يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

تصنيع أكسيد الجرافين المضاد للبكتيريا / مركبات النحاس النانوية

1.7K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/66762

⸱

أكتوبر 4, 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1School of Integrative Engineering, Chung-Ang University, 2Feynman Institute of Technology, Nanomedicine Corporation, 3Department of Chemical Science and Engineering, Tokyo Institute of Technology, 4Department of Chemical Engineering, Kumoh National Institute of Technology

في هذه المقالة

ملخص

هنا ، نقدم مركبات أكسيد الجرافين / النحاس (GO / Cu) النانوية كمادة نانوية مضادة للبكتيريا. تم تقييم الفعالية المضادة للبكتيريا للمركبات النانوية GO / Cu ضد كل من البكتيريا إيجابية الجرام وسالبة الجرام المقاومة للمضادات الحيوية.

الملخص

المضادات الحيوية هي حاليا العلاج المضاد للبكتيريا الأكثر استخداما لقتل البكتيريا. ومع ذلك ، فإن البكتيريا تطور مقاومة عند التعرض المفرط باستمرار للمضادات الحيوية. يعد تطوير العوامل المضادة للميكروبات التي يمكن أن تحل محل المضادات الحيوية الموجودة أمرا ضروريا لأن البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية لديها آليات مقاومة لجميع المضادات الحيوية الحالية ويمكن أن تعزز عدوى المستشفيات. لمواجهة هذا التحدي ، في هذه الدراسة ، نقترح مركبات نانوية من أكسيد الجرافين / النحاس (GO / Cu) كمواد مضادة للبكتيريا يمكن أن تحل محل المضادات الحيوية الموجودة. تتميز المركبات النانوية GO / Cu بالمجهر الإلكتروني النافذ والمجهر الإلكتروني الماسح. أنها تظهر أن الجسيمات النانوية النحاس (Cu) تنمو بشكل جيد على صفائح أكسيد الجرافين. بالإضافة إلى ذلك ، يتم استخدام طريقة مرق التخفيف الدقيق لتأكيد فعالية المادة المضادة للميكروبات ضد المكورات العنقودية الذهبية المقاومة للميثيسيلين (MRSA) والزائفة الزنجارية (P. aeruginosa) ، والتي غالبا ما تكون متورطة في عدوى المستشفيات. على وجه التحديد ، يتم التخلص من 99.8 ٪ من MRSA و 84.7 ٪ من P. aeruginosa بواسطة 500 ميكروغرام / مل من المركبات النانوية GO / Cu. يمكن للمركبات النانوية المعدنية القضاء على البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية عن طريق إطلاق الأيونات ، وتشكيل أنواع الأكسجين التفاعلية ، وإتلاف البكتيريا جسديا. توضح هذه الدراسة إمكانات المركبات النانوية GO / Cu المضادة للبكتيريا في القضاء على البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية.

المقدمة

الالتهابات البكتيرية لها تأثير كبير على الصحة العامة. البكتيريا المسببة للأمراض ، على وجه الخصوص ، يمكن أن تتهرب من آليات الحماية في الجسم وتسبب الأمراض1. تستخدم المضادات الحيوية على نطاق واسع لعلاج الالتهابات البكتيرية. ومع ذلك ، فإن الاستخدام غير المناسب للمضادات الحيوية قد عجل بظهور البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية. في الوقت الحالي ، تسببت عدوى المستشفيات التي تعزى إلى البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية في مضاعفات ملحوظة في مرافق الرعاية الصحية2. لسوء الحظ ، البكتيريا لديها آليات مقاومة لجميع المضادات الحيوية الحالية3. لذلك ، فإن تطوير مضادات حيوية جديدة أمر ضروري ، على الرغم من وجود احتمال كبير لظهور آليات المقاومة.

