مقالة منهجية

تحضير عينات الشبكية للفحص المجهري الإلكتروني الحجمي

1.3K مشاهدات

⸱

DOI:

10.3791/66589

⸱

مايو 24, 2024

 ,  ,  , 
1State Key Laboratory of Ophthalmology, Optometry and Visual Science, Eye Hospital, Wenzhou Medical University, 2Laboratory of Retinal Physiology and Disease, School of Ophthalmology and Optometry, Wenzhou Medical University

* These authors contributed equally

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول الخطوات التفصيلية لإعداد عينات الشبكية للفحص المجهري الإلكتروني الحجمي ، مع التركيز على السمات الهيكلية لمحطات المستقبلات الضوئية لشبكية العين.

الملخص

ظهر المجهر الإلكتروني الحجمي (Volume EM) كأداة قوية لتصور الهيكل ثلاثي الأبعاد للخلايا والأنسجة بدقة على مستوى النانومتر. داخل شبكية العين ، تنشئ أنواع مختلفة من الخلايا العصبية روابط متشابكة في طبقات الضفيرة الداخلية والخارجية. في حين أن تقنيات EM التقليدية قد أسفرت عن رؤى قيمة حول عضيات الشبكية تحت الخلوية ، فإن قيودها تكمن في توفير بيانات صورة ثنائية الأبعاد ، والتي يمكن أن تعيق القياسات الدقيقة. على سبيل المثال ، يعد تحديد حجم ثلاثة تجمعات حويصلية متشابكة متميزة ، وهي ضرورية للانتقال المشبكي ، أمرا صعبا في 2D. يوفر Volume EM حلا من خلال توفير بيانات ثلاثية الأبعاد واسعة النطاق وعالية الدقة. تجدر الإشارة إلى أن تحضير العينة هو خطوة حاسمة في Volume EM ، مما يؤثر بشكل كبير على وضوح الصورة وتباينها. في هذا السياق ، نحدد بروتوكول تحضير العينة لإعادة بناء 3D لمحطات محورية المستقبلات الضوئية في شبكية العين. يتضمن هذا البروتوكول ثلاث خطوات رئيسية: تشريح شبكية العين وتثبيتها ، وعمليات تضمين العينة ، واختيار مجال الاهتمام.

المقدمة

شبكية العين مليئة بالمحاور العصبية المتشابكة والتشعبات التي تشكل نقاط الاشتباك العصبيبينهما 1. الفحص المجهري هو أداة لا غنى عنها لدراسة تشريح الشبكية لأنه يحتوي على هياكل دقيقة ومعقدة وصغيرة. على الرغم من أن المجهر الإلكتروني (EM) يوفر قوة لا مثيل لها للتحقيق في البنية التحتية للعضيات تحت الخلوية والتوطين الدقيق لبروتينات معينة على مستوى النانومتر2 ، إلا أنه ينتج صورا تقتصر على المستوى ثنائي الأبعاد (2D) ، مما يؤدي إلى فقدان محتمل للمعلومات الأساسية.

يدعم تطوير تقنيات المجهر الإلكتروني عالية الدقة (Volume EM) توفير معلومات هيكلية ثلاثية الأبعاد (ثلاثية الأبعاد) أكثر شمولا وأوسع نطاقا. تمت مراجعة بعض طرق 3D EM مؤخرا من قبل آخرين3،4،5. يسمح 3D EM بإعادة بناء الشكل العصبي وتفاصيل الاتصال ، مما يتيح التحليل الكمي الدقيق للهياكل ذات الأهمية. يوضح هذا أن البيانات التي تم الحصول عليها بواسطة الحجم EM أكثر منهجية واكتمالا ودقة.

