يصف هذا البروتوكول نظام فحص عالي الإنتاجية يستخدم الاستقطاب الفلوري لمسبار فلورسنت معين مرتبط بمستقبل نووي كقراءة لفحص الملوثات البيئية.
Method Article
يصف هذا البروتوكول نظام فحص عالي الإنتاجية يستخدم الاستقطاب الفلوري لمسبار فلورسنت معين مرتبط بمستقبل نووي كقراءة لفحص الملوثات البيئية.
تم الكشف عن مستويات متزايدة من المركبات في البيئة ، مما تسبب في تلوث واسع النطاق ويشكل مخاطر على صحة الإنسان. ومع ذلك ، على الرغم من حدوثها البيئي العالي ، إلا أن هناك معلومات محدودة للغاية فيما يتعلق بآثارها السمية. من الضروري تطوير طرق الفحص عالية الإنتاجية (HTS) لتوجيه الدراسات السمية. في هذه الدراسة ، تم تطوير مقايسة ربط المستقبلات والترابط باستخدام نظام HTS لتحديد فاعلية ربط الملوثات البيئية على المستقبلات النووية. يتم إجراء الاختبار باستخدام قارئ صفيحة دقيقة (أي صفيحة مكونة من 96 بئرا تحتوي على مواد كيميائية مختلفة) عن طريق قياس استقطاب التألق (FP) لمسبار فلورسنت معين. يتكون هذا الاختبار من أربعة أجزاء: بناء وتحويل النواقل المؤتلفة ، والتعبير عن بروتين المستقبل وتنقيته (مجال ربط الترابط) ، وربط مسبار المستقبلات ، والارتباط التنافسي للمواد الكيميائية بالمستقبل. تم تحديد فاعلية الارتباط لاثنين من الملوثات البيئية ، حمض السلفونيك المشبع بالفلور أوكتين (PFOS) وفوسفات ثلاثي فينيل (TPHP) ، مع مستقبلات غاما المنشطة بانتشار البيروكسيسوم (PPARγ) لتوضيح إجراء المقايسة. أخيرا ، تمت مناقشة مزايا وعيوب هذه الطريقة وتطبيقاتها المحتملة.
تم اكتشاف عدد كبير من المواد الكيميائية على نطاق واسع في البيئة والأجسام البشرية ، مما أثار مخاوف كبيرة بشأن تأثيرها على البيئة البيئية وصحة الإنسان1،2،3. على الرغم من حدوثها البيئي المرتفع ، إلا أن المعلومات المتعلقة بآثارها السمية نادرة. لذلك ، من الضروري تطوير طرق الفحص عالية الإنتاجية (HTS) لتسهيل تقييم السمية الكيميائية.
تم الإبلاغ عن العديد من طرق الفحص عالية الإنتاجية (HTS) لتقييم السمية الكيميائية ، مثل المقايسات الحيوية HTS المستخدمة في برامج Tox21 و ToxCast4،5. يمكن لهذه الطرق تحديد المواد السامة المحتملة بسرعة وتوفير معلومات قيمة عن آليات السمية الكيميائية. ومع ذلك ، تعتمد هذه المقايسات الحيوية HTS بشكل أساسي على الأنظمة القائمة على الخلايا ، والتي يمكن أن تكون معقدة ومكلفة. بالإضافة إلى ذلك ، تم أيضا استخدام طرق التسلسل عالية الإنتاجية لتقييم السمية الكيميائية ، ولكن تحقيق تقييم عالي الإنتاجية للمواد الكيميائية لا يزال يمثل تحديا6. طورت الدراسات السابقة فحوصات ربط تنافسية قائمة على استقطاب التألق (FP) لتحديد فاعلية الارتباط للعديد من الملوثات البيئية ، بما في ذلك مواد البير والبولي فلورو ألكيل (PFAS) 7،8،9 ، وثنائي الفينول A (BPA) 10،11 ، والجسيمات (PM) 12 ، مع المستقبلات النووية مثل المستقبلات المنشطة بانتشار البيروكسيسوم (PPAR) 7 ،8،9،10،13 ، مستقبلات فارنيزويد X (FXR) 11،12 ، ومستقبلات الغدة الدرقية (TR) 14،15. هذا النهج فعال وفعال من حيث التكلفة ويوفر رؤى ميكانيكية.