برزت الجسيمات النانوية المعدنية كعوامل واعدة لمكافحة البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية بسبب خصائصها الفعالة المضادة للبكتيريا4،5،6. من الصعب على البكتيريا تطوير آليات مقاومة ضد الجسيمات النانوية المعدنية لأنها لا ترتبط بأي مستقبلات بكتيرية محددة7. على وجه الخصوص ، الجسيمات النانوية للفضة والنحاس وأكسيد الزنك هي محور بحث مكثف بسبب فعاليتها المضادة للبكتيرياالرائعة 8،9،10،11،12،13. تعزى سمية الجسيمات النانوية المعدنية تجاه البكتيريا إلى ثلاث آليات أساسية: 1) إطلاق أيونات المعادن ، 2) توليد أنواع الأكسجين التفاعلية (ROS) ، مثل • OH و • O2− ، و 3) التفاعل الجسدي والتعلق 4,14.

في هذه الدراسة ، تم تطوير المركبات النانوية لأكسيد الجرافين / النحاس (GO / Cu) كعامل مضاد للميكروبات. النحاس (Cu) يقتل بكفاءة مسببات الأمراض التي تواجه سطحه ويتداخل مع تكاثر الجينات البكتيرية. ومع ذلك ، فهو عنصر دقيق أساسي في جسم الإنسان ، وهو أقل سمية لخلايا الثدييات لأنه يحتوي على آليات استتباب تنظم تركيزات النحاس داخل الخلايا4. عندما تتأكسد الجسيمات النانوية Cu ، فإنها تولد أيونات النحاس ، والتي لها تقارب مرتفع نسبيا للبكتيريا سالبة الشحنة15,16. ترتبط أيونات النحاس بالهياكل الخلوية (مثل البروتينات والأغشية والحمض النووي) ، مما يعطل وظائف الخلية17. من خلال توليف الجسيمات النانوية Cu على سطح أكسيد الجرافين (GO) ، يمكن التحكم في معدل إطلاق أيونات المعادن18،19،20. يظهر GO أيضا تأثيرا مضادا للبكتيريا عن طريق منع الالتصاق البكتيري بسطح خشن من خلال الإجهاد التأكسدي أو عن طريق تكوين ROS21,22. علاوة على ذلك ، تطلق المركبات النانوية GO / Cu المزيد من أنواع الأكسجين التفاعلية أكثر من GO من خلال العمل الكيميائي ل Cu2+ ، مما يؤدي إلى إتلاف البروتينات البكتيرية والحمض النووي ، مما يؤدي إلى موت البكتيريا23,24.

تحدد هذه الورقة بروتوكول توليف المركبات النانوية GO / Cu وتقدم نهج اختبار مضاد للميكروبات ضد البكتيريا السريرية MRSA و P. aeruginosa ، وهي سلالات البكتيريا المقاومة للأدوية المتعددة الأكثر شيوعا والتي تسبب عدوى المستشفيات25. يهدف هذا البروتوكول إلى إدخال طريقة اختزال كيميائية سهلة لتوليف المركبات النانوية GO / Cu التي يمكن أن تعيق نمو البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية. نستخدم كلوريد النحاس الثنائي (CuCl2) وبوروهيدريد الصوديوم (NaBH4) كسلائف وعامل اختزال، على الترتيب. يصف البروتوكول أيضا تفاصيل تطبيق هذه المركبات النانوية على البكتيريا باستخدام طريقة مرق التخفيف الدقيق. لاستبعاد الأخطاء الناتجة عن تداخل امتصاص الجسيمات النانوية المعدنية وإجراء تقييمات دقيقة ، يتم تقييم القدرة المضادة للبكتيريا باستخدام طريقة عد المستعمرات.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

1. تحضير المركبات النانوية GO / Cu

ملاحظة: يتم تحديد حجم ومورفولوجيا الجسيمات النانوية Cu التي تنمو على صفائح GO النانوية من خلال درجة أكسدة GO ، وتركيز السلائف Cu ، وتركيز عامل الاختزال26.