المستقبلات الضوئية للشبكية ، التي تشكل الخلايا العصبية الأولية في الإشارات البصرية6،7 ، تنشئ نقاط الاشتباك العصبي مع تشعبات الخلايا ثنائية القطب والأفقية من الدرجة الثانية في طرف المستقبلات الضوئية لتسهيل الإشارات المثيرة8،9. تشمل هذه المحطات ، التي يشار إليها باسم العنق المخروطية وكرات القضيب ، ثلاثة مكونات حاسمة: الميتوكوندريا ، والأشرطة المشبكية ، والحويصلات المتشابكة. في حين أن الدراسات السابقة ركزت في الغالب على الهيكل العام لمشابك الشريط ، كان هناك غياب ملحوظ للتحقيق في البنية الدقيقة للمكونات الرئيسية ، بما في ذلك الميتوكوندريا والشريط وبرك الحويصلات وتنظيمها المكاني في المحطات10،11،12،13. يعد التحليل الدقيق والمنهجي لكل مكون ، جنبا إلى جنب مع فهم ارتباطها داخل محطات المستقبلات الضوئية ، أمرا حيويا لكشف التنظيم المكاني واستيعاب وظائف المعالجة المرئية بشكل شامل. في المستقبلات الضوئية ، توجد الميتوكوندريا بشكل أساسي في الجزء الداخلي وجسم الخلية والمحطة. ركزنا هنا على الميتوكوندريا في المستقبلات الضوئية الطرفية. الفحص المجهري الإلكتروني لمسح الحزمة الأيونية المركزة (FIB-SEM) ، وهو نوع من الحجم EM يتميز بدقة عالية (دقة x و y و z < 5 نانومتر) وتدفق حجم كبير نسبيا4،14 ، بمثابة أداة قوية لتصور الهيكل ثلاثي الأبعاد لمحطات المستقبلات الضوئية بدقة.

كل من FIB-SEM والمجهر الإلكتروني لمسح الوجه التسلسلي (SBF-SEM) هما حجم EM يعتمد على SEM للحصول على صورة الأنسجة عن طريق مسح سطح العينة. يتم الكشف عن ميزات البنية التحتية لسطح العينة من خلال التباين الناتج عن شدة الإلكترونات الثانوية أو المتناثرة (BSE) عندما تقوم حزمة الإلكترون بمسح العينة15. بشكل أساسي ، يسمح الكشف عن مرض جنون البقر أو الإلكترونات الثانوية من سطح المقطع العرضي لعينة الأنسجة المضمنة في الراتنج في SEM بالحصول على صور للعينة المدمجة16،17. عندما يكون مرض جنون البقر أو الإلكترونات الثانوية أقل إنتاجا ، لا يمكن الحصول إلا على معلومات على سطح العينة. يتطلب تحقيق تباين متسق وصور تسلسلية عالية الجودة ترسب كاف للمعادن الثقيلة في العينة. لذلك ، تعد بروتوكولات إعداد العينات المحددة ضرورية للتجزئة اللاحقة ، وإعادة البناء ثلاثية الأبعاد ، والتحليل عند استخدام SEM للتصوير التسلسلي. طريقة الأوزميوم - ثيوكاربوهيدرازيد - أوزميوم (OTO) هي مخطط نموذجي لإعداد العينة للفحص المجهري الإلكتروني ثلاثي الأبعاد للعينات البيولوجية ، مع الحفاظ على بنية الأغشية المحتوية على الدهون والحفاظ على تباين جيد18،19.

هنا ، قمنا بتطوير طريقة OTO لإعداد عينات الشبكية لاستخدام Volume EM. تركز هذه العملية بشكل خاص على تشريح شبكية العين ، وتحديد وقت التثبيت الأمثل لأنسجة الشبكية ، وتفصيل الإجراءات والاحتياطات المحددة في إعداد العينة ثلاثية الأبعاد. بالإضافة إلى ذلك ، يعد التجزئة وإعادة البناء ثلاثية الأبعاد للهيكل المستهدف خطوات أساسية في هذا التطبيق الموسع. تتطلب شبكية العين ، كونها هيكلا صغيرا وصعبا للحصول على المواد منه ، عمليات سريعة ودقيقة ل EM ، مع أوقات ثابتة وكواشف جديدة معدة للاستخدام الفوري.

البروتوكول

تمت الموافقة على بروتوكولات رعاية واستخدامه من قبل لجنة الأخلاقيات بجامعة ونتشو الطبية واتبعت الإرشادات التي وضعتها جمعية أبحاث الرؤية وطب العيون (ARVO). تم الحفاظ على جميع الفئران في دورة إضاءة مدتها 12 ساعة و 12 ساعة وزودت بنظام غذائي قياسي.

