مقالة منهجية

استكشاف عضلة Longissimus: كشف ارتباطها بجودة اللحوم في Bos indicus والثيران المهجنة

1.5K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/66764

⸱

يوليو 12, 2024

 ,  ,  ,  ,  , 
1School of Veterinary Medicine and Animal Science, São Paulo State University, Botucatu (São Paulo), 2School of Agricultural and Veterinary Sciences, São Paulo State University, Jaboticabal (São Paulo)

في هذه المقالة

ملخص

قمنا بالتحقيق في الأنسجة العضلية الهيكلية في Bos indicus والثيران المهجنة لشرح الاختلافات في سمات جودة اللحوم. وجد أن قوة القص وارنر براتزلر (WBSF) تتراوح من 4.7 كجم إلى 4.2 كجم. كشفت الأشكال المتساوية للسلسلة الثقيلة من الميوسين عن اختلافات بين ، وقدم مؤشر تجزئة اللييفات العضلية مزيدا من الأفكار حول اختلافات الرقة (WBSF).

الملخص

بحثت هذه الدراسة الأنسجة العضلية في Bos indicus والثيران المهجنة لشرح الاختلافات في سمات جودة اللحوم. يتم وصف سمات الذبيحة ، ومعايير جودة اللحوم ، والتحقيقات الكيميائية الحيوية والجزيئية للبروتينات الليفية العضلية. تم تحديد طرق تقييم الأس الهيدروجيني والدهون العضلية (IMF) ولون اللحم (L * ، a * ، b *) ، وفقدان الماء ، والحنان ، وفحوصات البيولوجيا الجزيئية. يتم وصف الإجراءات المحددة التي توضح بالتفصيل المعايرة وإعداد العينات وتحليل البيانات لكل طريقة. وتشمل هذه التقنيات مثل التحليل الطيفي بالأشعة تحت الحمراء لمحتوى صندوق النقد الدولي ، وتقييم الرقة الموضوعي ، والفصل الكهربائي للأشكال المتماثلة ل MyHC.

تم تسليط الضوء على معلمات اللون كأدوات محتملة للتنبؤ بحنان اللحم البقري ، وهي سمة جودة حاسمة تؤثر على قرارات المستهلك. استخدمت الدراسة طريقة قوة القص وارنر-براتزلر (WBSF) ، وكشفت عن قيم 4.68 و 4.23 كجم ل Nellore و Angus-Nellore (P < 0.01) ، على التوالي. قدم إجمالي خسائر الطهي والتحليلات الكيميائية الحيوية ، بما في ذلك مؤشر تجزئة اللييفات العضلية (MFI) ، رؤى حول اختلافات الحنان. تم فحص أنواع الألياف العضلية ، وخاصة أشكال سلسلة الميوسين الثقيلة (MyHC) ، مع غياب ملحوظ لشكل MyHC-IIb في Zebu المدروسة. كشفت العلاقة بين MyHC-I وحنان اللحوم عن نتائج متباينة في الأدبيات ، مما يسلط الضوء على تعقيد هذا الارتباط. بشكل عام ، تقدم الدراسة رؤى شاملة حول العوامل التي تؤثر على جودة اللحوم في ثيران Bos indicus و Crossbred (Bos taurus × Bos indicus) ، مما يوفر معلومات قيمة لصناعة لحوم البقر.

المقدمة

تمتلك البرازيل أكبر قطيع تجاري للماشية على مستوى العالم ، حيث يبلغ عددها حوالي 220 مليون وتحتل المرتبة الثانية كأكبر منتج للحوم ، حيث تنتج أكثر من 9 ملايين طن متري من الذبيحة تعادل سنويا1. يساهم قطاع إنتاج الأبقار بشكل كبير في النظام الزراعي الوطني ، حيث يتجاوز إجمالي المبيعات السنوية 55 مليار ريال برازيلي. منذ عام 2004 ، كانت البرازيل لاعبا رئيسيا في تجارة اللحوم العالمية ، حيث صدرت إلى أكثر من 180 دولة ، وهو ما يمثل ~ 50٪ من تجارة اللحوم العالمية2.

يبرز حنان اللحوم باعتباره سمة الجودة القصوى التي تؤثر على رضا المستهلك واستهلاك اللحوم3. من خلال استخدام الأساليب البيوكيميائية والموضوعية لقياس طراوة اللحوم ، يهدف الباحثون إلى تقديم رؤى قيمة حول عوامل مثل علم الوراثة الحيوانية وتقنيات المعالجة وظروف التخزين ، مما يؤدي في النهاية إلى تحسين جودة واتساق منتجات اللحوم للمستهلكين. هذه المعلومات مفيدة لأن حنان اللحوم اكتسب أهمية متزايدة في اتخاذ قرارات المستهلك أثناء الشراء. علاوة على ذلك ، يوفر تقييم طراوة اللحوم معلومات قيمة لمراقبة الجودة في إنتاج اللحوم والصناعات التحويلية. من خلال مراقبة الرقة باستمرار ، يمكن للمنتجين التأكد من أن منتجات اللحوم تلبي المعايير والمواصفات المطلوبة. في هذا السياق ، يتبنى منتجو الأبقار البرازيليون تدريجيا أنظمة تسمين مكثفة مع المهجنة لتعزيز معدل دوران رأس المال. يمثل هذا النظام حوالي 10٪ طن من الذبيحة المنتجة سنويا في البرازيل 4,5.

دفع الطلب المتزايد على تحسين جودة اللحوم من قبل المستهلكين منتجي الأبقار إلى التهجين مع السلالات الأوروبية ، وخاصة أبردين أنجوس6. تهدف هذه الاستراتيجية إلى إنتاج هجين F1 Angus-Nellore ، المعروف بالأداء المتفوق ، وسمات الذبيحة المرغوبة ، وتحسين جودة اللحوم مقارنة بحيوانات zebuالنقية 7,8. في المناطق الاستوائية في البرازيل ، من الشائع استخدام غير المخصية (الثيران) ذات النضج المتقدم في الانتهاء من المزارع ، مما قد يضر بسمات جودة اللحوم مثل اللون والرخامي والحنان. والجدير بالذكر أن دراسة استقصائية كشفت أن 95٪ من التي تم الانتهاء منها في حظائر التسمين البرازيلية هي من الذكور ، مع 73٪ من نيلور ، تليها 22٪ من المهجنة و 5٪ من الأنماط الوراثية الأخرى 9,10.

يعد فهم الآليات الكيميائية الحيوية الكامنة وراء طراوة اللحم أمرا بالغ الأهمية لتحسين جودة اللحوم. أحد الجوانب الرئيسية هو التحلل البروتيني بعد الوفاة ، والذي يؤثر على السلامة الهيكلية لألياف العضلات11. مؤشر تجزئة اللييفات العضلية (MFI) هو اختبار كيميائي حيوي يستخدم على نطاق واسع يحدد مدى تدهور اللييفة العضلية ، مما يوفر نظرة ثاقبة على طراوة اللحم12. تتضمن طريقة MFI قياس تجزئة البروتينات الليفية العضلية ، والتي ترتبط ارتباطا مباشرا بحنان اللحوم. يكمل هذا الفحص تقييمات جودة اللحوم التقليدية ويقدم فهما أعمق للعمليات الكيميائية الحيوية التي تساهم في الاختلافات في طراوة اللحوم.

في هذا السياق ، بحثت الدراسة الحالية في العضلات الهيكلية لثيران Bos indicus مقابل الثيران المهجنة (Bos taurus × Bos indicus) التي تم الانتهاء منها في حظيرة التسمين ، بهدف شرح الاختلافات في سمات جودة اللحوم.

البروتوكول

امتثلت جميع الإجراءات مع لمعايير البحث الأخلاقية التي وضعتها لجنة أخلاقيات استخدام (CEUA) التابعة ل "جامعة باوليستا جوليو دي ميسكيتا فيلهو" - حرم UNESP Botucatu ، بموجب البروتوكول 0171/2018.

