مقالة منهجية

الحفاظ على النماذج الحيوية للخنازير لدراسة التشريح البشري المقارن

DOI:

10.3791/66646

⸱

مايو 30, 2025

 ,  ,  ,  , 
1Departamento de Ciencias Básicas Médicas, Facultad de Ciencias de la Salud, Universidad Icesi, 2Departamento de Salud Pública y Medicina Comunitaria, Facultad de Ciencias de la Salud, Universidad Icesi, 3Translational Research Laboratory in Critical Care Medicine (TransLab-CCM), Universidad Icesi

في هذه المقالة

ملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تقدم هذه المقالة بروتوكولا للحفاظ على النماذج الحيوية للخنازير. تتضمن الطريقة المقترحة استخدام محلول تشيلي معدل بتركيز فورمالين منخفض. تتكون عملية الحفظ من إدارة المحلول من خلال ملء العينة وغمرها ، متبوعا بإزالة الشكل وتليين الأنسجة باستخدام الجلسرين.

الملخص

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يواجه تدريس علم التشريح البشري في التعليم الطبي تحديات ، مما يستلزم بدائل فعالة للطلاب لاستكشاف التعقيد التشريحي عمليا. تقدم النماذج الحيوية للخنازير ، مع أوجه التشابه التشريحية مع البشر ، حلا واعدا. تقدم هذه المقالة بروتوكولا مفصلا للحفاظ على النماذج الحيوية للخنازير ، مما يعالج الحاجة إلى طرق يمكن الوصول إليها وفعالة في دراسات التشريح المقارنة. يقترح هذا البروتوكول استخدام حل تشيلي معدل للحفاظ على النموذج الحيوي ، باستخدام تقنيات التشكيل الرسمي من خلال الملء والغمر. بعد ذلك ، يتم تحقيق إزالة الشكل باستخدام المحلول التشيلي المعدل بدون الفورمالديهايد ، متبوعا بعملية تليين الجلسرين. نظرا لندرة الأدبيات حول تقنيات الحفظ وعدم وجود إجراء أو اختبار موحد لتقييم الحفاظ على الأنسجة ، نقترح تقييم جودة الأنسجة بناء على مقاييس المقاومة والمرونة. تشير النتائج التي توصلنا إليها إلى مستوى عال نوعيا من الحفاظ على الأنسجة في عيناتنا. علاوة على ذلك ، يتم استخدام هذه النماذج الحيوية حاليا بنجاح لدراسات التشكل وفي تدريس علم التشريح البشري المقارن لطلاب الطب.

المقدمة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

غالبا ما يواجه تدريس علم التشريح في كليات الطب عقبات ، مثل صعوبات الوصول إلى الأجسام البشرية للتشريح ونقص المرافق المناسبة. تؤكد هذه القيود على الحاجة إلى بدائل فعالة تمكن الطلاب من استكشاف التعقيد التشريحي عمليا وواقعيا. في هذا السياق ، برزت النماذج الحيوية للخنازير كبديل واعد نظرا لأوجه التشابه التشريحية مع البشر ، مما يوفر وسيلة سهلة الوصول وفعالة لتعلم وتعليم علمالتشريح 1.

تهدف تقنيات الحفظ التشريحي إلى الحفاظ على سلامة الأنسجة البيولوجية مع تقليل الضرر. تم استخدام هذه التقنيات للأغراض التعليمية والأكاديمية والبحثية في دراسة كل من علم التشريح البشري والبيطري. تم اختبار العديد من المواد للحفاظ على الأجسام والأعضاء والأنسجة في حالتها الطبيعية لأطول فترة ممكنة2. ومع ذلك ، فإن الحفاظ على العينات التشريحية والحفاظ عليها لا يزال يمثل تحديا ، خاصة بالنسبة لتلك المخصصة للدراسات المورفولوجية ، حيث يلزم الحفاظ على الأنسجة بشكل عال3.

