطاء المضادات الحيوية والتغذية كما هو موضح سابقا.
  7. في نهاية فترة الشفاء ، تأكد من أن الجرح المخاطي مغلق تماما وله مظهر وردي فاتح.

figure-protocol-3
الشكل 3: تسلسل وضع الغرسة: (أ) شق باستخدام شفرة 15c متصلة بالمقبض. (ب) اللوحات كاملة السماكة باستخدام مستكشف الأسنان # 5. (ج) قطع العظم باستخدام مثقاب يدوي دقيق من الكربيد 0.3 مم متصل ب Pin Vise. د: زراعة الأسنان من التيتانيوم. (ه، واو) دعم الزرع وحامل الغرسة. (G- I) وضع الزرع باستخدام حركة الشد في اتجاه عقارب الساعة. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

4. تحريض التهاب ما حول الزرع

  1. ضع رباطا حريريا (6-0) حول كل تركيبات قمي مباشرة لرأس الغرسة عن طريق تحديد سطح الغرسة وتثبيتها بعقدة مزدوجة. حافظ على الرباط لمدة أسبوعين مما يسمح بتطور التهاب ما حول الزرع.
  2. تحقق من الأربطة كل يومين للتأكد من أنها لا تزال موجودة. إذا كان مفقودا ، ضع رباطا جديدا.

figure-protocol-4
الشكل 4: تسلسل التهاب ما حول الزرع الناجم عن الرباط. (أ-د) الرباط الحريري (6.0) يوضع حول رأس الزرع. (E-G) إغلاق العقدة. (ح) قطع الأربطة. (ط) المثول النهائي. الصور السريرية التي تم الحصول عليها من الحية تحت التخدير. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

5. التضحية

  1. بعد فترة تحريض التهاب ما حول الزرع (أسبوعين) ، التضحية بجميع ذات التركيز العالي من الأيزوفلوران المستنشق ، تليها طريقة ثانوية لخلع عنق الرحم مع ضغط قضيب في قاعدة الجمجمة وسحب الأطراف الخلفية بسرعة ، مما تسبب في فصل الفقرات العنقية عن الجمجمة.
  2. افصل الفك العلوي باستخدام أدوات حادة ، مثل المقص الجراحي ، الذي سيفصل فك بالكامل عن بقية الجسم.
  3. قم بتصوير الفك العلوي باستخدام المجهر الضوئي ، وقم بتثبيته في 10٪ فورمالين لمدة 24 ساعة ، ثم قم بتخزينه في 70٪ من الإيثانول.

6. التصوير المقطعي الجزئي (μCT)

  1. افحص الفك العلوي كما هو موضح سابقا 18,19 باستخدام التصوير المقطعي المحوسب الدقيق (micro-CT).
  2. قم بتشغيل الماسح الضوئي والكمبيوتر ، ثم افتح برنامج المسح الضوئي ، وانقر فوق علامة الإشعاع ، وانتظر 15 دقيقة لتسخينه مسبقا.
  3. افتح باب الجهاز بالنقر فوق رمز الباب.
  4. استخدم طاولة دوارة ربع الحجم. ضع الفك العلوي على أنبوب مخروطي سعة 15 مل. ثبت الأنبوب في قاعدة الطاولة الدوارة. ضع الطاولة الدوارة في برغي الجهاز.
  5. أغلق باب الجهاز بالنقر فوق رمز الباب.
  6. قم بتشغيل مصدر الأشعة السينية.
  7. انقر على أيقونة الاستيلاء على الصورة وتأكد من وجود العظم في الحقل.
  8. اضبط دقة حجم البكسل 10 ميكرومتر ، طاقة الأشعة السينية 55 كيلو فولت و 181 ميكروأمبير ، مرشح الذكاء الاصطناعي 0.5 مم ، خطوة الدوران 0.4 ، متوسط الإطار 10. ستنشئ هذه الإعدادات وقت مسح تقديري يبلغ 24 دقيقة.
  9. ابدأ عملية الاستحواذ.
  10. لإعادة الإعمار فتح برنامج إعادة الإعمار. استخدام تصلب شعاع من 20 ٪. استخدام قطعة أثرية حلقة من 5 ٪. استخدم نطاقا ديناميكيا من 0-0.13. قم بإلغاء تحديد التسمية تشغيل. انقر فوق معاينة. اختر طريقة العرض المناسبة التي يتم عرضها لمنطقة الاهتمام، واحفظها بتنسيق TIFF.
  11. توجيه الصور التي تم الحصول عليها باستخدام برنامج لعرض وتحليل البيانات. اجعل المحور الطويل لرأس الغرسة موازيا للمحاور السهمية والإكليلية ومتعامدا مع المحور المحوري.
  12. احفظ الصورة السهمية كصورة واحدة لتحليل العظام الخطية.
  13. احفظ الصورة عبر المحاور كمجموعة بيانات لتحليل العظام الحجمي.
  14. إجراء تحليل العظام الخطي باستخدام برنامج تحليل البيانات. قم بقياس المسافات بالمليمترات بين رأس الزرع والعظم السنخي في المستويين السهمي والإكليلي ، بما في ذلك المواقع المتوسطة والبعيدة والشدقية والحنكية.
  15. إجراء تحليل العظام الحجمي باستخدام برنامج تحليل البيانات. تتبع فقدان العظام حول الغرسات عن طريق رسم منطقة الاهتمام في جميع الشرائح المقابلة لفقدان العظام.