1. التجارب

  1. قم بإنهاء 30 ثيران نيلور (Bos indicus) و 30 ثيران F1 Angus-Nellore (Bos taurus × Bos indicus) ، الذين تتراوح أعمارهم بين 20 و 24 شهرا ، في حظيرة تسمين. إيواء كلتا المجموعتين من في حظائر جماعية بقياس 5 م × 6 م بأرضية خرسانية ومجهزة بأحواض مياه من نوع الصدفة ، تستوعب ما يصل إلى خمسة لكل حظيرة. تأكد من أن جميع تنتمي إلى نفس مجموعة الإدارة (ولدت ونشأت في نفس المزرعة) وتم تقديمها إلى نفس فترة التسمين.
    ملاحظة: في هذه الدراسة ، كان متوسط وزن الجسم الأولي لثيران نيلور 370.7 كجم بينما كان متوسط وزن الجسم الأولي لثيران F1 Angus-Nellore 380.8 ± 17 كجم.
  2. النظام الغذائي التسمين
    1. تأكد من أن النظام الغذائي النهائي يتكون من 11.3٪ نخالة (تبن تيفتون وتفل قصب السكر) و 88.7٪ مركزات (حبوب الذرة الجافة المطحونة ، وجبة فول الصويا ، حبوب تقطير الذرة الرطبة ، علف الذرة الجافة الغلوتين ، واللب المعدني). إطعام لمدة 120 يوما وتوفير الوجبات الغذائية الإعلانية مرتين في اليوم (في الساعة 10:00 صباحا و 04:00 مساء).
  3. ذبح
    1. سجل وزن الجسم النهائي (BWf) في نهاية الفترة التجريبية. معالجة جميع في مسلخ قريب ، مع الالتزام بإجراءات التفتيش القياسية. قبل الذبح ، تأكد من أن تخضع لصيام 16 ساعة على الأقل ، مع الامتناع عن كل من الأعلاف والماء.
      ملاحظة: أظهر ثيران F1 Angus-Nellore وزنا نهائيا للجسم بلغ 615.09 ± 57.53 كجم ، بينما كان وزن ثيران Nellore 545.47 ± 11.45 كجم.
  4. تقييم سمات الذبيحة
    1. قم بوزن جثث اللحم البقري في البداية ثم قم بتعريضها لفترة تبريد عند 2-4 درجة مئوية لمدة 48 ساعة. تشمل القياسات وزن الذبيحة الساخنة (HCW) ومنطقة عين الضلع (REA) وسمك الدهون الخلفية (BFT) عندواجهة الضلع 12/ 13 ، على النحو الموصى به13. حدد REA باستخدام طريقة الشبكة بشبكة صغيرة (18 سم × 13 سم) وقم بقياس BFT بالمليمترات باستخدام الفرجار.
      1. قم بقياس REA في كل ذبيحة باستخدام شبكة شبكية (نفس الشبكة المستخدمة في نظام تصنيف درجة العائد التابع لوزارة الزراعة الأمريكية) ، مقسمة إلى مربعات 1 سم² مع نقطة واحدة في المنتصف. أضف جميع المربعات داخل محيط تتبع ريب آي وتلك الموجودة على طول محيط التتبع الذي يمر عبر النقطة الوسطى.
      2. قم بقياس BFT في موضع محدد في موقع التقييم في أي مكان بينالضلوع 12/ 13. لتحديد هذا الموقف ، قم بقياس طول العين الضلع ؛ ثم ، بدءا من الحد الإنسي "A" ، حدد نقطة ثلاثة أرباع الطريق على طول الضلع ومنتصف الطريق عبر "B". خذ الفرجار من خلال هذه النقطة وبزاوية قائمة على الضلع المحدد إلى الواجهة بين الدهون تحت الجلد والدهون العضلية. قم بقياس الدهون تحت الجلد عن طريق وضع الفرجار بزاوية قائمة على خط الدهون تحت الجلد ، من نقطة الواجهة (الشكل التكميلي S1).
  5. أخذ العينات
    1. عينة Longissimus thoracis (LT) من نصف الذبيحة اليسرى (جزء من ± 12.0 سم من اللحم) ، بينالضلوع 11و 13 في اتجاه الجمجمة. في المختبر ، قسم عينات اللحم إلى شرائح لحم بحجم 2.54 سم.
  6. الشيخوخه
    1. قم بتقييم سمات جودة اللحوم بعد فترة تقادم رطب مدتها 14 يوما عند درجة حرارة 0-2 درجة مئوية في حاضنة الطلب البيولوجي على الأكسجين (BOD). استخدم شرائح اللحم بسمك 2.54 سم لتحليل لون اللحم ، ودرجة الحموضة ، والدهون العضلية ، وفقدان التطهير ، والقدرة على الاحتفاظ بالمياه ، والحنان الموضوعي ، وخسائر الطهي. قم بتعبئة شرائح اللحم بشكل منفصل في أكياس بلاستيكية للحصول على تفريغ عالي ونفاذية أكسجين منخفضة وبعد الوصول إلى وقت الشيخوخة ، احتفظ بها مجمدة عند -20 درجة مئوية حتى وقت التحليل. قم بإذابة عينات اللحم البقري عند 4 درجات مئوية لمدة 24 ساعة وعرضها للأكسجين لمدة 30 دقيقة عند 4 درجات مئوية (وقت التفتح).

2. درجة حموضة اللحوم

  1. قم بقياس درجة الحموضة في اللحم باستخدام مقياس رقمي للأس الهيدروجيني مزود بمسبار اختراق. قم بمعايرته باستخدام pH 4.0 و 7.0 buffers عند درجة حرارة الغرفة 25 درجة مئوية. قم بقياس درجة حموضة اللحم في ثلاثة مواقع من عينة العضلات LT. تسجيل قراءات البيانات يدويا ثم تصدير ورقة البيانات ؛ احسب متوسط القراءات الثلاث لدرجة الحموضة في اللحوم.

3. الدهون العضلية

ملاحظة: تم تحديد محتوى الدهون العضلية (IMF) باستخدام التحليل الطيفي للأشعة تحت الحمراء القريبة (NIR)14 وبطريقة الجاذبية15.