على الرغم من أن الحلول المستخدمة تقليديا متاحة على نطاق واسع ، إلا أن القيود في الممارسة اليومية واضحة. الفورمالين ، أحد أكثر المواد المستخدمة شيوعا ، له العديد من العيوب الموثقة للحفاظ على الأنسجة. وتشمل هذه رائحته المهيجة ، وسميته العالية ، والمخاطر المرتبطة بالسرطان والطفرات للمعالجين ، والتغيرات الحسية التي يسببها في الأنسجة ، مثل التصلب وتغير اللون. يمكن أن تغير هذه التغييرات إدراك الخصائص الفسيولوجية للأنسجة عند دراستها بعد التثبيت ، مما قد يعيق الدراسات المورفولوجية الدقيقةوالدقيقة 4. أظهرت الدراسات أن التثبيت بتركيزات عالية من الفورمالين يؤدي إلى درجة أكبر من تصلب الأنسجة5. أظهرت البدائل ، مثل تقنية التحنيط Thiel ، نتائج واعدة مع الحفاظ على اللون الأصلي بشكل أفضل ومرونة الأنسجة6. ومع ذلك ، فإن هذه التقنية أكثر تكلفة مقارنة بالحلول الأخرى7. تقدم هذه التحديات فرصة لتصميم واختبار تقنيات حفظ جديدة وبأسعار معقولة لا تزال تمكن من تدريس علم التشريح عالي الجودة.

الهدف من هذا البروتوكول هو وصف المنهجية المستخدمة في مختبر التشريح التابع لجامعة إيسيسي في كالي ، كولومبيا ، للحفاظ على النماذج الحيوية للخنازير المستخدمة كأدوات تعليمية للدراسة المقارنة للتشريح البشري.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تم تطوير التقنية الموصوفة بما يتوافق تماما مع المبادئ التوجيهية للجنة الأخلاقيات المؤسسية لرعاية واستخدام في التجارب (CIECUAE) التابعة لجامعة Icesi ، وفقا للقانون 84 لعام 1989 وقرار رئيس الجامعة رقم 847 (9 يوليو 2012). هذا يضمن كلا من النزاهة العلمية ورفاهية المستخدمة ، مما يقلل من معاناتها. تم استخدام ذكور خنازير Landrace ، التي يبلغ عمرها 3 أشهر وتزن 15-20 كجم ، في هذه الدراسة. الكواشف والمعدات المطلوبة مدرجة في جدول المواد.

1. النموذج الحيوي للخنازير

  1. تضحية
    1. قم بإجراء تقييم بيطري عام وقم بالحجر الصحي لعينة الخنازير المختارة لمدة 24 ساعة. إذا لم تظهر على أي أعراض خلال هذه الفترة ، فاستمر في القتل الرحيم.
  2. تخدير
    1. يتم تطبيق التخدير العضلي باستخدام الكيتامين + الزيلازين + الأتروبين بجرعات 10 ملغم / كجم و 0.5 مجم / كجم و 0.04 مجم / كجم على التوالي (باتباع البروتوكولات المعتمدة مؤسسيا).
      ملاحظة: تأكد من التخدير العميق. تقييم عمق التخدير من خلال الفحص البدني. يشار إلى التخدير العميق من خلال اتساع التلميذ ومركزه ، وغياب المنعكس الجني ، وانخفاض منعكس القرنية ، وانخفاض معدل التنفس ومعدل ضربات القلب وضغط الدم.
  3. القتل الرحيم
    1. يجب تطبيق 5 مل من بنتوباربيتال الصوديوم / ثنائي فينيل هيدانتوين (390/50 مجم / مل) عن طريق الوريد. بعد إعطاء عامل القتل الرحيم ، قم بتسمع المعلمات الفسيولوجية للحيوان لأنواع Suis Scrofa : HR ، 60-90 ؛ FR ، 8-18 ؛ و T ° 37-39 °C8.
    2. راقب معدل ضربات القلب حتى ينخفض تدريجيا ويتوقف تماما. لاحظ التغيرات الفورية مثل استرخاء العضلة العاصرة ، والأغشية الزرقاء ، وغياب الاستجابة لمحفزات الجسم. ضع في اعتبارك إكمال القتل الرحيم بعد 5 دقائق من التسمع القلبي دون اكتشاف نبضات القلب.
  4. التخزين والنقل
    1. انقل النموذج الحيوي للخنازير من غرفة العمليات إلى مختبر التشريح في غضون نصف ساعة من القتل الرحيم لمنع التحلل والتكاثر الميكروبي ، وبالتالي تحسين الحفاظ على النموذج الحيوي.