7. التحليل الإحصائي

  1. قياس فقدان العظام المجهري الخطي والحجمي وتطبيع هذه القيم بقسمة كل قيمة على متوسط المجموعة الضابطة. قدم متوسطا لجميع المجموعات ، كمتوسط ± الخطأ المعياري للمتوسط (SEM).
  2. قارن الأهمية باستخدام تحليل التباين ثنائي الاتجاه (ANOVA) متبوعا باختبار Tukey بفاصل ثقة 95٪. (المنشور 5). تطبيق مستويات الدلالة على النحو التالي: p≤0.01** ، p≤0.001****.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

لهذه الطريقة ، تم استخدام ثمانية عشر فأرا من ذكور C57BL / 6J عمرها 3 أسابيع وخضعوا لقلع الأسنان ووضع الزرع وتحريض التهاب ما حول الزرع. كان هناك تسعة لكل مجموعة والتي كانت ذات دلالة إحصائية ، مع الأخذ في الاعتبار أن فقدان العظام الخطي يحقق 80٪ قوة ، وانحراف معياري 15٪ (σ) وفاصل ثقة 95٪ (α = 0.05). تم تغذية الفئران بنظام غذائي ناعم خلال التجربة. تلقت تسعة فئران رباطا (مجموعة تجريبية لالتهاب حوائط الزرع الناجم عن الرباط) ، ولم تتلق تسعة فئران الرباط (المجموعة الضابطة).

معدل نجاح ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

يقدم هذا البروتوكول تقريرا وصفيا عن الإجراءات الجراحية لتحريض التهاب ما حول الزرع باستخدام نموذج الرباط في الفئران. العمل مع الفئران له مزايا ، مثل كونه فعالا من حيث التكلفة ، وتوافر مجموعة وراثية واسعة بالنظر إلى العديد من الخلفيات23 من بين جوانب أخرى24,25. على مر السنين ، نجحت العديد من الدراسات في استخدام الفئران في المجالات الطبية وطب الأسنان ، بما في ذلك التهاب ما حول الزرع26،27

