تقدم هذه المقالة تقنية فريدة من نوعها للصدر المغلق لإحداث إصابة نقص تروية عضلة القلب (IRI) في الفئران. تسمح الطريقة المقدمة للفئران بالتنفس تلقائيا أثناء تحفيز نقص تروية عضلة القلب عن بعد. يوفر هذا الوصول إلى لدراسة العمليات الديناميكية لنقص التروية وإعادة التروية في الموقع وفي الوقت الفعلي عبر التصوير غير الباضع.
يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية
مقالة منهجية
انسداد LAD الذي يتم تشغيله عن بعد باستخدام قسطرة بالون في الفئران التي تتنفس تلقائيا
* These authors contributed equally
في هذه المقالة
ملخص
الملخص
احتشاء عضلة القلب الحاد (AMI) هو حالة قلبية وعائية منتشرة وعالية الوفيات. على الرغم من التقدم في استراتيجيات إعادة التوعي ل AMI ، فإنه يؤدي في كثير من الأحيان إلى إصابة نقص تروية عضلة القلب (IRI) ، مما يؤدي إلى تضخيم تلف القلب. تعمل نماذج الفئران كأدوات حيوية للتحقيق في كل من الإصابات الحادة وإعادة تشكيل عضلة القلب المزمنة في الجسم الحي. تقدم هذه الدراسة تقنية فريدة من نوعها لإغلاق الصدر لتحفيز IRI عضلة القلب عن بعد في الفئران ، مما يتيح التحقيق في المرحلة المبكرة جدا من الانسداد وإعادة التروية باستخدام التصوير في الجسم الحي مثل التصوير بالرنين المغناطيسي أو التصوير المقطعي بالإصدار البوزيتروني. يستخدم البروتوكول طريقة انسداد عن بعد ، مما يسمح بالتحكم الدقيق في بدء نقص التروية بعد إغلاق الصدر. يقلل من الصدمات الجراحية ، ويتيح التنفس التلقائي ، ويعزز الاتساق التجريبي. ما يميز هذه التقنية هو قدرتها على التصوير غير الباضع في وقت واحد ، بما في ذلك الموجات فوق الصوتية والتصوير بالرنين المغناطيسي (MRI) ، أثناء أحداث الانسداد وإعادة التروية. إنه يوفر فرصة فريدة لتحليل استجابات الأنسجة في الوقت الفعلي تقريبا ، مما يوفر رؤى مهمة للعمليات أثناء نقص التروية وإعادة التروية. تم إجراء اختبارات منهجية مكثفة لهذا النهج المبتكر ، وقياس علامات نخر القلب للاحتشاء ، وتقييم المنطقة المعرضة للخطر باستخدام التصوير بالرنين المغناطيسي المعزز بالتباين ، واحتشاء تلطيخ في مرحلة نضج الندبة. من خلال هذه التحقيقات ، تم التركيز على قيمة الأداة المقترحة في تطوير مناهج البحث لإصابة نقص تروية عضلة القلب وتسريع تطوير التدخلات المستهدفة. يتم عرض النتائج الأولية التي توضح جدوى الجمع بين البروتوكول التجريبي المبتكر المقترح وتقنيات التصوير غير الباضعة هنا. تسلط هذه النتائج الأولية الضوء على فائدة استخدام مهد المصمم لهذا الغرض للحث على نقص تروية عضلة القلب عن بعد أثناء إجراء فحوصات التصوير بالرنين المغناطيسي في نفس الوقت.
المقدمة
يرتبط احتشاء عضلة القلب الحاد (AMI) ، وهو حالة قلبية وعائية عالمية سائدة ، بارتفاع معدلات الوفيات والمراضة1. على الرغم من التطورات التكنولوجية التي مكنت استراتيجيات إعادة التوعي المبكرة والفعالة لمرضى AMI ، لا يزال المرضى يعانون من إصابة نقص تروية عضلة القلب (IRI) بعد هذه التدخلات2. لذلك ، فإن فهم الآليات الأساسية وصياغة النهج للتخفيف من IRI أمر بالغ الأهمية. يمثل IRI حالة فيزيولوجية مرضية معقدة تنطوي على العديد من العمليات البيولوجية المعقدة. وتشمل هذه موت الخلايا المنظم ، واستجابات الإجهاد التأكسدي ، والالتهابات ، والتئام الجروح ، والتليف ، وإعادة تشكيل البطين. كانت النماذج الحيوانية ، مثل الفئران ، ذات أهمية كبيرة لأبحاث IRI ويتم استخدامها على نطاق واسع بسبب فعاليتها من حيث التكلفة ، والتكاثر السريع ، وثروة المعلومات الميكانيكية من النماذج المعدلة وراثيا3.