في هذه الدراسة ، تم وصف بروتوكول مقايسة ربط المستقبل والترابط بناء على الكشف عن استقطاب التألق (FP) لمسبار فلوري صغير. يتم توضيح مبدأ اختبار ربط المستقبلات القائم على FP في الشكل 1. عندما يتم إثارة جزيء فلورسنت صغير بواسطة الضوء المستقطب المستوي ، يصبح الضوء المنبعث مزيل الاستقطاب بدرجة عالية بسبب الدوران الجزيئي السريع. ومع ذلك ، عندما يرتبط المتتبع بمستقبل أكبر ، يتباطأ دورانه. يتم الكشف عن قيمة FP عالية عندما يرتبط المتتبع بالمستقبل الكبير ، بينما يتم ملاحظة قيمة FP منخفضة عندما يكون التتبع مجانيا. تم تنقية مستقبلات جاما المنشطة بمولد التكاثر البيروكسي (PPARγ) لربط المسبار بالمستقبل. تم استخدام Rosiglitazone (Rosi) وحمض البيرفلوروكتان سلفونيك (PFOS) وفوسفات ثلاثي فينيل (TPHP) للتنافس على ارتباط المسبار بالمستقبل. تم استخدام Rosi ، ناهض محدد ل PPARγ ، كعنصر تحكم إيجابي في فحوصات الربط التنافسي للمستقبلات. بالإضافة إلى ذلك ، تم تحديد سلفونات الأوكتين المشبعة بالفلور و TPHP سابقا على أنها ناهضات ضعيفة ل PPARγ في الدراسات السابقة8،9،10،11،12،13،14،15،16،17. علاوة على ذلك ، فهي تنتمي إلى فئات هيكلية مختلفة من المركبات المعروفة بالتعرض البيئي وتتميز بمعدلات اكتشافها العالية نسبيا في البشر. تم استخدام هذه المركبات لزيادة التحقق من صحة التطبيق الواسع لمقايسة المنافسة الملزمة. يتكون الإجراء من أربع خطوات: بناء وتحويل النواقل المؤتلفة ، والتعبير عن بروتين المستقبل وتنقيته (مجال ربط الترابط) ، وربط مسبار المستقبلات ، والارتباط التنافسي للمواد الكيميائية بالمستقبل.
تفاصيل الكواشف والمعدات مدرجة في جدول المواد.
1. بناء وتحويل النواقل المؤتلفة
ملاحظة: PPARγ هو عامل نسخ يعتمد على الترابط مع بنية مستقبلات نووية كلاسيكية ، ويتألف من مجال ربط الحمض النووي الذي ينظم الجينات المستهدفة ومجال ربط الترابط الذي يتم تنشيطه بواسطة الروابط. عند تنشيط الترابط ، يشكل PPARγ مغاير مع مستقبل نووي آخر ، مستقبل الريتينويد X (RXR) ، ويرتبط بعناصر استجابة PPARγ ، وبالتالي ينظم نسخ الجينات المستهدفة النهائية9،16.
2. التعبير عن بروتين المستقبلات وتنقيته
3. اختبار ربط المستقبلات
ملاحظة: في هذا الاختبار ، تم استخدام C1-BODIPY-C12 كمسبار فلوري خاص بالموقع لإنشاء نظام ربط المستقبلات والترابط. C1-BODIPY-C12 ، وهو رابط محدد ل PPARγ ، هو نظير فلوري للأحماض الدهنية مع مجموعة BODIPY الفلورية المدمجة في الأحماض الدهنية في موضع C1.
4. اختبار ملزم تنافسي
ملاحظة: في هذا الاختبار ، تم استخدام 800 نانومتر من مسبار PPARγ-LBD البشري و 50 نانومتر C1-BODIPY-C12 لربط المستقبلات. تم استخدام Rosiglitazone (Rosi) وفوسفات ثلاثي فينيل (TPHP) وحمض البيرفلوروكتان سلفونيك (PFOS) للتنافس مع ارتباط المسبار ب PPARγ.