  1. إزالة الدهون تحت الجلد من عضلة LT باستخدام مشرط. بعد ذلك ، قم بطحن شريحة اللحم وتجانسها لمدة 5 دقائق باستخدام خلاط ، مع دمج حوالي 180 جراما من العينة. ضع العينة في كوب ، وضعها داخل غرفة العينة ، وقم بإجراء مسح فرعي لمناطق مختلفة من عينة الاختبار عن طريق تدوير كوب العينة ؛ دمج المناطق للحصول على النتيجة النهائية.
  2. خذ ثلاث قراءات لكل عينة. بعد التجانس ، ضع العينات في اللوحة للقراءة اللاحقة. اضبط الجهاز على إرسال NIR ، مع صريف أحادي اللون متحرك يمسح المنطقة من 850 نانومتر إلى 1050 نانومتر.
  3. تصدير ورقة البيانات ثم حساب متوسط ثلاث قراءات لصندوق النقد الدولي. عبر عن النتائج كنسبة مئوية ، باستخدام الصيغة: [(متوسط وزن العينة ÷ صندوق النقد الدولي) × 100].
  4. الجمع بين تجانس عينات العضلات LT (3.0 جم) مع محلول الكلوروفورم / الميثانول / الكلوروفورم (2: 1) لمدة دقيقتين وإخضاعها للطرد المركزي (700 × جم ؛ 10 دقائق ؛ 20 درجة مئوية) لفصل المراحل المحبة للماء (العلوية) والصلبة (الوسطى) والكارهة للماء (السفلية).
  5. قم بتصفية المرحلة الكارهة للماء التي تم الحصول عليها بعد الطرد المركزي باستخدام ورق ترشيح على قمع مع شفط طفيف. انقل الراشح (الطور السفلي ؛ الدهون في الكلوروفورم) إلى دورق يسمى طور الدهون وانقل ما لا يقل عن 5 مم من الراشح إلى دورق دورق مسبق الوزن بعد تركه يقف لبضع دقائق. بعد ذلك ، سجل حجم طبقة الكلوروفورم (150 مل على الأقل) واستنشق الطبقة الكحولية.
    1. تجانس 100 غرام من القسامات من عينة الأنسجة الطازجة أو المجمدة لمدة 2 دقيقة مع مزيج من 100 مل من الكلوروفورم و 200 مل من الميثانول. أضف 100 مل من الكلوروفورم إلى الخليط ، واخلطه لمدة 30 ثانية ، وأضف 100 مل من الماء المقطر ، واخلطه لمدة 30 ثانية أخرى.
    2. قم بتصفية التجانس من خلال ورق الترشيح على قمع بشفط طفيف. اضغط بقاع الكأس الزجاجية عندما تصبح البقايا جافة لضمان أقصى قدر من استرداد المذيب.
    3. انقل المرشح إلى أسطوانة مدرجة سعة 500 مل واتركها لبضع دقائق للسماح بالفصل والتوضيح. سجل حجم طبقة الكلوروفورم (150 مل على الأقل) واستنشق الطبقة الكحولية.
    4. تأكد من إزالة الطبقة العليا تماما ؛ تحتوي طبقة الكلوروفورم على الدهون المنقاة. لاستخراج الدهون الكمي ، استرجع الدهون المحاصرة في بقايا الأنسجة عن طريق مزج البقايا وورق الترشيح مع 100 مل من الكلوروفورم.
    5. قم بتصفية الخليط من خلال القمع وشطف جرة الخلاط والبقايا بإجمالي 50 مل من الكلوروفورم. امزج هذا المرشح مع المرشح الأصلي قبل إزالة الطبقة الكحولية.
      ملاحظة: عادة ما يكون الترشيح سريعا; اضغط بقاع دورق على البقايا الجافة لضمان أقصى قدر من استرداد المذيب.
  6. جفف العينات في الفرن ، وقم بتبريدها في مجفف لمدة 24 ساعة على الأقل ، وضعها في فرن على حرارة 110 درجة مئوية حتى يتبخر المذيب بالكامل ، وقم بتبريدها في مجفف طوال الليل ، وأخيرا أعد وزنها.
  7. حدد محتوى صندوق النقد الدولي عن طريق حساب الفرق بين الأوزان الأولية والنهائية للدورق.

4. لون اللحم

  1. قم بمعايرة الجهاز باستخدام لوحة قياسية بالأبيض والأسود. ضع لوحة المعايرة البيضاء بالقرب من منتصف اللوحة. عند إجراء معايرة ، استخدم المنطقة القريبة من منتصف اللوحة. تكتمل المعايرة بعد وميض المصباح ثلاث مرات.
  2. خذ القياسات بعد 30 دقيقة عند 4 درجات مئوية (وقت التفتح). احصل على قراءات ملونة من ثلاثة مواقع مختلفة على عينة العضلات LT ، وتجنب بعناية النسيج الضام والدهون.
  3. في درجة حرارة الغرفة (20 درجة مئوية) ، احسب متوسطا من هذه القياسات ، على النحو الموصى به16.

5. خسائر المياه

  1. تقييم فقدان التطهير (PL) لجميع العينات. حدد PL لأقسام الخاصرة البقرية عن طريق قياس التباين بين الوزن الأولي قبل التجميد والوزن النهائي بعد التجميد / الذوبان.
    ملاحظة: لا تقم بتقييم PL من حقويه اللحم البقري غير المجمدة أبدا.
  2. قم بقياس قدرة الاحتفاظ بالماء (WHC) من خلال فرق وزن عينة اللحم (حوالي 1.0 جم) قبل وبعد التعرض لضغط 10 كجم لمدة 5 دقائق17.

6. طراوة اللحم الموضوعية

ملاحظة: تم إجراء قياس قوة القص Warner-Bratzler (WBSF) كما هو موضح18,19.

  1. ضع العينات على شبكة متصلة بزجاج حراري واطهيها في فرن كهربائي صناعي حتى تصل درجة الحرارة النهائية إلى 71 درجة مئوية. بعد الطهي ، تبرد العينات وتزنها وتبرد على حرارة 4 درجات مئوية لمدة 24 ساعة.
  2. حدد خسائر الطهي (CL) باستخدام الصيغة figure-protocol-1.
    1. حدد فقدان التنقيط عن طريق وزن المادة المقاومة للحرارة قبل وبعد طهي العينة. تحقيقا لهذه الغاية ، ضع العينات على شبكة فوق زجاج حراري للسماح بتصريف عصائر اللحوم والدهون أثناء الطهي.
    2. حدد فقد التبخر عن طريق وزن العينة فقط قبل الطهي وبعده.
    3. سجل الأوزان النيئة والمطبوخة واحسب النسبة المئوية ل DL كوزن بالتنقيط بعد الطهي مقسوما على وزن عينة اللحم المذاب.
    4. احسب نسبة فقدان التبخر (EVP) باستخدام الصيغة [100 - (الوزن بعد الطهي) ÷ الوزن الخام × 100].
  3. لتحديد WBSF ، القسم الثامن من النوى بقطر 1.27 سم باستخدام محلل نسيج ، مزود بشفرة قوة القص Warner-Bratzler مقاس 3.07 مم وحافة قطع على شكل حرف V (زاوية 60 درجة).
    1. أبلغ عن النتائج كمتوسط ست قيم لكل عينة ، بالكيلوجرام (كجم) ، بعد استبعاد الحدود القصوى المنخفضة والعالية19.

7. مقايسة الكيمياء الحيوية

ملاحظة: تم تقييم التحلل البروتيني بعد الوفاة من خلال تقدير مؤشر تجزئة اللييفات العضلية (MFI) ، باتباع الإجراء الأصلي الذي حدده Culler et al.20 وتم تكييفه مع ماشية Bos indicus بواسطة Borges et al.21.

  1. تجانس شظايا حوالي 3 جم من عينات LT (الأنسجة العضلية المجردة من الدهون والنسيج الضام) في محلول عازل يحتوي على 100 mM كلوريد البوتاسيوم ، 20 mM فوسفات البوتاسيوم عند الرقم الهيدروجيني 7 ، 1 mM حمض الإيثيلين ديامينيترايتيك (EDTA) ، 1 mM كلوريد المغنيسيوم ، و 1 mM أزيد الصوديوم عند 2 درجة مئوية ، تليها الطرد المركزي (1000 × جم لمدة 15 دقيقة عند 4 درجات مئوية).
    1. أعد تعليق الرواسب في 10 مجلدات (v / w) من الوسط العازل باستخدام قضيب التحريك ، ثم ترسيبها مرة أخرى عند 1000 × جم لمدة 15 دقيقة وصب المادة الطافية.
    2. إعادة تعليق الرواسب في 2.5 حجم (v / w) من الوسط العازل وفصل النسيج الضام والحطام عن طريق تمريره عبر مصفاة البولي إيثيلين (18 شبكة). استخدم 2.5 وحدة تخزين إضافية (v / w) للسماح لللييفات العضلية بالمرور عبر المصفاة.
    3. تحديد تركيز البروتين من تعليق اللييفات العضلية باستخدام طريقة بيوريت من Gornall et al.22. خفف حصة معلق اللييفة العضلية مع وسط عازل إلى تركيز بروتين 0.5 ± 0.05 ملغم/مل.
    4. قم بقياس امتصاص هذا التعليق على الفور عند 540 نانومتر. تحديد MFI باستخدام القياس الطيفي عند 540 نانومتر. اضرب الامتصاص في 200 للحصول على MFI لكل عينة (وقم بالإبلاغ عنها كمؤشر بدون وحدة قياس).