1. تشريح الشبكية وتثبيتها

  1. تخدير الفئران (C57BL / 6J ، ذكر ، 8 أسابيع ، 20-25 جم) عن طريق حقن 2،2،2-ثلاثي البروم إيثانول (0.25 مجم / غرام من وزن الجسم) داخل الصفاق. تأكد من عمق التخدير عن طريق عدم تراجع المخلب الخلفي بعد الضغط على إصبع القدم أو عدم وجود رد فعل وامض. ثم خلع فقرة عنق الرحم بينما لا تزال تحت التخدير للقتل الرحيم للحيوان.
    ملاحظة: تم اختيار ثلاثي بروموإيثانول لفعاليته الموثقة جيدا في إحداث تخدير سريع وموثوق به في نماذج الصغيرة ، خاصة بالنسبة للإجراءات قصيرة المدى. في حين أن التخدير الصيدلاني مفضل ، فإن ثلاثي بروموإيثانول يوفر مزايا محددة في بروتوكولات معينة ، مما يجعله بديلا مناسبا عند تحضيره وإدارته بشكل صحيح. تم اتخاذ جميع الاحتياطات لضمان استخدامه الآمن والفعال. تلتزم هذه الدراسة بالاعتبارات الأخلاقية من خلال ضمان الإعداد والإدارة والمراقبة المناسبة للتخفيف من المخاطر المحتملة المرتبطة باستخدامها.
  2. قم بإزالة العينين بمقص منحني واغمر العينين في محلول مختلط يحتوي على 2٪ جلوتارالديهايد و 2٪ بارافورمالدهيد في مخزن الفوسفات (PB ، 0.1 م ، درجة الحموضة 7.4).
  3. قم بإزالة الجزء الأمامي والجسم الزجاجي من العينين باستخدام ملقط تحت مجهر التشريح.
  4. قشر الصلبة بالملقطين حتى يتم عزل الشبكية تماما عن كوب العين.
  5. قم بتقطيع شبكية العين بسرعة إلى شرائح بسمك 100 - 200 ميكرومتر باستخدام ماكينة حلاقة وتعامل مع شرائط شبكية العين بماصة باستور في أنبوب جديد للطرد المركزي الدقيق (EP) يحتوي على 2٪ جلوتارالديهايد و 2٪ بارافورمالدهيد في عازلة الفوسفات (PB ، 0.1 M ، درجة الحموضة 7.4) لمدة ساعتين في درجة حرارة الغرفة (RT) على المدور. بعد الانتهاء ، ضع الأنابيب لتثبيتها عند 4 درجات مئوية لمدة 24 ساعة.

2. عملية تضمين العينة

  1. بعد الغسيل في 0.1 M cacodylate buffer (الرقم الهيدروجيني 7.4) 5 مرات لمدة 15 دقيقة لكل منها ، احتضان شرائط شبكية العين بمحلول يحتوي على 1.5٪ فيروسيانيد البوتاسيوم و 1٪ OsO4 (في PB ، الرقم الهيدروجيني 7.4) في 0.1 M cacodylate الصوديوم مع 4 ملي CaCl2 لمدة 1.5 ساعة في الظلام على الجليد.
    ملاحظة: يمكن أن تمنع الحضانة المظلمة ونقص الفوسفات هطول الأمطار والتحف في العينة.
  2. اغسل شرائط شبكية العين 3 مرات في ddH2O لمدة 10 دقائق لكل منها ، ثم عالجها بنسبة 1٪ ثيوكاربوهيدرازيد في ddH2O لمدة 30 دقيقة في الظلام في RT.
  3. بعد الشطف في ddH2O 3 مرات لمدة 15 دقيقة لكل منها ، قم باحتضان شرائط شبكية العين في 2٪ OsO4 (في PB ، PH 7.4) لمدة 45 دقيقة في الظلام في RT.
  4. بعد الغسيل في ddH2O 3 مرات لمدة 15 دقيقة لكل منهما ، اغمر شرائح شبكية العين في أسيتات اليورانيل المائية بنسبة 1٪ في الظلام عند 4 درجات مئوية طوال الليل.
  5. في اليوم التالي ، بعد الغسيل في ddH2O 3 مرات لمدة 15 دقيقة لكل منها ، عالج شرائط شبكية العين بنسبة 0.66٪ نترات الرصاص في حمض الأسبارتيك (0.03 م ، درجة الحموضة 5.5) لمدة 40 دقيقة عند 65 درجة مئوية.
  6. بعد الغسيل في ddH2O 3 مرات لمدة 15 دقيقة لكل منها ، قم بتجفيف شرائط شبكية العين بتركيز الإيثانول الصاعد بنسبة 30٪ و 50٪ و 70٪ و 90٪ و 100٪ لمدة 20 دقيقة في كل محلول.
  7. عالج شرائح شبكية العين بمحلول مختلط يحتوي على الإيثانول والأسيتون المتساوي لمدة 20 دقيقة ، متبوعا بغسل الأسيتون مرتين لمدة 20 دقيقة لكل منهما.
  8. تسلل إلى شرائط شبكية العين في الأسيتون / الراتنج الممزوج بنسبة 7: 3 في الظلام في RT بين عشية وضحاها ثم الأسيتون / الراتنج عند 3: 7 في الظلام لمدة 24 ساعة في RT.
    ملاحظة: التركيب الدقيق للراتنج هو كما يلي: Epon812 10.06 مل ، DDSA 4 مل ، MNA 5.94 مل ، و DMP-30 0.2 مل.
  9. قم بتغيير الأنابيب في اليوم التالي وتسلل إلى شرائط شبكية العين براتنج نقي لمدة 24 ساعة عند 45 درجة مئوية. قم بتغيير الراتنج مرة أخرى في اليوم التالي ، وقم بتضمين شرائط شبكية العين لمدة 48 ساعة عند 60 درجة مئوية.
    ملاحظة: الغرض من زيادة درجة الحرارة هو تحسين الاختراق.