التعبير عن البروتين وتنقية PPARγ-LBD
تم التعبير عن PPARγ-LBD بشكل غير متجانس في BL21 (DE3) كبروتين موسوم بالهيستيدين. تم اكتشاف البروتين في الكسور القابلة للذوبان ، وأظهر PPARγ-LBD المنقى نطاقا واحدا على SDS-PAGE بوزن جزيئي واضح يبلغ حوالي 34.9 كيلو دالتون (الشكل 2) ، بما يتفق مع الوزن الجزيئي المتوقع للبروتين.
ربط مسبار C 1-BODIPY-C12 ب PPARγ-LBD
في مقايسة ربط المستقبلات ، تم استخدام C1-BODIPY-C12 ، وهو حمض دهني مسمى BODIPY يمكن أن يرتبط ب PPARγ-LBD ، كمسبار مضان لدراسة فاعلية ربط الملوثات البيئية باستخدام hPPARγ-LBD. كما هو موضح في الشكل 3 أ ، زادت قيم الاستقطاب الفلوري (FP) من 20 إلى 250 عند إضافة PPARγ-LBD ، مما يشير إلى ارتباط C1-BODIPY-C12 بالمستقبل. وصل منحنى الربط إلى التشبع عند 800 نانومتر PPARγ-LBD ، مع ثابت تفكك (Kd) يبلغ 253.5 نانومتر ± 10.05 نانومتر. لذلك ، تم اختيار 800 نانومتر PPARγ-LBD لمقايسات الربط التنافسية اللاحقة.
الارتباط التنافسي للملوثات البيئية ب PPARγ-LBD
تم استخدام Rosiglitazone (Rosi) ، وهو ناهض محدد ل PPARγ ، كعنصر تحكم إيجابي لإزاحة مسبار الفلورسنت في فحوصات ربط الترابط التنافسي. كما هو موضح في الشكل 3 ب ، منع روزي ارتباط مسبار C1-BODIPY-C12 ب PPARγ-LBD بطريقة تعتمد على الجرعة ، مع IC50 من 6.89 ميكرومتر ، مما يدل على جدوى الفحص. بعد ذلك ، تم تحديد الصلات المرتبطة بين TPHP و PPARγ LBD. كما هو مبين في الشكل 3 جيم و دال ، فإن TPHP و PFOS يثبطان أيضا ارتباط مسبار C1-BODIPY-C12 ب PPARγ-LBD بطريقة تعتمد على الجرعة ، مع قيم IC50 تبلغ 60.45 ميكرومتر و 37.27 ميكرومتر ، على التوالي.

الشكل 1: رسم تخطيطي لمقايسات الربط التنافسي القائمة على الاستقطاب الفلوري (FP). الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الشكل.

الشكل 2: تحليل SDS-PAGE ل PPARγ-LBD المنقى. M هي علامة الوزن الجزيئي للبروتين. Cl هو محللة الخلية ، و FT هو جزء التدفق ، و W1-W6 هي محاليل الغسيل ، و E1 هي الشطف ، و E2-E4 هي بروتينات PPARγ-LBD المنقاة. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.

الشكل 3: منحنى ربط المستقبلات القائم على الاستقطاب الفلوري (FP) ومنحنيات الربط التنافسية. (أ) منحنى الربط القائم على FP ل C 1-BODIPY-C12 ب PPARγ-LBD البشري. (ب-د) منحنيات الربط التنافسية القائمة على FP من Rosi و TPHP و PFOS إلى PPARγ-LBD البشري. تشير أشرطة الخطأ إلى الانحراف المعياري (SD) لثلاث تجارب مستقلة. الرجاء النقر هنا لعرض نسخة أكبر من هذا الرقم.