يقدم هذا البروتوكول تقنية مبتكرة للحث عن بعد IRI في الفئران التي تتنفس تلقائيا بصدر مغلق ، تحاكي عن كثب علم الأمراض البشري. تم تحقيق الانسداد عن بعد من خلال استخدام قسطرة بالون موضوعة على مسافة من عضلة القلب لسد الشريان النازل الأمامي الأيسر (LAD). يوفر هذا النهج وصولا مستمرا إلى القلب النابض في لحظات الانسداد وإعادة التروية بالضبط ، مما يسهل طرق التصوير المتزامن ، بما في ذلك التصوير بالموجات فوق الصوتية أو التصوير بالرنين المغناطيسي (MRI). يمكن أن توفر هذه الطرق غير الباضعة رؤى مهمة حول استجابات الأنسجة قبل وأثناء وبعد أحداث الانسداد وإعادة التروية.
توجد تقنيات جراحية مختلفة للحث على IRI في نماذج الفئران. تؤدي الصدمة الجراحية الناجمة عن بضع الصدر في نماذج الصدر المفتوح للربط التاجي إلى استجابة مناعية تؤثر على آليات متنوعة مرتبطة بنقص التروية وإعادة التروية. تفعيل الجهاز المناعي الفطري يحمل القدرة على التأثير على مدى احتشاء عضلة القلب4. توفر التقنية المعدلة المقترحة نهجا محتملا لاستكشاف ما قبل وبعد تكييف عضلة القلب وربما تقليل تأثير الاستجابة المناعية الفطرية للصدمة الجراحية في دراسات IRI للفئران عن طريق تقليل الإطار الزمني المفتوح للصدر إلى 5 دقائق كحد أقصى. علاوة على ذلك ، قد تساهم التقنية المطورة حديثا أيضا في تقليل العواقب المؤيدة للالتهابات الناتجة عن إصابة الرئة التي يسببها جهاز التنفسالصناعي 5. ومع ذلك ، فإن الآثار المشتركة لهذه الطريقة الجديدة للصدر المغلق تتطلب مزيدا من التحقيق المتعمق.
تم إجراء التحقق الشامل من التقنية المقترحة من خلال مقارنتها بالطريقة التقليدية ، والتي تتضمن تعريض LAD من خلال تشريح الصدر الجراحي والانسداد الناجم عن الأربطة لمدة 30 دقيقة. تمت مقارنة النتائج من كلتا التقنيتين ، والتي تضمنت قياسات التروبونين التي تعكس حجم احتشاء القلب ، وتقييمات المنطقة المعرضة للخطر باستخدام التصوير بالرنين المغناطيسي مع تعزيز تباين الجادولينيوم ، وتلطيخ كلوريد ثلاثي فينيل رباعي التنسج (TTC) ، وتحديد أحجام الندبات النهائية عبر تلطيخ Sirius Red (SR). توضح النتيجة متانة وفعالية النهج المقترح لدراسة إصابة نقص التروية في نماذج الفئران.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
البروتوكول
تمت الموافقة على هذا البروتوكول الحيواني من قبل ويتوافق مع المبادئ التوجيهية واللوائح التي وضعتها اللجنة الأخلاقية للتجارب على (ECD) في الجامعة الكاثوليكية في لوفين. تتبع جميع السياسات التي طورتها تنمية الطفولة المبكرة المحلية لوائح الاتحاد الأوروبي المتعلقة برعاية المختبر كما هو معلن في التوجيه 2010/63 / EU. تم إجراء جميع الاختبارات الموضحة أدناه على ذكور الفئران C57BL / 6 البالغة من العمر 8-12 أسبوعا (وزن الجسم = 20-23 جم). تمثل التجارب الحادة التي تم التضحية بها على الفور بعد الجراحة. مثلت تجارب البقاء على قيد الحياة متابعة لمدة أربعة أسابيع ، بما في ذلك قياس التروبونين والتصوير بالرنين المغناطيسي وتلطيخ SR.