  1. تحضير 10 مل من 1 ملغ / مل تعليق GO في زجاجة زجاجية. قم بتنشيط تعليق GO لمدة 1 ساعة حتى يتم تشتيت GO جيدا في الماء المقطر (DI).
  2. تحضير محلول 20 mM CuCl2 في قنينة زجاجية. قم بتدوير محلول CuCl2 حتى ينتشر CuCl2 جيدا في ماء DI.
  3. أضف 10 مل من محلول 20 mM CuCl2 إلى محلول GO وقم بصوتنة الخليط عند 70 درجة مئوية لمدة 1 ساعة.
  4. تحضير محلول NaBH4 20 مللي متر.
    تنبيه: يجب إجراء هذا الإجراء في غطاء دخان كيميائي. يحدث تفاعل الأكسدة والاختزال بمجرد إدخال عامل الاختزال NaBH4 في الماء. قم بإعداد محلول NaBH4 مباشرة قبل التجربة.
  5. تحضير خليط NaBH4 و GO و CuCl2
    1. أضف 20 مل من محلول NaBH4 20 mM إلى خليط GO و CuCl2 مع التحريك بقضيب مغناطيسي عند 200 دورة في الدقيقة. بعد إضافة محلول NaBH4 ، يقلب باستمرار لمدة 30 دقيقة.
      تنبيه: يجب إجراء هذا الإجراء في غطاء دخان كيميائي.
  6. الطرد المركزي للخليط
    1. انقل الخليط من الخطوة 1.5.1 إلى أنبوب طرد مركزي. جهاز طرد مركزي الحل في 23000 × غرام لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة. تخلص من المادة الطافية.
      تنبيه: عند تشغيل جهاز الطرد المركزي ، حافظ دائما على التوازن عن طريق وضع أنابيب متساوية الوزن.
  7. أعد تعليق خليط GO / Cu المركب النانوي ب 10 مل من ماء DI وقم بصوتنتها لتمكين الراسب من الانتشار بالتساوي في جميع أنحاء المحلول.
  8. جهاز طرد مركزي المحلول عند 23000 × جم لمدة 10 دقائق في درجة حرارة الغرفة ؛ ثم قم بإزالة الطاف.
  9. كرر الخطوات من 1.7 إلى 1.8 مرة أخرى لإزالة المواد الكيميائية غير المتفاعلة.
  10. أضف 1 مل من الماء المقطر إلى المركبات النانوية GO / Cu وقم بصوتنة الخليط لتفريق الرواسب بالتساوي طوال المرحلة السائلة.
    ملاحظة: اجمع كل محاليل GO / Cu النانوية في أنبوب مخروطي واحد.
  11. قم بتجميد المحلول وتجفيفه عند -60 درجة مئوية تحت فراغ طوال الليل حتى تجف المركبات النانوية GO / Cu تماما واحصل على مسحوق GO / Cu النانوي.
  12. قم بتخزين مسحوق GO / Cu المركب النانوي في -20 درجة مئوية حتى الاستخدام.

2. إعداد البكتيريا لاختبار مضاد للجراثيم

تنبيه: يجب إجراء هذا الإجراء في خزانة أمان بيولوجي مع مصباح كحولي. يجب تعقيم النفايات البكتيرية قبل التخلص منها. عند التعامل مع البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية ، يجب ارتداء القفازات والعباءات والأقنعة ، ويجب غسل اليدين بالصابون أو معقم اليدين بعد التجربة. دائما تطهير تماما. في حالة حدوث تلوث في المنطقة التجريبية ، قم بتطهيرها على الفور بنسبة 70٪ من الإيثانول.