8. مقايسة البيولوجيا الجزيئية

ملاحظة: لتحليل سلسلة الميوسين الثقيلة (MyHC) ، وهو البروتين الأكثر وفرة في العضلات الهيكلية البقرية ، تمت معالجة عينات LT من كلا المجموعتين باتباع البروتوكول الموصوف في الأدبيات23،24.

  1. حقق الفصل الكهربائي باستخدام جل SDS-PAGE المتدرج (7-10٪) وجل التراص بنسبة 4٪. ضع 25 ميكرولتر من كل عينة على الجل وقم بتشغيله عند 70 فولت و 28 مللي أمبير و 4 درجات مئوية لمدة 1 ساعة ، متبوعا بالجري عند 180 فولت و 12 مللي أمبير و 4 درجات مئوية لمدة 29 ساعة.
  2. استخدم اثنين من المخازن المؤقتة المختلفة في الأشواط: المخزن المؤقت الهلامي العلوي الذي يتكون من الجلايسين ، وقاعدة تريس (هيدروكسي ميثيل) أمينوميثان ، وكبريتات دوديسيل الصوديوم (SDS) ، والماء المقطر ، في حين أن المخزن المؤقت الهلامي السفلي مطابق للمخزن المؤقت العلوي ، مع إضافة ميركابتوإيثانول.
  3. قم بتلطيخ المواد الهلامية باستخدام Coomassie Blue والتقط الصور باستخدام البرامج المناسبة.
  4. تحديد الأشكال المتماثلة ل MyHC (MyHC-I و MyHC-IIa و MyHC-IIx / d) بناء على أوزانها الجزيئية (223.900 و 224.243 و 223.875 كيلو دالتون على التوالي). إجراء تحليل شبه كمي عن طريق قياس كثافة النطاقات المقابلة لكل شكل متساوي ، باستخدام البرامج المناسبة.
  5. استخدم الجرذ النعل والعضلة الباسطة الرقمية الطويلة (EDL) كعناصر تحكم إيجابية لتصنيف الأشكال المتماثلة ل MyHC ، مع الاحتفاظ ببئر واحد في كل هلام لتحميل 40 ميكرولتر من العينة المعالجة.
  6. بالنسبة لجميع البيانات ، قم بإجراء تحليل التباين (ANOVA) بواسطة اختبار F ، باستخدام النموذج التالي:
    Yij = μ + ti + Ɛij
    حيث Yij هي القيمة المرصودة للوحدة التجريبية التي تشير إلى العلاج i في التكرار j ؛ μ هو التأثير العام للمتوسط. t هو تأثير العلاج (المجموعة الوراثية) ، ε هو الخطأ التجريبي.
  7. قارن الوسائل باستخدام اختبار t للطالب واعتمد قيمة P < 0.05 كاحتمال حرج.

النتائج

يعرض الجدول 1 سمات الذبيحة للمجموعتين الوراثيتين اللتين تم بحثهما في هذه الدراسة. والجدير بالذكر أنه تم تحديد الاختلافات (P < 0.01) في HCW و REA و BFT ، حيث أظهرت المهجنة قيما أكبر ، مما يشير إلى تأثير التغاير .

متغير¹نيلورF1 أنجوس × نيلورسيمالقيمة الاحتمالية
BW النهائي ، كجم545.47ب615.09أمبير7.32<.0001
HCW ، كجم286.87ب325.12أمبير3.26<.0001
ريا، سم²75.17ب90.48أمبير1.66<.0001
بفت، مم5.72ب9.16أمبير0.620.001

الجدول 1: صفات الذبيحة للثيران Nellore (Bos indicus) و F1 Angus-Nellore (Bos taurus × Bos indicus). أ-ب تشير الأحرف الصغيرة المختلفة إلى الاختلافات عند P < 0.05. الاختصارات: BW = وزن الجسم ؛ HCW = وزن الذبيحة الساخنة ؛ REA = منطقة ريب آي ؛ BFT = سمك الدهون الخلفية. SEM = خطأ قياسي للمتوسط.

كما أجريت مقارنات لسمات جودة اللحوم (الجدول 2) ولم يتم العثور على فروق في درجة حموضة اللحوم والاحمرار و PL و EVP و CL (P > 0.05) بين ثيران Nellore مقابل F1 Angus-Nellore . ومع ذلك ، كان لدى الثيران المهجنة صندوق النقد الدولي ، والصفرة ، و WHC ، و MFI أكبر من ثيران نيلور (P < 0.05). وبالتالي ، تأثرت سمات جودة اللحوم لثيران نيلور سلبا من حيث الرقة ، مع زيادة WBSF و DL (اللحوم الأكثر صلابة) ، بالإضافة إلى انخفاض WHC وزيادة الرطوبة.

متغير¹نيلورF1 أنجوس × نيلورسيمالقيمة الاحتمالية
الرقم الهيدروجيني5.585.630.060.122
الرطوبة،٪74.51 أمبير73.65 ب0.210.017
صندوق النقد الدولي NIRS, ٪3.79أمبير5.11 ب0.250.002
طريقة الجاذبية لصندوق النقد الدولي ، ٪1.95 أمبير3.11 ب0.340.005
خفة (L *)31.57 أمبير30.98 ب0.580.008
احمرار (أ*)14.9115.590.370.061
اصفرار (ب *)5.61 أمبير6-19 ب0.170.003
خسارة التطهير،٪23.1721.031.220.176
فقدان التنقيط ،٪3.96 أمبير3.67 ب0.050.039
فقدان التبخر ،٪22.924.221.150.122
إجمالي فقد الطهي ،٪26.828.081.040.764
WHC, ٪61.363.51.010.042
WBSF ، كجم4.68 أمبير4.23 ب0.170.002
مؤسسة التمويل الأصغر64.95 أمبير81.76 ب1.540.005

الجدول 2: سمات جودة اللحوم من نيلور التسمين النهائي (Bos indicus) و F1 Angus-Nellore (Bos taurus × Bos indicus).  أ-ب تشير الأحرف الصغيرة المختلفة إلى الاختلافات عند P < 0.05. الاختصارات: IMF = محتوى الدهون العضلي. WBSF = قوة القص وارنر بلاتزلر. MFI = مؤشر تجزئة اللييفات العضلية ؛ WHC = القدرة على الاحتفاظ بالمياه.

يمكن أن ترتبط الاختلافات في طراوة اللحم أيضا بالاختلافات في MyHC IIa (P < 0.01) بين المجموعات التجريبية (الشكل 1). أظهرت ثيران F1 Angus-Nellore وفرة أعلى من MyHC IIa مقارنة بثيران نيلور. تشير هذه النتائج إلى أنه بالنسبة لحيوانات نيلور ، حدث تعديل من ألياف تحلل السكر السريع (MyHC IIx) إلى ألياف تحلل السكر سريعة الأكسدة (MyHC IIa). في المقابل ، بالنسبة لحيوانات F1 Angus-Nellore ، حدث هذا التعديل بحجم أقل ، مما أظهر نموا ضخما ملحوظا للألياف سريعة التحلل (MyHC IIx). وهكذا، اختلف التعبير عن الأشكال المتماثلة MyHC-IIa بشكل واضح بين هذه المجموعات.

figure-results-1
الشكل 1: الرحلان الكهربي لأشكال الميوسين ذات السلسلة الثقيلة لعضلة لونجيسيموس الصدرية . (أ) نيلور و(ب) ثيران أنجوس نيلور F1. (ج) النسبة المئوية النسبية لأشكال MyHC في العضلة الصدرية Longissimus لمجموعتين تجريبيتين (SDS-PAGE gel 7-10٪). الاختصارات: MyHC = سلسلة الميوسين الثقيلة. SDS-PAGE = الصوديوم دوديسيل سلفات-بولي أكريلاميد هلام الكهربائي. يرجى النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل التكميلي S1: طريقة لقياس سمك الدهون الخلفية (BFT) في الواجهة بين الدهون تحت الجلد والدهون العضلية. تتضمن العملية تحديد معالم تشريحية محددة ، بما في ذلك الحد الإنسي "A" ونقطة ثلاثة أرباع على طول العين الضلعية وفي منتصف الطريق عبر "B". ثم يتم وضع الفرجار بشكل عمودي على الضلع المحدد عند النقطة B ، ويمتد إلى الواجهة بين الدهون تحت الجلد والدهون العضلية. يتم قياس سمك الدهون تحت الجلد عن طريق وضع الفرجار بزاوية قائمة على خط الدهون تحت الجلد من نقطة الواجهة. الرجاء الضغط هنا لتنزيل هذا الملف.