3. اختيار مجال الاهتمام

  1. قم بتقطيع كتل الراتنج إلى أقسام بسمك 1 ميكرومتر ، وأقسام تلطيخ ب 1٪ تولويدين أزرق ، وراقب الهيكل العام لشبكية العين تحت المجهر الضوئي لتحديد المناطق الخشنة ذات الأهمية.
  2. قم بتغطية كتل الراتنج بالبلاتين باستخدام طلاء الرش ، متبوعا بالطحن بقسم بسمك 70 نانومتر باستخدام مجهر إلكتروني ماسح شعاع أيوني مركز تحت تيار 0.23 نانوأمبير وجهد تسارع يبلغ 30 كيلو فولت.
  3. قم بفحص القسم مسبقا باستخدام FIB-SEM بتكبير 2000x لتحديد مناطق الاهتمام الدقيقة.
  4. اجمع البيانات باستخدام FIB-SEM بتيار شعاع 0.69 نانوأمبير وجهد تسارع 2 كيلو فولت. المعلمات الأخرى هي كما يلي: وقت السكون = 2 ميكرو ثانية ، حجم فوكسل = 1.8 نانومتر × 1.8 نانومتر × 15 نانومتر.

النتائج

يوضح الشكل 1 أ صورة محطات المستقبلات الضوئية للشبكية المحضرة باستخدام طريقة التثبيت المزدوج الكيميائي التقليدية ، ويوضح الشكل 1 ب صورة محطات المستقبلات الضوئية للشبكية المحضرة باستخدام طريقة OTO. تم أخذ عينات من كلاهما بواسطة FIB-SEM. يمكن ملاحظة أنه يمكن الاحتفاظ ببنية غشاء الخلية قدر الإمكان باستخدام طريقة OTO ، وحتى الخطوط العريضة للحويصلات يمكن رؤيتها بوضوح. بالإضافة إلى ذلك ، فإن تباين الصور التي تم الحصول عليها باستخدام طريقة OTO أكثر وضوحا أيضا.

يوضح الشكل 2 سير العمل التجريبي المستخدم لإعادة بناء خصائص البنية التحتية لمحطات المستقبلات الضوئية. ركزت إعادة الإعمار على أربعة أنواع من أطراف المستقبلات الضوئية ، بما في ذلك عنيق M-cone ، والعنيق S-cone ، وكرات rod1 ، وكرات rod2. كان التركيز الرئيسي على المكونات الأساسية ، مثل الميتوكوندريا ، والشرائط المشبكية ، وبرك الحويصلة المشبكية داخل أطراف المستقبلات الضوئية.