2. محلول حافظة يعتمد على المحلول التشيلي

  1. تحضير الحل التشيلي المعدل
    1. استخدم محلولا تشيليا معدلا يحتوي على الإيثانول والجلسرين والفورمالديهايد وكلوريد البنزالكونيوم وجوهر القهوة العطري والماء المقطر. تأكد من أن المحلول يحتوي على درجة حموضة 7.0.
    2. تحضير المحلول الحافظ في خزان سعة 50 لترا. أولا ، أضف 10.6 لتر من الماء المقطر إلى الخزان. بعد ذلك ، أضف 7.6 لتر من 96٪ إيثانول ، و 5 لتر من الجلسرين ، و 0.5 لتر من 50٪ كلوريد البنزالكونيوم ، و 0.1 لتر من جوهر القهوة العطري.
      ملاحظة: يرجى الرجوع إلى الجدول 1 للاطلاع على التركيزات والأحجام المطلوبة لكل مكون اللازم لتحضير 25 لترا من المحلول التشيلي المعدل.

3. إعطاء محلول التحافظة التشيلي المعدل

ملاحظة: بمجرد تحضير المحلول الحافظ ، قم بإدارته من خلال الملء والغمر.

  1. الإعطاء عن طريق ملء محلول الحافظة التشيلي المعدل
    ملاحظة: استخدم ملابس السلامة الحيوية لهذا الإجراء: قناع نصف قابل لإعادة الاستخدام مع مرشحات A1P2 ، ونظارات واقية للسلامة الحيوية ، وثوب جراحي بأكمام طويلة يمكن التخلص منه ، وقبعة جراحية ، وطماق ، وقفازات النتريل.
    1. النهج الجراحي
      1. قم بعمل شق على طول الخط ألبا (باستخدام مقبض مشرط 4 ، الشفرة 22) من عملية الخنجري إلى منطقة العانة.
      2. تحديد الأنسجة الخلوية تحت الجلد والألياف العضلية للعضلة المستقيمة البطنية.
        ملاحظة: في لحظة الشق ، حدد الأنسجة الدهنية الضئيلة الملتصقة بالجلد ، والمعروفة باسم الأنسجة الخلوية تحت الجلد ، والألياف العضلية للعضلة المستقيمة البطانية الموجودة بشكل أعمق9.
      3. قطع بعناية للوصول إلى الصفاق ، مما يضمن فتحه على تجويف البطن دون إصابة الكبد والأمعاء ، والتي سيتم الكشف عنها على الفور.
      4. اسحب الحلقات المعوية إلى الجانب الأيمن من تجويف البطن. تحديد الصفاق الجداري الذي يغطي الكلية اليسرى والأوعية الكلوية. استخدم هذه الهياكل الوعائية لتحديد موقع الشريان الأورطي البطني.
      5. ابحث عن ظهور السنيقة الكلوية اليسرى. إزالة الصفاق الذي يغطي الشريان الأورطي 5 سم فوق الشريان الكلوي.
      6. عند تعريض عنيق الكلى الأيسر ، قم بتعبئة الحلقات المعوية وشق الصفاق الذي يغطي النقير. تشريح الأمامي الخلفي لتحديد الوريد الكلوي أولا ، وهو أكبر ويقع في الأمام.
      7. حدد موقع الشريان الكلوي للخلف ، باتباع مساره إلى أصله في الشريان الأورطي البطني. أخيرا ، حدد الحوض الكلوي ، وهو الهيكل الخلفي للنقير9.
      8. قم بتشريح الجزء الخلفي من الشريان الأورطي بعناية. استخدم 0/0 حرير لربط الشريان الأورطي بعقدة أعلى من مستوى الشريان الكلوي وعقدة أخرى 5 سم فوقها.