  1. إعداد وسائط الثقافة البكتيرية
    1. مزيج 20 غرام من أجار الصويا tryptic و 500 مل من الماء المقطر في قارورة. عقم الخليط في الأوتوكلاف على حرارة 121 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة.
    2. تحضير لوحة أجار عن طريق صب 15 مل من محلول أجار في طبق بتري قبل أن تصلب أجار. قم بتخزين طبق الآجار على حرارة 4 درجات مئوية حتى الاستخدام.
      ملاحظة: يجب أن يتم ذلك بسرعة قبل أن يصلب محلول أجار. لمنع التلوث ، قم بتعقيم لوحة أجار بالأشعة فوق البنفسجية لمدة 15 دقيقة أثناء التصلب.
    3. مزيج 15 غرام من مرق الصويا tryptic (TSB) و 500 مل من الماء المقطر في قارورة. عقم الخليط في الأوتوكلاف على حرارة 121 درجة مئوية لمدة 15 دقيقة.
    4. القسمة 40-50 مل من محلول المرق في أنبوب مخروطي 50 مل. يحفظ المرق على حرارة 4 درجات مئوية حتى الاستخدام.
      ملاحظة: لمنع التلوث ، قم بتعقيم المرق المقتبس بالأشعة فوق البنفسجية لمدة 15 دقيقة.
  2. الثقافة البكتيرية
    1. تلقيح محلول مخزون MSRA أو P. aeruginosa على صفيحة أجار باستخدام حلقة. احتضان صفيحة أجار عند 37 درجة مئوية باستخدام حاضنة اهتزاز لمدة 24 ساعة.
    2. تلقيح مستعمرة واحدة من البكتيريا في 10 مل من المرق باستخدام حلقة. احتضان المرق عند 37 درجة مئوية باستخدام حاضنة اهتزاز عند 200 دورة في الدقيقة لمدة 24 ساعة.
    3. كرر الخطوات 2.2.1-2.2.2 مرة أخرى للحصول على البكتيريا التي لها نفس الخصائص.
    4. بعد 24 ساعة ، قم بتخفيف المحلول البكتيري بشكل متسلسل عشرة أضعاف باستخدام الماء المقطر المعقم. تلقيح 100 ميكرولتر من المعلق البكتيري المخفف على صفيحة أجار وانشرها باستخدام مفرشة. احتضان صفيحة أجار عند 37 درجة مئوية باستخدام حاضنة اهتزاز لمدة 24 ساعة.
      ملاحظة: يعتمد مستوى التخفيف على البكتيريا. تهدف إلى إعداد أقل من 100 مستعمرة في لوحة أجار.
    5. عد المستعمرات البكتيرية بعد حضانة 24 ساعة لتحديد وحدة تكوين المستعمرة (CFU) باستخدام المعادلة (1).
      figure-protocol-1 (1)
    6. كرر الخطوات 2.2.4-2.2.5 على الأقل 3x لتأكيد ما إذا كانت CFU للبكتيريا ثابتة نسبيا.