المناقشة

أثناء تقييم الذبيحة ، من الأهمية بمكان قياس سمات النمو والجودة بدقة بعد فترة تبريد مدتها 48 ساعة للحصول على بيانات متسقة وقابلة للمقارنة. أظهر النموذجان البيولوجيان سمات ذبيحة متباينة ، خاصة HCW و REA و BFT ، والتي تتوافق مع النتائج المبلغ عنها في دراسات أخرى. يتوافق متوسط HCW لثيران Nellore مع تفضيلات السوق البرازيلية ، والتي تعطي الأولوية لإنتاج لحوم أكبر لكل وحدة حيوانية ذات محتوى دهون أقل25. على العكس من ذلك ، فإن الماشية المهجنة (Bos taurus × Bos indicus) لها أوزان ذبيحة أعلى ودرجات رخامي أكبر ، والتي تنتج لحوما ذات جودة حسية فائقة. هذا يلبي طلب السوق على لحوم البقر ذات القيمة المضافة المرتفعة ، حيث ترتبط هذه السمات بمنتجات اللحوم الممتازة26.

يتماشى متوسط قيم الأس الهيدروجيني التي تم الحصول عليها ، والتي تتراوح بين 5.3 و 5.5 ، بشكل وثيق مع قيم الأدبيات المبلغ عنها للحوم البقر27 ، والتي تتراوح عادة من 5.3 إلى 5.6. تتوافق متغيرات اللون L * و a * و b * مع متوسط قيم الأبقار التي لوحظت في دراسات أخرى 7,28. أبلغت هذه الدراسات عن متغيرات b * و a * و L * تتراوح من 4.0 إلى 7.0 و 13 إلى 16 و 30.0 إلى 32.0 على التوالي. في فحوصات جودة اللحوم هذه ، يجب أن يكون تحضير العينات دقيقا ، بما في ذلك المعالجة السليمة لعينات العضلات ، بما في ذلك عملية الشيخوخة الموحدة ووقت الإزهار قبل التحليل ، لضمان التوحيد. تتطلب بروتوكولات المعايرة والقياس معايرة جميع الأجهزة ، مثل أجهزة قياس الأس الهيدروجيني ومقاييس الألوان ، بدقة قبل الاستخدام للحفاظ على سلامة القياسات.

ينتج لون اللحم عن تفاعل الأكسجين مع الميوجلوبين في العضلات ، ويبدو أن تركيز الميوجلوبين يتناسب مع حجم29. تم الإبلاغ عن نتائج مماثلة من قبل Purchas et al.30 للحيوانات الأوروبية (Bos taurus) ، حيث لاحظوا احمرارا وصفرا أعلى في لحوم ماشية أنجوس سريعة النمو مقارنة بالحيوانات بطيئة النمو. أفادت الدراسات السابقة عن الفائدة المحتملة لمعلمات اللون (L * ، a * ، b *) كأداة للتنبؤ بحنان اللحم البقري في كل منالأوروبية 31 و Zebu32.

يعد فحص لون اللحوم أمرا محوريا ، حيث يصنف من بين العوامل الأساسية التي يأخذها المستهلكون في الاعتبار عند شراء اللحوم ، إلى جانب اعتبارات سلامة الأغذية (منشأ المنتج وتجارته) ، ونوع القطع وحجمها ، وكذلك السمنة والدهون العضلية (الرخامي). وبالتالي ، لتعزيز احتمالية أن يكون اللحم طريا وعصيرا ، ينصح المستهلكون بتقييم لون اللحم ، وحجم القطع ، ولا سيما الرخامي أو الدهون العضلية وتحت الجلد33. ومع ذلك ، فمن الواضح أن اللون يمارس التأثير الأكثر أهمية على صنع القرار أثناء شراء اللحوم.

انخفض متوسط قيمة WBSF التي تم الحصول عليها في حدود 4.0 إلى 4.7 كجم. تم استخدام تحليل الحنان الموضوعي على نطاق واسع لتقييم طراوة اللحم ، حيث يعتبر فعالا نسبيا من حيث التكلفة ولا يتطلب أعضاء اللجنة أو الاختبارات الحسية34. نظرا للطبيعة الذاتية لتقييمات المستهلكين حول طراوة اللحم البقري ، والتي تتأثر بصندوق النقدالدولي 35 ، فإن الأساليب الفعالة ضرورية للتنبؤ بتصنيفات الرقة. وبالإضافة إلى ذلك، فإن حساسية بعض الطرائق، مثل التحليل الطيفي بالأشعة تحت الحمراء القريبة، تستلزم معايرة دقيقة واتساقا في إعداد العينات؛ أي انحراف يمكن أن يؤدي إلى قراءات غير دقيقة.

خضع المفهوم الأصلي لأداة WBSF لبعض التغييرات منذ 60s36. في سياق لحم البقر ، تم توحيد هذه الطريقة بواسطة Wheeler et al.37. وفقا للمؤلفين ، يجب التحكم بدقة في إعداد العينات وطهيها: يتم وضع العينات على شبكة فوق زجاج حراري وطهيها حتى تصل إلى درجة حرارة داخلية تبلغ 71 درجة مئوية. بعد الطهي ، يتم تبريد العينات ووزنها وتبريدها عند 4 درجات مئوية لمدة 24 ساعة لتثبيتها قبل إجراء مزيد من التحليل. يتم حساب خسائر الطهي باستخدام صيغ لفقدان التنقيط وفقدان التبخر ، مما يضمن تحديد تغيرات الوزن بسبب الطهي بدقة. يعد قياس WBSF خطوة حاسمة ، تتضمن تقسيم ثمانية نوى لكل عينة ، بمتوسط ست قيم لقوة القص تم الإبلاغ عنها بعد استبعاد التطرف ، مما يوفر مقياسا موثوقا لطراوة اللحم. كان إجمالي خسائر الطهي في الدراسة الحالية ، ممثلة بمجموع EL و DL ، مشابها لتلك المبلغ عنها في ماشية اللحم البقريالجاهزة 38. علاوة على ذلك ، من المقبول على نطاق واسع أن التغيرات التي تسببها الحرارة في النسيج الضام تساهم في تأثير طري. أظهرت الدراسات تأثير درجة حرارة الطهي النهائية على الحنان ، وكشفت عن تغيرات في بنية الليفي العضلي ، حيث يتأثر كل من الرقة و CL بتمسخ البروتين39,40. قد تؤثر هذه الأحداث الكيميائية أو الجزيئية على الخصائص الحسية بسبب التغيرات في WHC.

تتوافق النتائج المرصودة المتعلقة ب CL و WHC مع التوقعات ، حيث أنه من الثابت أن توزيع المياه وتوافرها في العضلات يلعبان دورا محوريا في العصارة والحنان والنكهة41. وبالتالي ، يؤدي ارتفاع DL وانخفاض WHC إلى لحوم أكثر صلابة وأقل غضا ، كما لوحظ في هذه الدراسة لثيران نيلور.

