يتطلب اشتراك JoVE لعرض هذا المحتوى. تسجيل الدخول أو ابدأ نسخة تجريبية مجانية

مقالة منهجية

خيوط سيليكون مطلية يدويا لنماذج انسداد الشريان الدماغي الأوسط للفئران

1.1K مشاهدة

⸱

DOI:

10.3791/67002

⸱

أغسطس 9, 2024

 ,  ,  ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Department of Neurology, Fifth Hospital of Shanxi Medical University, Shanxi Provincial People's Hospital, 2Department of Neurology, Taiyuan Central Hospital, Shan Xi Medical University, 3Experimental Animal Center, Shanxi Medical University, 4Collaborative Innovation Center for Molecular Imaging of Precision Medicine, Shan Xi Medical University

في هذه المقالة

ملخص

يصف هذا البروتوكول طريقة مباشرة لإنشاء خيوط مغلفة لنموذج انسداد الشريان الدماغي الأوسط (MCAO) في الفئران باستخدام خيوط السيليكون والنايلون وإبر المحقنة. تسمح هذه الطريقة بإنتاج خيوط ذات قطر ثابت وأطوال تغليف سيليكون مختلفة مصممة خصيصا لتلبية الاحتياجات التجريبية.

الملخص

مع تقدم سكان العالم في العمر ، ارتفعت السكتة الدماغية الإقفارية لتصبح السبب الرئيسي الثاني للإعاقة والوفيات في جميع أنحاء العالم ، مما يضع عبئا هائلا على كل من المجتمع والأسر. على الرغم من أن العلاجات مثل انحلال الخثار الوريدي والتدخلات داخل الأوعية الدموية يمكن أن تحسن بشكل كبير النتائج للمرضى الذين يعانون من السكتة الدماغية الإقفارية الحادة ، إلا أن نسبة صغيرة فقط من الأفراد يستفيدون من هذه العلاجات. لتعزيز فهمنا للمرض واكتشاف علاجات أكثر فعالية ، يعمل الباحثون باستمرار على تطوير وتحسين النماذج الحيوانية. من بين هؤلاء ، يبرز نموذج انسداد الشريان الدماغي الأوسط (MCAO) باعتباره النموذج الأكثر استخداما في أبحاث أمراض الأوعية الدموية الدماغية. الفتيل المستخدم في هذا النموذج أمر بالغ الأهمية لتطويره. يحدد هذا البروتوكول طريقة لإنشاء خيوط بأقطار متسقة وأطوال متفاوتة من طلاء السيليكون. أظهر نموذج MCAO الذي تم إنتاجه باستخدام هذه الطريقة في الفئران C57 نجاحا واتساقا عاليا ، مما يوفر أداة قيمة للتحقيقات المصممة خصيصا في أمراض الأوعية الدموية الدماغية الإقفارية.

المقدمة

السكتة الدماغية هي واحدة من أكثر أسباب الوفيات والعجز انتشارا في جميع أنحاء العالم. السكتات الدماغية الإقفارية والنزفية هي الأنواع الأساسية للأحداث الدماغية الوعائية ، حيث تمثل السكتات الدماغية الإقفارية حوالي 87٪ من الحالات1،2،3. حاليا ، هناك طريقتان للعلاج للمرضى الذين يعانون من السكتة الدماغية الإقفارية: العلاج الدوائي باستخدام منشط البلازمينوجين المؤتلف للأنسجة (rtPA) واستئصال الخثرة الميكانيكي. ومع ذلك ، فإن النافذة العلاجية الضيقة ومعايير الاستبعاد الواسعة تحد من تطبيق هذه العلاجات ، ولا تستفيد منها سوى أقلية من المرضى. هذا يؤكد الحاجة إلى بذل جهود متواصلة لتحسين علاجات السكتة الدماغيةالإقفارية 4،5. النماذج في المختبر غير كافية لتكرار الاستجابات الفيزيولوجية المرضية المعقدة بعد السكتة الدماغية ، مما يجعل النماذج الحيوانية مكونا لا غنى عنه في أبحاث السكتة الدماغية قبل السريرية. غالبا ما يحدث نقص التروية الدماغية البؤري البشري بسبب انسداد التخثر أو الانسداد الصمي للشريان الدماغي الأوسط (MCA) ، مما يجعل نماذج القوارض المصممة لمحاكاة انسداد MCA (MCAO) وثيقة الصلةللغاية 6.