3. اختبار مضاد للجراثيم باستخدام طريقة مرق التخفيف الدقيق

  1. اليوم 1) تلقيح مستعمرة واحدة من البكتيريا من صفيحة أجار إلى 10 مل من المرق باستخدام حلقة. احتضان المرق عند 37 درجة مئوية باستخدام حاضنة اهتزاز عند 200 دورة في الدقيقة لمدة 24 ساعة.
  2. اليوم 2) تحضير خليط GO / Cu المركب النانوي بثلاثة تركيزات على الأقل باستخدام محلول ملحي مخزن بالفوسفات من Dulbecco (DPBS). قم بتنشيط التعليق النانوي GO / Cu حتى يتم تشتيت المركبات النانوية GO / Cu بشكل جيد في DPBS.
    ملاحظة: في هذا البروتوكول ، تم اختبار 500 و 250 و 125 و 62.5 ميكروغرام / مل من خليط GO / Cu المركب النانوي.
  3. تحضير حلول التحكم. السيطرة السلبية هي DPBS ، والتحكم الإيجابي هو 1٪ من محلول البنسلين / الستربتومايسين في DPBS الذي سيقتل البكتيريا.
  4. أضف 100 ميكرولتر من نظام التعليق النانوي GO / Cu وحلول التحكم في 96 لوحة بئر. أضف جميع العينات في ثلاث نسخ.
    ملاحظة: تعقيم العينات بالأشعة فوق البنفسجية لمدة 15 دقيقة قبل وضعها على البكتيريا.
  5. استنادا إلى CFU بعد 24 ساعة من الحضانة ، قم بتخفيف التعليق البكتيري باستخدام TSB إلى 1 × 106 CFU / mL.
    ملاحظة: تركيزات تعليق مزرعة MRSA و P. aeruginosa الأولية في دراستنا ، وفقا للخطوة 2.2.5 ، هي 4.5 × 109 CFU / mL و 3 × 109 CFU / mL ، على التوالي. يتم الحصول على تركيزات بكتيرية من 1 × 106 CFU / mL عن طريق تخفيف الثقافات 4500x و 3000x ، على التوالي.
  6. تلقيح 100 ميكرولتر من المعلق البكتيري المخفف 1 × 106 CFU / mL في آبار العينة في ألواح 96 بئرا. احتضان 96 لوحة بئر عند 37 درجة مئوية باستخدام حاضنة اهتزاز عند 200 دورة في الدقيقة لمدة 24 ساعة.
    ملاحظة: التركيز النهائي للبكتيريا هو 5 × 105 CFU / مل بعد الخلط مع 100 ميكرولتر من العينة.
  7. اليوم 3) امزج العينة والمعلقات البكتيرية بقوة باستخدام طرف ماصة ميكرو سعة 200 ميكرولتر. تمييع بشكل متسلسل خليط عينة البكتيريا عشرة أضعاف بالماء المقطر المعقم.
    ملاحظة: يعتمد مستوى التخفيف على البكتيريا. تهدف إلى إعداد أقل من 100 مستعمرة في لوحة أجار.
  8. تلقيح 100 ميكرولتر من المعلق البكتيري المخفف على صفيحة أجار وانشرها باستخدام مفرشة. احتضان صفيحة أجار عند 37 درجة مئوية باستخدام حاضنة اهتزاز لمدة 24 ساعة.
  9. اليوم 4) عد المستعمرات البكتيرية وحدد قيم CFU لتأكيد النشاط المضاد للبكتيريا للمركبات النانوية GO / Cu باستخدام المعادلة (2).
    figure-protocol-2 (2)

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

تم إجراء تحليلات المجهر الإلكتروني النافذ (TEM) ، والمجهر الإلكتروني الماسح (SEM) ، والتحليل الطيفي للأشعة السينية المشتتة للطاقة (EDS) لتأكيد تكوين المركبات النانوية GO / Cu. يوضح الشكل 1 أ ، ب أن جسيمات النحاس النانوية غير المتجانسة نمت على صفائح GO. كما هو موضح في الشكل 1C ، أكد تعيين EDS أن الجسيمات الموجودة على ورقة GO كانت جسيمات نانوية نحاسية.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

هنا ، نبلغ عن طريقة منخفضة التكلفة وبسيطة لإعداد صفائح GO النانوية المودعة بجسيمات النحاس النانوية ، والتي ستكون طريقة فعالة محتملة للقضاء على البكتيريا المقاومة للمضادات الحيوية. الخطوة الحاسمة في توليف المركبات النانوية GO / Cu هي تشتيت GO و CuCl2 تماما في المحلول والحفاظ على درجة حرارة مرتفعة أثناء خلطها. علاوة على ذلك ، يجب إجراء خطوة الأكسدة والاختزال بسرعة لأن عامل الاختزال يسبب تفاعل اختزال بمجرد ملامسته للماء. بشكل عام ، تميل الجسيمات النانوية Cu بقوة إلى التجميع الذات...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

الدكتور جونغون تشوي هو الرئيس التنفيذي / المؤسس ، والدكتور يونغهيون تشوي هو الرئيس التنفيذي للتكنولوجيا في معهد فاينمان للتكنولوجيا في مؤسسة الطب النانوي.