تستخدم التحليلات الكيميائية الحيوية مثل MFI كمؤشر على طراوة اللحم. تؤكد النتائج التي تم الحصول عليها في الدراسة الحالية أن MFI في لحم البقر يتناقص مع زيادة قيمة WBSF ، مما قد يشير إلى انخفاض تجزئة الليفي العضلي في اللحوم الأكثر صلابة. وبالتالي ، يعمل MFI كمؤشر على تحلل البروتين للألياف العضلية ، ويزداد مع انخفاض WBSF42. أفاد الباحثون أن ارتفاع معدل تحلل البروتين الليفي العضلي أدى إلى زيادة الحنان في لحم البقر43 ولحم الضأن44. يتضمن هذا الفحص الكيميائي الحيوي للتحلل البروتيني بعد الوفاة تجانس عينات LT في محلول عازل محدد ، يليه الطرد المركزي والتعليق ، مع تحديد تركيز البروتين باستخدام طريقة بيوريت. ثم يتم قياس MFI عبر القياس الطيفي ، مما يوفر مؤشرا يعكس درجة تجزئة الليفي العضلي. تضمن هذه الخطوات التي يتم التحكم فيها بدقة سلامة وموثوقية البيانات ، وهو أمر بالغ الأهمية لتقييم الجودة والقيمة السوقية لمنتجات اللحوم.

علاوة على ذلك ، يمكن أن تفسر مؤسسة التمويل الأصغر أكثر من 50٪ من التباين في الحنان في اللحوم القديمة. عند دراسة السلالات أو المجموعات المختلفة ، لا تعتمد الاختلافات في طراوة اللحوم فقط على العوامل الوراثية. خاصة بالنسبة لعضلة LT ، كما هو موضح في هذا البحث ، يعزى تباين الرقة في المقام الأول إلى التحلل البروتيني للبروتينات الليفية العضلية ، وبدرجة أقل ، إلى طول القطعة العضلية ومحتوى النسيج الضام45. ومع ذلك ، يمكن أن تكون العلاقة بين WBSF و MFI بمثابة أداة قيمة للكشف عن المشكلات في طراوة اللحوم الناتجة عن عمليات التخزين البارد بعد الوفاة في صناعة اللحوم. من المهم ملاحظة أنه على الرغم من أن دراستنا توفر نظرة ثاقبة للاختلافات بين نوع السلالة ، إلا أنها لا تشكل تقييما جينيا شاملا بسبب حجم العينة ونطاق بحثنا.

يتطلب التحليل الجزيئي تحكما صارما في ظروف الرحلان الكهربائي والتحليل اللاحق لأشكال MyHC لضمان موثوقية فصل البروتين وتحديده. يضمن الالتزام بهذه الخطوات الحاسمة متانة نتائج الدراسة وإمكانية تكرارها. يلعب نوع الألياف العضلية دورا أساسيا في تعديل النمو وسمات حنان اللحم البقري. بروتينات MyHC هي البروتينات الأكثر وفرة في العضلات البقرية46 ويتم دراستها بشكل شائع للتعرف الجزيئي على أنواع الألياف في كل عضلة. تم اقتراح بعض الأشكال المتماثلة ل MyHC ، مثل MyHC-IIx ، كمؤشرات حيوية لطراوة اللحم في Bos taurus47. ومع ذلك ، كانت هناك دراسات محدودة لتقييم الجينات التي تشفر MyHC وتحديد أشكالها المتساوية في Zebu (Bos indicus). يتوافق غياب الشكل المتماثل MyHC-IIb في المدروسة مع النتائج المبلغ عنها في الدراسات حول تحديد وتعبير MyHC في العضلات الهيكلية للماشية البالغة48. على وجه التحديد ، في ماشية نيلور ، لم تتمكن الدراسات السابقة من اكتشاف وجود الشكل المتماثل MyHC-IIb عن طريق الرحلان الكهربائي في عضلة LT. هذا الشكل المتماثل أكثر شيوعا في سلالات Bos taurus مزدوجة العضلات ، مثل Blonde d'Aquitaine49.

كانت العلاقة بين نوع الألياف العضلية وحنان اللحم البقري موضوعا للنقاش المستمر. يعد تباين العينة عاملا مهما ، حيث يمكن أن تؤدي الاختلافات في تكوين العضلات وأنواع الألياف بين إلى نتائج غير متسقة. تلعب العوامل البيئية ، بما في ذلك النظام الغذائي وظروف المناولة ، دورا حاسما في التأثير على سمات جودة اللحوم. تسلط هذه القيود الضوء على الحاجة إلى رقابة صارمة وتوحيد طوال عملية القياس لضمان نتائج موثوقة وقابلة للمقارنة. على غرار النتائج في الدراسة الحالية ، تم الإبلاغ عن تأثير سلبي ل MyHC-I على حنان عضلات LT لماشية Charolais50,51. في المقابل ، وصفت دراسات أخرى تأثيرا إيجابيا ل MyHC-I على طراوة اللحوم في سلالات مختلفة ، بما في ذلك Aubrac و Salers و Limousin و Charolais و Montbéliard و Holstein و Blonde d'Aquitaine52،53،54. يمكن أن تعزى النتائج المتباينة الموجودة في الأدبيات إلى اختلافات النمط الجيني وقيود الطرق المستخدمة لفصل وتحديد هذا الشكل المتماثل في عضلة LT البقري. إلى جانب ذلك ، يمكن أن تؤثر البيئات الخلفية والوجبات الغذائية المختلفة أيضا على جودة اللحوم وسمات نوع العضلات.

تسلط التحليلات الكيميائية الحيوية ، ولا سيما MFI ، الضوء على آليات طراوة اللحم البقري بعد الوفاة ، والتي توضح الدور الرئيسي لأنواع الألياف العضلية ، وأشكال سلسلة الميوسين الثقيلة ، وتأثيراتها على طراوة اللحم البقري. ويلاحظ عدم وجود بعض الأشكال المتماثلة لمركبات الهيدروكلورايد الفطرية في ماشية Bos indicus ، مع ما يترتب على ذلك من آثار على تباين طراوة لحوم البقر. بشكل عام ، ينظم التفاعل المعقد للعوامل الوراثية والكيميائية الحيوية طراوة اللحم البقري ويسلط الضوء على الحاجة إلى مزيد من البحث في هذا المجال. يساعد تكامل طرق متعددة مثل قياس WBSF ، وتحليل محتوى صندوق النقد الدولي ، والرحلان الكهربائي ل MyHC على تفسير الاختلافات في جودة اللحوم. تقدم البروتوكولات التفصيلية الموصوفة خطوات دقيقة لتقييم جودة اللحوم ، مما يضمن إمكانية تكرار الإجراءات أو تكييفها بدقة من قبل باحثين آخرين. بالإضافة إلى ذلك ، تقدم النتائج رؤى وراثية قيمة من خلال تسليط الضوء على الاختلافات الكبيرة في سمات جودة اللحوم بين Bos indicus والثيران المهجنة.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين ما يكشفون عنه. لم يكن للممولين أي دور في تصميم الدراسة أو جمع البيانات وتحليلها أو قرار النشر أو إعداد المخطوطة.