يسهل نموذج MCAO الناجم عن الخيوط ، وهو الأكثر اعتمادا على نطاق واسع في أبحاث السكتة الدماغية ، الانسداد في بداية الشريان الدماغي الأوسط (MCA) وإعادة التروية اللاحقة ، مما يؤدي إلى احتشاء واسع النطاق عبر المناطق تحت القشرية والقشرية من الدماغ. تكمن ميزة هذا النموذج في قدرته على استعادة تدفق الدم بعد إحداث نقص تروية بؤرية ، وبالتالي موازاة العمليات الفيزيولوجية المرضية التي لوحظت في السكتة الدماغيةالبشرية 7. بالإضافة إلى ذلك ، يحاكي النموذج إصابة إعادة التروية ، وهو عامل حاسم في مدى الضرر8. ومع ذلك ، فإن نموذج MCAO له قيود ، بما في ذلك التباين في حجم الاحتشاء ، حيث من المحتمل أن يصل الانحراف المعياري إلى 64٪ من متوسط القيمة في بعض الدراسات9. على الرغم من أكثر من ثلاثة عقود من الاستخدام ، فإن الجهود المبذولة لتعزيز موثوقية النموذج مستمرة ، ومع ذلك لا تزال هناك اختلافات كبيرة في حجم الآفة الإقفارية عبر الدراسات والمختبرات10،11،12.

تقدم هذه المقالة خيوطا ذاتية الصنع لتحفيز النماذج التي تقيم درجات العجز العصبي ومناطق الاحتشاء الدماغي. يفحص العلاقة بين أطوال الخيوط المطلية بالسيليكون ونجاح واستقرار نموذج MCAO. تنتج تقنية الإنتاج هذه خيوطا ذات تناسق جدير بالثناء ، مما يساهم في تطوير نموذج MCAO مستقر نسبيا.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

البروتوكول

التزمت جميع الإجراءات الحيوانية بالإجراءات والمعايير التجريبية المعتمدة من قبل لجنة رعاية واستخدام المؤسسية لمستشفى مقاطعة شانشي الشعبية (رقم الموافقة: 2024 لجنة الأخلاقيات الطبية الإقليمية رقم 64). كانت الفئران المستخدمة في هذه التجربة من ذكور الفئران C57BL / 6 ، تتراوح أعمارهم بين 8 و 10 أسابيع ، ووزنها 24-26 جم. تفاصيل الكواشف والمعدات المستخدمة مدرجة في جدول المواد.

1. تحضير خيوط

  1. وضع علامة على الفتيل الأصلي: لف خياطة النايلون 6-0 بالتساوي حول لوحة المسطرة البلاستيكية. ضع علامات على بعد 5 مم و 10 مم من رأس الفتيل (بما في ذلك نقطة علامة الطلاء ونقطة علامة عمق الإدخال).
  2. قم بقصها عموديا لأسفل بشفرة للتأكد من أن كلا الطرفين دائريان تماما ، مما ينتج عنه خيوط أولية بطول 2 سم (الشكل 1).
  3. تصنيع جهاز الطلاء: استخدم ملقطا مرقئا لقطع رأس الإبرة لحقنة 26 جم ، ثم قم بتلميع ثقب الإبرة في دائرة مثالية بورق الصنفرة. ارسم 2 مل من مانع التسرب السيليكوني K-704 بحقنة 10 مللي كلفن ، وأخيرا ، قم بتوصيل رأس الإبرة بالمحقنة.
  4. طلاء الفتيل: أدخل الفتيل الأولي في فتحة الإبرة المعدة حتى الموضع المحدد 5 مم أو 10 مم. ادفع المحقنة ببطء وثبات حتى يتم طلاء الفتيل بالكامل تحت مجهر مجسم (الشكل 2).
  5. ضبط الفتيل المطلي: قم بتثبيت الفتيل المطلي في وضع مستقيم بشريط لاصق وانتظر حوالي 20 دقيقة حتى يتم ضبط السيليكون بالكامل.
  6. التعقيم والتعبئة والتغليف: انقع الخيوط المحضرة في كحول 75٪ ، وامسحها حتى تجف بقطعة قطن ، ثم قم بتعبئتها في أنابيب طرد مركزي سعة 5 مل.