يعرض الشكل 3 الميتوكوندريا المعاد بناؤها والأشرطة المشبكية في أطراف المستقبلات الضوئية للقضيب. والجدير بالذكر أن الأشرطة المشبكية لكروات rod2 تظهر شكل حدوة حصان مميز ، وعادة ما يتميز بشريط واحد لكل كروة. علاوة على ذلك ، يسلط الشكل 2 الضوء على وجود اثنين من الميتوكوندريا في كرات القضيب ، مع وضع ثابت داخل المساحة المركزية للأطراف ، الموجودة فوق الأشرطة المتشابكة. تم تتبع جميع الهياكل يدويا ، صفحة تلو الأخرى.

figure-results-1
الشكل 1: أمثلة على الصور التي تم أخذ عينات منها باستخدام FIB-SEM لطريقة التثبيت المزدوج الكيميائي التقليدية وطريقة OTO. (أ) طريقة التثبيت المزدوج الكيميائي التقليدية. (ب) طريقة OTO. شريط المقياس: 1000 نانومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-2
الشكل 2: سير عمل إعادة بناء ثلاثي الأبعاد لمطاريف المستقبلات الضوئية باستخدام FIB-SEM. بعد المحاذاة باستخدام برنامج تصور البيانات ثلاثية الأبعاد ، تم تقسيم الصور التسلسلية يدويا وعرضها لمزيد من التحليل. (أ) الصور التسلسلية الأصلية. (ب) الصور المحاذاة. (ج) الصور المجزأة. (د) الصور المعاد بناؤها. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

figure-results-3
الشكل 3: إعادة بناء 3D. تصور صور إعادة البناء ثلاثية الأبعاد التمثيلية محطات مستقبلات ضوئية باللون الأبيض ، والميتوكوندريا باللون البرتقالي ، وشرائط متشابكة باللون الأزرق. شريط المقياس: 500 نانومتر. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

المناقشة

قمنا بتنفيذ بروتوكول تحضير عينة حجم EM الخاص ب OTO لتحليل البنية الطرفية للمستقبلات الضوئية في أنسجة الشبكية. كان التركيز على تفصيل الإجراء بأكمله ، بدءا من انفصال شبكية العين وتثبيتها إلى عرض نتائج إعادة بناء ثلاثية الأبعاد لمحطات المحور العصبي المستقبلة للضوء.

تكمن السمة المميزة لأنسجة الشبكية ، على عكس أنسجة المخ ، في افتقارها إلى الاختلافات الإقليمية. تتكون شبكية العين من ثلاث طبقات من أجسام الخلايا العصبية وطبقتين من الوصلات المشبكية ، وتظهر بنية منتظمة وهرمية على الرغم من تعقيد مكوناتها العصبية والمشبكية20. عند تشريح شبكية العين ، يصبح من الضروري التأكد من تقليل الشرائط الرفيعة لضمان تباين موحد في مراحل تحضير العينة اللاحقة. تقع المحطات المحورية المستقبلة للضوء ، وهي الهياكل الحرجة ذات الأهمية ، في الطبقة الخارجية (OPL) لشبكية العين. تسمح الطبيعة الهرمية والمنظمة لشبكية العين بالتوطين الفعال للهياكل المستهدفة ، مما يسهل أخذ العينات الدقيقة أثناء EM وضمان دقة نتائج إعادة البناء ثلاثية الأبعاد اللاحقة.

يسهل Volume EM التصور ثلاثي الأبعاد للدوائر العصبية المحلية والوصلات المشبكية داخل شبكية العين على المقياس النانوي ، باستخدام الأقسام التسلسلية21،22. تتيح هذه التقنية التوليد التلقائي للصور ثلاثية الأبعاد عالية الدقة ، ويتمتع FIB-SEM بالقدرة على الكشف عن تفاصيل معقدة لكل من الأنشطة الفسيولوجية والمرضية. لذلك ، يعد الحفاظ على تباين ثابت للصورة في جميع أنحاء الكتلة بأكملها أمرا بالغ الأهمية أثناء عملية تحضير العينة. لتحقيق الموصلية الموحدة ، نستخدم طريقة OTO للتضمين المسبق ، وهو نهج كلاسيكي معترف به على نطاق واسع لفعاليته في تعزيز التباين في الفحص المجهري الإلكتروني الماسح (SEM) 18،23،24. تتضمن هذه الطريقة طلاء أوزميوم مزدوج جنبا إلى جنب مع ثيوكاربوهيدرازيد ، مما يضمن الموصلية السائبة المثلى للعينات الكبيرة. بالإضافة إلى ذلك ، تساهم معالجة الأوزميوم المزدوج في الحفاظ الفائق على هياكل الأغشية الدهنية ، مما يضيف طبقة من الدقة إلى تحقيقاتنا. عينات الشبكية هرمية ، وكتل الأنسجة صغيرة وسهلة الاختراق ، ويمكن لطريقة OTO الحفاظ على محيط غشاء الخلية بشكل أفضل وتباين موحد للصورة.