      9. قم بتثبيت الشريان الأورطي على الفور باستخدام مشابك كيلي على طرفي الجزء الأبهري المعزول.
      10. قم بشق جدار الأبهر بطرف مقص Metzembaum ، مع إجراء قطع بحوالي 0.3 سم في الجدار الأمامي للشريان الأورطي ، مع الحرص على عدم ثقبه.
      11. اربط الطرف البعيد أثناء إزالة مشبك كيلي لإدخال إبرة غير حادة على شكل حرف L مقاس 3.2 مم في التجويف الشرياني. قم بإزالة مشبك كيلي القريب وابدأ في نضح محلول الحفظ التشيلي المعدل.
    2. نضح الأبهر لمحلول الحفظ التشيلي المعدل
    3. استمر في نضح محلول الحفظ التشيلي المعدل.
      ملاحظة: قم بإدارة 0.25 لتر / كجم بضغط 10 أرطال باستخدام مضخة التروية.
    4. نهاية التروية
      1. بمجرد اكتمال نضح محلول الحفظ ، قم بإزالة قنية التروية وعقد موقع الإدخال بحرير 0/0 لمنع ارتجاع محلول الحفظ. أغلق البطن عن طريق خياطة الشق في الخط ألبا ب 0/0 حرير.
        ملاحظة: لتقييم ما إذا كان قد تم تحقيق التروية الكافية ، تحقق من المؤشرات الحادة للتشبع: تمديد الأطراف العلوية والسفلية ، وتعدد عنق الرحم والصدر ، والجريان السطحي للمحلول عبر الخياشيم. وقت التروية التقريبي هو 2 ساعة.
  2. الإدارة عن طريق الانغماس
    ملاحظة: استخدم ملابس السلامة الحيوية لهذا الإجراء: قناع نصف قابل لإعادة الاستخدام مع مرشحات A1P2 ، ونظارات واقية للسلامة الحيوية ، وثوب جراحي بأكمام طويلة يمكن التخلص منه ، وقبعة جراحية ، وطماق ، وقفازات النتريل.
    1. الإدارة عن طريق غمر محلول الحفظ التشيلي المعدل
      1. قم بتخزين عينة الخنازير في خزان سعة 300 لتر مملوء بنفس محلول الحماية الموضح في الخطوة 2.
        ملاحظة: تأكد من غمر النموذج الحيوي بالكامل باستخدام ما يقرب من 150 لترا من المحلول. بعد الغمر ، قم بتخزين النموذج الحيوي عند 20 درجة مئوية لمدة 6 أشهر. تشمل مؤشرات الحفظ الكافي عدم وجود علامات تحلل (على سبيل المثال ، وذمة الجسم ، والتورم ، والرائحة الكريهة ، والشحوم ، وتفتيت الأنسجة).

4. حل إزالة الشكل على أساس الحل التشيلي

  1. تحضير محلول إزالة الشكل
    1. استخدم محلولا تشيليا معدلا يحتوي على الإيثانول والجلسرين وكلوريد البنزالكونيوم وجوهر القهوة العطري والماء المقطر. تأكد من أن المحلول يحتوي على درجة حموضة 7.0.
  2. تحضير محلول إزالة الشكل في خزان سعة 50 لترا. أولا ، أضف 11.1 لترا من الماء المقطر ، ثم 7.8 لتر من الإيثانول بنسبة 96٪ ، و 5 لتر من الجلسرين ، و 1 لتر من كلوريد البنزالكونيوم بنسبة 50٪ ، و 0.1 لتر من جوهر القهوة العطري.
    ملاحظة: يرجى الرجوع إلى الجدول 2 للاطلاع على التركيزات والأحجام المطلوبة لكل مكون لازم لتحضير 25 لترا من المحلول التشيلي المعدل الخالي من الفورمالديهايد.