2. نموذج MCAO

ملاحظة: تم تعقيم الأدوات الجراحية عن طريق التعقيم (121 درجة مئوية عند 15 رطل لكل بوصة مربعة لمدة 60 دقيقة). تم تعقيم طاولة الجراحة والمعدات الأخرى باستخدام 75٪ من الإيثانول. تم صيام الفئران لمدة 8 ساعات قبل الجراحة ولكن سمح لها بحرية الوصول إلى الماء.

  1. يجب تطبيق 5 ملغ/كغ من ميلوكسيكام تحت الجلد لعلاج التسكين قبل 60 دقيقة من الجراحة. قم بتوصيل بطانية حرارية للحفاظ على درجة حرارة جسم الماوس عند 37 درجة مئوية أثناء التخدير.
  2. تحفيز التخدير بنسبة 4٪ من الأيزوفلوران حتى تتوقف الحركات العفوية وارتعاش الشعيرات ، ثم حافظ على التخدير بنسبة 1.5٪ (باتباع البروتوكولات المعتمدة مؤسسيا). ضع مرهم العين على كلتا العينين.
  3. ضع الفأر في وضع ضعيف ، وقم بتأمين رأسه وأطرافه ، وحلق شعر رقبته وأعلى صدره ، وقم بتطهير الجلد بنسبة 75٪ من الإيثانول من الداخل إلى الخارج.
  4. قم بعمل شق جلدي بطول 2.5 سم على طول خط الوسط للرقبة ، من الفك السفلي إلى القص.
  5. قم بتشريح عضلات الرقبة اليمنى بصراحة لفضح غمد الشريان السباتي. استخدم ملقط العين لفتح الغمد وفصل الشريان السباتي المشترك (CCA) والشريان السباتي الخارجي (ECA) والشريان السباتي الداخلي (ICA) ، مع الحرص على تجنب إزعاج العصب المبهم.
  6. قم بربط CCA مؤقتا بعقدة منزلقة قبل التشعب وقم بتثبيت ICA بمشبك شريان جراحي مجهري.
  7. كي الشريان الغرقي العلوي من ECA باستخدام قلم تخثر ثنائي القطب.
  8. اترك خيطين على ECA للربط: أحدهما على الطرف البعيد للربط الدائم والآخر على الطرف القريب مع عقدة فضفاضة للاستخدام في المستقبل. قم بعمل شق بحجم 0.5 مم تقريبا بين الرباطين على ECA باستخدام مقص العيون لإدخال الفتيل.
  9. أدخل الفتيل المطلي بالسيليكون مقاس 5 مم أو 10 مم في CCA من خلال الشق ثم قم بتثبيته عن طريق شد العقدة السائبة.
  10. بعد قطع الطرف البعيد من ECA وإزالة المشبك من ICA, سحب الفتيل إلى تشعب CCA. بعد ذلك ، اقلب الفتيل وقدمه إلى ICA العميق حتى يشعر المرء بالمقاومة. اسحب الفتيل قليلا وقم بتثبيته عن طريق شد العقدة.
  11. خياطة جلد بخياطة 3-0 وتطهير الجرح باليود. ضع الماوس في غرفة الاسترداد لمدة 1 ساعة.
  12. قم بتخدير الماوس مرة أخرى ، وقم بإزالة الفتيل برفق ، واربط خيط ربط ECA الذي يثبت الفتيل ، وحرر عقدة CCA لاستعادة تدفق الدم وإعادة إنفاذ الشريان الدماغي الأوسط.
  13. تقليم الخيوط الزائدة ، وخياطة جلد الرقبة ، وتطهير المنطقة مرة أخرى.