شكر وتقدير

تم دعم هذا البحث من خلال منحة أبحاث جامعة Chung-Ang في عام 2022 (خلال إجازة التفرغ للأستاذ Jonghoon Choi). تم دعم هذا البحث أيضا من قبل برنامج أبحاث العلوم الأساسية من خلال المؤسسة الوطنية للبحوث الكورية (NRF) ، بتمويل من وزارة التعليم (No. RS-2023-00275006) ، ومنحة المعهد الكوري لصناعة وتكنولوجيا البيئة (KEITI) بتمويل من وزارة البيئة الكورية (MOE) (رقم 2022002980003). تم الحصول على MRSA السريرية و P. aeruginosa من مستشفى جامعة تشونغ آنغ.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
المضادات الحيوية المضادة للفطرياتجيبكو15240062
سلالات بكتيرية MDR السريرية   ؛مستشفى جامعة تشونغ أنج (سيول ، كوريا الجنوبية)
ثنائي هيدرات كلوريد النحاس (II)دوكسان10125-13-0
المجهر الإلكتروني الماسح الضوئي للانبعاث الميداني (FE-SEM)كارل زايسSIGMA
أكسيد الجرافينسيجما796034
بوروهيدريد الصوديومسيجما71320
المجهر الإلكتروني للإرسال (TEM)JEOLJEM-2100
Tryptic Soy AgarBD difco236950
مرق الصويا TrypticBD difco211825