شكر وتقدير

تم تمويل هذا البحث من قبل FAPESP (منح 2023/05002-3 ؛ 2023/02662-2 و 2024/09871-9) ، CAPES (رمز المالية 001) ، CNPq (304158 / 2022-4) ، ومن قبل PROPE (منحة IEPe-RC رقم 149) من كلية الطب البيطري وعلوم ، جامعة ولاية ساو باولو.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
أسيتونميرك ، دارمشتات ، ألمانياCAS 67-64-1 | 100014الحلول المستخدمة للفواصل الكهربية
المضادة للأجسام المضادة ل MYH-1Merk ، دارمشتات ، ألمانياMABT846الأجسام
المضادة للجرذ الوحيدة المضادة للميوسينAbcam ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدةab37484السلسلة الثقيلة Myosin
Anti-Myosin-2 (MYH2) الأجسام المضادةMerk ، دارمشتات ، ألمانياMABT840Extensor digitorum longus (EDL)
حاضنة الطلب البيولوجي على الأكسجين (BOD)TECNAL، S & atilde. o باولو ، البرازيلTE-371 / 240Lشيخوخة
اللحوم الكلوروفورم. الكاشف التحليلي المطلقسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة67-66-3نظام الدهون العضلية
CIELabكونيكا مينولتا الاستشعار ، طوكيو ، اليابانCR-400 مقياس الألوانلون اللحم
Coomassie BlueSigma-Aldrich ، ميسوري ، الولايات المتحدةC.I. 42655)سلسلة الميوسين الكهربائية
فرنVen â ncio Aires ، ريو غراندي دو سول ، البرازيللحان اللحوم
الإيثانولميرك ، دارمشتات ، ألمانيا64-17-5حلول تستخدم للفواصل الكهربية
حمض الإيثيلين ديامين تترا أسيتيكسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة60-00-4بعد الوفاة تحلل البروتين
قوارير زجاجيةسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدةالحلول المستخدمة في الفواصل الكهربية
GlycineSigma-Aldrich ، ميسوري ، الولايات المتحدةG6761بالأشعة تحت الحمراء ذات السلسلة الثقيلة الميوسين
- FoodScanFoss NIRSystems ، Madson ، الولايات المتحدةFoodScan & trade ؛ 2الدهون العضلية
كلوريد المغنيسيومسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة  ؛ 7786-30-3تحلل البروتين بعد الوفاة
MercaptoetanolSigma-Aldrich ، ميسوري ، الولايات المتحدةM6250Myosin سلسلة ثقيلة
الميثانول ، كاشف تحليلي مطلقSigma-Aldrich ، ميسوري ، الولايات المتحدة67-56-1للدهون العضلية
LineLab ، S & atilde ؛ o باولو ، البرازيلAKLA 71980درجة الحموضة للحوم
PlusOne 2-D Quant KitGE Healthcareرمز المنتج 80-6483-56التحلل البروتيني بعد الوفاة
البولي بروبيلينسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدةالمحاليل المستخدمة في الفصل الكهربائي
كلوريد البوتاسيومسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة7447-40-7الانحلال
البروتيني بعد الوفاةفوسفات البوتاسيومسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدةP0662التحلل البروتيني بعد الوفاة
Rفيينا ، النمساالإصدار 3.6.2تحليل البيانات
أزيد الصوديومسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة26628-22-8التحلل البروتيني بعد الوفاة
كبريتات دوديسيل الصوديوم ( SDS)سيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة822050ذو السلسلة الثقيلة الميوسين
بيركين إلمر ، شيلتون ، الولايات المتحدةبيركين إلمر
Lambda 25 الأشعة فوق البنفسجية / فيس		للتحلل البروتيني بعد الوفاة
SAS ، كاري ، نورث كارولينا ، الولايات المتحدةالإصدار 9.1 ،تحليل البيانات
محلل الملمسAMETEK Brookfield ، ماساتشوستس ، الولايات المتحدة
States		CTXلحان اللحوم
تريس (هيدروكسي ميثيل) أمينوميثانسيجما ألدريتش ، ميسوري ، الولايات المتحدة77-86-1سلسلة ميوسين ثقيلة
UltrafreezerIndrel Scientific ، لوندرينا ، باران & ، البرازيل.INDREL IULT 335 D - تخزين عينات LCD
مياه فائقة النقاءElga PURELAB حلول نظام Ultra Ionicالمستخدمة في الفواصل
خلاط القص العالي Ultra-TurraxMarconi & ndash ؛ MA102 / E ، بيراسيكابا ، S & atilde ؛ o باولو, البرازيلانحلال البروتين بعد الوفاة
التحليل الطيفي مقياس الأس الهيدروجيني برنامج مقياس الطيف الضوئي نظام التحليل الإحصائي الكهربية