3. عملية الشام

  1. للعمليات الوهمية ، أدخل خيوطا مطلية بالسيليكون مقاس 7 مم لإغلاق الشريان الدماغي الأوسط الأيمن ثم اسحبه على الفور للسماح بإعادة التروية الفورية.
    ملاحظة: الإجراء اللاحق مطابق لتلك التي يتم إجراؤها على التي تخضع لنقص التروية الدماغية.

4. النقاط العصبية

  1. ضع التجارب من كل مجموعة في حقل مفتوح وقم بإجراء تسجيل سلوكي بعد الجراحة بعد 4 ساعات من إعادة تروية نقص التروية الدماغية.
  2. للحصول على نمذجة ناجحة ، ضع في اعتبارك الدرجات بين 1 و 3. تستند معايير التقييم إلى طريقة تسجيل لونجا10 ، كما هو مفصل في الجدول 1.
  3. تقييم العجز العصبي وفقا لدرجات الشدة العصبية المعدلة (mNSS) 13 ، مع إجراء التقييمات في 24 ساعة و 72 ساعة بعد إعادة التروية (انظر الجدول 2).

5. نضح عبر القلب

  1. تخدير الفأر باستخدام 1.5٪ بنتوباربيتال الصوديوم (باتباع البروتوكولات المعتمدة مؤسسيا). ضع الماوس مرة أخرى في قفصه وانتظر لمدة 10 دقائق. بعد ذلك ، اضغط على أصابع أصابع الماوس لاختبار عدم وجود ردود أفعال وضمان التخدير العميق.
  2. ضع الفأر في وضع ضعيف على حامل رغوي وقم بتأمين أطرافه.
  3. اقطع طرف إبرة 25 جم لخففها ، مما يمنع ثقب جدار الأبهر. قم بتوصيل الإبرة بحقنة مملوءة ب 20 مل من المحلول الملحي.
  4. ارفع فرو الصدر واستخدم المقص لقطع الجلد لفضح عملية الخنجري. أمسك عملية الخنجري واقطعها أفقيا أسفلها لكشف الحجاب الحاجز عن طريق فتح طبقة العضلات. قطع الحجاب الحاجز بعناية بالمقص ، وتجنب تلف القلب.
  5. اقطع على طول الجانب الخارجي من القص لفتح القفص الصدري على كلا الجانبين ، واقلب الجدار الأمامي للصدر ، وثبته بالمرقئ.
  6. استخدم قطعة قطن لإزالة الدهون الموجودة في قاعدة القلب ، وتعريض جذر الشريان الأورطي.
  7. قم بتأمين القلب بالملقط ، وأدخل الإبرة في قمة القلب ، وتقدم بشكل غير مباشر لأعلى حتى تظهر الإبرة من خلال جدار الأبهر. المشبك الإبرة في مكانها.
  8. قم بعمل قطع صغير في الأذين الأيمن لمراقبة تدفق الدم. قم ببث المحلول الملحي بثبات بالمحقنة ، وراقب خروج الدم من الأذين الأيمن. بمجرد أن تصبح النفايات السائلة صافية ، أوقف التروية14.
  9. بعد التروية ، اقطع رأس الفأر لحصاد الدماغ15 وضعه في فريزر -20 درجة مئوية لمزيد من المعالجة.