| معرف | تسلسل | ||
| pET28a-PPARG-P1 البشري | CAAATGGGTCGCGGATCCATGATCGACCAGCTGAATCCAGAGTCC | ||
| pET28a-الإنسان PPARG-P2 | GTGGTGGTGGTGCTCGAGTCAGTACAAGTCCTTGTAGATCTC | ||
| تسلسل النوكليوتيدات PPARγ-LBD | AGACGACATTCCCTCTAGAATAATTTTGTTTTTAACTTTAAGAAGGAGAT ATACCATGGGCAGCAGCCATCATCATCATCATCATCATCATCACACAGCAGCGGCCTG GTGCCGCGCGGCAGCCATATGGCTAGCATGACTGGTGGACAGCAAA TGGGTCGCGGATCCATGATCGACCAGCTGAATCCAGAGTCCGCTGAC CTCCGGGCCCTGGCAAAAACATTTGTATGACTCATACATAAAGTCCTTCC CGCTGACCAAAGCAAAGGCGAGGGCGATCTTGACACAGGAAAGACAACA GACAAATCACCATTCGTTATCTATGACATGAATTCCTTAATGATGGGAGA AGATAAAATCAAGTTCAAACACATCACCCCCCTGCAGGAGCAGAGCACACACACACACACACACACACA. AGAGGTGGCCATCCGCATCTTTCAGGGCTGCCTCGCTGCCTCGCTCCGTGG AGGCTGTGCAGGAGATCACAGAGTATGCCAAAAGCATTCCTGGTTTTG TAAATCTTGACTTGAACGACCAAGTAACTCTCCTCAAATATGGAGTCCA CGAGATCATTTACACAATGCTGGCCTCTCTTGATGAATAAAGATGGGGT TCTCATATCCGAGGGCCAAGGCTTCATGACACAAGGGGGTTTCTAAAG AGCCTGCGAAAGCCTTTTGGTGACTTTTTATGGAGCCCAAGTTTGAGT TTGCTGTGAAGTTCAATGCACTGGAATTAGATGACAGCGACTTGGCAA TATTTATTGCTGTCATTATTCTCAGTGGAGACCGCCCAGGTTTGCTGAA TGTGAAGCCCATTGAAGACATTCAAGACAACCTGCTACAAGCCCTGG AGCTCCAGCTGAAGCTGAACCCTGAACCCTGAGTCCTCACAGCTGTGTGTG CCAAGCTGCTCCAGAAAATGACACAGACCACCACCACCAGATTGTCACGGA ACACGTGCAGCTACTGCAGGTGATCAAGAAGACGGAAACCGACATG AGTCTTCACCCGCTCCTGCAGGAGATCTACAAGGACTTGGACTGGGG CTCGAGGCCACCCACCACCC | ||
الجدول 1: تسلسل التمهيدي والنيوكليوتيدات لمجال ربط الترابط PPARγ.
| أسماء الكواشف التجريبية | الحجم / الجرعة |
| pET28a-PPARG-P1 البشري | 1 ميكرولتر |
| pET28a-الإنسان PPARG-P2 | 1 ميكرولتر |
| 2×فانتا ماكس ماستر ميكس | 12.5 ميكرولتر |
| (كدنا) | 2 ميكرولتر |
| ddH2O | 8.5 ميكرولتر |
الجدول 2: نظام الكاشف التجريبي PCR.
| أسماء التجارب | درجة الحرارة | الوقت |
| التمسخ المسبق | 95 درجة مئوية | 3 دقائق |
| التمسخ | 95 درجة مئوية | 15 ثانية |
| الصلب | 65 درجة مئوية | 15 ثانية |
| امتداد | 72 درجة مئوية | 6 دقائق |
| دكان | 12 درجة مئوية | -- |
الجدول 3: برنامج التفاعل التجريبي PCR.
يعد الاستقطاب الفلوري (FP) ، ورين البلازمون السطحي (SPR) ، والرنين المغناطيسي النووي (NMR) من التقنيات الشائعة المستخدمة لتقييم تفاعلات الارتباط المباشر بين البروتينات والمركبات19،20. تم استخدام FP على نطاق واسع في التحقيق في التفاعلات الجزيئية لاكتشاف الأدوية والفحص الكيميائي21،22،23. وبالمقارنة ، فإن فحوصات SPR و NMR باهظة الثمن وتستغرق وقتا طويلا ، مما يجعلها أقل ملاءمة لتطبيقات الفحص عالية الإنتاجية (HTS). يصف هذا البروتوكول طريقة تحليل المستقبلات والترابط القائمة على FP مع نظام الكشف عن الألواح متعددة الآبار ، مما يتيح HTS للمواد الكيميائية.