1. التخدير والتنبيب الرغامي
- تطبيق دواء ما قبل التخدير باستخدام مزيج من الكيتامين (7.5 ملغ/كغ; نيماتيك 100 ملغم/مل)، زيلازين (1 ملغم/كغ; رومبون، 20 ملغ/مل)، والأسيبرومازين (0.1 ملغ/كغ; بلاسيفيت ، 10 مجم / مل) (KXA) (انظر جدول المواد) مع 0.9٪ محلول ملحي مخفف داخل الصفاق. هذا يسمح بتنبيب أكثر سلاسة وأقل توغلا.
- ضع الفأر في غرفة الحث (انظر جدول المواد) واستحضر التخدير باستخدام 2.5٪ إيزوفلوران في الأكسجين النقي بمعدل تدفق 1 لتر / دقيقة حتى فقدان التصحيح ومنعكس قرصة إصبع القدم.
- نقل إلى وسادة ساخنة (±38 درجة مئوية) ووضعها مستلق مع الرأس نحو الجراح. إصلاح الذيل والكفوف الأمامية مع الشريط على وسادة. تأكد من أن الأطراف الأمامية ليست ممتدة بشكل مفرط ، لأن هذا يمكن أن يضر بالتنفس.
- ضع خيطا حريريا 2-0 (انظر جدول المواد) حول القواطع العلوية وقم بلصق الخيط على حدود الوسادة لسحب الماوس مشدودا. إذا لزم الأمر ، قم بتوصيل حامل إبرة للحفاظ على التوتر على الخيط. الحفاظ على تخدير باستخدام 2٪ إيزوفلوران في أكسجين 100٪ مع تدفق 1 لتر / دقيقة باستخدام مخروط الأنف.
- ضع مصدر ضوء منبر القص فقط ، وأزل مخروط الأنف ، وضع إمداد الأيزوفلوران على جهاز التنفس الصناعي. تنبيب الفأر باستخدام ملقط عن طريق رفع اللسان لأعلى وعقد منظار الحنجرة عصامي لرفع الجزء القاعدي من اللسان أكثر وتصور الحبال الصوتية.
- ضع أنبوب القصبة الهوائية المصنوع ذاتيا باستخدام قسطرة 18 جم على إبرة باهتة بين الأحبال الصوتية. حرك القسطرة لأعلى ، واستخرج الإبرة الباهتة ، وقم بتوصيل الأنبوب بجهاز التنفس الصناعي للفأر (انظر جدول المواد).
- استخدم موصلا معدلا على شكل حرف Y (انظر جدول المواد) لتوصيل أنبوب التنبيب بجهاز التنفس الصناعي. يمكن تأكيد الموضع الصحيح لأنبوب القصبة الهوائية من خلال الحكم على توسع الصدر المتماثل.
- اضبط حجم المد والجزر (مل) عند وزن الجسم (BW) (g) x 7 ومعدل التهوية عند 53.5 × (BW (g) -0.26) ضربات في الدقيقة ، واضبطه على وزن جسم ماوس معين إذا لزم الأمر6 (على سبيل المثال ، بالنسبة للفأر 25 جم ، يكون حجم المد والجزر 175 مل بمعدل 140 ضربة في الدقيقة).
- قلل الأيزوفلوران إلى 1٪ في الأكسجين بنسبة 100٪ ، حيث سيبقى مخدرا بسبب التخدير. ومع ذلك ، قم بتقييم عمق التخدير بانتظام عن طريق إجراء قرصة إصبع القدم. تكييف تركيز إيزوفلوران على أساس عمق التخدير.
- ضع قطرة من مرهم العيون لمنع الجفاف أثناء التخدير.
2. تثبيت أداة IRI
ملاحظة: قم بإزالة كل الشريط ووضع على اللوحة الأساسية لأداة IRI المصممة لهذا الغرض. وترد تفاصيل عن خصائص أداة IRI في الملف التكميلي 1.
- ثبت اللوحة الأساسية لأداة IRI عن بعد المصممة لهذا الغرض في وضع جانبي أمام الجراح. إصلاح الذيل والكفوف باستخدام الشريط. ثبت الرأس باستخدام خياطة الحرير 2-0 حول القواطع العلوية لمنع الحركة العرضية (الشكل 1).