6. تقييم حجم الاحتشاء عن طريق تلطيخ TTC

  1. قم بتجميد أنسجة المخ المشتراة بسرعة في فريزر -20 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة ، ثم ضعها على قالب تقطيع الدماغ المبرد مسبقا وقم بتقسيمها إلى شرائح بسمك 1 مم.
  2. اغمر أقسام الدماغ التي تم الحصول عليها في محلول TTC بنسبة 2٪ واحتضانها عند 37 درجة مئوية لمدة 20 دقيقة.
  3. اغمر شرائح الدماغ في 4٪ بارافورمالدهيد طوال الليل والتقط صورا في اليوم التالي.
  4. قم بقياس المنطقة المحشية لكل شريحة ومنطقة الدماغ الكلية باستخدام ImageJ. احسب نسبة حجم الاحتشاء باستخدام الصيغة: حجم الاحتشاء ٪ = (مجموع المناطق المحشية / مجموع إجمالي مناطق الدماغ) × 100٪.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

النتائج

في إنشاء نموذج MCAO ، يتم عرض الأدوات الأساسية المستخدمة لتصنيع الخيوط والخيوط النهائية في الشكل 3. بعد إنتاج الخيوط ، يتم إنشاء نموذج MCAO عن طريق إدخال الفتيل من خلال الشريان السباتي الخارجي ، مع تسجيل مدة العملية. يتم تعريف النمذجة الناجحة من خلال درجة لونجا من 1-3 4 ساعات بعد سحب الفتيل. يتم مراقبة وزن الجسم يوميا بعد العملية. يتم تقييم العجز العصبي باستخدام درجات الشدة العصبية المعدلة (mNSS) في 24 ساعة و 72 ساعة بعد الجراحة. يتم تقييم الضرر الإقفاري من خلال تلطيخ TTC.

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المناقشة

توضح هذه الدراسة طريقة بسيطة وفعالة من حيث التكلفة لتصنيع الخيوط ، مما يؤكد جدواها في إنشاء نموذج MCAO. يمكن تعديل طول طبقة السيليكون للفتيل وفقا للاحتياجات التجريبية ، مما يوفر مرونة إضافية. حقق تحضير صمة خيوط 5 مم معدل نجاح بنسبة 100٪ دون حدوث أي نزيف تحت العنكبوتية (SAH) في الفئران. في المجموعة التي استخدمت صمات خيوط 10 مم ، كانت هناك حالات من SAH ، بينما أظهرت بقية الفئران احتشاء واضحا في منطقة MCA. كانت الخطوة الحاسمة في تقليل SAH هي سحب الفتيل قليلا عند مواجهة المقاومة أثناء العملي...

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

الإفصاحات

ليس لدى المؤلفين أي تضارب في المصالح للإعلان عنه.

شكر وتقدير

تم دعم هذا العمل من قبل مؤسسة وو جيبينغ الطبية (320.6750.161290).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