تساهم العديد من العوامل الحاسمة في نجاح هذا البروتوكول. أولا ، يعد الحصاد السريع للشبكية وأوقات التثبيت الدقيقة أمرا بالغ الأهمية للحفاظ على البنية المثلى تحت الخلوية. ثانيا ، يعد ضمان التركيزات المناسبة من الأوزميوم والثيوكاربوهيدرازيد أمرا ضروريا للحفاظ على التباين في بنية الغشاء لصور السلسلة. يلعب الأوزميوم ، على وجه الخصوص ، دورا مهما من خلال الارتباط بجزيئات الدهون ، مما يعزز إشارة مرض جنون البقر.

بروتوكول تحضير عينة الشبكية الخاص بنا سهل الاستخدام ، ولا يتطلب أي معدات إضافية ، ويقلل من وقت المعالجة. تسلط هذه الخاصية الضوء على قابليتها للتطبيق المحتمل على تقنيات Volume EM الأخرى ، مما يشير إلى تعدد الاستخدامات وسهولة التبني في الإعدادات التجريبية المتنوعة. تعمل طريقة OTO على تحسين تباين صور FIB-SEM بشكل ملحوظ. ومع ذلك ، قد تظل التفاصيل حول غشاء الخلية ، وخاصة بنية الطبقة الثنائية ، غير واضحة إلى حد ما. يتضمن مخطط إعداد العينات الحالي لدينا بعض التضحية بالتفاصيل الصغيرة في بنية الخلية إلى حد ما. نهدف إلى تطوير طرق محسنة في المستقبل لمعالجة هذا القيد وتحسينه.

الإفصاحات

لم يكشف المؤلفان عن أي إفصاح.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل جزئيا من خلال المنح المقدمة من البرنامج الوطني للبحث والتطوير الرئيسي في الصين (2022YFA1105503) ، والمختبر الرئيسي للدولة لعلم الأعصاب (SKLN-202103) ، ومؤسسة تشجيانغ للعلوم الطبيعية في الصين (Y21H120019).

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
2،2،2-TribromoethanolSigma-AldrichT48402
علم المجهر الإلكترونيالأسيتون10000
Amira 6.8Thermo Fisher Scientific
CaCl2< / sub>SigmaC-2661
تضمين القالبBeijing Zhongjingkeyi TechnologyGP10590
Epon علم المجهر الإلكتروني الراتنج14900
الإيثانولسيجما64-17-5
علم المجهرالإلكتروني الجلوتارالديهايد16020
Helios NanoLab 600i ثنائي الشعاع SEMFEI
حمض الأسبارتيك L-AsparticSigma56-84-8
نترات الرصاصSigma10099-74-8
Na2HPO4.12H2OSigma71650مكون من مخزن الفوسفات
NaH2PO4. H2< / sub>OSigma71507مكون من عازلة الفوسفات
OsO4< / sub>TED PELLA4008-160501
علم المجهر الإلكترونيبارافورمالدهايد157-8
فيروسيانيد البوتاسيومسيجما14459-95-1
كاكوديلات الصوديومسيجما6131-99-3
مغطي الرشLeicaACE200
ThiocarbohydrazideSigma2231-57-4
أسيتات اليورانيلتيدبيلا CA96049