- أدخل المسبار الحراري المستقيمي (انظر جدول المواد) لمراقبة درجة حرارة الجسم واستخدم مصباح تسخين بالأشعة تحت الحمراء فوق للحفاظ على درجة الحرارة حوالي 37 درجة مئوية. انتبه إلى المسافة الكافية بين والمصباح لتجنب ارتفاع درجة الحرارة.
- ضع أقطاب إبرة ECG في جميع الكفوف الأربعة لمراقبة وتسجيل معدل ضربات القلب وشكل موجة ECG. قم بتثبيت مسبار المستقيم وأقطاب تخطيط القلب على المنصة باستخدام شريط لاصق.
- ضع كريم إزالة الشعر على الجانب الأيسر من الصدر لإزالة الشعر وإنشاء مجال جراحي واضح.
ملاحظة: الحد من وقت التطبيق والانتباه إلى الإزالة الكاملة للكريم لمنع الحروق الكيميائية.
3. بضع الصدر
- قم بإجراء التحضير المعقم للجلد باستخدام محلول Betadine ، ثم ضع ثنى جراحيا على الصدر الأيسر لضمان بيئة معقمة. استخدم معدات معقمة لتنفيذ الإجراء. قم بعمل شق جلدي عمودي في الجزء الأوسط من العضلة الصدرية بطول 1 سم تقريبا و 2 مم بعيدا عن الحد القصي الأيسر.
- بصق العضلة الصدرية لفضح الأضلاع تحتها. تجنب الإصابة العرضية للسفينة. في حالة حدوث نزيف ، استخدم أدوات تطبيق القطن لوقف أي نزيف.
- تصور الأضلاع وحدد المساحات الوربية من خلال مراقبة الرئة المتضخمة من خلال جدار الصدر الرقيق شبه الشفاف. افتح تجويف الصدر باستخدام مقص جراحي عن طريق عمل شق 6-8 مم في الفضاء الوربي الثالث. تأكد من أن الشق لا يقل عن 2 مم من الحدود القصية حيث يوجد الشريان الصدري الداخلي.
- أدخل منظارا صغيرا لعين الجرذ (انظر جدول المواد) في الفضاء الوربي. سيعمل هذا كمبعدة ضلع (الشكل 1 أ).
- ارفع التامور برفق باستخدام ملقط منحني واسحبه بعيدا.
- ضع قطعة صغيرة من القطن أعلى الرئة وادفعها برفق إلى أسفل.
4. إعداد LAD
- يظهر LAD باللون الأحمر الفاتح ويمتد من الشريان الأورطي تحت الأذن اليسرى نحو القمة. الوضع المثالي للرباط أقل بحوالي 2 مم من طرف الأذن اليسرى. استخدم الجذع الرئوي كعلامة للمساعدة في تحديد الأذن اليسرى وتحسين تصور LAD باستخدام تدفق الضوء (الشكل 2).
- استخدم إبرة مدببة لتمرير خياطة البولي بروبلين 7-0 حول LAD. لا تضع الإبرة عميقة جدا ، لأنها يمكن أن تدخل البطين الأيسر ، ولا ضحلة جدا ، لأنها يمكن أن تلحق الضرر ب LAD.
- قم بإزالة قطعة القطن الصغيرة وتحقق مما إذا كانت الرئة اليسرى لا تزال جيدة التهوية.
- إزالة ضلع المبتور.
- تأكد من أن طول الخيط لا يقل عن 15 سم على كلا الطرفين. قطع الإبرة.
- ضع قطعة من أنابيب PE-50 مقاس 1 مم فوق قطعة من أنابيب PE-10 مقاس 15 مم (انظر جدول المواد). قم بتوجيه طرفي الخيط من خلال أنبوب PE-10 وقم بتحويل أنبوب PE بنهايته السميكة ضد القلب.
5. إغلاق الصدر ونزع الأنبوب
- ضع بعض هلام حمض الفوسيديك على المساحة الوربية المفتوحة واسمح للهواء المتبقي داخل الصدر بالهروب برفق عن طريق إعاقة تدفق جهاز التنفس الصناعي لفترة وجيزة. يمكن إضافة جل حمض الفوسيديك الإضافي إلى الجزء الخارجي من أنبوب PE لمنع دخول الهواء إلى الصدر.