المواد

قائمة المواد المستخدمة في هذه المقالة
الاسمالشركةرقم فهرسيالتعليقات
10 مل حقنةHaidike المنتجات الطبية المحدودةأداة لصنع خيوط
2،3،5-كلوريد Triphenyltetrazolium (TTC) صبغةSigma-AldrichG3005لتلوين TTC
لوحة ثقافة 24 بئرCorning   ؛CLS3527وعاء لتلوين TTC
26 جرام إبرة حقنةHaidike Medical Products Co.، Ltd.أداة لصنع الخيوط
4٪ paraformaldehydeServicebioG1101تثبيت الأنسجة
6-0 خياطة النايلونHaidike Medical Products Co.، Ltd.مواد لصنع خيوط
نظام التخدير لشركة isofluraneRwd Life Science Co.، Ltd.R610 مخدر
مولد التخثير الكهربائي ثنائي القطبYirun Medical Instrument Co.، Ltd.ZG300معدات للجراحة
حمام مائي بدرجة حرارة ثابتةالربيع   ؛ شركة الصك المحدودةHH-M6TTC تلطيخ
مرهم العينقوانغتشو الصيدلانيةH44023098المواد للجراحة
بطانية حراريةZH Biomedical Instrument Co.، Ltd.الحفاظ على مزاج الجسم 
شركة IsofluraneRwd Life Science Co.، Ltd.R510-22-10مخدر
MeloxicamBoehringer-IngelheimJ20160020تسكين للحيوان
مشبك الشريان الجراحيالمجهري شنغهاي Jinzhong الأدوات الجراحية المحدودة & nbsp ؛W40130أداة للجراحة
ملقط مشبك مرقئ الجراحةالمجهرية شنغهاي Jinzhong الأدوات الجراحية المحدودة   ؛M-W-0022أداة للجراحة
مجموعة أدوات الجراحة المجهريةRwd Life Science Co.، Ltd.SP0009-Rمعدات للجراحة
ميزان حرارة الماوسHubei Dasjiaer التكنولوجيا الحيويةFT3400أثناء الجراحة مراقبة درجة الحرارة
البنتوباربيتال الصوديومSigma-AldrichP3761القتل الرحيم
Joyu الأجهزة الكهربائيةPHC-920معدات للجراحة
سيليكون مانع التسربKafuterK-704المواد لصنع خيوط
المجهر المجسمRwd علوم الحياة المحدودة77001Sمعدات لخيوط خياطة الجراحة
بإبرة (3-0)شنغهاي بودونغ جينهوان للمنتجات الطبية المحدودة   ؛معدات F404SUS302للجراحة
ماكينة حلاقة