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل المعاهد الوطنية للصحة / DE031431 NIDCR. نود أن نشكر المختبر الأساسي لعلم الأمراض الانتقالي في جامعة كاليفورنيا في لوس أنجلوس للمساعدة في إعداد الأقسام النسيجية منزوعة الكلس.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
# 5 مستكشف الأسنانهو فريدي ، شيكاغو ، إلينوي392-0911   ؛خلع الأسنان
شفرة 15c ومشرط جراحيHenry Schein Inc. ، Melville ، NY1126186شق الأنسجة
6-0 أربطة حريريةفيشر Scientific ، هامبتون ، نيو هامبشايرNC9201232الرباط
Amoxicillin 50 & mu ؛ جم / ملZoetis ، سان دييغو ، CATS / DRUGS / 57/2003تعليق فموي
لحم الخنزير المقدد لينة النظام الغذائيالحيوي Serve & reg ؛ ، فرينشتاون ، نيوجيرسي14-726-701-C57BL
/ 6J ذكور الفئرانمختبرات جاكسون ، بار هاربور ، ME ، الولايات المتحدة الأمريكية000664العمر: برنامج CTAn البالغ من العمر 3 أسابيع
V.1.16 Bruker ، Billerica ،MA-التحليلالحجمي
برنامج دولفينNavantis، تورنتو ، كاليفورنيا-تحليل العظام الخطي
حامل الزرع & نصيحةD. P. Machining Inc., La Verne, CAمنتج فريد من نوعه حامل الزرع
دعم الزرعD. P. Machining Inc., La Verne, CAمنتج فريد من نوعه التقاط الغرسة
إيزوفلوران Vet One ، Boise ، IDNDC13985-528-60التخدير الاستنشاقي
Micro-CT scan 1172SkyScan ، Kontich ، بلجيكا-& التصوير المقطعي المحوسب
Nrecon SoftwareBruker Corporation ، Billerica ،MA-ImagesReconstruction
Ø ؛ 0.3 مم - L 2.5 مم مثاقب دقيقة   ؛أبو الهول ، هوفمان إستيتس ، ILART. 50699   ؛قطع العظم
Ø 0.5 مم - L 1.0mm غرسات التيتانيومD. P. Machining Inc. ، La Verne ، CAمنتج فريدمن نوعه -
زيوت تشحيم العيونApexa ، أونتاريو ، كاليفورنياNDC13985-600-03الدموع الاصطناعية
دبوس ملزمةالأدوات العامة ، Secaucus ، NJ90قطع العظم
Rimadyl 50mg / mlZoetis ، سان دييغو ، كاليفورنيا4019449مضاد للالتهابات
يميلDynarex ، Glendale ، AZ4304-1
ملقط طرفأدوات العلوم الدقيقة ، فوستر سيتي ، كاليفورنيا11071-10خلع الأسنان
ملقط ربطأدوات العلوم الدقيقة ، فوستر سيتي ، كاليفورنيا18025-10وضع الرباط
قطن معقم الإرقاء