- أغلق العضلة الصدرية بغرزة 5-0 بولي بروبيلين X أعلى وأسفل مستوى أنبوب PE ، وتأكد من أن الجزء السميك من أنبوب PE تحت مستوى العضلات.
- أغلق الجلد بغرزتين من مادة البولي بروبيلين X 5-0 أعلى واثنين أسفل أنبوب PE (الشكل 1B والشكل 3).
- مع صندوق مغلق ، يمكن للحيوان التنفس تلقائيا مرة أخرى. فطم من جهاز التنفس الصناعي عن طريق تقليل حجم المد والجزر ومعدل التنفس ببطء. عندما يبدأ في التنفس ، افصل أنبوب جهاز التنفس الصناعي تلقائيا بعناية ، ولكن احتفظ به في مكانه حتى يتم ملاحظة نمط تنفس مستقر.
- قم بتوصيل إمداد الأيزوفلوران بمخروط أنف يتم وضعه فوق أنف ويتم تثبيته على لوحة القاعدة.
6. تجميع أداة الأشعة تحت الحمراء عن بعد
- ضع الجزء الجانبي الرأسي في لوحة القاعدة عن طريق إدخاله في الشقوق.
- استخدم خطافا رفيعا لاسترداد طرفي الخياطة واسحبهما عبر الفتحة المركزية في الجزء الجانبي خلف البالون (انظر جدول المواد).
- توجيه أحد الغرز ينتهي فوق وحول البالون. اتبع مع نهاية خياطة أخرى تحت وحول البالون. ضع جل حمض الفوسيديك لتوجيه أكثر سلاسة للخياطة.
- توجيه ينتهي خياطة من خلال الشقوق على الجزء العلوي من الجزء الجانبي. في الجزء البعيد من الخيط ، ضع وزنا قدره 2.1 جم للحفاظ على نهاية كل خياطة في مكانها (الشكل 1 ج والشكل 4).
ملاحظة: تكوين الأوزان المناسبة عرضة للتغيير ويجب اختباره مسبقا. انظر الشكل التكميلي 1 والملف التكميلي 1 للحصول على التفاصيل. يتم توفير تصميم أداة IRI عن بعد في الشكل التكميلي 2.
7. تحريض نقص التروية والتروية
- تحفيز نقص التروية عن طريق نفخ البالون على الفور باستخدام مضخة البالون الوعائية حتى 2 بار. قفل المضخة. تحقق بصريا مما إذا كان البالون منتفخا وأن الأوزان مرفوعة (الشكل 4).
- تأكيد نقص التروية من خلال مراقبة التغيير في تتبع تخطيط القلب.
- اترك البالون منفوخا للوقت المحدد وفقا لبروتوكول الدراسة المحدد (30 دقيقة في التجارب المقدمة).
- أوقف الانسداد ببساطة عن طريق فتح المضخة. أفرغ البالون بعناية. تحقق بصريا مما إذا كان البالون مفرغا من الهواء ويتم خفض الأوزان.
8. تفكيك أداة الأشعة تحت الحمراء عن بعد
- قطع خياطة وأنبوب بين والجزء الجانبي وإزالة بعناية الجزء الجانبي.
- ضع هلام حمض الفوسيديك في موقع إدخال الأنبوب في الصدر. استخدم ملقط منحني لدفع الجلد برفق ضد الأنبوب واستخدم ملقط آخر لاستخراج الأنبوب. قطع أي خياطة المتبقية بالقرب من الجلد.
- ضع خيطا إضافيا من 5-0 بولي بروبيلين لإغلاق موقع خروج الأنبوب وتقليل خطر دخول الهواء إلى الصدر.
9. نهاية التخدير والشفاء
- أوقف إمداد الأيزوفلوران واسمح للحيوان بالاستيقاظ في بيئة صامتة ودافئة وغنية بالأكسجين.
- تأكد من أن الفأر ليس في أي ضائقة تنفسية من خلال مراقبته حتى الشفاء التام. توفير 0.3 مل من محلول ملحي معقم (في درجة حرارة الجسم) عن طريق الحقن داخل الصفاق لمنع الجفاف.