5. إزالة الشكل

ملاحظة: استخدم ملابس السلامة الحيوية لهذا الإجراء: قناع نصف قابل لإعادة الاستخدام مع مرشحات A1P2 ، ونظارات واقية للسلامة الحيوية ، وثوب جراحي بأكمام طويلة يمكن التخلص منه ، وقبعة جراحية ، وطماق ، وقفازات النتريل.

  1. الإعطاء عن طريق غمر محلول الحفظ التشيلي المعدل الخالي من الفورمالديهايد
    1. في نهاية فترة الحفظ بالغمر لمدة 6 أشهر ، انقل النموذج الحيوي إلى خزان سعة 300 لتر مملوء بمحلول حفظ تشيلي معدل خال من الفورمالديهايد. قم بتخزين النموذج الحيوي لمدة 4 أسابيع.
      ملاحظة: تأكد من غمر النموذج الحيوي بالكامل باستخدام ما يقرب من 150 لترا من المحلول.

6. تليين الجلسرين

  1. مباشرة بعد عملية إزالة الشكل ، اغمر النموذج الحيوي في المحاليل ذات تركيزات متزايدة من الجلسرين المخفف في الماء: 50٪ و 70٪ و 90٪ من الجلسرين. حافظ على النموذج الحيوي في كل تركيز لمدة أسبوع واحد.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

الهدف من هذا البروتوكول هو تقديم تقنية فعالة وقابلة للتطبيق تسمح بالحفاظ على النماذج الحيوية للخنازير لتدريس التشريح البشري المقارن. لا توجد حاليا طرق أو اختبارات موحدة لتقييم الحفاظ على النموذج. لذلك ، تم تقييم الحفظ الكلي للنموذج باستخدام مؤشرات امتلاء المحاليل وعلامات التحلل بعد اكتمال البروتوكول على العينات. علاوة على ذلك ، لتقييم جدوى النماذج الحيوية بشكل موضوعي للتدريس والبحث ، تم التخطيط لمقارنة خصائص الأنسجة للهياكل التشريحية المختارة ، مثل المقاومة والمرونة ، قبل وبعد الحفظ. كانت الهياكل التشريحية المختارة هي ال...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

تقليديا ، اعتمدت الدراسات التشريحية على الجثث البشرية. ومع ذلك ، أدت التحديات في الحصول على هذه العينات إلى استكشاف طرق بديلة. أثبتت النماذج الحيوية للخنازير أنها أدوات قيمة لدراسة علم التشريح البشري ، حيث تقدم أوجه تشابه تشريحية تسهل التعلم واستقراءه للتطبيقات الطبية في البشر12،13،14،15. على الرغم من أن تقنيات الحفاظ على الجثث قد تم وصفها تقليديا نوعيا ، إلا أ...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

يعلن أصحاب البلاغ عدم وجود تضارب في المصالح.

شكر وتقدير

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,

نعرب عن امتناننا لقسم العلوم الطبية الأساسية ومكتب البحوث في جامعة إيسيسي لدعمهم في هذا البحث.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
كلوريد البنزالكونيومبروت & eacute; cnica Ingenierí أPROQUAT BC 50/80رقم CAS. 68424-85-1
الإيثانولغير قابل للتطبيقغير قابل للتطبيقالإيثانول 96٪
الفورمالديهايدألبور qu í micosغير قابل للتطبيقفورمالديهايد
الجلسرينغير قابل للتطبيقلا ينطبقالجلسرين
Dis á ؛ حاقن خاص nchezحقنYA-02
ملقط كيليغير قابل للتطبيقغير قابل للتطبيقملقط
كيلي مقص Metzembaumغير قابل للتطبيقغير قابل للتطبيقمقص Metzembaum
إبرةDis á ؛ nchezL canuleL Canule
مشرطغير قابل للتطبيقمقبضمشرط 4 / شفرة مشرط 22
خياطة   ؛ الحريرغير قابل للتطبيقغير قابل للتطبيقخياطة الحرير 0/0
مضخة حقن مضخة