المراجع

  1. Ho, K., et al. A cross-sectional survey of patient's perception and knowledge of dental implants in japan. Int J Implant Dent. 8 (1), 14(2022).
  2. Elani, H. W., Starr, J. R., Da Silva, J. D., Gallucci, G. O. Trends in dental implant use in the u.S., 1999-2016, and projections to 2026. J Dent Res. 97 (13), 1424-1430 (2018).
  3. Grand view research. , Available from: grandviewresearch.com/industry-analysis/dental-implants-market (2022).
  4. Renvert, S., Persson, G. R., Pirih, F. Q., Camargo, P. M. Peri-implant health, peri-implant mucositis, and peri-implantitis: Case definitions and diagnostic considerations. J Clin Periodontol. 45, Suppl 20 S278-S285 (2018).
  5. Diaz, P., Gonzalo, E., Villagra, L. J. G., Miegimolle, B., Suarez, M. J. What is the prevalence of peri-implantitis? A systematic review and meta-analysis. BMC Oral Health. 22 (1), 449(2022).
  6. Herrera, D., et al. Prevention and treatment of peri-implant diseases-the efp s3 level clinical practice guideline. J Clin Periodontol. 50, Suppl 26 4-76 (2023).
  7. Graziani, F., Figuero, E., Herrera, D. Systematic review of quality of reporting, outcome measurements and methods to study efficacy of preventive and therapeutic approaches to peri-implant diseases. J Clin Periodontol. 39, Suppl 12 224-244 (2012).
  8. Schwarz, F., Derks, J., Monje, A., Wang, H. L. Peri-implantitis. J Periodontol. 89, Suppl 1 S267-S290 (2018).
  9. Bryda, E. C. The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).
  10. Mouse Genome Sequencing, C. Et al. Initial sequencing and comparative analysis of the mouse genome. Nature. 420 (6915), 520-562 (2002).
  11. Pirih, F. Q., et al. Ligature-induced peri-implantitis in mice. J Periodontal Res. 50 (4), 519-524 (2015).
  12. Rau, C. D., et al. High-density genotypes of inbred mouse strains: Improved power and precision of association mapping. G3. 5 (10), Bethesda. 2021-2026 (2015).
  13. Schwarz, F., Sculean, A., Engebretson, S. P., Becker, J., Sager, M. Animal models for peri-implant mucositis and peri-implantitis. Periodontol 2000. 68 (1), 168-181 (2015).
  14. Varon-Shahar, E., et al. Peri-implant alveolar bone resorption in an innovative peri-implantitis murine model: Effect of implant surface and onset of infection. Clin Implant Dent Relat Res. 21 (4), 723-733 (2019).
  15. Pirih, F. Q., et al. A murine model of lipopolysaccharide-induced peri-implant mucositis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 41 (5), e158-e164 (2015).
  16. Schwarz, F., et al. Influence of antiresorptive/antiangiogenic therapy on the extension of experimentally induced peri-implantitis lesions. Clin Oral Investig. 27 (6), 3009-3019 (2023).
  17. Wong, R. L., et al. Comparing the healing potential of late-stage periodontitis and peri-implantitis. J Oral Implantol. 43 (6), 437-445 (2017).
  18. Wong, R. L., et al. Early intervention of peri-implantitis and periodontitis using a mouse model. J Periodontol. 89 (6), 669-679 (2018).
  19. Hiyari, S., et al. Ligature-induced peri-implantitis and periodontitis in mice. J Clin Periodontol. 45 (1), 89-99 (2018).
  20. Nguyen Vo, T. N., et al. Ligature induced peri-implantitis: Tissue destruction and inflammatory progression in a murine model. Clin Oral Implants Res. 28 (2), 129-136 (2017).
  21. Yuan, S., et al. Comparative transcriptome analysis of gingival immune-mediated inflammation in peri-implantitis and periodontitis within the same host environment. J Inflamm Res. 15, 3119-3133 (2022).
  22. Berglundh, T., et al. Peri-implant diseases and conditions: Consensus report of workgroup 4 of the 2017 world workshop on the classification of periodontal and peri-implant diseases and conditions. J Periodontol. 89, Suppl 1 S313-S318 (2018).
  23. Hiyari, S., et al. Genomewide association study identifies cxcl family members as partial mediators of lps-induced periodontitis. J Bone Miner Res. 33 (8), 1450-1463 (2018).
  24. Kantarci, A., Hasturk, H., Van Dyke, T. E. Animal models for periodontal regeneration and peri-implant responses. Periodontol 2000. 68 (1), 66-82 (2015).
  25. Struillou, X., Boutigny, H., Soueidan, A., Layrolle, P. Experimental animal models in periodontology: A review. Open Dent J. 4, 37-47 (2010).
  26. Erata, E., et al. Cnksr2 loss in mice leads to increased neural activity and behavioral phenotypes of epilepsy-aphasia syndrome. J Neurosci. 41 (46), 9633-9649 (2021).
  27. Fakih, D., Guerrero-Moreno, A., Baudouin, C., Reaux-Le Goazigo, A., Parsadaniantz, S. M. Capsazepine decreases corneal pain syndrome in severe dry eye disease. J Neuroinflammation. 18 (1), 111(2021).
  28. Douam, F., Ploss, A. The use of humanized mice for studies of viral pathogenesis and immunity. Curr Opin Virol. 29, 62-71 (2018).
  29. Lin, P., et al. Application of ligature-induced periodontitis in mice to explore the molecular mechanism of periodontal disease. Int J Mol Sci. 22 (16), (2021).
  30. Marchesan, J., et al. An experimental murine model to study periodontitis. Nat Protoc. 13 (10), 2247-2267 (2018).
  31. Silva, D. N. A., et al. Probiotic lactobacillus rhamnosus em1107 prevents hyperglycemia, alveolar bone loss, and inflammation in a rat model of diabetes and periodontitis. J Periodontol. 94 (3), 376-388 (2023).
  32. Kim, Y. G., et al. 6-shogaol, an active ingredient of ginger, inhibits osteoclastogenesis and alveolar bone resorption in ligature-induced periodontitis in mice. J Periodontol. 91 (6), 809-818 (2020).
  33. Fine, N., et al. Periodontal inflammation primes the systemic innate immune response. J Dent Res. 100 (3), 318-325 (2021).
  34. Yu, X., et al. Role of toll-like receptor 2 in inflammation and alveolar bone loss in experimental peri-implantitis versus periodontitis. J Periodontal Res. 53 (1), 98-106 (2018).
  35. Reinedahl, D., Chrcanovic, B., Albrektsson, T., Tengvall, P., Wennerberg, A. Ligature-induced experimental peri-implantitis-a systematic review. J Clin Med. 7 (12), (2018).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

نموذج التهاب ما حول الزرعات السنيةزرعات الأسناننموذج الفأروضع الزرعةفقدان العظمالتهاب الأنسجةالتحليل النسيجيالتقييم السريريالمجهر الضوئي
نموذج تجريبي لالتهاب ما حول الزرع الناجم عن الأربطة في الفئران
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.