المراجع

  1. Doron, S., Gorbach, S. L. Bacterial infections: Overview. International Encyclopedia of Public Health. , 273-282 (2008).
  2. Van Duin, D., Paterson, D. L. Multidrug-resistant bacteria in the community: An update. Infect Dis Clin North Am. 34 (4), 709-722 (2020).
  3. Blair, J. M. A., Webber, M. A., Baylay, A. J., Ogbolu, D. O., Piddock, L. J. V. Molecular mechanisms of antibiotic resistance. Nat Rev Microbiol. 13 (1), 42-51 (2015).
  4. Sánchez-López, E., et al. Metal-based nanoparticles as antimicrobial agents: An overview. Nanomaterials (Basel). 10 (2), 292(2020).
  5. Makabenta, J. M. V., et al. Nanomaterial-based therapeutics for antibiotic-resistant bacterial infections. Nat Rev Microbiol. 19 (1), 23-36 (2021).
  6. Liang, X., Govindaraju, S., Yun, K. Dual applicability of polyaniline coated gold nanorods: A study of antibacterial and redox activity. BioChip J. 12 (2), 137-145 (2018).
  7. Niño-Martínez, N., Salas Orozco, M. F., Martínez-Castañón, G. A., Torres Méndez, F., Ruiz, F. Molecular mechanisms of bacterial resistance to metal and metal oxide nanoparticles. Int J Mol Sci. 20 (11), 2808(2019).
  8. Kim, J., Choi, Y., Park, J., Choi, J. Gelatin-gallic acid microcomplexes release go/cu nanomaterials to eradicate antibiotic-resistant microbes and their biofilm. ACS Infect Dis. 9 (2), 296-307 (2023).
  9. Jang, J., et al. Development of antibiofilm nanocomposites: Ag/cu bimetallic nanoparticles synthesized on the surface of graphene oxide nanosheets. ACS Appl Mater Interfaces. 12 (32), 35826-35834 (2020).
  10. Jang, J., Choi, Y., Tanaka, M., Choi, J. Development of silver/graphene oxide nanocomposites for antibacterial and antibiofilm applications. J Ind Eng Chem. 83, 46-52 (2020).
  11. Bankier, C., et al. Synergistic antibacterial effects of metallic nanoparticle combinations. Sci Rep. 9 (1), 16074(2019).
  12. Mendes, C. R., et al. Antibacterial action and target mechanisms of zinc oxide nanoparticles against bacterial pathogens. Sci Rep. 12 (1), 2658(2022).
  13. Yoon, S., et al. Biologically benign multi-functional mesoporous silica encapsulated gold/silver nanorods for anti-bacterial applications by on-demand release of silver ions. BioChip J. 13 (4), 362-369 (2019).
  14. Slavin, Y. N., Asnis, J., Häfeli, U. O., Bach, H. Metal nanoparticles: Understanding the mechanisms behind antibacterial activity. J Nanobiotechnology. 15 (1), 65(2017).
  15. Ismail, N. A., et al. Sonochemical synthesis of a copper reduced graphene oxide nanocomposite using honey and evaluation of its antibacterial and cytotoxic activities. Front Mol Biosci. 9, 995853(2022).
  16. Tu, Y., et al. Remarkable antibacterial activity of reduced graphene oxide functionalized by copper ions. Adv Funct Mater. 31 (13), 2008018(2021).
  17. Li, M., et al. Toward a molecular understanding of the antibacterial mechanism of copper-bearing titanium alloys against staphylococcus aureus. Adv Healthc Mater. 5 (5), 557-566 (2016).
  18. Yang, Z., et al. Long-term antibacterial stable reduced graphene oxide nanocomposites loaded with cuprous oxide nanoparticles. J Colloid Interface Sci. 533, 13-23 (2019).
  19. Yang, Y., et al. Graphene oxide/copper nanoderivatives-modified chitosan/hyaluronic acid dressings for facilitating wound healing in infected full-thickness skin defects. Int J Nanomedicine. 15, 8231-8247 (2020).
  20. Mao, M., et al. Graphene oxide-copper nanocomposites suppress cariogenic streptococcus mutans biofilm formation. Int J Nanomedicine. 16, 7727-7739 (2021).
  21. Ravikumar, V., Mijakovic, I., Pandit, S. Antimicrobial activity of graphene oxide contributes to alteration of key stress-related and membrane bound proteins. Int J Nanomedicine. 17, 6707-6721 (2022).
  22. Afreen, G., Shoeb, M., Upadhyayula, S. Effectiveness of reactive oxygen species generated from rgo/cds qd heterostructure for photodegradation and disinfection of pollutants in waste water. Mater Sci Eng C. 108, 110372(2020).
  23. Yang, F., et al. Fabrication of graphene oxide/copper synergistic antibacterial coating for medical titanium substrate. J Colloid Interface Sci. 638, 1-13 (2023).
  24. Rajapaksha, P., et al. Antibacterial properties of graphene oxide-copper oxide nanoparticle nanocomposites. ACS Appl Bio Mater. 2 (12), 5687-5696 (2019).
  25. Sachdeva, C., Satyamoorthy, K., Murali, T. S. Microbial interplay in skin and chronic wounds. Curr Clin Microbiol Rep. 9 (3), 21-31 (2022).
  26. Ramos, M. K., Zarbin, A. J. G. Graphene/copper oxide nanoparticles thin films as precursor for graphene/copper hexacyanoferrate nanocomposites. Appl Surf Sci. 515, 146000(2020).
  27. Fivenson, E. M., et al. A role for the gram-negative outer membrane in bacterial shape determination. PNAS. 120 (35), e2301987120(2023).
  28. Wu, C., et al. Copper-containing mesoporous bioactive glass scaffolds with multifunctional properties of angiogenesis capacity, osteostimulation and antibacterial activity. Biomater. 34 (2), 422-433 (2013).
  29. Zhang, W., et al. Graphene oxide-copper nanocomposite-coated porous cap scaffold for vascularized bone regeneration via activation of hif-1α. Adv Healthc Mater. 5 (11), 1299-1309 (2016).
  30. Labauve, A. E., Wargo, M. J. Growth and laboratory maintenance of pseudomonas aeruginosa. Curr Protoc Microbiol. 25 (1), 6E.1.1-6E.1.8 (2012).
  31. Lin, J., et al. The icmf3 locus is involved in multiple adaptation- and virulence-related characteristics in pseudomonas aeruginosa pao1. Front Cell Infect Microbiol. 5, 70(2015).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

استكشف المزيد من المقالات

المركبات النانوية المضادة للبكتيريامقاومة المضادات الحيويةالمركبات النانوية المعدنيةالمجهر الإلكتروني النافذالمجهر الإلكتروني الماسحالمكورات العنقودية الذهبية المقاومة للميثيسيلينالزائفة الزنجاريةطريقة التخفيف المباشر في المرق
تصنيع أكسيد الجرافين المضاد للبكتيريا / مركبات النحاس النانوية
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.