المراجع

  1. Masland, R. H. The fundamental plan of the retina. Nat Neurosci. 4 (9), 877-886 (2001).
  2. Harris, J. R. Transmission electron microscopy in molecular structural biology: A historical survey. Arch Biochem Biophys. 581, 3-18 (2015).
  3. Varsano, N., Wolf, S. G. Electron microscopy of cellular ultrastructure in three dimensions. Curr Opin Struct Biol. 76, 102444(2022).
  4. Briggman, K. L., Bock, D. D. Volume electron microscopy for neuronal circuit reconstruction. Curr Opin Neurobiol. 22 (1), 154-161 (2012).
  5. Titze, B., Genoud, C. Volume scanning electron microscopy for imaging biological ultrastructure. Biol Cell. 108 (11), 307-323 (2016).
  6. Sterling, P., Matthews, G. Structure and function of ribbon synapses. Trends Neurosci. 28 (1), 20-29 (2005).
  7. Heidelberger, R., Thoreson, W. B., Witkovsky, P. Synaptic transmission at retinal ribbon synapses. Prog Retin Eye Res. 24 (6), 682-720 (2005).
  8. Thoreson, W. B. Transmission at rod and cone ribbon synapses in the retina. Pflugers Arch. 473 (9), 1469-1491 (2021).
  9. Moser, T., Grabner, C. P., Schmitz, F. Sensory processing at ribbon synapses in the retina and the cochlea. Physiol Rev. 100 (1), 103-144 (2020).
  10. Schmitz, F. The making of synaptic ribbons: how they are built and what they do. Neuroscientist. 15 (6), 611-624 (2009).
  11. Kantardzhieva, A., Peppi, M., Lane, W. S., Sewell, W. F. Protein composition of immunoprecipitated synaptic ribbons. J Prot Res. 11 (2), 1163-1174 (2011).
  12. Zampighi, G. A., et al. Conical tomography of a ribbon synapse: structural evidence for vesicle fusion. PLoS One. 6 (3), e16944(2011).
  13. Barnes, S., et al. Morphological diversity of the rod spherule: A study of serially reconstructed electron micrographs. Plos One. 11 (3), e0150024(2016).
  14. Xu, C. S., et al. Enhanced FIB-SEM systems for large-volume 3D imaging. Elife. 6, e25916(2017).
  15. Crewe, A. V., Lin, P. S. The use of backscattered electrons for imaging purposes in a scanning electron microscope. Ultramicroscopy. 1 (3), 231-238 (1976).
  16. Richards, R. G., Gwynn, I. A. Backscattered electron imaging of the undersurface of resin-embedded cells by field-emission scanning electron microscopy. J Microsc. 177, Pt 1 43-52 (1995).
  17. Wergin, W. P., et al. Imaging thin and thick sections of biological tissue with the secondary electron detector in a field-emission scanning electron microscope. Scanning. 19 (6), 386-395 (1997).
  18. Willingham, M. C., Rutherford, A. V. The use of osmium-thiocarbohydrazide-osmium (OTO) and ferrocyanide-reduced osmium methods to enhance membrane contrast and preservation in cultured cells. J Histochem Cytochem. 32 (4), 455-460 (1984).
  19. Buravkov, S. V., Chernikov, V. P., Buravkova, L. B. Simple method of specimen preparation for scanning electron microscopy. Bull Exp Biol Med. 151 (3), 378-382 (2011).
  20. Masland, R. H. Neuronal diversity in the retina. Curr Opin Neurobiol. 11 (4), 431-436 (2001).
  21. Svara, F. N., Kornfeld, J., Denk, W., Bollmann, J. H. Volume EM reconstruction of spinal cord reveals wiring specificity in speed-related motor circuits. Cell Rep. 23 (10), 2942-2954 (2018).
  22. Kubota, Y., Sohn, J., Kawaguchi, Y. Large volume electron microscopy and neural microcircuit analysis. Front Neural Circuits. 12, 98(2018).
  23. Guo, J., et al. An optimized approach using cryofixation for high-resolution 3D analysis by FIB-SEM. J Struct Biol. 212 (1), 107600(2020).
  24. Seligman, A. M., Wasserkrug, H. L., Hanker, J. S. A new staining method (OTO) for enhancing contrast of lipid-containing membranes and droplets in osmium tetroxide-fixed tissue with osmiophilic thiocarbohydrazide (TCH). J Cell Biol. 30 (2), 424-432 (1966).

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

مقالات ذات صلة