- في حالة التسكين بعد الجراحة، يتم تطبيق مسكن أفيوني المفعول (البوبرينورفين، 0.1 ملغ/كغ) تحت الجلد قبل أن يصبح متنقلا. تحقق من الفئران كل 4-6 ساعات لمدة 24-48 ساعة القادمة عند توفير البوبرينورفين للتأكد من أن الفئران تستجيب لمسكنات الألم ولتحديد ما إذا كانت هناك حاجة إلى أدوية إضافية للألم. يجب أن يشمل الدعم الإضافي جل أو هريس غذائي قياسي موصى به للرعاية الداعمة يوضع على أرضية القفص بعد الجراحة.
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
النتائج
تم التحقق من صحة القدرة على إحداث نقص التروية من خلال أربعة اختبارات: كلوريد ثلاثي فينيل رباعي الأزوليوم (TTC) وتلطيخ سيريوس الأحمر (SR) ، وقياس تروبونين القلب I ، والتصوير بالرنين المغناطيسي لتعزيز الجادولينيوم المتأخر (LGE). تم تقييم الدلالة الإحصائية باستخدام اختبار مان ويتني غير المعلمية ، مع الأخذ في الاعتبار أحجام العينات المحدودة. تعزى الدلالة الإحصائية إلى p < 0.05.
لم يكن للتجارب الحادة (تلطيخ TTC ، ن = 15) أي عطل فني ، وتم تضمين جميع. تضمنت هذه التجارب الحادة تجارب متابعة...
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المناقشة
توفر تقنية الانسداد عن بعد الجديدة التي تم تقديمها في هذه الدراسة منصة فريدة لتطوير البحث في مجال نمذجة إصابة نقص التروية عن طريق تجنب الحاجة إلى التلاعب المباشر بالأوعية أثناء الجراحة الأولية والسماح بالتصوير المتزامن متعدد الوسائط لعضلة القلب المعاد تشكيلها في وقت مبكر. يظهر التوصيف الشامل ، بما في ذلك قياسات التروبونين I ، والتصوير بالرنين المغناطيسي على النقيض من LGE ، و TTC ، وتلطيخ SR ، أن التقنية المقترحة تعادل المعيار الذهبي الحالي (أي ربط LAD المفتوح الصدر)
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
الإفصاحات
ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للكشف عنه.
شكر وتقدير
تم إجراء التجارب في منشأة KU Leuven الأساسية "مركز التصوير الجزيئي للحيوانات الصغيرة" (MoSAIC). ويود المؤلفون أن يعربوا عن شكرهم لكاتارزينا بواجيجزيك على المساعدة التقنية. تم دعم البحث بمنح بحثية من KU Leuven (C14/20/095) ومؤسسة الأبحاث - فلاندرز (FWO G0A7722N). يتم دعم M. Algoet من قبل مؤسسة الأبحاث - منحة زمالة فلاندرز (FWO 11A2423N).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
المواد
| الاسم | الشركة | رقم فهرسي | التعليقات |
|---|---|---|---|
| 2-0 خياطة حريرية | منتجات شاربوينت | DC-2515N | |
| 5-0 خياطة البولي بروبلين | Ethicon | 8710H | |
| 7-0 خياطة البولي بروبلين | Ethicon | 8206H | |
| جهاز نفخ بالون ACCLARENT | Johnson& amp جونسون ميدتك | BID30 | |
| أسيبرومازين | كيلا | ||
| فيتامين بي فيالون 18 جم | دينار | بحريني 381347 | |
| BD فيالون 20 جم | دينار | بحريني 381334 | |
| بيتادين سوليول | بوردو فارما | 25655-41-8 | |
| بوبرينورفين (بوبرينكس عن طريق الحقن) | ريكيت بينكيسر للرعاية الصحية | NDC 12496-0757-1 | |
| الكارب زوم ستايل Knijplood 2.1 جم (أوزان الصيد الرصاصية) | Visdeal.nl | ||
| دومون # 3 ملقط | أدوات العلوم الدقيقة | 11231-30 | |
| دومون # 5 ملقط | أدوات العلوم | الدقيقة 11251-30 | |
| أدوات العلوم الدقيقة 14040-10 | |||
| جل فوسيدين | ليو فارما | ||
| إيزوفلوران | أبوت | NDC 5260-04-05 | |
| KD الماوس / الجرذ العين منظار | العالم أدوات الدقة | 501897 | |
| KD الماوس / الجرذ العين منظار | العالم أدوات الدقة | 501897 | |
| الكيتامين | Dechra | ||
| مصدر الضوء | Zeiss | KL 1500 LCD | |