المراجع

$$\rightleftharpoonup{xx}$$ $$\longleftharp{xx}$$, $$\longrightharp{xx}$$,
  1. Gonzalez, L. M., Moeser, A. J., Blikslager, A. T. Porcine models of digestive disease: the future of large animal translational research. Transl Res. 166 (1), 12-27 (2015).
  2. Guerra, J. A. B. Historia de la preservación de cadáveres humanos. Morfolia. 1, 3(2009).
  3. Balta, J. Y., Cronin, M., Cryan, J. F., O'Mahony, S. M. Human preservation techniques in anatomy: A 21st century medical education perspective. Clin Anat. 28 (6), 725-734 (2015).
  4. Bernardini, L., Barbosa, E., Charão, M. F., Brucker, N. Formaldehyde toxicity reports from in vitro and in vivo studies: A review and updated data. Drug Chem Toxicol. 45 (3), 972-984 (2022).
  5. Theeuwes, H. P., van Riel, M., Lange, J. F., Kleinrensink, G. J. A new model for training on human specimens in surgical-anatomical skills labs. Anat Physiol Biochem Int J. 3 (1), 0013-0017 (2017).
  6. Rakuša, M., Šaherl, L. K. Thiel embalming method used for anatomy dissection as an educational tool in teaching human anatomy, in research, and in training in comparison of different methods for long term preservation. Folia Morphol. 82 (3), 449-456 (2023).
  7. Hammer, N., et al. Comparison of modified Thiel embalming and ethanol-glycerin fixation in an anatomy environment: Potentials and limitations of two complementary techniques. Anat Sci Educ. 8 (1), 74-85 (2015).
  8. Jackson, P. G. G., Cockcroft, P. D., Elmhurst, S. Clinical examination of farm animals: Wiley Online Library. , (2002).
  9. Delaney, C. P. Netter's surgical anatomy and approaches. E-Book: Netter's Surgical Anatomy and Approaches E-Book. , Elsevier Health Sciences. (2020).
  10. Agache, P. G., Monneur, C., Leveque, J. L., De Rigal, J. Mechanical properties and Young's modulus of human skin in vivo. Arch Dermatol Res. 269, 221-232 (1980).
  11. McKee, C. T., Last, J. A., Russell, P., Murphy, C. J. Indentation versus tensile measurements of Young's modulus for soft biological tissues. Tissue Eng Part B Rev. 17 (3), 155-164 (2011).
  12. Echarte, O. Z. Evaluación del nuevo dispositivo Surgicric para cricotiroidotomía de emergencia en un modelo porcino. Rev Electr AnestesiaR. 8 (12), 2(2016).
  13. Vargas, D., et al. Caracterización de las arterias coronarias en corazón de porcino como modelo anatómico didáctico en estudiantes del área de la salud. Morfolia. 12 (1), 56-74 (2020).
  14. Fernández-Trujillo, L., et al. El biomodelo porcino en la investigación médica traslacional: del biomodelo al humano en trasplante pulmonar. Biomédica. 39 (2), 300-313 (2019).
  15. Villate, M. A. M., Méndez, J. D. B., Echeverry, J. E. P. Anatomía quirúrgica del ojo: Revisión anatómica del ojo humano y comparación con el ojo porcino. Morfolia. 8 (3), 21-44 (2016).
  16. Kocbek, L., Rakuša, M. Thiel's embalming method: Review of the literature and our institute's experience. Acta Med Biotechnol. 10 (2), 34-42 (2017).
  17. Guerrero Guzmán, C. C., et al. Restoration and conservation of anatomic pieces. Anat Cell Biol. 52 (3), 255-261 (2019).
  18. Balta, J. Y., Lamb, C., Soames, R. W. A pilot study comparing the use of Thiel- and formalin-embalmed cadavers in the teaching of human anatomy. Anat Sci Educ. 8 (1), 86-91 (2015).
  19. Hayashi, S., et al. History and future of human cadaver preservation for surgical training: From formalin to saturated salt solution method. Anat Sci Int. 91, 1-7 (2016).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

طلب إذن لإعادة استخدام النص أو الأشكال في مقالة JoVE هذه

طلب إذن

الوسوم

الفيديو قريباً

مقالات ذات صلة