يعد اختيار المسبار المناسب لمقايسة ربط المستقبلات أمرا بالغ الأهمية. يجب أن يتكون المسبار من مكونين: رابط محدد للمستقبل النووي ومجموعة الفلورسنت. عادة ، يمكن الحصول على مثل هذه المجسات تجاريا ، كما يتضح من مسبار C1-BODIPY-C12 المستخدم في هذه الدراسة. C1-BODIPY-C12 هو نظير فلوري للأحماض الدهنية ، مع مجموعة الفلورسنت BODIPY المدمجة في الموضع C1 ، وهو رابط محدد ل PPARγ. إذا لم يكن مسبار الفلورسنت المتاح تجاريا خيارا ، فيجب تصنيعه كيميائيا عن طريق ربط مجموعة فلورية برابط محدد معروف.
يشتمل الهيكل الكلاسيكي للمستقبل النووي على مجال ربط الحمض النووي المسؤول عن تنظيم التعبير الجيني المستهدف ومجال ربط الترابط (LBD) ، والذي يقع عادة في الطرف C24 للمستقبل. تم العثور على موقع ربط المنظم المشترك بشكل عام داخل مجال وظيفة تنشيط النسخ للمستقبل النووي ، حيث يتفاعل مع عوامل التنظيم النوويالمشترك 25. يمكن لهذه المنظمات المساعدة إما تعزيز أو قمع نشاط النسخ للمستقبل ، وبالتالي تعديل التعبير الجيني. ينظم LBD ، الموجود في منطقة معينة من بروتين المستقبل ، التغيرات التوافقية للمستقبل عند ارتباط الترابط ، والذي بدوره ينشط أو يثبط نشاطه النسخي. نظرا لأن LBD هو مجال محدد جيدا وضروري للتعرف على روابط الجزيئات الصغيرة المحددةوربطها 24 ، فقد تم استخدام المستقبل LBD فقط في مقايسة الربط التنافسي للمستقبلات في هذه الدراسة. هذا النهج ، الذي تضمن التعبير عن مجال ربط الترابط ل PPARγ وتنقية ، قلل من تكاليف الفحص.
الكواشف المستخدمة في هذه الطريقة ، بما في ذلك المخازن المؤقتة لتنقية البروتين ، ومسبار C1-BODIPY-C12 ، و Tris-HCl ، متوفرة تجاريا وغير مكلفة ، وهي ميزة كبيرة للمقايس. يتم إجراء الكشف عن الاستقطاب الفلوري (FP) في لوحة متعددة الآبار (إما 96 بئر أو 384 بئر) ، مع وقت قراءة سريع يبلغ 3-5 دقائق لكل لوحة ، مما يعزز إنتاجية الاختبار وكفاءته. نهج ربط المستقبلات والترابط مرن للغاية ويمكن تكييفه بسهولة مع المستقبلات المختلفة ، بشرط توفر بروتينات المستقبلات. تعمل هذه القدرة على التكيف على توسيع نطاق البحث الذي يمكن إجراؤه باستخدام هذه الطريقة. بشكل عام ، فإن الجمع بين هذه المزايا - سهولة الاستخدام ، وكفاءة التكلفة ، والقدرة العالية على الإنتاجية ، والمعالجة السريعة ، والمرونة في التكيف مع المستقبلات - يجعل هذه الطريقة خيارا واعدا لفحص الملوثات البيئية السامة.
وتبين النتائج الحالية أن سلفونات الأوكتين المشبعة بالفلور وسلفونات اليوتين الطارئة يمكن أن ترتبط ب PPARγ، وهو ما يتفق مع النتائج السابقة من الالتحام الجزيئي ومقايسات الجينات المراسلة9،26. بالإضافة إلى ذلك ، تم استخدام الطريقة الموضحة في هذه المخطوطة لتقييم فاعلية الارتباط للعديد من الملوثات البيئية بالمستقبلات النووية. على سبيل المثال ، باستخدام مقايسة الربط التنافسي للمستقبلات القائمة على FP ، وفاعلية الارتباط ل 19 مادة لكل وبولي فلورو ألكيل (PFASs) و 7 مركبات بيسفينول أ (BPA) لمستقبلات الانتشار البيروكسيسوم β / δ (PPARβ / δ) 7،10 ، 12 PFASs إلى PPARγ9،13 ، 7 مركبات BPA و 3 مكونات جسيمات (PM2.5) لمستقبلات فارنيزويد X (FXR) 11 ، تم تحديد 12 و 8 إثيرات ثنائي الفينيل متعددة البروم (PBDEs) و 6 ثنائي الفينيل متعدد الكلور (PCBs) لمستقبلات الغدة الدرقية (TR) 14،15. تسلط هذه النتائج الضوء على إمكانات هذه الطريقة لفحص التفاعلات الملزمة بين الملوثات البيئية والمستقبلات النووية.