| نظام التصوير بالرنين المغناطيسي | Bruker BioSpin ، Ettlingen ، ألمانيا | BioSpec 70/30 | |
| NatriumChloride 0.9٪ | Baxter | ||
| مصباح حراري للأشعة تحت الحمراء | الليلية Zoo Med Laboratories، Inc. | RS-75 | |
| ParaVision البرمجيات | إصدار Bruker BioSpin | 6.0.1 | |
| أنابيب البولي إيثيلين PE-10 | SAI تقنيات التسريب | PE-10 | |
| أنابيب البولي إيثيلين PE-50 | تقنيات التسريب SAI | PE-50 | |
| IRI عن بعد (PMMA) جهاز | محلية الصنع | ||
| Indus | |||
| Segment v4.0 | Medviso ، segment.heiberg.se | R12067 | |
| تسلسل صدى التدرج الذاتي | Bruker BioSpin ، Ettlingen ، ألمانيا | IntraGate ، ParaVision 6.0.1 | |
| حامل إبرة ممدود رفيع | أدوات العلوم الدقيقة | 12005-15 | |
| Sure-Seal Mouse / Rat Induction Chamber | World Precision Instruments | EZ-178 | |
| موصلات الأنابيب ، بولي ، Y الشكل | Westlab | 072025-0001 | |
| قسطرة توسيع Ultraverse 035 PTA: 5 مم × 40 مم ، بالون RBP 17 ATM على قسطرة بطول 130 سم | Bard Peripheral Vascular، Inc. | 00801741092671 | |
| فيت (كريم مزيل الشعر) | Reckitt Benkiser للرعاية الصحية | ||
| ، MiniVent موديل 845 | Hugo Sachs | 73-0043 | |
| Vidisic | BAUSCH & لومب فارما | 685313 | |
| زيلازين | باير |
المراجع
- Bryda, E. C. The mighty mouse: The impact of rodents on advances in biomedical research. Mo Med. 110 (3), 207-211 (2013).
- Fishbein, M. C., et al. Early phase acute myocardial infarct size quantification: Validation of the triphenyl tetrazolium chloride tissue enzyme staining technique. Am Heart J. 101 (5), 593-600 (1981).
- Ibáñez, B., et al. Evolving therapies for myocardial ischemia/reperfusion injury. J Am Coll Cardiol. 65 (14), 1454-1471 (2015).
- Dąbrowska, A. M., et al. The immune response to surgery and infection. Cent Eur J Immunol. 39 (4), 532-537 (2014).
- Muthuramu, I., et al. Permanent ligation of the left anterior descending coronary artery in mice: a model of post-myocardial infarction remodelling and heart failure. J Vis Exp. (94), e52206(2014).
- Nickles, H. T., et al. Mechanical ventilation causes airway distension with proinflammatory sequelae in mice. Am J Physiol-Lung C. 307 (1), L27-L37 (2014).
- Reed, G. W., et al. Acute myocardial infarction. Lancet. 389 (10065), 197-210 (2017).
- Rittié, L. Method for picrosirius red-polarization detection of collagen fibers in tissue sections. Methods Mol Biol. 1627, 395-407 (2017).
- Schwarte, L. A., et al. Mechanical ventilation of mice. Basic Res Cardiol. 95 (6), 510-520 (2000).
- Vaneker, M., et al. Mechanical ventilation induces a Toll/Interleukin-1 receptor domain-containing adapter-inducing interferon β-dependent inflammatory response in healthy mice. Anesthesiology. 111, 836-843 (2009).
- Van Allen, N. R., et al. The role of volatile anesthetics in cardioprotection: A systematic review. Med Gas Res. 2, 22(2012).
- Kumar, D., et al. Distinct mouse coronary anatomy and myocardial infarction consequent to ligation. Coron Artery Dis. 16 (1), 41-44 (2005).
- Bayat, H., et al. Progressive heart failure after myocardial infarction in mice. Basic Res Cardiol. 97 (3), 206-213 (2002).
الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.
إعادة الطباعة والأذونات