المراجع

  1. Nunes, C. L. deC., Pflanzer, S. B., Rezende-de-Souza, J. H., Chizzotti, M. L. Beef production and carcass evaluation in Brazil. Anim Front. 14 (2), 15-20 (2024).
  2. MAPA. Projeções Do Agronegócio: Brasil 2017/18 a 2027/28 Projeções de Longo Prazo / Ministério Da Agricultura, Pecuária e Abastecimento. Biblioteca Nacional de Agricultura. , BINAGRI. Brasília-DF. (2018).
  3. Bernués, A., Ripoll, G., Panea, B. Consumer segmentation based on convenience orientation and attitudes towards quality attributes of lamb meat. Food Qual Prefer. 26, 211-220 (2012).
  4. Andrade, T. S., et al. Perception of consultants, feedlot owners, and packers regarding management and marketing decisions on feedlots: A national survey in Brazil (Part II). Can J Anim Sci. 100 (4), 759-770 (2020).
  5. de Andrade, T. S., et al. Perception of consultants, feedlot owners, and packers regarding the optimal economic slaughter endpoint in feedlots: A national survey in Brazil (Part I). Can J Anim Sci. 100 (4), 745-758 (2020).
  6. Santiago, B., et al. Comparison of dental carcass maturity in non-castrated male F1 Angus-Nellore cattle finished in feedlot. Food Sci Anim Resour. 41 (3), 554-562 (2021).
  7. Miguel, G. Z., et al. Immunocastration improves carcass traits and beef color attributes in Nellore and Nellore×Aberdeen Angus crossbred animals finished in feedlot. Meat Sci. 96 (2), 884-891 (2014).
  8. Costa, N. V., et al. Carcass and meat quality traits in Nellore and F1 Nellore-Araguaia crosses. Genet Mol Res. 14 (2), 5379-5389 (2015).
  9. Pinto, A. C. J., Millen, D. D. Nutritional recommendations and management practices adopted by feedlot cattle nutritionists: the 2016 Brazilian survey. Can J Anim Sci. 99 (2), 392-407 (2019).
  10. Costa Junior, C., et al. Brazilian beef cattle feedlot manure management: A country survey. J Anim Sci. 91 (4), 1811-1818 (2013).
  11. Huang, C., et al. Proteomics discovery of protein biomarkers linked to meat quality traits in post-mortem muscles: Current trends and future prospects: A review. Trends Food Sci Technol. 105, 416-432 (2020).
  12. Muniz, M. M. M., et al. Use of gene expression profile to identify potentially relevant transcripts to myofibrillar fragmentation index trait. Funct Integr Genomics. 20, 609-619 (2020).
  13. Official United States Standards for Grades of Carcass Beef. United States Standards for Grades of Carcass Beef. USDA. , Available from: https://www.ams.usda.gov/sites/default/files/media/CarcassBeefStandard.pdf 1-20 (1997).
  14. Anderson, S. Determination of fat, moisture, and protein in meat and meat products by using the FOSS FoodScan near-infrared spectrophotometer with FOSS artificial neural network calibration model and associated database: Collaborative study. J AOAC Int. 90 (4), 1073-1083 (2007).
  15. Bligh, E. G., Dyer, W. J. A rapid method of total lipid extraction. Can J Biochem Physiol. 37 (8), 911-917 (1959).
  16. Hernández Salueña, B., Sáenz Gamasa, C., Diñeiro Rubial, J. M., Alberdi Odriozola, C. CIELAB color paths during meat shelf life. Meat Sci. 157, 107889(2019).
  17. Rao, M. V., Gault, N. F. S., Kennedy, S. Variations in water-holding capacity due to changes in the fibre diameter, sarcomere length and connective tissue morphology of some beef muscles under acidic conditions below the ultimate pH. Meat Sci. 26 (1), 19-37 (1989).
  18. Wheeler, T. L., Koohmaraie, M., Cundiff, L. V., Dikeman, M. E. Effects of cooking and shearing methodology on variation in Warner-Bratzler shear force values in beef. J Anim Sci. 72 (9), 2325-2330 (1994).
  19. AMSA. Research Guidelines for Cookery, Sensory Evaluation, and Instrumental Tenderness Measurements of Meat. American Meat Science Association Educational Foundation. , (2015).
  20. Culler, R. D., Parrish, F. C., Smith, G. C., Cross, H. R. Relationship of myofibril fragmentation index to certain chemical, physical and sensory characteristics of bovine longissimus muscle. J Food Sci. 43 (4), 1177-1180 (1978).
  21. Borges, B. O., et al. Polymorphisms in candidate genes and their association with carcass traits and meat quality in Nellore cattle. Pesqui Agropecu Bras. 49 (5), 364-371 (2014).
  22. Gornall, A. G., Bardawill, C. J., David, M. M. Determination of serum proteins by means of the biuret reaction. J Biol Chem. 177 (2), 751-766 (1949).
  23. Chardulo, L. A. L., et al. Gene and protein expression of myosin heavy chain in Nellore cattle comparing growth or meat tenderness traits. Anim Biotechnol. 32 (3), 300-309 (2019).
  24. Vechetti-Júnior, I. J., et al. NFAT isoforms regulate muscle fiber type transition without altering can during aerobic training. Int J Sports Med. 34 (10), 861-867 (2013).
  25. Ferraz, J. B. S., de Felício, P. E. Production systems - An example from Brazil. Meat Sci. 84, 238-243 (2010).
  26. Liang, R. R., et al. Tenderness and sensory attributes of the longissimus lumborum muscles with different quality grades from Chinese fattened yellow crossbred steers. Meat Sci. 112, 52-57 (2016).
  27. Viljoen, H. F., De Kock, H. L., Webb, E. C. Consumer acceptability of dark, firm and dry (DFD) and normal pH beef steaks. Meat Sci. 61 (2), 181-185 (2002).
  28. Lopes, L. S. F., et al. Application of the principal component analysis , cluster analysis , and partial least square regression on crossbreed Angus-Nellore bulls feedlot finished. Trop Anim Health Prod. 52 (6), 3655-3664 (2020).
  29. Oddy, V. H., Harper, G. S., Greenwood, P. L., McDonagh, M. B. Nutritional and developmental effects on the intrinsic properties of muscles as they relate to the eating quality of beef. Aust J Exp Agric. 41 (7), 921-942 (2001).
  30. Purchas, R. W., Burnham, D. L., Morris, S. T. Effects of growth potential and growth path on tenderness of beef longissimus muscle from bulls and steers. J Anim Sci. 80 (12), 3211-3221 (2002).
  31. Wulf, D. M., O’Connor, S. F., Tatum, J. D., Smith, G. C. Using objective measures of muscle color to predict beef Longissimus tenderness. J Anim Sci. 75 (3), 684-692 (1997).
  32. Baldassini, W. A., et al. Meat quality traits of Nellore bulls according to different degrees of backfat thickness: A multivariate approach. Anim Prod Sci. 57 (2), 363-370 (2017).
  33. Chardulo, L. A. L., Silveira, A. C., Vianello, F. Analytical aspects for tropical meat quality assessment. Food Quality, Safety and Technology. Lima, G. P. P., Vianello, F. , Springer-Verlag Wien. 53-62 (2013).
  34. Chen, L., Opara, U. L. Texture measurement approaches in fresh and processed foods - A review. Food Research International. 51 (2), 823-835 (2013).
  35. Luo, L., Guo, D., Zhou, G., Chen, K. An investigation on the relationship among marbling features, physiological age and Warner–Bratzler Shear force of steer longissimus dorsi muscle. J Food Sci Technol. 55 (4), 1569-1574 (2018).
  36. Essex, E. Objective measurements for texture in foods. J Texture Stud. 1, 19-37 (1969).
  37. Wheeler, T. L., Koohmaraie, M., Shackelford, S. D. Standardized Warner-Bratzler shear force procedures for meat tenderness measurement. , Available from: https://www.ars.usda.gov/ARSUserFiles/30400510/protocols/shearforceprocedures.pdf (1995).
  38. Severino, M., et al. Proteomics unveils post-mortem changes in beef muscle proteins and provides insight into variations in meat quality traits of crossbred young steers and heifers raised in feedlot. Int J Mol Sci. 23 (20), 12259(2022).
  39. Bertola, N. C., Bevilacqua, A. E., Zaritsky, N. E. Heat treatment effect on texture changes and thermal denaturation of proteins in beef muscle. J Food Process Preserv. 18 (1), 31-46 (1994).
  40. Palka, K., Daun, H. Changes in texture, cooking losses, and myofibrillar structure of bovine M. semitendinosus during heating. Meat Sci. 51 (3), 237-243 (1999).
  41. Pearce, K. L., Rosenvold, K., Andersen, H. J., Hopkins, D. L. Water distribution and mobility in meat during the conversion of muscle to meat and ageing and the impacts on fresh meat quality attributes - A review. Meat Sci. 89 (2), 111-124 (2011).
  42. Muniz, M. M. M., et al. Use of gene expression profile to identify potentially relevant transcripts to myofibrillar fragmentation index trait. Funct Integr Genomics. 20 (4), 609-619 (2020).
  43. Baldassini, W., et al. Meat quality and muscle tissue proteome of crossbred bulls finished under feedlot using wet distiller grains by-product. Foods. 11 (20), 3233(2022).
  44. della Malva, A., et al. In-depth characterization of myofibrillar muscle proteome changes in lambs fed hazelnut skin by-products. Food Biosci. 53, 102836(2023).
  45. Koohmaraie, M., Kent, M. P., Shackelford, S. D., Veiseth, E., Wheeler, T. L. Meat tenderness and muscle growth: Is there any relationship. Meat Sci. 62 (3), 345-352 (2002).
  46. Lefaucheur, L., et al. Muscle characteristics and meat quality traits are affected by divergent selection on residual feed intake in pigs. J Anim Sci. 89 (4), 996-1010 (2011).
  47. Picard, B., et al. Inverse relationships between biomarkers and beef tenderness according to contractile and metabolic properties of the muscle. J Agric Food Chem. 62 (40), 9808-9818 (2014).
  48. Chikuni, K., Muroya, S., Nakajima, I. Myosin heavy chain isoforms expressed in bovine skeletal muscles. Meat Sci. 67 (1), 87-94 (2004).
  49. Picard, B., Cassar-Malek, I. Evidence for expression of IIb myosin heavy chain isoform in some skeletal muscles of Blonde d’Aquitaine bulls. Meat Sci. 82 (1), 30-36 (2009).
  50. Crouse, J. D., Koohmaraie, M., Seideman, S. D. The relationship of muscle fibre size to tenderness of beef. Meat Sci. 30 (4), 295-302 (1991).
  51. Zamora, F., et al. Predicting variability of ageing and toughness in beef M. Longissimus lumborum et thoracis. Meat Sci. 43 (3-4), 321-333 (1996).
  52. Strydom, P. E., Naude, R. T., Smith, M. F., Scholtz, M. M., Van Wyk, J. B. Characterisation of indigenous African cattle breeds in relation to meat quality traits. Meat Sci. 55 (1), 79-88 (2000).
  53. Renand, G., Picard, B., Touraille, C., Berge, P., Lepetit, J. Relationships between muscle characteristics and meat quality traits of young Charolais bulls. Meat Sci. 59 (1), 49-60 (2001).
  54. Chriki, S., et al. Meta-analysis of the comparison of the metabolic and contractile characteristics of two bovine muscles: Longissimus thoracis and semitendinosus. Meat Sci. 91 (4), 423-429 (2012).

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

الدهون العضليةقص وارنر-براتزلرتفتت اللييفات العضليةأنواع الألياف العضليةطراوة اللحمالفصل الكهربائي
استكشاف عضلة Longissimus: كشف ارتباطها بجودة اللحوم في Bos indicus والثيران المهجنة
تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.