أبلغت الدراسات السابقة عن طرق فحص الاستقطاب الفلوري (FP) ل PPARγ التي تتضمن استخدام ترشيح الهلام لقياس الارتباط ، والذي يتطلب 1.5 ساعة على الأقل للكشف عن ارتباط مركب واحد23. في المقابل ، تسمح هذه الطريقة باكتشاف تقاربات الارتباط لما لا يقل عن 12 مركبا مع PPARγ في غضون 10 دقائق. بالإضافة إلى ذلك ، يتم تسعير بعض مجموعات الفحص المتاحة تجاريا (انظر جدول المواد) بأكثر من 3000 دولار لتنسيق 800 × 20 ميكرولتر. هذه الأساليب باهظة الثمن بشكل ملحوظ وتستغرق وقتا طويلا. تقدم هذه الدراسة تحسينات على هذه الطرق الحالية.
أحد القيود المحتملة لهذه الطريقة هو أن مسبار التألق يجب أن يكون رابطا للمستقبل ، ولا تتفاعل مجسات التألق مع الملوثات البيئية مباشرة. لذلك ، من الأهمية بمكان التأكد من أن المسبار والملوثات البيئية منفصلان في المحلول. بالإضافة إلى ذلك ، يعكس هذا الاختبار حالة في المختبر ولا يمكنه التقاط التفاعلات في الجسم الحي بشكل كامل ، حيث أن المستقبلات غير متجانسة في الجسم الحي27. وبالتالي ، في حين أن هذه الطريقة تعمل كأداة فحص سريعة ، فمن الضروري إجراء مزيد من التحقيق في تنشيط المستقبلات والآليات السمية ذات الصلة في الجسم الحي .
عيب آخر هو ظاهرة "التحول إلى اليمين" التي لوحظت في فحوصات الاستقطاب الفلوري (FP) عند تقييم تقارب الربط ، مما قد يؤدي إلى التقليل المنهجي من الصلات المقاسة. في الدراسات السابقة ، تم تقييم تقارب ربط روزيجليتازون مع PPARγ باستخدام مقايسة نقل طاقة الرنين الفلوري (TR-FRET) التي تم حلها بمرور الوقت (TR-FRET)28 ، وهي طريقة حساسة للغاية لقياس تقارب ارتباط مستقبلات الترابط. ومع ذلك ، فإن مقايسة TR-FRET تستغرق وقتا طويلا ومرهقة نسبيا ، وتتطلب حضانة محلول التفاعل لمدة 4 ساعات في درجة حرارة الغرفة قبل اكتشافها. على الرغم من أن مقايسة FP تظهر حساسية أقل مقارنة بمقايسة TR-FRET ، إلا أنها أكثر ملاءمة للفحص عالي الإنتاجية للروابط البيئية التي ترتبط بالمستقبلات النووية. ومع ذلك ، قد يفتقد اختبار FP بعض الروابط البيئية الضعيفة. وبالإضافة إلى ذلك، في دراسات سابقة، تم تحديد تقارب ارتباط سلفونات الأوكتين المشبعة بالفلور مع سلفونات الأوكتين المشبعة بالفلور باستخدام غسيل الكلى التوازني (EqD)29، وهي طريقة أخرى شديدة الحساسية لقياس تقارب ارتباط مستقبلات الترابط. ومع ذلك ، تعتمد EqD على المعدات التحليلية باهظة الثمن (LC-MS / MS) ، مما يحد من تطبيقها ويمنع قدرات الفحص عالية الإنتاجية.