المراجع

  1. Collaborators GBDS. Global, regional, and national burden of stroke and its risk factors, 1990-2019: A systematic analysis for the global burden of disease study 2019. Lancet Neurol. 20 (10), 795-820 (2021).
  2. Kleindorfer, D. O., et al. Guideline for the prevention of stroke in patients with stroke and transient ischemic attack: A guideline from the American Heart Association/American Stroke Association. Stroke. 52 (7), e364-e467 (2021).
  3. Saini, V., Guada, L., Yavagal, D. R. Global epidemiology of stroke and access to acute ischemic stroke interventions. Neurology. 97 (20 Suppl 2), S6-S16 (2021).
  4. Hill, M. D., Coutts, S. B. Alteplase in acute ischaemic stroke: The need for speed. Lancet. 384 (9958), 1904-1906 (2014).
  5. Asif, K. S., et al. Mechanical thrombectomy global access for stroke (mt-glass): A mission thrombectomy (mt-2020 plus) study. Circulation. 147 (16), 1208-1220 (2023).
  6. Fluri, F., Schuhmann, M. K., Kleinschnitz, C. Animal models of ischemic stroke and their application in clinical research. Drug Des Devel Ther. 9, 3445-3454 (2015).
  7. Ringelstein, E. B., et al. Type and extent of hemispheric brain infarctions and clinical outcome in early and delayed middle cerebral artery recanalization. Neurology. 42 (2), 289-298 (1992).
  8. Shaik, N. F., Regan, R. F., Naik, U. P. Platelets as drivers of ischemia/reperfusion injury after stroke. Blood Adv. 5 (5), 1576-1584 (2021).
  9. Zhang, S. R., et al. Large-scale multivariate analysis to interrogate an animal model of stroke: Novel insights into poststroke pathology. Stroke. 52 (11), 3661-3669 (2021).
  10. Longa, E. Z., Weinstein, P. R., Carlson, S., Cummins, R. Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats. Stroke. 20 (1), 84-91 (1989).
  11. Chen, Y., Ito, A., Takai, K., Saito, N. Blocking pterygopalatine arterial blood flow decreases infarct volume variability in a mouse model of intraluminal suture middle cerebral artery occlusion. J Neurosci Methods. 174 (1), 18-24 (2008).
  12. Yuan, F., et al. Optimizing suture middle cerebral artery occlusion model in c57bl/6 mice circumvents posterior communicating artery dysplasia. J Neurotrauma. 29 (7), 1499-1505 (2012).
  13. Bieber, M., et al. Validity and reliability of neurological scores in mice exposed to middle cerebral artery occlusion. Stroke. 50 (10), 2875-2882 (2019).
  14. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), e3564(2012).
  15. Barone, F. C., Knudsen, D. J., Nelson, A. H., Feuerstein, G. Z., Willette, R. N. Mouse strain differences in susceptibility to cerebral ischemia are related to cerebral vascular anatomy. J Cereb Blood Flow Metab. 13 (4), 683-692 (1993).
  16. Kitagawa, K., et al. Cerebral ischemia after bilateral carotid artery occlusion and intraluminal suture occlusion in mice: Evaluation of the patency of the posterior communicating artery. J Cereb Blood Flow Metab. 18 (5), 570-579 (1998).
  17. Mccoll, B. W., Carswell, H. V., Mcculloch, J., Horsburgh, K. Extension of cerebral hypoperfusion and ischaemic pathology beyond mca territory after intraluminal filament occlusion in c57bl/6j mice. Brain Res. 997 (1), 15-23 (2004).
  18. Liu, Z., et al. Optimisation of a mouse model of cerebral ischemia-reperfusion to address issues of survival and model reproducibility and consistency. Comput Intell Neurosci. 2022, 7594969(2022).
  19. Ward, R., Collins, R. L., Tanguay, G., Miceli, D. A quantitative study of cerebrovascular variation in inbred mice. J Anat. 173, 87-95 (1990).
  20. Hanna, K. L., Hepworth, L. R., Rowe, F. Screening methods for post-stroke visual impairment: A systematic review. Disabil Rehabil. 39 (25), 2531-2543 (2017).
  21. Rowe, F. J. Stroke survivors' views and experiences on impact of visual impairment. Brain Behav. 7 (9), e00778(2017).
  22. Scoles, D., Mcgeehan, B., Vanderbeek, B. L. The association of stroke with central and branch retinal arterial occlusion. Eye (Lond). 36 (4), 835-843 (2022).
  23. Kim, Y. D., et al. Cerebral magnetic resonance imaging of coincidental infarction and small vessel disease in retinal artery occlusion. Sci Rep. 11 (1), 864(2021).
  24. Emiroglu, M. Y., et al. Effects of obstructive carotid artery disease on ocular circulation and the safety of carotid artery stenting. Heart Lung Circ. 26 (10), 1069-1078 (2017).
  25. Cotofana, S., Lachman, N. Arteries of the face and their relevance for minimally invasive facial procedures: An anatomical review. Plast Reconstr Surg. 143 (2), 416-426 (2019).
  26. Xu, X., et al. Dibazol-induced relaxation of ophthalmic artery in C57bl/6J mice is correlated with the potency to inhibit voltage-gated ca(2+) channels. Exp Eye Res. 231, 109468(2023).
  27. Justic, H., et al. Redefining the Koizumi model of mouse cerebral ischemia: A comparative longitudinal study of cerebral and retinal ischemia in the Koizumi and Longa middle cerebral artery occlusion models. J Cereb Blood Flow Metab. 42 (11), 2080-2094 (2022).

الوصول مقيد. يرجى تسجيل الدخول أو بدء فترة تجريبية لعرض هذا المحتوى.

إعادة الطباعة والأذونات

الوسوم

نموذج انسداد الشريان السباتي الأوسطالسكتة الدماغية الإقفاريةنموذج السكتة الدماغية الحيوانيفئران C57أمراض الأوعية الدموية الدماغيةتحضير الخيطأبحاث السكتة الدماغيةنموذج السكتة الدماغية التجريبي

تم نشر هذه المقالة

الفيديو قريباً

تواصل معنا
أوصِ به للمكتبة

الخصوصية

شروط الاستخدام

السياسات

حقوق الطبع والنشر © 2026 MyJoVE Corporation. جميع الحقوق محفوظة.