على الرغم من أن مقايسة الاستقطاب الفلوري (FP) تظهر ظاهرة "التحول الأيمن" ، والتي قد تؤدي إلى قيم IC50 محسوبة أعلى بشكل عام ، إلا أنها لا تؤثر على ترتيب التقارب النسبي أو تنبؤات تقييم المخاطر اللاحقة. علاوة على ذلك ، فإن اختبار FP فعال من حيث التكلفة وفعال من حيث الوقت وقادر على فحص مجموعة واسعة من المركبات للتأكد من تقاربها مع مستقبلات نووية متعددة. بشكل عام ، يسهل الفحص عالي الإنتاجية القائم على FP للروابط البيئية التعرف السريع على الملوثات البيئية السامة.
ويعلن المؤلفان أنه لا يوجد تضارب في المصالح.
تم دعم هذا العمل من قبل المؤسسة الوطنية للعلوم الطبيعية في الصين (المنحة رقم 82103875).
| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| C1< / sub>-BODIPY-C12< / sub> مسبار | Thermo Fisher Scientific ، الصين | 102209-82-3 | يرتبط ب PPAR & gamma ؛ -LBD وينبعث منه تألق. |
| Coomassie Brilliant Blue R-250 | Solarbio ، الصين | 6104-59-2 | وصمة عار العصابات البروتينية. |
| GraphPad prism | Dotmatics | https://www.graphpad.com/features | |
| imidazole | Solarbio ، الصين | I8090 | قم بإعداد المخازن المؤقتة لعملية تنقية البروتين. |
| الأيزوبروبيل & بيتا ;-D-1-thiogalactopyranoside | Solarbio, الصين | 367-93-1 | الحث على التعبير عن PPARγ-LBD |
| Microplate قارئ | Biotek , الولايات المتحدة الأمريكية | التآزر H1 | الكشف عن قيمة FP |
| كلوريد | الصوديوم شنغهاي | 7647-15-5 | قم بإعداد مخازن مؤقتة لعملية تنقية البروتين. |
| NaH2PO4 · 2H2O | كاشف شنغهاي | 13472-35-0 | إعداد المخازن المؤقتة لعملية تنقية البروتين. |
| Ni NTA Beads 6FF | Smart-Lifesciences ، تنقية | البروتين SA005005 | الصين. |
| الأصل 8.5 | OriginLab, نورثهامبتون, ماساتشوستس, الولايات المتحدة الأمريكية | ||
| حمض السلفونيك المشبع بالفلور أوكتين (PFOS) | J& K Scientific Ltd ، الصين | 1763-23-1 | الملوثات البيئية المكتشفة |
| Phenylmethylsulfonyl fluoride (PMSF) | Solarbio ، الصين | P0100 | تمنع تدهور البروتين. |
| PPAR & gamma ;-Competitor Assay | Kit Thermo Fisher Scientific | PV6136 | https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/PV6136 |
| PPAR & gamma ;-LBD Ligand Screening Assay Kit | كايمان | 600616 | https://www.caymanchem.com/product/600616 |
| Rosiglitazone (Rosi) | علاء الدين ، الصين | 122320-73-4 | ناهضات PPAR & gamma ؛ |
| شاكر | ZHICHENG ، الصين | ZWY-211C | توسيع الثقافة البكتيرية وتحريض تعبير البروتين |
| ثلاثي الفينيل الفوسفات (TPHP) | ماكلين ، الصين | T819317 | الملوثات البيئية المكتشفة |
| Tris | Solarbio ، الصين | T8230 | إعداد المخازن المؤقتة لعملية تنقية البروتين. |
| Tryptone | OXOID Limited ، الصين | LP0042B | تحضير وسط مرق Lysogeny (LB). |
| منظف بالموجات فوق الصوتية | كيمبرلي ، الصين | LHO-1 | تعطيل البكتيريا لتحقيق التحلل الكامل |
| Urea | Solarbio ، الصين | U8020 | إعداد المخازن المؤقتة لعملية تنقية البروتين. |
| مستخلص الخميرة | OXOID Limited ، الصين | LP0021B | تحضير مرق Lysogeny (LB) متوسط. |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request Permission